ES2276436T3 - Cebadores para la deteccion de vih-1. - Google Patents

Cebadores para la deteccion de vih-1. Download PDF

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Abstract

LA PRESENTE INVENCION APORTA CEBADORES MEJORADOS PARA LA AMPLIFICACION POR LA REACCION EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR) DE UNA SECUENCIA DE ACIDO NUCLEICO DEL GEN GAG DEL VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA TIPO 1 (VIH-1). LOS CEBADORES Y LOS METODOS DE AMPLIFICACION DE LA INVENCION PERMITEN LA DETECCION DE TODOS LOS VIRUS AISLADOS DE VIH-1 DEL GRUPO 1 CON EFICIENCIA CASI UNIFORME.

Description

Cebadores para la detección de VIH-1.
La presente invención se refiere al campo de la biología molecular y a la química de los ácidos nucleicos. Más específicamente se refiere a los métodos y reactivos para detectar el virus de la inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1). La invención por lo tanto tiene aplicaciones en el campo de la medicina en general, de los diagnósticos médicos en particular, y en el campo de la biología molecular.
La invención de métodos para amplificar las secuencias específicas de los ácidos nucleicos, en particular, la reacción en cadena de la polimerasa (RCP), hace posible la rápida detección de los ácidos nucleicos presentes en una muestra en lo que previamente era una cantidad indetectablemente baja (ver patente americana nr. 4.683.195; 4.683.202 y 4.965.188). El desarrollo y la aplicación de la RCP se han descrito ampliamente en la literatura. Por ejemplo, una gama de temas relacionados con la RCP se comenta en PCR Technology - Principles and applications for DNA amplification, 1989, (ed. H.A. Erlich) Stockton Press, New Cork, NY; PCR Protocols: A guide to methods and applications, 1990; (ed. M.A. Innis et al) Academic Press, San Diego, CA; and PCR Strategies, 1995 (ed. M.A.Innis et al.) Academic Press, San Diego, CA. Comercial vendors, como Perkin Elmer (Norwalk, CT), market PCR reagents and publish PCR protocols.
El uso de la RCP y de la hibridación de muestras para amplificar y detectar el ácido nucleico del VIH-1 se ha revisado en Kwok, 1992, Ann. Med. 24:211-214 y Coutlee y cols., 1991, Mol. Cell. Probes 5:241-259. Los ensayos de detección del VIH basados en la RCP se han descrito en, por ejemplo, las patentes americanas nr. 5.008.182 y 5.176.775; Kellogg y Kwok, 1990, en los protocolos de la RCP: A guide to methods and applications, (ed. Innis et al) Academic Press, San Diego, CA:337-347; Holodniy y cols., 1991. J. Inf. Dis. 163:802-865; Jackson y cols., 1991, AIDS 5:1463-1467; y Mulder y cols., 1994, J. Clin.Microbiol.32(2): 292-300.
Los estuches comerciales para la amplificación y detección del VIH-1 se encuentran disponibles en el comercio en Hoffmann-La Roche (Nutley, NJ). La prueba Amplicor^{TM} VIH-1 es un ensayo in vitro para la detección del ADN provírico del VIH-1. La prueba AMPLICOR HIV-1 MONITORTM es un ensayo in vitro para la cuantificación del ARN del VIH-1. Ambos ensayos Amplicor amplifican los ácidos nucleicos del VIH-1 usando el primer par SK462 (SEQ ID NO:5) y SK431 (SEQ ID NO:6), descritos en Mulder y cols., 1994, J.Clin.Microbiol.32(2):292-300, y a los que se hace referencia aquí como cebadores Amplicor HIV-1.
El VIH-1 muestra una variabilidad de la secuencia genómica considerable. Se ha descrito el análisis filogenético de las secuencias de ácidos nucleicos de los genes gag y env de VIH-1 en Myers y cols., 1993, Human retrovirus y AIDS 1993, Los Alamos Nacional Laboratory, Los Alamos, NM, a los que se hace aquí referencia. Dentro de los grupos M se han identificado los subtipos A-J. La WO 96/17079 describe el método de amplificación de la repetición terminal. Para la amplificación de un VIH-1 determinado artificial se utiliza un cebador que tenga una secuencia que se solape a los cebadores SKCC1 y SKCC3 descritos en la solicitud actual.
Las técnicas convencionales de biología molecular y de química de los ácidos nucleicos que se conocen en la actualidad se explican en la literatura. Ver, por ejemplo, Sambrook y cols. 1989, Molecular Cloning - A laboratory Manual, Cold Spring Harbour Laboratory, Cold Spring Harbor, New Cork; Oligonucleotide Síntesis (M.J.Gait, ed., 1984); Nucleic Acid Hybridization (B.D. Hames y S.J. Higgins. eds., 1984); and a series, Methods in Enzymology (Academic Press, Inc).
Una serie de cepas del grupo M del virus de inmunodeficiencia adquirida tipo 1 han sido identificadas. Se trata de cepas amplificables y no amplificables eficazmente usando cebadores del gen gag descritos con anterioridad, en particular, los cebadores Amplicor HIV-1, SK462 (SEQ ID NO:5) y SK431 (SEQ ID NO:6). Estas cepas exhiben una variabilidad de secuencia previamente no vista en la región que encierra los lugares de enlace del cebador de los cebadores Amplicor HIV-1.
Un objetivo de la presente invención es conseguir unos pares de cebadores mejorados que permitan una amplificación eficaz de estas cepas recién descubiertas, además de todas las cepas amplificables con los cebadores Amplicor HIV-1. Además, los primeros pares de la presente invención permiten la amplificación de todas las cepas conocidas del grupo M de VIH-1 con una eficacia casi uniforme.
