ES2287936T3 - Identificacion, purificacion y usos de leczimas y ligandos de carbohidratos. - Google Patents

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Abstract

EN DIVERSOS ASPECTOS DE LA PRESENTE INVENCION SE PROPORCIONAN LIGANDOS CARBOHIDRATO Y MIMETOPOS PEPTIDICOS DE DICHOS LIGANDOS QUE SE UNEN ESPECIFICAMENTE A LECZIMAS, ASI COMO SE PROPORCIONAN LECZIMAS QUE SE UNEN ESPECIFICAMENTE A LIGANDOS CARBOHIDRATO Y MIMETOPOS PEPTIDICOS. OTROS ASPECTOS DE LA INVENCION INCLUYEN METODOS PARA IDENTIFICAR, PURIFICAR Y PRODUCIR DICHOS CARBOHIDRATOS, MIMETOPOS Y LECZIMAS, Y EL USO DE DICHAS COMPOSICIONES EN EL TRATAMIENTO DE DIVERSAS ENFERMEDADES Y EN DIFERENTES MODIFICACIONES DE LAS FUNCIONES CELULARES. OTROS ASPECTOS ADICIONALES DE LA INVENCION SE REFIEREN AL DIAGNOSTICO DE DIVERSAS ENFERMEDADES QUE IMPLICAN LIGANDOS CARBOHIDRATO, MIMETOPOS PEPTIDICOS DE DICHOS LIGANDOS Y/O LECZIMAS.

Description

Identificación, purificación y usos de leczimas y ligandos de carbohidratos.
Antecedentes de la invención Campo de la invención
Esta invención se refiere en general al campo de la glicobiología.
Información de los antecedentes
El complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) codifica para una variedad de productos de genes, muchos de los cuales tienen un rol central en la defensa del cuerpo contra organismos patógenos. Tales moléculas incluyen los clásicos antígenos de trasplantes y moléculas estructuralmente relacionadas, proteínas para el transporte de péptidos extraños dentro de las células, proteínas de complemento sérico, las linfocinas necrosis tumoral \alpha y necrosis tumoral \beta, los citocromos y las proteínas de shock térmico.
Los antígenos de trasplante clásicos, codificados por genes en el MHC, son un grupo altamente polimorfo de moléculas que fueron descubiertas originalmente por su rol en la determinación del rechazo de tejidos y células extraños transplantados. Un amplio trabajo experimental ha sostenido desde entonces un rol para los antígenos de trasplante clásicos en el auto-reconocimiento. En el paradigma comúnmente aceptado, denominado a continuación el "viejo paradigma", los antígenos de trasplante sirven para presentar péptidos derivados tanto de proteínas propias como extrañas, para el reconocimiento por las células del sistema inmunológico.
Dos grupos distintos de antígenos, los antígenos clase I y clase II, son codificados por genes dentro del MHC. Los antígenos clase I son expresados en prácticamente todas las células nucleadas en el cuerpo y tienen un rol en la mediación de las respuestas inmunológicas basadas en la destrucción de células mediadas por linfocitos (T) citotóxicos derivados del timo. Los linfocitos T citotóxicos tienen un rol en la destrucción de las células infectadas por virus y las células tumorales. La molécula de MHC clase I está compuesta por una cadena pesada de aproximadamente 45 kiloDalton (kDa) asociada en forma no covalente con una proteína de 12 kDa conocida como microglobulina \beta_{2} (\beta_{2}M). El viejo paradigma caracteriza a los antígenos clase I como presentando fragmentos de péptidos derivados tanto de proteínas propias como extrañas sintetizadas endógenamente dentro de la célula.
Las moléculas clase I fueron descubiertas por su rol en los trasplantes y fueron denominadas las moléculas clase I "clásicas", para distinguirlas de un grupo de moléculas clase I descubiertas más tarde denominadas las moléculas clase I "no clásicas". Los genes que codifican las moléculas del MHC clase I no clásicas consisten en la mayoría de los genes identificados hasta ahora en el locus de MHC. Las moléculas del MHC clase I no clásicas están relacionadas en general estructuralmente con los antígenos de trasplante del MHC clase I clásico porque tienen una amplia homología de secuencia y una cadena pesada asociada en forma no covalente con la \beta_{2}M. Las moléculas del MHC clase I no clásicas son, en general, menos polimorfas que las moléculas del MHC clase I clásicas y están más circunscriptas en su distribución tisular. Varios tipos de moléculas clase I no clásicas son expresadas principalmente en el tracto gastrointestinal (GI), planteando interrogantes con respecto a su función, si la tienen, en el sistema inmunológico.
Los antígenos clase II del MHC son expresados principalmente por células especializadas que presentan antígenos en el cuerpo. Tales células están limitadas al linfocito B que produce anticuerpos, así como también macrofágos y células dendríticas distribuidas en varios tejidos del cuerpo. La molécula clase II en la superficie celular está compuesta por una cadena \alpha de 33 kDa y una cadena \beta de 28 kDa asociada en forma no covalente. Las moléculas clase II, como se entienden bajo el viejo paradigma, funcionan principalmente para presentar péptidos derivados de proteínas propias o extrañas a una clase especializada de linfocitos T que sostiene el desarrollo de linfocitos T citotóxicos, provee inmunidad con respecto a infecciones fúngicas y ayuda a los linfocitos B en la generación de respuestas protectoras de los anticuerpos con respecto a infecciones bacterianas encapsuladas. Los antígenos clase II del MHC presentan fragmentos de péptidos derivados de proteínas captadas por células del ambiente circundante, en contraste con las moléculas clase I clásicas, que presentan péptidos derivados de proteínas sintetizadas endógenamente.
Se ha demostrado que una variedad de enfermedades autoinmunes humanas están asociadas más frecuentemente en la población con individuos que heredan ciertos genes del MHC. Para muchas de estas enfermedades, la asociación está localizada en la región de los antígenos de histocompatibilidad clase II que codifican el MHC. Estas enfermedades no son heredadas por simple segregación Mendeliana de genes del MHC, ya que sólo uno de un par de mellizos idénticos puede tener la enfermedad. Esta característica sugiere que otros factores genéticos o ambientales tienen roles en el desarrollo de la autoinmunidad, teniendo los genes del MHC una parte significativa en el proceso.
El viejo paradigma para la función de los genes del MHC provee varias teorías para explicar un rol para los genes del MHC en enfermedades autoinmunes. Estas incluyen la expresión inapropiada de moléculas del MHC clase II en células que provocan la respuesta autoinmune response o el reconocimiento aberrante de auto-péptidos por productos de genes del MHC particulares. Tales teorías, sin embargo, tienen que ser probadas aún. Además, el viejo paradigma no provee una hipótesis útil para explicar la base para una enfermedad de acumulación de hierro asociada con el MHC conocida como hemocromatosis. De estudios animales y de la estructura genómica de varios genes clase I se conoce que esta enfermedad involucra una molécula clase I codificada por el MHC ya que la eliminación del gen \beta_{2}M en estos animales da por resultado la enfermedad.
Se divulga en la presente un nuevo paradigma referido a moléculas que reconocen carbohidratos que incluyen por lo menos algunos antígenos de clase I, clase II, y otras moléculas relacionadas, algunas de las cuales son del IgGSF. Este paradigma sostiene que las moléculas que reconocen a los carbohidratos tienen una función central para reconocer y modificar estructuras de carbohidratos. Así, existe una necesidad de desarrollar nuevas propuestas para el tratamiento de enfermedades asociadas con el MHC y otras enfermedades que involucran problemas con reconocimiento de carbohidratos, y en particular, una necesidad de proveer una composición, un aparato y métodos para utilizar el nuevo paradigma.
Síntesis de la invención
En un aspecto de la invención, la hemocromatosis puede ser diagnosticada detectando una mutación en una molécula del MHC clase I que reduce su capacidad para asociarse con la microglobulina \beta_{2}.
Descripción detallada de la invención
Como se usa en la presente, "leczima" significa cualquier proteína celular que puede catalizar la modificación química de un substrato que contiene carbohidratos, dando por resultado un producto con carbohidrato adicional o carbohidrato químicamente modificado, y que luego es capaz de reconocer específicamente el substrato modificado. El término "leczime" se deriva de la combinación de tener la actividad ligante de lectina y la actividad enzimática en la misma molécula base. La función de la leczima es característica de muchas moléculas de reconocimiento de péptidos que son bien conocidas en el arte. Tales moléculas incluyen por lo menos algunas de las moléculas codificadas por el MHC clase I y clase II, junto con otros miembros de la superfamilia de moléculas de genes de inmunoglobulina (IgGSF), algunas de las cuales no son moléculas de auto-reconocimiento. Leczimas ilustrativas incluyen aquellas que catalizan la fosforilación, la acetilación, la carboxilación y/o la sulfación de una molécula que contiene carbohidratos. Las leczimas pueden funcionar dentro de una célula, en la superficie celular, o pueden ser segregadas de una
célula.
Una leczima puede presentar actividad enzimática y actividad ligante de carbohidratos en la misma isoforma de la molécula o estas actividades pueden encontrarse separadamente en diferentes isoformas de la molécula. Por ejemplo, un corte y empalme de ARN diferencial de una leczima puede dar por resultado una isoforma enzimáticamente activa de la leczima que contiene una o más señales que dirigen a la leczima a sitios en la célula normalmente asociados con glucosilación, tales como el retículo endoplasmático o el complejo de Golgi. El corte y empalme de ARN diferencial también puede dar por resultado una isoforma de la leczima que presenta capacidad de reconocimiento de carbohidratos y contiene una o más señales que dirigen el receptor a la superficie celular o para salir de la célula. Alternativamente, una leczima expresada o bien en la célula o en la superficie celular puede contener tanto la actividad enzimática como también la capacidad de reconocimiento de carbohidratos en la misma molécula.
En las moléculas clase I o clase II, y posiblemente en otras leczimas, la función de la leczima puede residir en la ranura formada en la parte superior de la molécula codificada por el MHC. El viejo paradigma caracteriza la ranura como una ranura que liga péptidos, pero el nuevo paradigma sostiene que la ranura funciona principalmente para reconocer una estructura de carbohidratos y su forma subsiguiente después de la modificación por la leczima.
Se pueden aislar composiciones de ligandos de carbohidratos substancialmente purificados que se ligan específicamente a una leczima. Como se usa en la presente, el término "ligando de carbohidratos" significa una molécula que contiene carbohidratos en donde la parte de carbohidrato es una parte del ligando que es reconocida por la leczima. Un ligando de carbohidratos está compuesto por uno o más residuos de azúcar que están ligados en una configuración o bien de cadena recta o de cadena ramificada. Por lo tanto, un ligando de carbohidratos incluye un monosacárido, un disacárido, un trisacárido, un oligosacárido o un polisacárido.
Los ligandos de carbohidratos compuestos por múltiples residuos de carbohidratos pueden variar en el tipo y la ubicación de la unión entre cada residuo. Los residuos de carbohidratos útiles para producir un ligando de carbohidratos incluyen, por ejemplo, glucosa, galactosa, fucosa, manosa y ácido siálico. Los residuos de carbohidratos de un ligando también pueden ser acetilados, fosforilados y/o sulfatados por procedimientos químicos bien conocidos en el arte. Un ligando de carbohidratos también puede estar unido químicamente a otras moléculas tales como un lípido, un glucolípido, una proteína, una glucoproteína, un proteoglicano, un glucosaminoglicano o una molécula orgánica. Tales moléculas adicionales pueden proveer al ligando de carbohidratos de características tales como una mayor ligadura a la leczima o una mayor estabilidad in vivo.
Un ligando de carbohidratos puede ser de naturaleza multivalente teniendo más de un ligando de carbohidratos unido a una estructura del esqueleto. La estructura del esqueleto puede ser una proteína natural tal como una albúmina sérica o puede ser una molécula sintética tal como un péptido sintético. Las propuestas para unir múltiples ligandos de carbohidratos a una estructura del esqueleto son conocidas en el arte e incluyen, por ejemplo, la unión biotina-avidina (Rothenberg et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 90: 11939-11943 (1993), que se incorpora en la presente por referencia).