Un aspecto de la presente invención se refiere a pares de cebadores de oligonucleótidos mejorados que permitirán la amplificación de la reacción en cadena de la polimerasa (RCP) de una región del gen gag de las cepas del grupo M de VIH-1 de los subtipos A-G con casi una eficacia uniforme y sin la amplificación simultánea de las secuencias no correspondientes.
En particular, la presente invención se refiere a pares de cebadores de oligonucleótidos para la amplificación del ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia adquirida tipo 1 (VIH-1), de forma que dicho cebador de nucleótido sea el SK145 (SEQ ID NO:1) y SKCC1 (SEQ ID NO:3) o bien SK145 (SEQ ID NO:1) y SKCC3 (SEQ ID NO:4).
En una configuración adicional estos pares de cebadores se podrán combinar con el cebador SK145M2 (SEQ ID NO:2) en un grupo de cebadores de oligonucleótidos formado por cebadores de oligonucleótidos SK145 (SEQ ID NO:1), SKCC1 (SEQ ID NO:3) y SK145M2 (SEQ ID NO:2) o bien en un grupo de cebadores de oligonucleótidos formado por los cebadores de oligonucleótidos SK145 (SEQ ID NO:1), SKCC3 (SEQ ID NO:4) y SK145M2 (SEQ ID NO:2).
Otro aspecto de la invención se refiere a los métodos mejorados para amplificar una región del gen gag de los subtipos del grupo M del VIH-1 que comprendan llevar a cabo una RCP usando los pares de cebadores de la invención.
Otro aspecto de la invención se refiere a los estuches que contengan un par de cebadores de amplificación de la presente invención. Estos estuches pueden incluir unos reactivos adicionales, como las muestras de detección o bien uno o más reactivos de amplificación, por ejemplo, la polimerasa, los tampones y los trifosfatos de nucleósido.
Para comprender mejor la invención se definen varios términos a continuación.
Los términos "ácido nucleico" y "oligonucleótido" se refieren a los polideoxirribonucleótidos (que contienen 2-deoxi-D-ribosa), a los polirribonucleótidos (que contienen D-ribosa) y a cualquier otro tipo de polinucleótido que sea un glucósido N de una base de purina o pirimidina, o base de purina o pirimidina modificada. No existe una distinción clara en la longitud entre los términos "ácido nucleico" y "oligonucleótido", y estos términos se usarán sin intercambiarse. Estos términos se refieren únicamente a la estructura primaria de la molécula. Por consiguiente, estos términos incluyen el ADN de ramificación simple y doble, así como el ARN de ramificación doble y simple.
Los oligonucleótidos pueden prepararse mediante un método adecuado, que incluya la clonación y restricción de las secuencias apropiadas y la síntesis química directa por un método como el método del fosfotriéster de Narang y cols., 1979, Meth. Enzymol. 68:90-99; el método del fosfodiéster de Brown y cols., 1979, Meth. Enzymol. 69:109-151; el método de la dietilfosforamidita de Beaucage y cols., 1981, Tetrahedron Lett.22: 1859-1862; y el método del soporte sólido de la patente americana nr. 4.458.066. Una revisión de los métodos de síntesis se obtiene en Goodchild, 1990, Bioconjugate Chemistry 1(3):165-187.
El término "hibridación" se refiere a la formación de una estructura dúplex o de duplicidad por dos ácidos nucleicos de ramificación simple debida a pares de bases complementarias. La hibridación puede ocurrir entre ramas de ácido nucleico totalmente complementarias o bien entre ramas de ácido nucleico "sustancialmente complementarias" que contengan regiones mínimas de emparejamiento incorrecto o incompatibilidad. Las condiciones en las cuales únicamente ramas de ácido nucleico totalmente complementarias hibridarán se conocen como "condiciones de hibridación astringentes" o "condiciones de hibridación específicas de la secuencia". Las duplicidades estables de secuencias sustancialmente complementarias se pueden conseguir en unas condiciones de hibridación menos astringentes; el grado de emparejamiento incorrecto o incompatibilidad tolerado se puede controlar mediante el ajuste apropiado de las condiciones de hibridación. Los expertos en el tema de la tecnología del ácido nucleico pueden determinar la estabilidad de la duplicidad de forma empírica, considerando una serie de variables que incluirán, por ejemplo, la longitud y la concentración del par de base de los oligonucleótidos, la resistencia iónica, y la incidencia de pares de bases incompatibles, siguiendo las directrices según el modelo (ver, por ejemplo, Sambrook y cols., 1989, Molecular Cloning - A laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New Cork; y Wetmur, 1991, Critical Reviews in Biochem and Mol. Biol. 26(3/4):227-259).
El término "cebador" se refiere a un oligonucleótido, natural o sintético, capaz de actuar como un punto de inicio de la síntesis del ADN en unas condiciones en las que se induce la síntesis de un producto de extensión del cebador complementario a una rama de ácido nucleico, por ejemplo, en presencia de cuatro trifosfatos de nucleósido distintos y un agente de polimerización (es decir, polimerasa de ADN o transcriptasa invertida) en un tampón apropiado y a una temperatura apropiada. Un cebado es preferiblemente un oligodeoxirribonucleótido de rama única. La longitud apropiada de un cebador depende del uso previsto del cebador pero oscila típicamente entre 15 y 35 nucleótidos. Las moléculas de cebador cortas generalmente requieren temperaturas más frías para formar unos complejos híbridos suficientemente estables con el patrón. Una primera necesidad no refleja la secuencia exacta del ácido nucleico modelo, pero debe ser suficientemente complementaria para formar un híbrido con el patrón. Los cebadores pueden incorporar unas características adicionales que permitan la detección o inmovilización del cebador pero no alteren la propiedad básica del cebador, la de actuar como punto de inicio de la síntesis del ADN. Por ejemplo, los cebadores pueden contener una secuencia de ácido nucleico adicional en el extremo 5' que no forme híbridos con el ácido nucleico de referencia, pero que facilite la clonación del producto amplificado. La región del cebador que es suficientemente complementaria con el modelo para formar híbridos se conoce aquí como región de hibridación.