Existen una variedad de leczimas que difieren en su capacidad para modificar tipos particulares de moléculas. Esta diferencia resulta en parte de las diferencias en la especificidad del sitio de ligadura de lectina que tienen las leczimas para su substrato. Así, una parte de la estructura de la leczima es un sitio de reconocimiento para el substrato. El sitio catalítico de una leczima puede ser el mismo sitio que el sitio de reconocimiento del substrato o puede ser un sitio diferente del sitio de reconocimiento del substrato. Después de la modificación del substrato, la leczima puede presentar una afinidad de ligadura similar o mayor por el substrato modificado que por el substrato original debido a la ligadura coordinada por el sitio de reconocimiento del substrato y el sitio catalítico de la leczima o por multivalencia del ligando.
Las leczimas provistas en la presente incluyen un amplio grupo de moléculas relacionadas estructuralmente, muchas de las cuales están contenidas dentro del IgGSF. La serie de genes de IgGSF comparte una homología de evolución (es decir, un ancestro común) pero no están relacionadas necesariamente funcionalmente, ligadas genéticamente o reguladas en forma coordinada. Los productos del IgGSF han sido definidos por la presencia de una o más regiones homólogas con respecto a la unidad estructural básica de la inmunoglobulina (Ig), conocida como la unidad de homología de Ig. Estas unidades están caracterizadas por una secuencia de aminoácidos primaria de aprox. 70-100 residuos de longitud e incluye un puente disulfuro que esencialmente no varía, que abarca 50-70 residuos de longitud y varios otros residuos relativamente conservados que mantienen una estructura terciaria conocida como el pliegue de la Ig (para un panorama ver Hunkapiller y Hood, Adv. Immunol., 44:1-63, (1989)).
Los genes del IgGSF codifican muchas moléculas con función inmunológica conocida, tales como las inmunoglobulinas, los receptores de linfocitos T, las moléculas del MHC clásicas y no clásicas, varias moléculas de la superficie celular de los linfocitos B y los linfocitos T o la \beta_{2}M. Además, el IgGSF codifica varias moléculas de la superficie celular que se conoce que funcionan como receptores para la adhesión célula-célula. Tales moléculas de adhesión incluyen, por ejemplo, la molécula de adhesión celular neural del antígeno carcinoembriónico. Por supuesto, estas moléculas del IgGSF que o bien no modifican la parte de carbohidrato del ligando de carbohidrato, o que no reconocen el producto modificado no son leczimas.
Las leczimas del IgGSF incluyen aquellas codificadas por genes ubicados dentro de la región del MHC. En los seres humanos, el MHC se encuentra en una banda continua de ADN ubicada en el brazo corto del cromosoma 6. El MHC completo en los seres humanos es denominado el complejo HLA. En ratones, el MHC está ubicado en el cromosoma 17 y contiene los complejos H-2, Q, T y M. Como se usa en la presente, el término "producto de gen derivado del MHC" significa cualquier molécula que contiene por lo menos un polipéptido codificado por un gen ubicado dentro del MHC. Las leczimas que son productos de genes derivados del MHC incluyen las moléculas de clase I y de clase II. Las moléculas de clase I y de clase II que son leczimas en los seres humanos son codificadas por genes dentro de la región HLA-D tales como HLA-DP, HLA-DN, HLA-DM, HLA-DO, HLA-DQ o HLA-DR, o los diversos alelos de los loci HLA-A, HLA-B y HLA-C, o los genes HLA-X, HLA-E, HLA-J, HLA-H, HLA-G y
HLA-F.
Las leczimas que son moléculas del MHC clase I contienen una cadena pesada polimorfa de aproximadamente 45 kDa o una cadena \alpha asociada en forma no covalente con una proteína pequeña no polimorfa denominada \beta_{2}M. La cadena pesada es un producto de gen codificado por el MHC ubicado en, o cerca de, las regiones A, B o C del complejo HLA humano y dentro, o cerca de, las regiones K o D/L del complejo H-2 del ratón. Aunque la \beta_{2}M es codificada por un gen ubicado fuera del MHC y en un cromosoma diferente, la cadena pesada de la molécula clase I es codificada por un gen ubicado dentro del MHC, incluyendo de este modo una molécula clase I dentro de la definición de un producto de gen codificado por el MHC.
Las leczimas que son moléculas del MHC clase II incluyen aquellos productos de genes derivados del MHC compuestos por una cadena \alpha de 34 kDa asociada en forma no covalente con una cadena \beta de 28 kDa. Una cadena adicional denominada la cadena invariable está asociada transitoriamente con el heterodímero clase II durante el transporte a la membrana plasmática de la célula.
Las leczimas pueden ser expresadas en la superficie celular porque tienen una región transmembrana y una cola citoplasmática, como en el caso de los antígenos de trasplante clásicos. Las leczimas también pueden ser ligadas a la superficie celular de una manera similar a las moléculas clase I no clásicas. Por ejemplo, muchas de las moléculas Qa y Tia clase I no clásicas están ligadas a la superficie celular por una unión fosfatidilinositol (PI), y el producto del gen Q10 parece ser segregado (Devlin et al., EMBO J. 4:369-374 (1985)). La mayoría de los antígenos Qa y Tia no tienen los exones citoplasmáticos clase I clásicos incluyendo el sitio de fosforilación en el exón siete (Thor et al., J. Immunol., 151:211-224 (1993)), aunque el dominio transmembrana y el séptimo exón están presentes en los productos de genes Q1 y Q2.
La cadena pesada de clase I del MHC está organizada en tres dominios externos (\alpha1, \alpha2 y \alpha3), cada uno conteniendo aprox. 90 aminoácidos, un dominio transmembrana de aprox. 40 aminoácidos y un segmento de anclaje citoplasmático de aprox. 30 aminoácidos. La \beta_{2}M es similar en tamaño y en organización al dominio externo \alpha3 de la cadena pesada. El análisis cristalográfico de rayos X de la parte extracelular de la molécula clase I del MHC muestra que los dominios \alpha1 y \alpha2 interactúan y son más externos con respecto a la membrana celular, mientras que los dominios \alpha3 y \beta_{2}M interactúan y están más próximos a la membrana celular. Los dominios \alpha1 y \alpha2 que interactúan forman una plataforma que contiene una ranura profunda o hendidura ubicada en la superficie superior de la molécula.
El viejo paradigma para la función de la molécula del MHC clase I clásica interpreta la ranura en la parte superior de la molécula como un sitio de ligadura de péptidos. El sitio es suficientemente grande como para ligar un péptido de aprox. 8-20 residuos de longitud y presentar tanto péptidos derivados propios como extraños para el reconocimiento por ciertas células linfoides T. Una amplia investigación ha mostrado que la molécula clase I clásica del MHC puede ligar un péptido de aproximadamente la longitud de la ranura. Además, el análisis cristalográfico de rayos X de una molécula clase I clásica purificada de una célula indicó que había un péptido en la ranura. Sin embargo, como se describió más arriba, el nuevo paradigma en la presente invención sostiene que la ranura que liga péptidos de la molécula del MHC clase I clásica también es adecuada para ligar un ligando de carbohidratos.
Las leczimas que son una molécula del MHC clase II incluyen aquellas que comparten características estructurales significativas con una molécula clase I. La molécula clase II es una glucoproteína ligada a la membrana que contiene dominios externos, un segmento transmembrana, y un segmento de anclaje citoplasmático. La cadena \alpha contiene dos dominios externos marcados \alpha1 y \alpha2 y la cadena \beta contiene dos dominios externos \beta1 y \beta2. La cristalografía de rayos X muestra que los dominios \alpha2 y \beta2 interactúan como una estructura próxima de la membrana análogamente a la interacción del dominio \alpha3 y el dominio \beta_{2}M de la molécula clase I. Los dominios \alpha2 y \beta2 de la molécula clase II forman juntos una hendidura en la parte superior de la molécula que es muy similar a la hendidura formada por los dominios \alpha2 y \alpha3 de una cadena pesada de clase I. Una amplia evidencia indica que la ranura en la molécula clase II puede ligarse y presentar tanto péptidos propios como extraños para el reconocimiento por las células T linfoides. Se han aislado péptidos de la molécula clase II que tienen 13-18 aminoácidos de longitud, levemente más largos que los péptidos octoméricos o monoméricos aislados comúnmente de las moléculas clase I clásicas del MHC. Como se comentó más arriba, el nuevo paradigma de la presente invención sostiene que la ranura que liga péptidos en la molécula del MHC clase II, como la ranura en la molécula del MHC clase I clásica, también es adecuada para ligar un ligando de carbohidratos.
Las leczimas también pueden ser codificadas por genes clase I no clásicos. En el ratón, los genes que codifican a las leczimas están ubicados en las regiones Q, T y M del MHC corriente debajo de los antígenos de histocompatibilidad clásicos. Hay regiones similares en los seres humanos que codifican para moléculas clase I no clásicas conocidas tales como HLA-F y HLA-G. Los genes clase I no clásicos son en general menos polimorfos que los genes clase I clásicos y muestran diferentes modelos de expresión. Los genes del complejo Q, T y M de ratones consisten en aproximadamente 45 genes, que codifican para los antígenos de diferenciación no polimorfos con distribución tisular limitada.
Las leczimas conocidas que son moléculas del MHC clase I no clásicas presentan una distribución tisular limitada en comparación con las leczimas que son moléculas del MHC clase I clásicas. Por ejemplo, los antígenos Qa y Tia, los productos de los genes Q y T, son expresados en subpoblaciones de linfocitos (para un panorama, ver Flaherty et al. Critical Reviews in Immunology, 10:131-175 (1990)). Previamente, no se asignó ninguna función convincente a los productos de genes de clase I no clásicos, aunque han sido sugeridos como posibles elementos de restricción para células T \gamma\delta (Hershberg et al. Proc. Nat. Acad. Sci (USA), 87:9727-31 (1993)). Se ha informado también que los antígenos Qa y TLa son expresados en el epitelio intestinal (Wu et al., J. Exp. Med., 174:213-218 (1991); Hershberg et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 87: 9727-97231 (1990); Wang et al., Immunogenet., 38:370-372 (1993)) en donde su función era desconocida. El nuevo paradigma de la presente invención sostiene que por lo menos algunas de estas moléculas clase I no clásicas son leczimas.
La molécula Q2 clase I no clásica, producida por un gen dentro del MHC de ratón, es un ejemplo de una leczima que está involucrada en el transporte del hierro (ver Ejemplo I). En este caso una mucina u otra molécula que contiene carbohidratos actúa como un quelador de hierro, y a su vez también contiene el ligando para leczimas expresado del gen Q2. El gen para Q2 está ubicado en una relación cabeza a cabeza con otro gen que codifica más probablemente a una mucina. Ambos genes comparten una sola región promotora, ubicada entre los genes, siendo el promotor análogo en estructura al promotor de la \beta-globina involucrado en el metabolismo del hierro. La regulación coordinada de estos dos genes puede ser entendida fácilmente en vista de las interacciones ligando/receptor y receptor/substrato definidas como función leczima en el nuevo paradigma. Es interesante, que el gen Q2 se distingue de otros genes de clase I no clásicos por ser altamente polimorfo con moléculas de Q2 de diferentes cepas de ratones que difieren significativamente en la secuencia de aminoácidos. A pesar de estas diferencias, las moléculas de Q2 de cepas separadas de ratones funcionan todas como un receptor para su producto de gen corregulado ya que, como una leczima, el Q2 puede modificar enzimáticamente su ligando/substrato de acuerdo con el reconocimiento de lectina y la función enzimática de cada producto de gen Q2 y puede reconocer el producto resultante. Así, la capacidad enzimática/de reconocimiento combinada de una leczima como se definió en el nuevo paradigma mantiene las relaciones receptor/ligando frente a un amplio polimorfismo genético.
Existen leczimas con una variedad de actividades enzimáticas. Por ejemplo, una leczima puede tener una actividad enzimática glucosiltransferasa que da por resultado la transferencia catalítica de un grupo glucosilo (mono o carbohidrato) de un glucosilnucleótido a una molécula aceptora tal como una proteína, un carbohidrato o un lípido. Sin embargo, no todas las glucosiltransferasas son leczimas.
Existe actualmente solo una glucosiltransferasa (\beta1,4-galactosiltransferasa) que se sabe previamente que se expresa en el citoplasma y en la célula (para un panorama ver Shur, Curr. Opin. in Cell Biol., 5:854-863 (1993)). Esta enzima tiene la capacidad de reconocimiento de carbohidratos y la actividad catalítica de carbohidratos y ha sido involucrada en una variedad de interacciones célula-célula y célula-matriz. Una característica de la forma expresada en la superficie celular de la \beta1,4-galactosiltransferasa es que ya no retiene más la actividad ligante del producto que genera después de la modificación enzimática (Miller et al., Nature, 357:590-593 (1992)). Así, esta transferasa particular no es una leczima porque no presenta el reconocimiento de su producto enzimático.
Una leczima del IgGSF puede ser codificada por un gen ubicado fuera del MHC. Por ejemplo, el CD-1 es un producto del gen IgGSF que está relacionado en estructura con la molécula del MHC clase I, pero la cadena pesada CD-1 es codificada por un gen fuera del MHC. La molécula T-6 CD-1 es expresada por una célula especializada que presenta antígenos en la piel (célula de Langerhans) y puede ser internalizada en la célula junto con el antígeno clase II del MHC, indicando una función inmunológica para T-6.
Se puede preparar una composición que comprende un ligando de carbohidratos substancialmente purificado que está ligado específicamente por una leczima. Como se usa en la presente, el término "substancialmente purificado" significa un ligando de carbohidratos que está relativamente libre de otras moléculas contaminantes tales como lípidos, proteínas, ácidos nucleicos, carbohidratos u otras moléculas que no están asociadas normalmente con el ligando de carbohidratos. También, como se usa en la presente, el término "ligado específicamente" significa que tiene suficiente complementariedad para lograr una concentración de substrato no ligado en la presencia de suficiente leczima de por lo menos 10^{-4} molar, y preferentemente 10^{-6} molar o mayor. Un ligando de carbohidratos substancialmente purificado se puede obtener, por ejemplo, usando métodos bioquímicos bien conocidos de purificación de una fuente de carbohidratos o por síntesis química o enzimática.
Una muestra que contiene un ligando de carbohidratos substancialmente purificado se puede obtener de una variedad de fuentes tales como de fluidos, tejidos o células. Estas fuentes pueden ser de cualquier especie de plantas o cualquier animal tal como un mamífero o cualquier organismo. Una fuente de ligando de carbohidratos puede incluir también una célula que ha sido modificada introduciendo en la célula un vector de expresión que codifica una leczima o una proteína, la cual cuando es expresada contiene un ligando de carbohidratos.
Una muestra que contiene un ligando de carbohidratos se puede obtener de una biblioteca de carbohidratos producida químicamente. Tales bibliotecas pueden ser preparadas mezclando carbohidratos de fuentes naturales y de fuentes producidas enzimáticamente. Además, los carbohidratos individuales de la biblioteca pueden ser marcados con un marcador detectable tal como un marcador fluorescente para ayudar a la determinación estructural del ligando de carbohidratos.
Una muestra que contiene un ligando de carbohidratos puede ser procesada para purificar adicionalmente el ligando por métodos bien conocidos en el arte. Tales métodos incluyen, por ejemplo, purificación de glucoconjugados, marcado de glucoconjugados por medios químicos o metabólicos, liberación de carbohidratos de glucoconjugados y caracterización de la estructura del carbohidrato liberado (ver, por ejemplo, Ausabal et al., En "Current Protocols in Molecular Biology", Vol. 2, capítulo 17, (Green Publishing Associates and Wiley Interscience, Nueva York, 1994); Fukuda y Kobata, "Glycobiology: A practical Approach", (IRL Press, Nueva York, 1993), ambos incorporados a la presente por referencia). Además, estos métodos son útiles para la caracterización estructural, incluyendo la secuenciación del ligando de carbohidratos. La elucidación de la estructura de un ligando de carbohidratos purificado de un tejido o una célula puede permitir la producción futura del ligando por síntesis química directa o síntesis enzimática o purificación a partir de una fuente natural.
Un ligando de carbohidratos que se puede ligar a una leczima puede ser identificado por varios métodos. En un método, una muestra que contiene un ligando de carbohidratos se pone en contacto con una leczima de la que sospecha que se liga al ligando bajo condiciones adecuadas para permitir la ligadura específica del ligando a la leczima. Las condiciones adecuadas incluyen, por ejemplo, una concentración de búfer y un pH y un tiempo y temperatura apropiados que permiten la ligadura de la leczima particular y el ligando de carbohidratos. Después de un período de reacción adecuado, la cantidad de ligando de carbohidratos ligado a la leczima puede ser determinada, por ejemplo, adhiriendo una parte detectable tal como un radionúclido o un marcador fluorescente al ligando de carbohidratos y midiendo la cantidad de marcador que está asociada con la leczima después que se ha retirado cualquier ligando de carbohidratos del complejo ligando-leczima.
Como se usa en la presente, "marcador detectable" significa una molécula cuya presencia puede ser detectada debido a una característica física, química o biológica de la molécula. Los marcadores detectables incluyen, por ejemplo, radioisótopos, moléculas fluorescentes, sistemas de enzima/substrato, o moléculas visualmente detectables. Los métodos para marcar en forma detectable una molécula de carbohidratos son bien conocidos en el arte, e incluyen, por ejemplo, reducción con NaB(^{3}H)_{4} o síntesis con carbohidratos radiomarcados (ver, por ejemplo, Varki, supra, 1994 y Rothenberg et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 90: 11939-11943 (1993), ambos incorporados a la presente por referencia, y Fukuda y Kobata, supra 1993). Además, kits para la preparación de una molécula de carbohidrato marcada se pueden obtener comercialmente de fuentes tales como Oxford GlycoSystems (Rosedale,
NY).
Los métodos para retirar un ligando marcado no ligado del complejo ligando-leczima pueden depender, por ejemplo, de la unión de la leczima a un soporte sólido. Los soportes sólidos útiles en la presente invención y los métodos para unir las proteínas a tales soportes son bien conocidos en el arte (ver, por ejemplo, Harlow y Lane, "Antibodies: A laboratory Manual" (Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Nueva York, 1988), que se incorpora a la presente por referencia). Tales soportes sólidos incluyen, por ejemplo, sefarosa, agarosa o poliestireno.
Después de un período de reacción adecuado y después que se ha retirado cualquier marcador no ligado, por ejemplo, por lavado, la cantidad de marcador adherida al soporte sólido provee una medición directa de la cantidad de ligando de carbohidratos unida a la leczima en el soporte. Alternativamente, la cantidad de ligando de carbohidratos marcado unida al soporte puede ser determinada indirectamente después del período de reacción midiendo la cantidad de marcador no unido y substrayendo esta de la cantidad de marcador agregada al comienzo de la reacción.
Para determinar con exactitud la cantidad de ligando marcado que se liga específicamente a la leczima, se puede realizar una reacción de control en donde todas las condiciones son las mismas que en la reacción de ligadura entre el ligando marcado y la leczima excepto que la leczima no está incluida en la reacción de control o la leczima es reemplazada por una proteína irrelevante tal como una albúmina sérica. La reacción de control determina la cantidad de ligadura del ligando de carbohidratos marcado que ocurre no específicamente tal como la cantidad de ligando marcado que se liga al soporte sólido más que a la leczima en el soporte sólido. Así, es necesario substraer el valor de ligadura no específica obtenido de la reacción de control, del valor de ligadura obtenido de la reacción que incluía el ligando de carbohidratos marcado y la leczima para determinar la cantidad de ligando que se liga específicamente a la leczima bajo las condiciones de ensayo.
Una ventaja de usar un soporte sólido es que el ligando marcado puede ser agregado en exceso con relación a la leczima, haciendo posible identificar niveles más bajos de afinidad de ligadura entre el ligando de carbohidratos y la leczima. Métodos tales como el análisis de Scatchard son bien conocidos en el arte para determinar la afinidad de ligadura entre dos moléculas, las cuales pueden estar en solución o una de las cuales puede estar unida a un soporte sólido. La diálisis de equilibrio es un ejemplo de un método en donde la ligadura de un ligando a la leczima puede ser determinada cuando ambas moléculas están en solución.
Métodos para medir la ligadura de un ligando de carbohidratos marcado a una leczima también pueden ser realizados cuando la leczima está asociada con una célula. De una manera análoga al uso de soportes sólidos, las células que expresan la leczima en la superficie celular pueden ligar el ligando de carbohidratos marcado y, después de un período de reacción adecuado, las células pueden ser separadas del ligando no ligado por métodos bien conocidos en el arte tales como por centrifugación o filtración. Las células que expresan una leczima en el citoplasma también se pueden usar para detectar la ligadura de un ligando de carbohidratos a la leczima siempre que la membrana celular haya sido suficientemente permeabilizada para permitir el acceso del ligando de carbohidratos a la leczima en la célula. Métodos que usan células en ensayos de ligadura tales como los ensayos de ligadura antígeno-anticuerpo son bien conocidos en el arte (ver, por ejemplo, Harlow y Lane supra, 1988) y se pueden aplicar en general a los ensayos de ligadura entre un ligando de carbohidratos y una leczima.
Una célula que expresa una leczima puede ser una célula que expresa naturalmente la leczima, tal como un linfocito que expresa una leczima codificada por el MHC clase I o clase II. Una célula que expresa una leczima también puede ser una célula que expresa la leczima como resultado de introducir un vector de expresión que codifica a la leczima en la célula. Las células que expresan leczimas pueden ser obtenidas de fuentes in vivo por métodos bien conocidos en el arte tales como disrupción mecánica del tejido o digestión del tejido por enzimas para liberar a las células de su matriz circundante (ver, por ejemplo, Freshney, "Culture of Animal Cells" (Alan R. Liss, Nueva York, 1993), que se incorpora a la presente por referencia). Una célula que expresa una leczima puede ser una línea celular que se puede obtener de depósitos públicos de células tales como de la "American Type Culture Collection".
Es bien conocido en el arte que la ligadura entre dos moléculas se puede realizar cuando cualquiera de las dos moléculas contiene un marcador detectable. Así, la identificación de un ligando de carbohidratos marcado en forma detectable que se liga a una leczima unida a un soporte sólido o una célula también se puede realizar si la leczima contiene el marcador detectable y el ligando de carbohidratos está unido a un soporte sólido o es expresado por una célula. Una leczima se puede marcar en forma detectable usando métodos para marcar una proteína, que son bien conocidos en el arte e incluyen, por ejemplo, biotinilación o incorporación de precursores marcados con radioisótopos. Una célula que expresa un ligando de carbohidratos puede ser una célula obtenida de tejidos u órganos o puede ser una línea celular tal como una línea celular que se puede obtener de un depósito público.
Los métodos para unir un ligando de carbohidratos a un soporte sólido dependen de la naturaleza química del ligando. Así, la unión puede lograrse a través de la parte carbohidrato u otra molécula unida al ligando de carbohidratos a través de la unión química adecuada para unir estructuras de carbohidratos, péptidos o lípidos a un soporte sólido. Métodos para unir carbohidratos, proteínas o lípidos a varios tipos de soporte sólidos son bien conocidos en el
arte.