Tal como aquí se usa, el cebador "corriente arriba" se refiere al cebador cuyo producto de extensión es una subsecuencia de la rama de codificación. El cebador "corriente abajo" se refiere al cebador cuyo producto de extensión es una subsecuencia de la rama no codificada complementaria.
Los términos "secuencia de referencia", "región de referencia" y "ácido nucleico de referencia" se refieren a una zona de un ácido nucleico que ha de ser amplificada, detectada o bien analizada de otro modo.
Tal como se utiliza aquí, un cebador es "específico" para una secuencia de referencia si el número de emparejamientos incorrectos o incompatibilidades presentes entre el cebador y la secuencia de referencia es menor al número de emparejamientos incorrectos entre el cebador y las secuencias que no son de referencia que podrían estar presentes en una muestra. Las condiciones de hibridación en las que se forman duplicidades estables se pueden elegir únicamente si el número de incompatibilidades presente no es superior al número de incompatibilidades presente entre el cebador y la secuencia de referencia. En dichas condiciones, el cebador específico de referencia puede formar una duplicidad estable solamente con una secuencia de referencia. Por consiguiente, el uso de cebadores específicos de referencia en unas condiciones de amplificación suficientemente astringentes permite la amplificación específica de aquellas secuencias que contienen los puntos de enlace del cebador de referencia. Del mismo modo, el uso de muestras específicas de referencia en unas condiciones de hibridación suficientemente astringentes permite la detección de una secuencia de referencia específica.
El término "mezcla de reacción de amplificación" se refiere a una solución que contiene los reactivos necesarios para llevar a cabo una reacción de amplificación y contiene típicamente cebadores, una polimerasa de ADN termoestable, dNTP, y un catión metálico divalente en un tampón adecuado. Una mezcla de reacción se considera completa si contiene todos los reactivos necesarios para llevar a cabo la reacción, e incompleta si contiene únicamente un subgrupo de los reactivos necesarios. Un experto en el tema considerará que los componentes de la reacción son almacenados de forma rutinaria como soluciones distintas, conteniendo cada una de ellas un subgrupo del total de componentes, por cuestiones de conveniencia, estabilidad en el almacenamiento, o para permitir el ajuste dependiente de la aplicación de las concentraciones de componentes, y que los componentes de reacción se combinen previamente a la reacción para completar una mezcla de reacción. Además, un experto en el tema entenderá que los componentes de la reacción se empaqueten por separado para su comercialización y que los estuches comerciales útiles puedan contener cualquier subgrupo de componentes de reacción que incluya cebadores de la presente invención.
Cebadores de amplificación del VIH-1
Los pares de cebadores de la presente invención permiten la amplificación de ácidos nucleicos de los subtipos del grupo M de VIH-1. Los pares de cebadores representan una mejoría significativa respecto a los cebadores descritos con anterioridad ya que permiten la amplificación del ácido nucleico de una región del gen gag de todas las cepas de subtipos A-G que pertenecen al grupo M con una eficacia casi uniforme, incluyendo las cepas recién descubiertas. Las se-
cuencias de nucleótidos de los cebadores se indican a continuación, de izquierda a derecha en una orientación 5' a 3'.
Cebadores corriente arriba
SK145 (SEQ ID NO:1) AGTGGGGGACATAAGCAGCCATGCAAAT
SK145M2 (SEQ ID NO:2) AGTGGGGGACACAGGCAGCAATGCAAAT
\vskip1.000000\baselineskip
Cebadores corriente abajo
SKCC1 (SEQ ID NO:3) TACTAGTAGTTCCTGCTATGTCACTTCC
SKCC3 (SEQ ID NO:4) TGAAGGGTAGTAGTTCCTGCTAT
Los cebadores corriente abajo se puede usar con cualquier cebador corriente arriba que aquí se indique. Los cebadores corriente abajo se utilizan preferiblemente con el cebador corriente arriba SK145(SEQ ID NO:1), opcionalmente junto con el cebador corriente arriba SK145M2(SEQ ID NO:2). El cebador corriente arriba SK145(SEQ ID NOR:1)se ha descrito en Kellogg y Kwok, 1990, en Protocolos de la RCP: A guide to Methods and Applications (ed. Innis et al.), Academic Press, San Diego, CA:337-347. El segundo cebador corriente arriba, SK145M2 (SEQ ID NO:2), forma híbridos en la misma región que el SK145 (SEQ ID NO:1), pero ha sido diseñado para compatibilizar más estrechamente con la secuencia de nucleótidos de ciertas cepas de VIH-1 de los subtipos A y E. Tal como se muestra en los ejemplos, el uso de ambos cebadores corriente arriba puede ayudar a equilibrar la eficacia de amplificación de subtipos especiales.
Amplificación
Las amplificaciones se llevan a cabo en unas condiciones que permitan la amplificación de todos los subtipos M del grupo HIV-1, pero que sean suficientemente astringentes como para evitar la amplificación de secuencias que no sean de referencia. Las condiciones de reacción de amplificación preferidas se describen en los ejemplos, en Mulder y cols., 1994, J.Clin. Microbiol. 32(2):292-300, y en el producto adicional de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. Las condiciones exactas no son un aspecto crítico de la invención. La optimización de las condiciones de amplificación se puede realizar de forma rutinaria en base a las directrices aquí propuestas.
Los pares y métodos de cebadores de la presente invención se pueden usar para detectar tanto el ADN provírico del VIH-1 como el ARN del VIH-1. La amplificación del ARN usando una trascripción invertida/reacción en cadena de la polimerasa (TI/RCP) es bien conocida y se ha descrito en las patentes americanas nr. 5.322.770 y 5.310.652; Myers y Gelfand, 1991, Biochemistry 30(31):7661-7666; y Young y cols.,1993, J.Clin.Microbiol. 31(4):882-886. La amplificación TI-RCP del ARN del VIH-1 se describe en Mulder y cols.,1994, J.Clin.Microbiol. 32(2):292-300 y Holodniy y cols., 1991, J.Inf.Dis. 163:802-865.