La ligadura de un ligando de carbohidratos a una leczima puede ser determinada sin necesidad de un marcador detectable midiendo una característica física o bien del ligando o de la leczima, tal como absorción de radiación ultravioleta. Tales métodos para cuantificar una proteína o carbohidrato por características físicas son bien conocidos en el arte. La capacidad de seguir una característica física del ligando o la leczima se puede aplicar a ensayos de ligadura que usan un soporte sólido o una célula que expresa, o cuando ambas moléculas están en solución. La ligadura de un ligando de carbohidratos a una leczima también puede ser evaluada si el ligando es un substrato para la actividad enzimática de la leczima. En este caso, la ligadura puede ser medida siguiendo la cinética de conversión de substratos medida, por ejemplo, por la ecuación de Michaelis-Menten (Devlin, "Textbook of Biochemistry" (Wiley-Liss Inc., Nueva York, 1992), que se incorpora a la presente por referencia).
Los métodos para identificar un ligando de carbohidratos que se liga a una leczima se pueden realizar usando un solo ligando de carbohidratos purificado o un número limitado de ligandos de carbohidratos, que pueden ser purificados por procedimientos convencionales como se describió más arriba o pueden ser purificados por ligadura a un reactivo de ligadura. Como se usa en la presente, "reactivo de ligadura" significa una molécula química o biológica que se puede ligar específicamente a un ligando de carbohidratos. Por ejemplo, una leczima que se liga a un ligando de carbohidratos es un reactivo que se puede usar para purificar ese ligando. También, un anticuerpo puede ser un reactivo si puede reaccionar específicamente con la parte de carbohidrato, proteína o lípido de un ligando de carbohidratos.
Un ligando de carbohidratos purificado también puede ser marcado en forma detectable por los métodos divulgados en la presente. Un ligando de carbohidratos que no es purificado, tal como uno que se encuentra en una muestra que contiene otras moléculas, se puede usar en un ensayo de ligadura siempre que esté unido a un soporte sólido o sea expresado por una célula y la ligadura sea determinada detectando la ligadura de una leczima. En este caso, si el ligando de carbohidratos no purificado puede ligar a la leczima, la muestra que contiene el ligando puede ser sometida a purificación y ensayos de ligadura subsiguientes para obtener el ligando de carbohidratos en un estado purificado.
Las leczimas purificadas se pueden obtener de células por métodos clásicos para purificación de proteínas o glucoproteínas tales como los métodos conocidos en el arte para purificar las moléculas clase I o clase II. Las leczimas también pueden ser obtenidas de células que han sido modificadas por técnicas de biología molecular para permitir la expresión de una leczima. Un gen que codifica una leczima puede ser clonado en un vector de expresión y luego introducido en una célula huésped. Los vectores son bien conocidos en el arte e incluyen, por ejemplo, vectores de clonación y vectores de expresión, así como también plásmidos o vectores virales (ver, por ejemplo, Goedell,
"Methods in Enzymology", vol. 185 (Academic Press, Nueva York, 1990), que se incorpora a la presente por referencia). Un vector baculovirus es un ejemplo de un vector que se puede usar para expresar una leczima en células de insectos y da por resultado la expresión de nuevos ligandos de carbohidratos en la célula.
Un vector que comprende una molécula de ácido nucleico que codifica una leczima también puede contener un elemento promotor o intensificador, que puede ser constitutivo o inducible y, si se desea, puede ser específico del tejido. Las células huésped también son conocidas en el arte y una célula huésped apropiada puede ser seleccionada para el vector particular que se usará. Por ejemplo, se puede usar un vector de transferencia de baculovirus con ADN de baculovirus para infectar líneas celulares de insectos tales como células SF21. La clonación de tales células transformadas para producir una línea celular estable puede proveer una fuente de la leczima expresada o puede proveer una fuente de ligando de carbohidratos modificada por la leczima expresada.
El gen que codifica una leczima puede ser expresado como una proteína de fusión para ayudar a la purificación o en otros procesamientos corriente abajo de la leczima. Por ejemplo, la leczima puede ser producida como una proteína quimérica fusionada al dominio CH2 o CH3 que constituye la región ligante de Fe de una molécula de inmunoglobulina, como se realizó previamente para expresar la lectina CD22\beta (Stamenkovic et al., Cell, 66:1133-1144 (1991)). El uso de la Proteína A de Staphylococcus aureus ligada a un soporte sólido, que se puede obtener fácilmente de fuentes comerciales, se puede usar para purificar la leczima quimérica que contiene Fe. Además, el soporte sólido que contiene la leczima quimérica se puede usar directamente para evaluar una ligadura de un ligando de carbohidratos.
Los métodos que se describieron más arriba para identificar a un ligando de carbohidratos que se liga a una leczima también se pueden usar para identificar a una leczima que se liga a un ligando de carbohidratos. Por ejemplo, una muestra que contiene una leczima se pone en contacto con un ligando de carbohidratos del que se sospecha que se liga a la leczima bajo condiciones adecuadas para permitir la ligadura específica del ligando a la leczima. Las leczimas a ser identificadas para la ligadura incluyen, por ejemplo, una leczima purificada o una leczima contenida dentro de una mezcla compleja tal como una mezcla de proteínas expresada de una biblioteca de expresión de cADN. Los métodos para producir una biblioteca de expresión de cADN son bien conocidos en el arte (ver, por ejemplo, Sambrook et al., "Molecular Cloning: A laboratory manual" (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989), que se incorpora a la presente por referencia).
Un ligando de carbohidratos también puede ser purificado por una columna de afinidad y tecnologías relacionadas. Por ejemplo, Una muestra que contiene el ligando de carbohidratos se puede poner en contacto con el reactivo de ligadura bajo condiciones adecuadas para permitir la formación de un complejo de ligando-reactivo ligante. Las condiciones adecuadas incluyen, por ejemplo, una concentración de búfer y pH y tiempo y temperatura apropiados que permiten la ligadura del ligando de carbohidratos al reactivo ligante. El complejo de ligando-reactivo ligante es separado luego del resto de la muestra por un método de separación tal como por lavado, y el ligando es disociado del complejo.
Como otro ejemplo, una leczima que se liga a un ligando de carbohidratos puede comprender un reactivo ligante usado para purificar ese ligando. Un anticuerpo puede comprender también un reactivo ligante si éste puede reaccionar específicamente con la parte de carbohidrato, proteína o lípido de un ligando de carbohidratos.
La purificación del ligando de carbohidratos se puede lograr si el reactivo ligante se une a un soporte sólido tal como agarosa, sefarosa o plástico. Los métodos para acoplar una proteína o un carbohidrato a un soporte sólido, divulgados más arriba para detectar la ligadura de un ligando de carbohidratos a una leczima, también son útiles para unir un reactivo ligante a un soporte sólido.
Los métodos para disociar un ligando de carbohidratos de un complejo de ligando-reactivo ligante pueden depender de la naturaleza del reactivo ligante. Por ejemplo, si el reactivo ligante es una leczima, entonces un método para disociar el complejo puede involucrar la inhibición competitiva del complejo con una estructura de carbohidrato que tiene una afinidad de ligadura por el mismo sitio en la leczima que liga el ligando de carbohidratos. Otros tratamientos bien conocidos que son útiles para disociar un ligando de carbohidratos de un reactivo ligante incluyen, por ejemplo, extremos en pH, alta concentración de sales o agentes caotrópicos (ver, por ejemplo, Harlow y Lane, supra, 1988), que se incorpora a la presente por referencia, y Varki, supra, 1994). Los ligandos de carbohidratos purificados por los métodos divulgados más arriba son adecuados para el análisis estructural como se describió más arriba, para permitir la producción futura del ligando por síntesis química o enzimática.
Un anticuerpo que se liga específicamente a un ligando de carbohidratos del tipo oligosacárido o polisacárido puede ser producido con respecto a la parte carbohidrato, o a una parte de proteína o una parte de lípido si tales partes están unidas al ligando. Un anticuerpo específico para el esqueleto de péptidos del ligando de carbohidratos tal como el esqueleto de péptidos de una mucina puede ser útil para purificar una fuente de mucina de diferentes células o de diferentes individuos, ya que el esqueleto de péptidos se puede conservar más entre carbohidratos que contienen péptidos que las partes de carbohidrato de esas moléculas. Métodos para producir anticuerpos tales como anticuerpos policlonales, anticuerpos monoclonales, fragmentos de anticuerpos o similares, que son específicos para proteínas, carbohidratos o lípidos son bien conocidos en el arte (ver, por ejemplo, Harlow y Lane, supra,
1988).
Una leczima puede ser purificada usando métodos en donde la leczima se liga específicamente a un ligando de carbohidratos. En estos métodos, una muestra que contiene la leczima se pone en contacto con un ligando de carbohidratos bajo condiciones adecuadas para permitir la formación de un complejo de ligando-leczima. Las condiciones adecuadas incluyen, por ejemplo, una concentración de búfer y pH y tiempo y temperatura apropiados que permiten la ligadura de la leczima y el carbohidrato. El complejo de ligando-reactivo ligante se separa luego del resto de la muestra por un método tal como por lavado, y la leczima es disociada del complejo.
La purificación de la leczima se puede lograr si el ligando de carbohidratos se une a un soporte sólido tal como agarosa, sefarosa o plástico. Los métodos para acoplar un ligando de carbohidratos a un soporte sólido, tales como aquellos divulgados más arriba para detectar la ligadura de un ligando de carbohidratos a una leczima, son útiles para unir un ligando de carbohidratos a un soporte sólido. Los métodos para disociar la leczima del complejo de ligando-leczima pueden utilizar los métodos divulgados en la presente para disociar un ligando de carbohidratos de un complejo de ligando-leczima.
Como se usa en la presente, "función" con referencia a una célula incluye cualquier actividad que puede ser detectada para una célula. La función de una célula puede variar con la naturaleza de la célula en cuestión. Por ejemplo, la función de un linfocito T puede incluir actividades tales como la producción de ciertas citoquinas, adquisición de linfólisis mediada por células, capacidad para mediar en la citotoxicidad mediada por células dependiente de anticuerpos o la capacidad de ayudar a los linfocitos B a producir anticuerpos. Así, un ligando de carbohidratos particular que se puede ligar a una leczima en un linfocito T y efectuar subsiguientemente la función de la célula puede hacerlo aumentando o disminuyendo cualquiera de las funciones del linfocito T mencionadas más arriba. Como otro ejemplo, la adición de un complejo de carbohidrato a las células epiteliales del tracto gastrointestinal afectará la absorción de hierro.
La función de una célula que expresa una leczima puede ser modificada poniendo en contacto la célula con un ligando de carbohidratos que se liga a la leczima. Además, la invención provee métodos para modificar la función de una célula que expresa un ligando de carbohidratos poniendo en contacto la célula con una leczima que liga al ligando. La identificación de o bien un ligando de carbohidratos o una leczima que puede modificar la función de una célula tiene usos in vitro e in vivo. Por ejemplo, los ligandos o las leczimas capaces de disminuir o aumentar la actividad funcional de una célula que está involucrada en un estado de enfermedad pueden ser administrados a un individuo para tratar la enfermedad.
Un péptido que se puede ligar al sitio de ligadura del ligando de carbohidratos de una leczima puede ser identificado, por ejemplo, poniendo en contacto una muestra que contiene un péptido o péptidos a ser probados con una leczima bajo condiciones adecuadas para permitir la ligadura del péptido a la leczima. Subsiguientemente, la leczima se hace reaccionar con un ligando de carbohidratos que se sabe que se liga a la leczima. La reacción se realiza bajo condiciones adecuadas para que el ligando de carbohidratos se ligue a la leczima. Alternativamente, el péptido, la leczima y el ligando de carbohidratos pueden ser agregados juntos al comienzo de la reacción.
El ligando de carbohidratos puede ser agregado directamente a la mezcla que contiene el péptido y la leczima o puede ser agregado después que cualquier péptido no ligado ha sido retirado de la leczima. Después del final de la reacción, la cantidad de carbohidrato que liga a la leczima se determina y se compara con la cantidad de ligando de carbohidratos que se liga a la leczima en una muestra de control que no contenía péptido. Si la cantidad de ligando de carbohidratos que se liga a la leczima en la muestra que contiene el péptido es menor que la cantidad de ligando de carbohidratos que se liga a la leczima en la muestra de control, entonces se puede concluir que el péptido se ligó al sitio de ligadura del ligando de carbohidratos de la leczima y por lo tanto es un péptido mimetopo del ligando de carbohidratos.
Un péptido mimetopo puede ser identificado en un formato de ensayo que utiliza un ligando de carbohidratos que contiene un marcador detectable y una leczima que está ligada a un soporte sólido o es expresada por una célula. Los métodos divulgados en la presente para identificar un ligando de carbohidratos que se liga a una leczima son útiles para generar el formato de ensayo para identificar un péptido mimetopo de un ligando de carbohidratos.
Una secuencia de péptidos definida puede ser sintetizada químicamente o producida por métodos biológicos, tales como por técnicas de ADN recombinante (ver, por ejemplo, Sambrook et al., supra, 1989). También se puede usar una mezcla compleja de péptidos para identificar a un péptido mimetopo. Tales mezclas complejas pueden incluir, por ejemplo, una mezcla de secuencias definidas, o puede ser una biblioteca de secuencias semialeatoria o aleatoria. Los métodos para generar las bibliotecas de péptidos por métodos tales como síntesis química en una perla o una placa de microtitulación o producción biológica tal como en la superficie de un bacteriófago son bien conocidos en el arte (ver, por ejemplo, Huse et al., Science 246:1275-1281 (1989), que se incorpora a la presente por referencia).
Un péptido que se puede ligar al sitio de ligadura del ligando de carbohidratos de una leczima también puede tener algunas de las características funcionales de un ligando de carbohidratos y así puede ser considerado un mimetopo funcional del ligando de carbohidratos. Tales péptidos mimetopos se pueden usar para modificar la función de una célula y también se pueden usar para tratar un estado de enfermedad que involucra una leczima que se puede ligar al mimetopo.
Una célula puede ser modificada para producir un ligando de carbohidratos introduciendo un vector de expresión que codifica una leczima en una célula para obtener la expresión de la leczima, lo que da por resultado la producción del ligando de carbohidratos por la célula. Las células que producen un ligando de carbohidratos particular son útiles para proveer tipos de ligandos únicos, que pueden ser purificados a partir de las células. Además, tales células son útiles en ensayos de ligadura para identificar una leczima que liga al ligando.
Una respuesta inmunológica en un individuo, tal como un ser humano u otro animal, puede ser modulada usando un antígeno para el cual se desea la respuesta inmunológica y un ligando de carbohidratos que se liga a una leczima. Como las leczimas incluyen, por ejemplo, las moléculas del complejo mayor de histocompatibilidad que están involucradas en el sistema inmunológico, la inyección de un ligando de carbohidratos y un antígeno puede modular una respuesta inmunológica. Como se usa en la presente, "modular" significa aumentar o disminuir. Un aumento en la respuesta inmunológica se puede obtener administrando un ligando de carbohidratos ligado a un antígeno de tal modo que el antígeno es direccionado a través de la leczima a una célula que presenta un antígeno.
Un antígeno puede ser asociado con un ligando de carbohidratos uniendo en forma covalente el antígeno al carbohidrato o a cualquier proteína o lípido del ligando usando métodos bien conocidos en el arte. El método actual para acoplar en forma covalente el antígeno al ligando de carbohidratos dependerá de la naturaleza de cada molécula a ser acoplada y si el procedimiento de acoplamiento es perjudicial para cualquier determinante antigénico crítico del antígeno o la capacidad del ligando de carbohidratos para ligar su leczima objetivo. Tales efectos perjudiciales pueden ser evaluados fácilmente en ensayos de ligadura como se describió más arriba.
Más de una sola molécula de antígeno o más de un solo ligando de carbohidratos pueden ser acoplados juntos para producir un inmunógeno. Tales moléculas pueden hacerse multivalentes para cualquiera o para ambos del antígeno o el ligando de carbohidratos y se pueden usar para provocar una mayor respuesta inmunológica que un inmunógeno que contiene una sola molécula de antígeno y una sola molécula de un ligando de carbohidratos.
Los métodos para aumentar una respuesta inmunológica en un individuo son bien conocidas por los expertos en el arte y requieren optimización de parámetros tales como dosis, vía de administración, uso de un adyuvante, o esquema de administración (ver, por ejemplo, Hartow y Lane, capítulo 5, supra, 1988). Estos mismos métodos pueden ser adaptados para usar con ligandos de carbohidratos. Una respuesta inmunológica aumentada obtenida después de administrar un antígeno y un ligando de carbohidratos se logra cuando el parámetro de la respuesta inmunológica ha aumentado en un nivel estadísticamente significativo sobre el nivel del parámetro manifestado antes de la administración del antígeno y el ligando de carbohidratos.
Los parámetros de la respuesta inmunológica que pueden aumentar después de administrar un antígeno asociado con un ligando de carbohidratos incluyen una respuesta mediada por anticuerpos o una respuesta mediada por células. Los métodos para medir las respuestas inmunológicas a los anticuerpos son bien conocidos por los expertos en el arte e incluyen, por ejemplo, detección de inmunoglobulinas por métodos in vitro e in vivo (ver, por ejemplo, Harlow y Lane, supra, 1988). Los métodos para medir las respuestas inmunológicas celulares también son bien conocidos en el arte e incluyen métodos in vivo tales como prueba en la piel para la hipersensibilidad retardada y métodos in vitro tales como citotoxicidad celular directa o ensayos de activación celular (ver, por ejemplo, Colligan et al., supra, 1992; Mishell y Shiigi, supra, 1980).
Un antígeno asociado con un ligando de carbohidratos también se puede usar para disminuir una respuesta inmunológica al antígeno y puede ser particularmente útil para tratar una respuesta inmunológica deletérea tal como un estado de enfermedad autoinmune. Los métodos para disminuir una respuesta inmunológica pueden, bajo algunas condiciones, dar por resultado un estado prolongado de falta de respuesta inmunológica específica al antígeno, denominado comúnmente estado de tolerancia al antígeno.
La disminución de una respuesta inmunológica a un antígeno administrando el antígeno unido a un ligando de carbohidratos se puede lograr usando métodos bien conocidos en el arte para suprimir o tolerizar un individuo a un antígeno. Tales métodos incluyen, por ejemplo, la administración de bajas dosis, formas monoméricas y no agregadas del antígeno y el ligando de carbohidratos o la administración oral. Además, se puede obtener una respuesta inmunológica disminuida administrando el antígeno y el ligando de carbohidratos en forma concurrente con un agente inmunosupresor tal como ciclosporina A, FK506 o anticuerpos a un receptor de la superficie celular de linfocitos T particular. Los métodos para usar tales agentes para disminuir la respuesta inmunológica a un antígeno en seres humanos o animales son bien conocidos en el arte.
Un trastorno metabólico de hierro conocido como hemocromatosis también puede ser diagnosticado usando métodos divulgados en la presente porque los defectos en el metabolismo del hierro pueden tener una base en la función de la leczima. En concentraciones elevadas, el hierro es una molécula inorgánica tóxica que ha sido involucrada en la fisiopatología de un número de enfermedades comunes. Estas incluyen, pero no están limitadas a, cáncer (Stevens et al., N. Engl. J. Med., 319:1047 (1988); Stevens, et al., Med. Oncol. Tumor Pharmacother, 7: 177-181 (1990)), enfermedades cardíacas (Kannel, et al., 1976; Sullivan, Lancet, 1:1293-1294 (1981); Salonen, et al., Circulation, 86:803-811 (1992)), lesión por reperfusión (Zweier, J. Biol. Chem., 263:1353-1357 (1988)) y artritis reumatoide (Blake et al., Arthritis Rheum., 27:495-501 (1984)). No hay argumentos en contra de que una fuerte sobrecarga de hierro da por resultado un conjunto de patologías, denominadas colectivamente hemocromatosis, la enfermedad genética más común que se conoce que afecta a los seres humanos.
La hemocromatosis resulta de la absorción aumentada de hierro del tracto GI por transporte activo, pero el gen o los genes que provocan el efecto metabólico subyacente no se conocen actualmente. La identificación de los genes responsables de la absorción de hierro y que desarrollan un modelo animal en donde la sobrecarga de hierro se debe a la absorción de hierro aumentada activa del tracto GI, facilitaría mucho la comprensión de la hemocromatosis y aumentaría el conocimiento de los mecanismos generales del metabolismo del hierro. Como se divulga en la presente, una leczima codificada por el MHC puede estar involucrada en la patogénesis de la hemocromatosis.
La hemocromatosis no capta usualmente la atención clínica hasta que se desarrollan los síntomas y varios estudios han indicado que la remoción del hierro después del desarrollo del daño al tejido no mejora necesariamente la función del órgano (Cundy, et al., Clin, Endocrinol., 38:617-620 (1993); Westera et al., Am. J. Clin. Path., 99:39-44 (1993)). La hemocromatosis es una enfermedad subdiagnosticada y subtratada que se beneficiaría mucho del diagnóstico temprano y de un tratamiento efectivo (para un panorama ver, Edwards et al., Hosp. Pract. Suppl., 3:30-36 (1991); Edwards y Kushner, N. Engl. J. Med., 328:1616-1620 (1993)).
La hemocromatosis no tratada está caracterizada por la sobrecarga de hierro de las células del parénquima, que es tóxica y en muchos casos una causa probable de varias complicaciones incluyendo hepatopatía (incluyendo cirrosis y cáncer hepático), artropatía, hipogonadismo hipogonadotrópico, aplasia medular, trastornos de la piel, diabetes mellitus y cardiomiopatía (para un panorama ver, Halliday y Powell, "Iron and Human Disease", Lauffer, RB, (ed). 131-160 (1992)). Hay, según se informa, aproximadamente 1,5 a 2 millones de casos activos de hemocromatosis en los EE.UU., con aproximadamente 25% de los pacientes diagnosticados tardíamente o no tratados que desarrollaron hepatomas.
En la hemocromatosis no tratada, el hierro es depositado universalmente en los hepatocitos del hígado, y la saturación elevada de transferrina con niveles elevados de ferritina sérica combinados con una biopsia del hígado provee la mejor prueba diagnóstica disponible actualmente (Fairbanks, Hosp. Pract., 26: 17-24 (1991)). El hierro se encuentra principalmente en el citoplasma de los hepatocitos y por microscopia electrónica en vacuolas lisosómicas, y en casos más graves, el hierro se deposita en la mitocondria (para un panorama, ver Iancu, Ped. Pathol., 10:281-296 (1990)). Otras toxinas hepáticas tales como alcohol y hepatitis exacerban el daño causado por la deposición de hierro (Piperno et al., J. Hepat., 16:364-368 (1992)). A los pacientes con hemocromatosis se les aconseja no tomar alcohol, debido a un mayor daño del hígado, o a no fumar productos de tabaco, ya que la deposición de hierro también puede ocurrir en los pulmones.
En la literatura se informa que la hemocromatosis es una enfermedad recesiva autosómica en la cual el o los genes responsables están unidos al locus A del MHC humano (complejo HLA), ubicado en el cromosoma 6 (Simon y Brissot, Hepatol., 6:116-124 (1988)). La unión al HLA-A3 humano ha sido documentada en aproximadamente 73% de los casos. Sin embargo, también se han involucrado otros loci genéticos, especialmente en poblaciones africanas (Gorduke et al., N. Engl. J. Med., 326:95-100 (1992)) y afro-americanas (Barton et al., Blood, 85:95a (1993)).