Los métodos para la preparación de muestras adecuados para la amplificación del ADN y del ARN del VIH-1 se describen en la literatura. El método especial usado no es un aspecto crítico de la presente invención. Un experto en la materia puede seleccionar y optimizar los métodos de preparación de muestras adecuados en base a las directrices que aquí se indican. Los métodos de preparación de muestras preferidos para utilizar en la detección del ADN provírico del VIH-1 se han descrito en Casareale y cols., 1992, PCR Methods and Applications 2:149-153 and Butcher and Spadoro, 1992, Clin. Immunol. Newsletter 12:73-76. Un estuche de preparación de muestras preferido para la detección del ADN provírico del HIV-1 se encuentra disponible en el comercio como parte de la prueba Amplicor HIV-1. Los métodos de preparación de muestras preferidos para utilizar en la detección del ARN del HIV-1 en plasma se han descrito en Mulder y cols., 1994, J. Clin. Microbiol. 32(2):292-300. Un estuche de preparación de muestras preferido para la detección y/o cuantificación del ARN del HIV-1 se encuentra disponible como parte de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR.
Análisis del producto amplificado
Los pares de cebadores de amplificación y los métodos de la presente invención son adecuados para cualquier aplicación que utilice ácido nucleico amplificado. Por ejemplo, la clonación y/o la secuenciación de las secuencias de HIV-1 vienen facilitadas por el uso de los cebadores actuales. Los métodos para detectar los ácidos nucleicos amplificados de la RCP son bien conocidos. El método utilizado para analizar el ácido nucleico amplificado no es un aspecto crítico de la invención y se puede utilizar cualquier método adecuado. Preferiblemente, la amplificación del ARN del HIV-1 se utiliza tal como se ha descrito en los ejemplos para cuantificar la carga vírica.
Ejemplos de métodos para detectar los ácidos nucleicos amplificados incluyen el análisis del producto de amplificación mediante electroforesis del gel y la detección por hibridación con muestras complementarias de oligonucleótidos. Los formatos de valoración adecuados para detectar la hibridación de la muestra de referencia son bien conocidos e incluyen los formatos de valoración Dot-blot y Dot-blot reverso.
En un formato Dot-blot o de transferencia puntual, el ADN de referencia amplificado se inmoviliza sobre un soporte sólido, tal como una membrana de nylon. El complejo de referencia de la membrana es incubado con la muestra etiquetada en unas condiciones de hibridación adecuadas, se retira la muestra no hibridizada lavando en unas condiciones suficientemente astringentes y se controla la presencia de la muestra enlazada en la membrana. La detección Dot-blot de los productos de amplificación de la RCP se ha descrito, por ejemplo, en Saiki y cols, 1986, Nature 324:163-166 y en la patente americana nr. 5.468.613.
En un formato dot-blot reverso, las muestras son inmovilizadas sobre un soporte sólido, como una membrana de nylon y se etiqueta el ADN de referencia amplificado. El ADN de referencia se marca típicamente durante la amplificación mediante la incorporación de los cebadores marcados. Uno o ambos cebadores pueden ser etiquetados. El complejo membrana-muestra se incuba con el ADN de referencia amplificado en unas condiciones de hibridación adecuadas se retira la muestra no hibridizada lavando en unas condiciones suficientemente astringentes y se controla la presencia de la muestra enlazada en la membrana. La detección Dot-blot reversa de los productos de amplificación de la RCP se ha descrito, por ejemplo, en Saiki y cols, 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:6230 y en la patente americana nr. 5.468.613.
Alternativamente, la valoración dot-blot reversa puede ser realizada usando un soporte sólido que tenga una pluralidad de puntos o pocillos de hibridación de la muestra. Por ejemplo, una microplaca es especialmente útil en aplicaciones clínicas a gran escala de los métodos actuales. Las muestras pueden ser inmovilizadas a una microplaca mediante una unión pasiva o a través de un producto intermedio proteínico como la albúmina de suero bovino (ASB), que se adhiere a la microplacas (ver Tung y cols, 1991, Bioconjugate Chem. 2:464-465). Los métodos dot-blot inversos o reversos llevados a cabo en una microplaca se han descrito en la patente americana nr. 5.232.829; Loeffelholz y cols., 1992, J.Clin. Microbiol. 30(11):2847-2851; Jackson y cols., 1991, AIDS 5:1463-1467; Mulder y cols., 1994, J. Clin. Microbiol. 32(2):292-300; la prueba AMPLICOR HIV-1 producto insertado; y la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR producto insertado.
Preferiblemente, la detección y/o cuantificación del producto amplificado se realiza mediante la hibridación con una muestra de oligonucleótido inmovilizada en una microplaca usando los reactivos y protocolos de la prueba Amplicor HIV-1 o de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. El uso de los métodos actuales para cuantificar el ARN del HIV-1 se ha descrito más adelante en los ejemplos.
De forma alternativa, las muestras de BSA-conjugado se enlazan a las micropartículas magnéticas. Las muestras enlazadas son hibridizadas en solución al producto de amplificación marcado, y lo que resulta es retirado de la solución de forma magnética. Los duplicados de hibridación inmovilizados magnéticamente son luego detectados tal como se ha descrito en los métodos.