La hemocromatosis se reconoce actualmente como la enfermedad genética más común en los seres humanos, excediendo en mucho a la fibrosis quística, la fenilcetonuria y la distrofia muscular combinadas (Leggett et al., Clin. Chem., 36:1350-1355 (1990)). Una explicación para la alta incidencia de esta enfermedad genética puede ser que las mutaciones en genes ligados en forma múltiple producen un fenotipo similar. La hemocromatosis ocurre muy frecuentemente en poblaciones de origen europeo con una frecuencia de homocigotas y heterocigotas de aproximadamente 0,3 y 13%, respectivamente.
Varios marcadores, incluyendo el D6S105 recientemente descrito, han sido identificados en el locus del MHC humano y han estrechado la ubicación genómica del gen de la hemocromatosis a dentro de 1 centimorgan del locus A (Jazwinska et al., Am. J. Hum. Genet., 53:347-352 (1993)), y posiblemente centromérico con respecto a HLA-F (Gasparini, et al., Hum. Mol. Genet., 5:571-576 (1993)). Otros han informado genes candidatos para la hemocromatosis ubicados 20-200 kb teloméricos con respecto a HLA-A (Kahloun et al., Hum. Mol. Genet., 2:55-60 (1993)). Si bien se creía que varios de estos genes candidatos eran una copia simple, se halló que tres de los genes, denominados HCG II, IV y VII, eran genes multicopias. Así, a pesar de los avances realizados en la determinación de la ubicación del gen de la hemocromatosis, aún no ha sido aislado.
La mayoría de los modelos animales para la sobrecarga de hierro no son completamente adecuados para el estudio de la hemocromatosis ya que no reflejan la absorción aumentada de hierro del intestino por transporte activo. Ratones homocigotas para la eliminación del gen que codifica el \beta_{2}M (ratones \beta_{2}-/- (Koller et al., Science, 248:1227-1230 (1990); Zijlstra et al., Nature, 344:742-746 (1990)), sin embargo, proveen un excelente modelo animal para el estudio de la hemocromatosis. Estos animales no tienen las proteínas clase I detectables en la superficie celular, aunque la marcación bioquímica muestra que los productos de genes clase I están siendo sintetizados. Los linfocitos activados de animales \beta_{2}-/- pueden ser lisados por células asesinas naturales (NK), sugiriendo nuevamente una deficiencia en la expresión de la clase I (Liao et al., Science, 253:199-202 (1991)). Estos ratones se desarrollaron originalmente para estudiar el rol del \beta_{2}M en el desarrollo. Si bien los ratones se desarrollaron y tuvieron crías normalmente, no pudieron generar números significativos de células T CD8+. En consecuencia, estos ratones han sido estudiados intensamente desde una perspectiva inmunológica.
Los ratones \beta_{2}-/- combaten infecciones virales relativamente bien, aunque el curso de la infección es más largo que en animales normales (Eichelberger et al., J. Exp Med., 174:875-878 (1991); Muller et al., Nature, 255:1576-1579 (1992)). Los mismos rechazan aloinjertos (Zijlistra et al., J. Exp. Med., 175:885-889 (1992)) y muestran mayores niveles de producción de Ig y un cambio de clase de los tipos de anticuerpos más rápido que los ratones normales. Aunque las células T CD8+ se encuentran a un nivel bajo hasta no detectable en el nacimiento, los estudios han mostrado que los animales pueden generar células T CD8+, y se puede formar una respuesta citotóxica de las células T CD8+ bajo circunstancias apropiadas (Apasov y Stikovsky, J. Immunol., 152:2087-2097 (1994)). Otra anormalidad significativa informada en estos animales es que desarrollan hiperglucemia (glucosa>300 mg/dl) cuando son viejos (más de 2 años). Se ha sugerido que la aparición de diabetes en los ratones \beta_{2}-/- está relacionada con la autoinmunidad (Faustman et al., Science, 254:1756-1761 (1991)), sin embargo, esta explicación ha sido discutida (Serreze et al., Diabetes, 43:505-509 (1994); Wicker et al., Diabetes, 43:500-504 (1994)).
Los ratones \beta_{2}-/- pueden desarrollar sobrecarga de hierro que es similar a la hemocromatosis humana. Los ratones \beta_{2}-/- pueden desarrollar espontáneamente hepatomas. Esta observación combinada con los datos de biología molecular de los genes \beta-GAP (ver Ejemplo I), sugirieron que los ratones desarrollarían sobrecarga de hierro. El examen histoquímico de los tejidos de estos ratones, confirmó esta hipótesis. Se halló hierro depositado en el hígado de todos los animales y en los riñones, bazos y pulmones de algunos de los animales. Además, el 16% de los animales desarrolló una enfermedad hepática, presentando o bien hepatomas o necrosis del hígado. Así, los hallazgos clínicos para los ratones con deficiencia de \beta_{2}-/- son suficientemente similares a la patología de la hemocromatosis para hacer que los ratones \beta_{2}-/- sean un modelo atractivo para el estudio de un mecanismo subyacente a la hemocromatosis humana. Lo que es más importante, los ratones \beta_{2}-/- demostraron que el \beta_{2}M tiene un rol en esta enferme-
dad.
La capacidad de los promotores \beta-GAP para co-regular el gen \beta-GAP y un gen clase I no clásico que codifica a la leczima, expresándose ambos en el intestino, sostiene un rol para una leczima clase I en la hemocromatosis. El gen clase I no clásico regulado por el promotor \beta-GAP es una leczima que puede reconocer y modificar una estructura de carbohidrato asociada con el producto de gen \beta-GAP, el último de los cuales liga directa o indirectamente el hierro (es decir, el gen p-GAP puede ser un vehículo del hierro). La disrupción de la expresión de \beta_{2}M resulta en una pérdida de regulación de la función de la leczima provista por la molécula clase I no clásica, que lleva a la sobrecarga de hierro y la hemocromatosis.
Una predisposición genética para la hemocromatosis u otras enfermedades de acumulación de hierro basadas en una leczima puede ser diagnosticada detectando una mutación en la cadena pesada de una molécula del MHC clase I codificada por un gen en el locus del MHC. Estos métodos pueden ser usados para diagnosticar a un individuo que tiene los síntomas de una enfermedad con acumulación de hierro. Un diagnóstico positivo de mutación en una cadena pesada del individuo es útil para verificar la causa subyacente de la enfermedad y para identificar la leczima particular que mutó. La identificación de la leczima que mutó se puede usar con los métodos divulgados en la presente para identificar un carbohidrato adecuado para tratar la enfermedad.
Un individuo que no tiene una enfermedad de acumulación de hierro, pero del que se sospecha que ha heredado una mutación que puede predisponer al individuo a desarrollar una enfermedad de acumulación de hierro más tarde en su vida también se puede beneficiar de probar las mutaciones por los métodos divulgados en la presente.
Una mutación que puede diagnosticar la enfermedad es una que da por resultado una afinidad significativamente reducida de la cadena pesada para el \beta_{2}M humano. Por ejemplo, una mutación en una cadena pesada clase I no clásica que da por resultado la eliminación de una señal para la fosforilación es una mutación que diagnostica la hemocromatosis ya que una cadena pesada adecuadamente fosforilada es necesaria para que la cadena interactúe con el \beta_{2}M. Las secuencias de aminoácidos de consenso que dan una señal a una célula para fosforilar un residuo de serina o treonina en un polipéptido son bien conocidas en el arte. Una mutación que sirve como diagnóstico para la hemocromatosis también puede ocurrir en una región de la cadena pesada que está cerca de un sitio de fosforilación. Una mutación como ésta puede reducir la capacidad de la cadena pesada de asociarse con el \beta_{2}M si el grupo fosfato agregado a este sitio no puede ser retirado en una célula.
Los métodos para detectar una mutación en un sitio de fosforilación en una cadena pesada clase I no clásica pueden basarse o bien en el análisis de la proteína o del ácido nucleico que codifica a la proteína. Para la determinación de la proteína, la molécula clase I no clásica puede ser purificada a partir de una fuente de células o fluidos corporales de un individuo y la cadena pesada puede ser aislada de \beta_{2}M. Los métodos para purificar una molécula del MHC clase I y aislar la cadena pesada de \beta_{2}M son bien conocidos en el arte. La cadena pesada aislada puede ser sometida a secuenciación de aminoácidos, mapeo de péptidos u otros análisis de proteínas de este tipo para determinar si la secuencia de un sitio de fosforilación ha sido mutada. Tales métodos para la determinación de proteínas son bien conocidos por los expertos en el arte.
Una mutación en una secuencia de ácidos nucleicos puede ser detectada por varios métodos para analizar ácidos nucleicos tal como por secuenciación de ácidos nucleicos, reacción en cadena de polimerasa o hibridación. Tales métodos son bien conocidos por los expertos en el arte (ver, por ejemplo, Sambrook et al., supra, 1989; Hames y Higgins, "Nucleic Acid Hybridisation: a practical approach", (IRL Press, Nueva York, 1985), los cuales se incorporan a la presente por referencia).
Los métodos para detectar una ligadura disminuida de una cadena pesada mutada con \beta_{2}M se pueden usar para diagnosticar una enfermedad de acumulación de hierro tal como la hemocromatosis. En estos métodos, la cadena pesada de una molécula del MHC clase I es aislada de un individuo y puesta en contacto con \beta_{2}M bajo condiciones adecuadas para que una cadena pesada como ésta no mutada se asocie con \beta_{2}M. Una reacción de control, que contiene una forma no mutante de una cadena pesada clase I igual o similar a la que se está probando para determinar una mutación se realiza en paralelo. Después de poner en contacto la cadena pesada con \beta_{2}M, la reacción es incubada bajo condiciones adecuadas, incluyendo, por ejemplo, una concentración de búfer y pH y tiempo y temperatura apropiados, que es suficiente para que la cadena pesada de control se asocie con el \beta_{2}M. La cadena pesada del individuo que está siendo examinada se considera que tiene un diagnóstico de mutación para una enfermedad de acumulación de hierro cuando la fracción de esta cadena pesada que se asocia con el \beta_{2}M es significativamente menor que la fracción de la cadena pesada de control que se asocia con el \beta_{2}M.
La asociación de una cadena pesada clase I con el \beta_{2}M puede ser detectada, por ejemplo, uniendo una de las moléculas a un soporte sólido y uniendo un marcador detectable tal como un radionúclido o un marcador fluorescente a la otra molécula y midiendo la cantidad de marcador detectable que está asociado con el soporte sólido, en donde la cantidad de marcador detectada indica la cantidad de asociación de la cadena pesada con el \beta_{2}M.
Los siguientes ejemplos pretenden ilustrar pero no limitar la presente invención.
Ejemplo I
Clonación y expresión de los genes \beta-Gap
Este ejemplo provee una propuesta para identificar y clonar genes de leczima de varias especies de animales para elucidar su rol en las enfermedades metabólicas de hierro.
Clonación de los genes \beta-Gap de ratón
Se construyeron bibliotecas \alpha genómicas por digestión parcial con Hae III de ADN de hígado de ratones A/J y Balb/c y clonación de los fragmentos en el vector Charon 4A. Las bibliotecas fueron rastreadas con la sonda S15, aislada del gen H-2L^{d} (Margulies et al., Nature, 295: 168-170 (1982), que se incorpora a la presente por referencia)) S15 es una sonda de ratón del MHC clase I 3' y consiste en 522 pares de bases incluyendo 36 pares de bases del exón 4 que codifica el dominio alfa-3 y 486 pares de bases del intrón (Evans et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 79:1994-1998 (1982)). Las sondas se prepararon extirpando el inserto de M13RF o pUC 18, purificando el fragmento a partir de geles de acrilamida reticulados con disulfuro (Hansen, Anal. Biochem. 116:146-151 (1981)), y marcando con ^{32}P a una actividad específica de >10^{8} cpm/\alphag por traducción de la mella ("nick") (Rigby et al., J. Mol. Biol. 113:237-251 (1977)). Las bibliotecas fueron rastreadas usando técnicas de hibridación de colonias estándar (para detalles ver Sambrook et al., supra, 1988).
Se aislaron 17 clones \alpha únicos de las bibliotecas y fueron sometidos a mapeo de digestión por enzimas de restricción. La digestión con BamHI y electroforesis en gel de estos clones reveló cinco de la cepa A/J y uno de la cepa Balb/c que contenían un fragmento de restricción (BB500) BamHI de 500 pares de bases (bp) único. Los seis clones que contenían el fragmento único fueron sometidos a digestión con BamHI, el fragmento BB500 fue purificado en gel y subclonado en el vector M13, Mp18 y mp19 (Yanisch-Perron et al., Gene 33: 103-119 (1985)). Las secuencias de ADN fueron determinadas por el método de terminación de cadena (Sanger, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 74:5463-5467 (1977)) usando ^{35}S-ATP. Las reacciones se analizaron en geles de gradiente de 6% urea-poliacrilamida (Biggins et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 80:3963-3965 (1983)). Las secuencias de ADN fueron ensambladas y analizadas usando los Programas del Grupo de Computación de la Universidad de Wisconsin (Devereux, et al., Nucleic Acids Res. 12:387-395 (1984)) corridos en una computadora VAX-11/785.
Las comparaciones de secuencias de ADN demostraron que los fragmentos de BB500 comparten más de 93% de homología de secuencias. Una región dentro del fragmento BB500 muestra una homología de secuencias de 100% entre los clones \alpha y ha sido denominado \beta-GAP (promotor análogo de globina) ya que su motivo regulador comparte homología de secuencia con promotores \beta-globina de ratón, conejo o seres humanos (para una comparación detallada ver más adelante). Hay una estrecha similitud entre los seis fragmentos (denominados \beta-GAP1-6) con la excepción menor del \beta-GAP4 en donde se ha eliminado una secuencia de 8 pares de bases AAGAGGAG, inmediatamente corriente abajo de un elemento CCAAT. Hay otras diferencias menores entre estas secuencias y los clones \alpha de las cuales fueron aislados demuestran diferentes modelos de restricción que confirman que los diversos clones \alpha contienen secuencias y no son un artefacto de clonación. Así, el ratón de cepa A/J contiene por lo menos cinco secuencias \beta-GAP altamente homólogas dentro de su genoma.
Mapeo del mapa de secuencias \beta-GAP con respecto al cromosoma 17 en el ratón
Se usó la transferencia Southern para determinar si la secuencia BB500 podía identificar genes ubicados en el cromosoma 17 del ratón. Se evaluó el ADN de varias líneas celulares híbridas somáticas de ratón de ovario de hámster chino (CHO) por transferencia Southern usando la sonda \beta-GAP6 de BB500. Se aisló el ADN genómico de células cultivadas, se digirió con EcoRI, se sometió a electroforesis en geles de agarosa 0,8% y se transfirió a una membrana de nitrocelulosa. La hibridación con la sonda BB500 se llevó a cabo en presencia de sulfato de dextrano bajo las condiciones descriptas por Meinkof y Wahl (Anal. Biochem. 138:267-284 (1985)) con un lavado final en 0,2X de búfer de cloruro de sodio citrato de sodio, pH 7,0 (SSC) a 60ºC.
La sonda BB500 hibridó con la línea celular HM27 que contenía el ADN de los cromosomas de ratón 15 y 17 y reveló el mismo modelo de bandeo que con el ADN genómico total de BALB/c. La línea celular HM65 que no tiene el cromosoma 17 de BALB/c no tenía bandas hibridables, indicando que la sonda no se ligó no específicamente al ADN de CHO. Se examinó el ADN de otras líneas celulares de CHO que contenían cromosomas de ratón distintos del cromosoma 17 por transferencia Southern con la sonda BB500 y se halló que eran negativas (no mostradas). Estos resultados indican que las secuencias de \beta-GAP mapean todas al cromosoma 17 en el ratón.
Mapeo de las secuencias \beta-GAP con respecto al complejo O/TL de ratón
El hecho de que las secuencias \beta-GAP fueron aisladas del genoma de ratón proporcionó varias herramientas poderosas para mapear precisamente la ubicación de las secuencias. Primero, el MHC de ratón está altamente caracterizado, particularmente con respecto a la región clase I no clásica y, segundo, existen cepas congénicas de ratones en donde la posición de los genes en el MHC puede ser destacada. Las cepas congénicas se desarrollaron originalmente criando cepas de ratones consanguíneos juntas. Las generaciones subsiguientes de entrecruzamiento cromosómico han producido un número de cepas que contienen una parte del MHC de una cepa y el resto del MHC de otra cepa. En consecuencia, es posible comparar el polimorfismo de la longitud del fragmento de restricción (RFLP) entre las cepas, y determinar si los modelos de bandeo están ligados a un locus de MHC dado (para un panorama ver Klein, "Natural History of the Major Histocompatibility Complex", 50-73 (1986)). El análisis del RFLP se realizó obteniendo ADN genómico purificado de varias cepas de ratón, digiriendo el ADN con EcoRI y realizando una hibridación Southern con la sonda \beta-GAP6 de BB500 como se describió más arriba. La transferencia Southern mostró que la sonda identificó hasta diez bandas diferentes del ADN de las cepas de ratón examinadas (Tabla 1). Cuatro de estas bandas, de 30 kb, 20 kb, 16 kb y 10,5 kb, fueron mapeadas dentro del locus de MHC. El análisis del RFLP indicó que había por lo menos cuatro a seis copias de las secuencias \beta-GAP/genoma dependiendo de la cepa de ratón examinada. Además, el análisis genético de los modelos de RFLP indicó que las bandas de \beta-GAP de 30 kb y 10,5 kb fueron mapeadas a una región Q entre Q1 y Q4, mientras que las bandas de \beta-GAP de 20 kb y 16 kb fueron mapeadas a la región T. Además, dos de las secuencias \beta-GAP que no demostraron polimorfismo RFLP fueron mapeadas teloméricas con respecto a los genes clase I clásicos.
Ubicación de las secuencias \beta-GAP directamente adyacentes a los genes clase I no clásicos
Las dos secuencias de genes \beta-GAP que fueron mapeadas a la región Q entre Q1 y Q4, estaban ligadas directamente a Q1 y Q2 por análisis de secuencias de ADN de los genes Q1 y Q2 aislados de una biblioteca C57BL/6 (H-2^{b}). La secuenciación mostró que ambos genes, Q1 y Q2, están asociados en una configuración cabeza a cabeza con un gen desconocido (definido comúnmente como el gen \beta-GAP) con ambos genes regulados en forma transcripcional por una sola región de promotor/intensificador que tiene dos promotores definidos por un par de secuencias CAAT y TATA ubicadas aprox. 25 bp separadas en hebras opuestas del ADN. Así, teniendo promotores intactos y una región reguladora común, los genes \beta-GAP y clase I serían transcriptos de hebras opuestas, con los genes clase I, Q1 o Q2, transcriptos de 5' a 3' en la hebra superior y el gen \beta-GAP transcripto de 5' a 3' en la hebra inferior.
El análisis de secuencias de los genes Q1 y Q2 de C57BL/6, así como también un gen TL de A/J (H-2^{a}, Watts et al., EMBO J. 8: 1749-1759 (1980)) indicó que el promotor \beta-GAP y las regiones reguladoras habían reemplazado las secuencias reguladoras 5' clase I clásicas típicas que se sabía que estaban involucradas en la regulación de los genes clase I clásicos. El promotor \beta-GAP es un promotor activo ya que se sabe que el gen Q2 expresa un producto de gen que puede ser detectado en el intestino (Wang et al., Immunogenet., 38:370-372 (1993)). Estos resultados indican que el promotor \beta-GAP regula la expresión de algunos genes clase I no clásicos.
TABLA 1
1
La estructura de genes cabeza a cabeza con co-regulación de los genes fue descripta previamente en organismos que abarcan desde bacterias a seres humanos, indicando que la corregulación es una estrategia ampliamente adoptada. (Brickman et al., J. Molec. Biol., 212:669-682 (1990); Xu y Doolittle, Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 87:2097-2101 (1990); Lennard y Fried, Molec. Cell. Biol., 11:1281-1294 (1991); Heikkila et al., J. Biol. Chem., 268:24677-24682 (1993); Fererjian y Kafatos, Dev. Biol., 161:37-47 (1994); Sun y Kitchingman, Nucleic Acids Res., 22:861-868 (1994)). En ambos sistemas, el procariótico y el eucariótico, se ha sugerido la interacción entre, o la ligadura en, una vía metabólica de dos productos de genes (Galvalas, et al., Mol. Cell. Biol., 13:4784-4792 (1993); Lightfoot et al., Br. J Cancer, 69:264-2673 (1994)). Debería señalarse que en los clones de \beta-GAP estudiados hasta ahora, los genes Q1 y Q2 aún poseen sus propios elementos CAAT y TATA, y sólo están ausentes las regiones intensificadoras reguladoras de clase I clásicas típicas.
Conservación de las secuencias \beta-GAP entre las especies
Para demostrar que las secuencias \beta-GAP están conservadas, y que varias especies, incluyendo los seres humanos, contienen múltiples copias de estos genes una "transferencia Zoo" de varias especies de ADNs genómicos fue digerida con EcoRI y analizada por transferencia Southern usando la sonda de ratón \beta-GAP6 BB500. Bajo condiciones moderadas la transferencia mostró la detección de una multiplicidad de bandas en el ADN de seres humanos, ratas, ratones, perros, conejos y monos. Esto indica que se hallaron múltiples copias de las secuencias \beta-GAP en muchas especies incluyendo los seres humanos. Además, la conservación de la familia de multigenes \beta-GAP antedata la evolución de las especies de ratones y seres humanos y por lo tanto no es el producto de una duplicación o reasociación reciente de genes. La demostración de homología de secuencias interespecies es significativa porque, en general, los exones y las regiones reguladoras tienden a ser conservadas. Experimentos adicionales muestran homología de secuencias para el \beta-GAP en conejos, ratones, pollos y seres humanos. Así, el modelo de las regiones específicas de homología retenida sugiere que las secuencias de \beta-GAP son retenidas por presión selectiva.
Homología entre las secuencias de \beta-GAP y los promotores para \beta-globina
Las secuencias dentro de los seis clones de \beta-GAP de 500 bp muestran una homología de secuencias y de posición notable con respecto a elementos reguladores del promotor de \beta-globina de ratón, conejo y de seres humanos. Se han caracterizado importantes elementos reguladores dentro de una región de 106 bp del promotor de \beta-globina (Myers et al., Science 232:613-618 (1986); Stuve y Myers, Mol. Cell Biol. 6:3350-3358 (1990)). Usando mutagénesis de saturación y promotores de eliminación 5', Myers y sus colegas construyeron una serie de mutantes que se usaron para identificar cuatro secuencias reguladoras. Los cuatro motivos reguladores fueron ubicados entre las posiciones -95 y -26 que contienen un elemento CACCC (posiciones -95 a -87), los motivos de secuencias CCAAT y TATA en las posiciones -79 a -72 y -30 a -26, respectivamente, y un elemento de repetición de 11 bp ubicado entre las secuencias CCAAT y TATA (posiciones -53 a -32) que contiene 2 elementos de repetición duplicados imperfectos (\betaDRE). El hecho de que estos \betaDRE son esenciales para la expresión de genes de globina ha sido demostrado por estudios de eliminación.