Otro método de valoración adecuado, al que se hace referencia como una valoración de la 5'-nucleasa se ha descrito en las patentes nr. 5.210.015 y 5.487.972 y Holland y cols., 1988, proa. Nati. Acad. Sci. USA 88<.7276-7280. En la valoración de las 5'-nucleasas, las muestras de detección marcadas que se han modificado para impedir que las muestras actúen como cebadores para la síntesis del ADN se añaden durante la mezcla de reacción de amplificación. Cualquier muestra que forme híbridos con el ADN de referencia durante cada etapa de síntesis, es decir, durante la extensión del cebador, es degradada por la actividad de la 5' a 3' exonucleasa de la polimerasa del ADN, por ejemplo, Taq ADN polimerasa. Luego se detecta el producto de degradación de la muestra. Así pues, la presencia del producto de descomposición o degradación de la muestra indica que se ha producido la hibridación entre la muestra y el ADN de referencia y que también se ha producido la reacción de amplificación. Las patentes americanas números 5.491.063 y 5.571.673 describen métodos mejorados para detectar la degradación de la muestra que se produce al mismo tiempo que la amplificación.
Los formatos de valoración descritos antes utilizan típicamente oligonucleótidos marcados para facilitar la detección de los duplicados híbridos. Los oligonucleótidos pueden ser marcados incorporando una etiqueta detectable por un medio espectroscópico, fotoquímico, bioquímico, inmunoquímico o químico. Las etiquetas útiles incluyen ^{32}P, colorantes fluorescentes, reactives densos en electrones, enzimas (utilizadas frecuentemente en ELISAS), biotina o haptenos y proteínas para las cuales se dispone de antisueros o anticuerpos monoclonales. Los oligonucleótidos marcados de la invención se pueden sintetizar y marcar usando las técnicas descritas antes para sintetizar oligonucleótidos.
Un método alternativo para detectar la amplificación del ácido nucleico del VIH-1 controlando el aumento en la cantidad total de ADN doblemente ramificado en la mezcla de reacción se ha descrito en Higuchi y cols., 1992, Bio/Technology 10: 413-417; Higuchi y cols., 1993, Bio/Technology 11:1026-1030; y European Patent Publication Nr. 512.334. La detección del ADN de referencia doblemente ramificado se basa en la elevada fluorescencia que el bromuro de etidio (EtBr) y otros marcadores de enlace del ADN exhiben cuando están enlazados al ADN doblemente ramificado. El marcador de enlace del ADN se añade a la mezcla de reacción de amplificación. La amplificación de la secuencia de referencia dará lugar a un incremento en la cantidad de ADN doblemente ramificado, que dará lugar a un aumento detectable de la fluorescencia.
La presente invención se refiere también a los estuches, unidades multirecipiente que comprenden componentes útiles para llevar a la práctica el método actual. Un estuche útil contiene cebadores para la amplificación de la RCP del ácido nucleico del VIH-1. Un estuche puede contener también un medio para detectar el ácido nucleico del VIH-1 amplificado, como las muestras de oligonucleótidos. En algunos casos, las muestras se fijarán a una membrana de soporte apropiada. Otros componentes opcionales del estuche incluyen, por ejemplo, un agente para catalizar la síntesis de los productos de extensión del cebador, los trifosfatos de nucleósido del sustrato, los medios utilizados para marcar (por ejemplo, un conjugado de enzima de avidina y un sustrato de enzima y el cromógeno si la etiqueta es la biotina), los tampones apropiados para la RCP o las reacciones de hibridación, e instrucciones para llevar a cabo el método actual.
Los ejemplos de la presente invención que se indican a continuación son para fines ilustrativos y no para limitar el alcance de la invención. Numerosas versiones de la invención dentro del alcance de las reivindicaciones que siguen a los ejemplos serán evidentes para los expertos en este campo a partir de la lectura del texto anterior y de los ejemplos siguientes.
Ejemplo 1 Construcción de un modelo o patrón cuantitativo
La cuantificación de la carga vírica, llevada a cabo usando la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR utiliza un patrón o estándar cuantitativo (QS) que es amplificado usando el mismo par de cebadores, pero que es detectado usando una muestra distinta. El QS se añade a la muestra de prueba en una concentración conocida para dar una señal de referencia conocida. Para una gama amplia de concentraciones de referencia, la señal generada de la referencia amplificada o del QS amplificado es proporcional a la cantidad presente. El número de copias de referencia se calcula a partir de una comparación de la señal generada de la amplificación de la referencia desconocida respecto a la señal generada del QS conocido.
Los pares de cebadores de la presente invención amplifican una región que no se adapta completamente al QS incluido en la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR (el Amplicor QS). Por consiguiente, se construía un nuevo QS para ser utilizado con los cebadores de la presente invención. El QS nuevo se construía a partir del Amplicor QS ampliando la secuencia del Amplicor QS para encerrar los puntos de enlace del SKCC1 (SEQ ID NO:3) y SKCC3 (SEQ ID NO:4). El QS resultante se detecta usando la muestra específica de QS empleada en la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. La construcción de un plasmida que contiene la nueva secuencia QS, a partir de la cual se transcribe el ARN del QS, puede efectuarse utilizando técnicas estándar tal como se describe a continuación.
El Amplicor QS obtenido de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR se amplifica usando el SK145 (SEQ ID NO:1) y el SK151 (SEQ ID NO:7) en unas condiciones como las descritas en el ejemplo 2 siguiente. La amplificación dará lugar a un producto de ADN que contendrá unos puntos de enlace del cebador para SK145 (SEQ ID NO:1) y SK151(SEQ ID NO:7) y retendrá la secuencia interna que contenga el punto de enlace de la muestra específica del QS.
Seguidamente, el producto amplificado resultante se extiende para rodear el lugar de enlace del cebador del SKCC1 (SEQ ID NO:3) y se añade un elemento de enlace para permitir la clonación del producto. Esto se consigue reamplificando el producto usando SK145(SEQ ID NO:1) extendido en el extremo 5' para incluir un elemento de enlace HindIII y el SKCC1 (SEQ ID NO:3). Las condiciones de amplificación adecuadas se describen en Kellogg y Kwok, 1990, en los protocolos de la RCP: A Guide to Methods and Applications, (ed. Innis y cols.), Academia Press, San Diego, CA): 337-347, con la excepción de que una temperatura de recocido/extensión inferior (por ejemplo, 42°C) se utiliza para permitir la hibridación del SKCC1 (SEQ ID NO:3).
A continuación, el producto amplificado resultante se extiende todavía más para rodear el punto de enlace del cebador del SKCC3 (SEQ ID NO:4) y se añade un segundo elemento de enlace en el otro extremo para conseguir la clonación del producto. Esto se consigue amplificando el producto usando SK145(SEQ ID NO:1) extendido en el extremo 5' para incluir un elemento de enlace HindIII, tal como se ha descrito antes, junto con el SKCC3 (SEQ ID NO:4) extendido en el extremo 5' para incluir un elemento de enlace XBaI, usando las mismas condiciones de amplificación que antes.
Seguidamente, el producto amplificado se inserta en un plásmido. El ADN amplificado y el plásmido pSP64 (Promega, Madison, WI) se digieren por separado con HindI y XBaI y luego se unen usando procedimiento estándar. Las células competentes son transformadas con los plásmidos recombinantes y se obtiene un clon que contiene el inserto correcto. El inserto clonado en el plásmido resultante debería tener una secuencia que determinara que no se introducen mutaciones en los puntos de enlace del cebador o de la muestra.
El ARN QS se transcribe del plásmido recombinante que contiene la secuencia QS usando el estuche MEgascript^{TM} SP6 (Ambion, Inc., Austin, TX).
Ejemplo 2 Cuantificación del ARN del VIH-1
Este ejemplo describe una valoración de la eficacia relativa de las amplificaciones de varias cepas de VIH-1. Para comparación, las amplificaciones también se realizaban usando el estuche de prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR.
Las cepas HIV-1 se obtenían de las muestras clínicas positivas de VIH-1. Se clonaba una zona del gen gag y se secuenciaba usando técnicas estándar y el subtipo de VIH-1 clonado se determinaba en base a la secuencia. Una serie de estas cepas de VIH-1 resultaba que eran nuevas. Para este ejemplo, se elegían unas cepas las cuales, en base a las secuencias de nucleótidos, se esperaba que fueran problemáticas para la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. Además, se utilizaban cepas que fueran representativas de la variación de la secuencia presente en los subtipos M del grupo.
Ácido nucleico de referencia
Se construían los plásmidos que contienen una zona del gen gag del VIH-1 de cada cepa y los modelos se transcribían esencialmente tal como se describe en Holodniy y cols., 1991, .J.Inf.Dis. 163:802-865. Se preparaban las soluciones madre de cada modelo y se analizaban las concentraciones modelo o patrón. Las soluciones madre se diluían en base a las concentraciones relativas estimadas de manera que la concentración del patrón añadida a cada reacción era la misma. El número absoluto de copias del modelo que se añadía a las reacciones era de aproximadamente 4000-8000.
Estándar de cuantificación
Un QS tal como se ha descrito en el ejemplo 1 se introducía en cada mezcla de reacción a una concentración conocida, que solía ser de unas 100 copias por reacción.
Cebadores
Las reacciones A-F se llevaban a cabo usando las siguientes combinaciones de cebador.
Combinaciones de cebadores comparadas
Reacción \hskip1cm Combinación de cebador
A SK462 (SEQ ID NO:5)
SK431 (SEQ ID NO:6)
B SK145 (SEQ ID NO:1)
SK151 (SEQ ID NO:7)
C SK145 (SEQ ID NO:1)
SKCC1 (SEQ ID NO:3)
D SK145 (SEQ ID NO:1) y SK145M2 (SEQ I NO:2)
SKCC1 (SEQ ID NO:3)
E SK145 (SEQ ID NO:1)
SKCC3 (SEQ ID NO:4)
F SK145 (SEQ ID NO:1) y SK145M2 (SEQ I NO:2)
SKCC3 (SEQ ID NO:4)
Todos los cebadores eran biotinilados en el extremo 5' para permitir la detección en un formato de microplaca dot-blot inverso. Las secuencias de los cebadores adicionales no descritas antes se indican a continuación en una orientación 5' a 3'.
Cebador corriente arriba
SK462(SEQ ID NO:5) AGTTGGAGGACATCAAGCAGCCATGCAAAT
\vskip1.000000\baselineskip
Cebadores corriente abajo
SK431 (SEQ ID NO:6) TGCTATGTCAGTTCCCCTTGGTTCTCT
SK151 (SEQ ID NO:7) TGCTATGTCACTTCCCCTGGTTCTCT
Amplificación
La reacción de amplificación A se llevaba a cabo usando los reactivos y las condiciones de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR.
La reacción de amplificación B se llevaba a cabo en volúmenes de 100 \mul que contenían los reactivos siguientes:
ARN del patrón del VIH-1
ARN QS
Bicine 50 mM, ph 8,3
111 mM K(OAc)
Mn(OAc)_{2} 3,6 mM
dUTP 500 pM
300 \muM de cada dATP, dCTP y dGTP
50 \muM dTTP
15% de glicerina
0,2 \muM de cada cebador biotinilado
2 unidades de UNG*
10 unidades de polimerasa de ADN rT
* fabricado y desarrollado por Hoffmann-La Roche y comercializado por Perkin Elmer (Norwalk, CT)
Las reacciones de amplificación C y D se llevaban a cabo en unas condiciones como las usadas en la reacción B, pero con los cambios siguientes:
100 mM K(OAc)
500 \muM de cada dATP, dCTP y dGTP
7,5% de glicerina
10 unidades de UNG
Las reacciones de amplificación E y F se llevaban a cabo en unas condiciones como las usadas en las reacciones C y D pero con la excepción de que se utilizaba una concentración de glicerina del 10%. Las diferencias mínimas en las mezclas de reacción eran el resultado de una optimización previa de las condiciones de amplificación para cada par de cebadores.
Las reacciones de amplificación B-F se llevaban a cabo en un ciclador térmico TC9600 DNA (Perkin elmer, Norwalk, CT) usando el perfil de temperatura siguiente:
Incubación pre-reacción:
50°C durante 2 minutos
Transcripción reversa 60°C durante 30 minutos:
4 ciclos:
desnaturalizado: 95°C durante 10 segundos
\quad
Recocido: 55°C durante 10 segundos, y
\quad
Extensión: 72°C durante 10 segundos;
\vskip1.000000\baselineskip
26 ciclos:
desnaturalizado: 90°C durante 10 segundos
\quad
Recocido: 60°C durante 10 segundos, y
\quad
Extensión: 72°C durante 10 segundos;
\vskip1.000000\baselineskip
Extensión final:
72°C durante 15 minutos;
Detección del producto amplificado por hibridación de la muestra
Los productos amplificados se detectaban usando los reactivos y protocolos de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. La concentración de referencia inicial estimada se calculaba tal como se ha descrito antes.
Resultados
En el método de cuantificación de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR, la concentración de referencia inicial se calcula a partir de una comparación de las señales generadas después de la amplificación de la referencia respecto a la señal generada después de la amplificación de una concentración conocida de QS. Puesto que la concentración conocida de QS es el valor de pre-amplificación, mientras que las señales comparadas son señales post-amplificación, los cambios en la eficacia relativa de la amplificación afectarán al valor aproximado de la concentración inicial de la referencia desconocida. La cuantificación AMPLICOR HIV-1 MONITOR se calibra en base a la eficacia de amplificación del subtipo B de VIH-1. Se sabe que los subtipos VIH-1 pueden ser amplificados con una menor eficacia y, como consecuencia de ello, la concentración de referencia estimada sería un valor inferior a la verdadera concentración.
En el experimento actual, el ARN de referencia se añadía en una concentración conocida a cada reacción. Por consiguiente, la eficacia de amplificación relativa para cada cepa se puede determinar comparando las concentraciones de referencia estimadas. Puesto que la prueba de cuantificación AMPLICOR HIV-1 MONITOR se calibra en base a la eficacia de amplificación del subtipo B del VIH-1, la concentración de referencia aproximada del subtipo B (clon 105-1) se utilizaba como una referencia. Para cada cepa, la concentración de referencia estimada para el subtipo B (clon 105-1) se dividía ponla concentración de referencia aproximada para la cepa para dar una medida de la eficacia de amplificación relativa. Estas eficacias de amplificaciones relativas se indican en la tabla siguiente. Una entrada de "-" indica que no se realizó la reacción.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa página siguiente)
\newpage
Eficacia relativa al subtipo B
1
2
Los resultados demuestran que la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR (reacción A) amplificaba las diferentes cepas de VIH-1 con una variación significativa en la eficacia. Algunas de las cepas, que incluyen la cepa del subtipo E, el clon 110-5, se amplificaban con una eficacia al menos 500 veces menor que la eficacia de amplificación del subtipo B, clon 105-1.
Aunque no se comprobaban todas las cepas, el uso del par de cebadores SK145 (SEQ ID N0:1) y SK151 (SEQ ID NO:7)(reacción B) parecía mejorar la uniformidad de la eficacia de amplificación de una forma significativa. Sin embargo, la cepa del subtipo E, clon 110-5, todavía se amplificaba con una eficacia unas 500 veces menor que la eficacia de amplificación del subtipo B, clon 105-1.
El uso de SK145 (SEQ ID NO:1) y SKCC1 (SEQ ID NO:3)(reacción C) permitía la amplificación de todas las cepas, incluyendo la cepa del subtipo E, el clon 110-5, con una eficacia de unas 3 veces la eficacia de amplificación del subtipo B, clon 105-1. La adición de SK145M2 (SEQ ID NO:2)(reacción D) mejoraba además la eficacia de amplificación del subtipo B, clon 105-1. La adición de SK145M2 (SEQ ID NO:2)(reacción F) mejoraba además la eficacia de amplificación de la cepa 110-5, básicamente equivalente a la de la cepa de referencia del subtipo B.
Ejemplo 3 Cuantificación de VIH-1 en las muestras clínicas
En este ejemplo, 30 muestras clínicas obtenidas de pacientes seropositivos del Senegal se analizaban en busca de la presencia de ARN de VIH-1. No se determinaban los subtipos presentes en las muestras clínicas. Sin embargo, como los subtipos A y D son frecuentes en esta región de Africa, se esperaba que algunas muestras clínicas no fueran amplificadas o no fueran amplificadas eficazmente usando la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR.
Las muestras se preparaban tal como sigue. Las muestras de plasma (80-250 \mul) se combinaban con 20 \mul de un 0,25% (p/v) de microesferas de poliestireno rojas Estapor (Bangs Laboratorios, Inc. Carmel, IN) en un tubo de centrífuga cónico de 1,5 ml y se centrifugaban durante 1 hora a 25,300 X g a 4°C. El sobrenadante se aspiraba y los gránulos se volvían a suspender en 250 \mul de tampón (50 \mul de tampçón de lisis es igual a 6,7 \mul de RNasin 30 U/\mul (Promega, Madison, WI) ; 0,67 \mul de DTT 100 mM; 2 \mul de NP40 al 10% (Pierce, Rockford, IL); 0,25 \mul de poly-rA ARN 4 mg/ml; y 40,4 \mul de Depc-treated H_{2}O). Los gránulos se incubaban a temperatura ambiente durante al menos 15 minutos y se agitaban para garantizar la mezcla.
Las amplificaciones se llevaban a cabo en reacciones de 100 \mul que contenían 50 \mul de solución de lisado vírica y 50 \mul de una mezcla 2X de reactivos de amplificación formulada de manera que la concentración final del reactivo era tal como se ha descrito antes. Aproximadamente 100 copias del QS apropiado se añadían a cada reacción como parte de la mezcla de reacción. La detección del producto amplificado se llevaba a cabo usando los reactivos y protocolos de la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR, tal como se ha descrito antes.
Las amplificaciones de cada muestra se llevaban a cabo usando las siguientes combinaciones de cebadores.
Combinaciones de cebadores comparadas
Reacción \hskip1cm Combinación de cebador
A SK462 (SEQ ID NO:5)
SK431 (SEQ ID NO:6)
B SK145 (SEQ ID NO:1)
SKCC1 (SEQ ID NO:3)
C SK145 (SEQ ID NO:1) y SK145M2 (SEQ ID NO:2)
SKCC1 (SEQ ID NO:3)
Los resultados, expresados en copias del patrón VIH-1 por ml de plasma se resumen a continuación.
Concentración de referencia estimada (copias/ml)
3
Los resultados indican que los pares de cebadores de la presente invención, combinaciones B y C, permitían la amplificación de más de las muestras clínicas. Las combinaciones de cebadores B y C permitían la amplificación de todas las 20 muestras. En contraste con ello, la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR fallaba a la hora de amplificar 6 de las 29 muestras. La amplificación de la muestra MIH 053 usando la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR daba lugar a una señal de referencia fuerte, pero no podía generar una señal QS.
Por consiguiente, la muestra no era cuantificable y se marcaba como "+" en la tabla.
Además, para un número significativo de muestras, el número de copias estimado usando tanto la combinación de cebadores B como la C era significativamente superior a la estimada usando la prueba AMPLICOR HIV-1 MONITOR. En base a la variabilidad de la eficacia de amplificación demostrada i en el ejemplo 2 anterior, los valores estimados inferiores de la concentración de plasma obtenida usando el AMPLICOR HIV-1 MONITOR eran el resultado de unas eficacias de amplificación significativamente inferiores.
El ARN vírico no se detectaba en la muestra MIN 067. Sin embargo, se sabe que esto es debido a una variabilidad no observada en la secuencia de referencia que interfería con la hibridación del cebador o de la muestra, o bien por cualquier otra causa.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
(A):
F. HOFFMANN-LA ROCHE AG
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
CALLE: Grenzacherstrasse 124
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CIUDAD: Basle
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
ESTADO: BS
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
PAÍS: Suiza
\vskip0.500000\baselineskip
(F)
CÓDIGO POSTAL: CH-4070
\vskip0.500000\baselineskip
(G)
TELÉFONO: 061-688 37 82
\vskip0.500000\baselineskip
(H)
TELEFAX: 061-688 13 95
\vskip0.500000\baselineskip
(I)
TELEX: 962292 /965542 hlr ch
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TITULO DE LA INVENCIÓN: Cebadores para la detección de VIH-1
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
NÚMERO DE SECUENCIAS: 7
\vskip0.800000\baselineskip
(iv)
FORMA LEGIBLE DEL ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
TIPO DE MEDIO: floppy disk
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
ORDENADOR: Apple Macintosh
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
SISTEMA OPERACIONAL: Sistema 7.1 (Macintosh)
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
SOFTWARES: Word 5.1
\vskip0.800000\baselineskip
(v)
DATOS DE SOLICITUD PREVIOS:
\vskip0.500000\baselineskip
NÚMERO DE SOLICITUD: 60-037744
\vskip0.500000\baselineskip
FECHA DE PRESENTACIÓN: 17.01.97
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:1:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 30 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AGTGGGGGGA CATCAAGCAG CCATGCAAAT
\hfill
30
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:2:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 30 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AGTGGGGGGA CACCAGGCAG CAATGCAAAT
\hfill
30
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:3:
\vskip0.500000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 28 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TACTAGTAGT TCCTGCTATG TCACTTCC
\hfill
28
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:4:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 26 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TGAAGGGTAC TAGTAGTTCC TGCTAT
\hfill
26
\vskip1.000000\baselineskip
(2) IMFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:5:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 30 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AGTTGGAGGA CATCAAGCAG CCATGCAAAT
\hfill
30
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:6:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 27 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TGCTATGTCA GTTCCCCTTG GTTCTCT
\hfill
27
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:7:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 27 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
RAMIFICACIÓN: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLECULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TGCTATGTCA CTTCCCCTTG GTTCTCT
\hfill
27

Claims (8)

1. Un par de cebadores de oligonucleótidos para la amplificación del ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1), de manera que dicho par de cebadores de oligonucleótidos es el SK145 (SEQ ID NO:1) y SKCC1 (SEQ ID NO:3) o bien SK145 (SEQ ID NO:1) y SKCC3 (SEQ ID NO:4).
2. Un grupo de cebadores de oligonucleótidos formado por un par de cebadores de oligonucleótidos de la reivindicación 1 y el SK145M2 (SEQ ID NO:2).
3. Un estuche para detectar el ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) de forma que dicho estuche comprenda un par de cebadores de oligonucleótidos de la reivindicación 1.
4. Un estuche para detectar el ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) de forma que dicho estuche comprenda un par de cebadores de oligonucleótidos de la reivindicación 2.
5. Un método para amplificar el ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) de forma que dicho método comprenda llevar a cabo una reacción en cadena de la polimerasa usando el par de cebadores SK145 (SEQ ID NO:1) y el SKCC1(SEQ ID NO:3).
6. Un método de la reivindicación 5, en el que dicha reacción en cadena de la polimerasa se realiza usando el SK145M2 (SEQ ID NO:4).
7. Un método para amplificar el ácido nucleico del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) de forma que dicho método comprenda llevar a cabo una reacción en cadena de la polimerasa usando el par de cebadores SK145 (SEQ ID NO:1) y el SKCC3(SEQ ID NO:4).
8. Un método de la reivindicación 7, en el que dicha reacción en cadena de la polimerasa se realiza usando el SK145M2(SEQ ID NO:2).
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