La comparación de las seis secuencias de \beta-GAP de 500 bp con las secuencias del promotor de \beta-globina de varias especies mostró varias homologías de secuencias notables con respecto a los elementos reguladores de \beta-globina. El análisis de la secuencia de \beta-GAP en esta región reveló 5 motivos reguladores hallados en los promotores de \beta-globina. Estos incluyen el elemento eritroide 5' CACCC entre las posiciones -127 a -123, los motivos de secuencias CCAAT y TATA entre las posiciones -109 a -105 y -30 a -26, respectivamente, las secuencias de consenso "cap" posiciones -13 a -10, y un quinto y más complejo elemento regulador involucró un \betaDRE de \beta-globina de una secuencia de 10 y 11 bp (la numeración de los pares de bases fue determinada de las alineaciones de secuencias con espacios ("gaps") insertados y no refleja la verdadera posición de los pares de bases del sitio de inicio de la transcrip-
ción).
En todos los clones de \beta-GAP, dos de los cuatro motivos reguladores \betaDRE estaban flanqueados por los elementos CCAAT y TATA entre las posiciones -54 y -32, mientras que otros dos \betaDREs fueron hallados inmediatamente corriente arriba de la secuencia TATA (posiciones -11 a +1 y +3 a +12). Todos estos \betaDREs fueron conservados en secuencia, y además, dos de ellos fueron conservados en posición (-54 y -32). Es significativo que los \betaDREs conservados en \beta-GAP fueron conservados en globinas de múltiples especies (ratón, conejo, pollo y seres humanos) abarcando más de 100 millones de años de evolución. Esta observación de la conservación en la evolución indica que los genes \beta-GAP son genes viejos.
Un motivo regulador putativo final de los clones de \beta-GAP era AGATAA (nucleótidos -82 a -77), que es idéntica a la secuencia de consenso de ADN para los factores de ligadura de transcripción NF-E1. Esta familia de proteínas ligantes de \beta-GAP (NFE 1 a, b, y c) están involucradas en la expresión específica eritroide y/o de células T de muchos genes, incluyendo la \beta-globina adulta de ratón y de pollo, la enzima porfobilinógeno (PGB) desaminasa de la vía heme, el receptor de la célula T y el virus de la leucemia HTLVIII.
Una inspección más cercana de las regiones de homología entre el \beta-GAP y los promotores de \beta-globina de ratón, revela varias características: 1) 18 de 26 pares de bases se aparean en las posiciones -35 a -10 abarcando el motivo TATA de consenso (Bucher, J. Mol. Biol. 212:563-578 (1990)); 2) una región que abarca la secuencia CCAT del \beta-GAP, posiciones -113 a -109 contiene el elemento regulador de \beta-globina CACCC que se ha demostrado que es esencial para la expresión apropiada de \beta-globina en células eritroides; 3) un apareamiento perfecto del elemento CCAAT existe en las posiciones -109 a -105; 4) la cuarta región de apareamiento comprende un elemento \betaDRE, ubicado entre las secuencias CCAAT y TATA en las posiciones -64 a -45 (esta región contiene 16 de 19 bp apareamientos sin espacios ("gaps")); y 5) una secuencia de sitio "cap" de consenso como definió Bucher (Bucher, supra, 1990) y un sitio de inicio de transcripción putativo es identificado en los nucleótidos -13 a + 1.
Varias otras secuencias reguladoras putativas son evidentes en el promotor de \beta-GAP. Entre las posiciones -68 y -37 y los 5 nucleótidos de comienzo distales del elemento TATA hay 4 palíndromos. La repetición de 5 pares de bases de TCAGA aparece dos veces dentro de 24 pares de bases. Estas repeticiones flanquean y se encuentran dentro de un elemento de repetición directo imperfecto tipo globina (posiciones -57 a -47). Dos palíndromos más largos con simetría díada imperfecta de 12 bp, y 15 bp, posiciones -67 a -56 y -51 a -37, respectivamente, contienen palíndromos internos más pequeños de 7 bp, CCTCAGG (-66 a -60) y repetición de 5 bp, TCAGA (-46 a -42), respectivamente. Esta región tipo \betaDRE de 33 bp de \beta-GAP que combina los dos palíndromos imperfectos de 12 y 15 bp grandes, el elemento de repetición directo imperfecto de \beta-globina y las dos repeticiones palindrómicas TCAGA muestran aprox. 50% (16/33) de homología de secuencias de nucleótidos con respecto al promotor de \beta-globina del
ratón.
Expresión de genes inmediatamente corriente abajo de las secuencias \beta-GAP en el tracto gastrointestinal
El modelo de las regiones específicas de homología retenida entre los motivos reguladores de \beta-globina y los promotores de \beta-GAP sugiere: 1) las secuencias han salido en un gen ancestral común; y 2) las regiones conservadas en las secuencias \beta-GAP tienen un rol crítico en la regulación de la expresión de sus genes respectivos. Además, la homología con los promotores para genes involucrados íntimamente en el metabolismo del hierro, la existencia de secuencias reguladoras específicas eritroides y la proximidad estrecha de estos genes con respecto al locus humano responsable de la hemocromatosis, indica un rol para los genes \beta-GAP en el metabolismo del hierro.
Para demostrar que los promotores del \beta-GAP regulan los mensajes corriente abajo, es imperativo mostrar que los genes asociados codifican los mensajes que se pueden transcribir. Además, tales mensajes deberían ser expresados en tejidos involucrados en la absorción de hierro, es decir, el tracto gastrointestinal, si es que van a estar involucrados en la patogénesis de la hemocromatosis.
Se realizó una transferencia Northern con poli A+ ARN de varios órganos incluyendo el tracto gastrointestinal. La transferencia se desarrolló usando una sonda derivada de un clon cósmido \beta-GAP(Q2^{b}). Se preparó ARN celular total por el método del reactivo TRIzol^{TM} de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Gibco/BRL, Gaitherburg, MO). Se purificó poli A+ o mARN por cromatografía de oligo dT celulosa (Strategene, San Diego, CA). Se analizó el ARN en geles de formaldehído-agarosa y se transfirió a membranas Zeta Bind como se describió previamente (Evans, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 81:5532-5536 (1984)). El clon cósmido que contiene una secuencia \beta-GAP que se usó para la sonda se obtuvo de una biblioteca. El clon fue digerido con ApaLI and KpnI para dar un fragmento de 10kb. El fragmento fue digerido parcialmente con BamHI para dar un fragmento de 2 kb que comprende las secuencias \beta-GAP y un fragmento de 8 kb más corriente abajo que contiene las secuencias de codificación para un gen
\beta-GAP.
La transferencia Northern mostró la presencia de mensajes polidispersos producidos en tejidos del estómago, duodeno, yeyuno, riñón, de 4-5 kb y 8 kb de tamaño. El riñón mostró menos polidispersidad con sólo el predominio de la banda de 8 kb. Estos resultados indican que las secuencias codificadoras del \beta-GAP corriente arriba y del promotor de \beta-GAP están expresadas en el tracto gastrointestinal y están asociadas con miembros de una familia de multigenes de los cuales el mensaje de 5 Kb del yeyuno es el más importante. El hecho de que esta sonda también reconoció una banda en el riñón y el estómago, sugirió que los miembros relacionados de la familia del \beta-GAP pueden funcionar en otros tejidos.
El tamaño y la complejidad de los productos de mARN del \beta-GAP detectados por la transferencia Northern es consistente con los genes \beta-GAP que codifican para una familia de proteínas grandes. Estas características son más como las de una familia de proteínas de mucina que de una familia de moléculas de transporte de iones. La homología con respecto a los promotores de \beta-globina, la existencia de secuencias reguladoras específicas eritroides y la estrecha proximidad de los genes \beta-GAP y de la clase I no clásica con respecto al locus responsable de la hemocromatosis en los seres humanos, una enfermedad hereditaria del metabolismo de hierro indican un rol para los genes \beta-GAP y los genes clase I no clásicos en el metabolismo del hierro. Con esta información a mano y los hechos divulgados en la presente de que los ratones \beta^{2}M-knockout tienen una incidencia inusualmente alta de hepatomas llevó a la comprensión de que estos ratones tienen una condición metabólica y patológica similar a la hemocromatosis.
Aislamiento de cADNs de \beta-GAPs de ratón de una biblioteca de yeyuno del ratón
Se usa una sonda de cósmido \beta-GAP para rastrear una biblioteca de cADN de yeyuno de ratón (Strategene de ZAP Express kit). Se usan transferencias Northern para indicar que los mensajes reconocidos por la sonda de \beta-GAP son expresados en los tejidos examinados. Los clones que dan señales positivas son aislados, caracterizados y purificados. El ADN purificado de los seleccionados es digerido con EcoRI y sometido a un análisis de transferencia Southern. La transferencia se exploró con la sonda \beta-GAP de 800 bp para verificar que contiene los genes \beta-GAP.
Clonación de los genes \beta-Gap humanos
Se prepara una biblioteca de ADN genómica humana producida en un vector cósmido sCOS como se describió previamente para producir una biblioteca genómica de ratón en sCOS (Strategene, San Diego, CA). El aislamiento de los genes \beta-GAP humanos de la biblioteca de cósmidos sCOS humanos se realiza rastreando los clones con una sonda de MHC clase I. La sonda es generada a partir de los exones 4 y 5 del gen HLA-A2, que codifica el dominio de ligadura \beta_{2}M altamente conservado y la región transmembrana. Se detectan los clones seleccionados que contienen las secuencias clase I, y se purifican los cósmidos de esos clones, se cortan con la enzima de restricción EcoRI, se corren en un gel de agarosa al 0,7% y se transfieren sobre una membrana de nylon cargada. La transferencia es hibridada con la sonda de la clase I, separada e hibridada nuevamente con la sonda de \beta-GAP de 800 bp.
Ejemplo II
Los ratones \beta_{2}M-knockout desarrollan sobrecarga de hierro similar a la hemocromatosis
Este ejemplo provee un método para analizar la deficiencia de hierro en un modelo animal en donde se eliminó genéticamente la función de la leczima codificada por el MHC. Además, estos ratones son útiles para evaluar la utilidad in vivo de los ligandos de carbohidratos en el tratamiento de la hemocromatosis y varias enfermedades relacionadas con el hierro tales como ateroesclerosis, artritis o cáncer.
Los datos referidos a la sobrecarga de hierro en los ratones \beta_{2}M-knockout se encuentran en Rothenberg y Voland, 1994. El examen histológico de tejidos de ratones knockout de 12-18 meses de edad, mantenidos en una dieta estándar, reveló evidencia de necrosis hepática. Manchas de hierro de los tejidos revelaron deposición de hierro en el hígado de todos los animales, y el riñón, o el pulmón de aproximadamente 10% de los animales. La dieta estándar contiene 350 mg/kg de carbonato férrico. Cuando los animales recibieron una "dieta de criador", que contiene además de carbonato férrico, 10 mg/kg de sulfato ferroso, los depósitos de hierro aumentaron notablemente. La deposición de hierro en los animales también estaba relacionada con la edad observándose los niveles más altos de hierro en los animales más viejos. Todos estos datos juntos indican que los ratones \beta_{2}M-knockout desarrollan sobrecarga de hierro que está relacionada con la dieta y la edad. Además, hemos mostrado que los animales desarrollan hepatomas y otros han informado que los animales más viejos desarrollan diabetes (Faustman et al., Science 254: 1756-1761 (1991)). Este conjunto de patologías representa la hemocromatosis humana.

Claims (15)

1. Un método para la identificación de un individuo que tiene, o que está predispuesto a tener, hemocromatosis por medio del análisis de una muestra que comprende una cadena pesada de clase I del MHC aislada de un individuo a ser examinado, que comprende los pasos de:
a)
poner en contacto la cadena pesada con la microglobulina \beta_{2} bajo condiciones adecuadas para asociar una cadena pesada de clase I del MHC con la microglobulina \beta_{2}; y
b)
detectar la asociación de dicha cadena pesada con dicha microglobulina \beta_{2}, en donde una asociación reducida de dicha cadena pesada con la microglobulina \beta_{2} comparada con la asociación de una cadena pesada de control con la microglobulina \beta_{2} identifica a un individuo como teniendo, o estando predispuesto a tener, hemocromatosis.
2. Un método de acuerdo con la reivindicación 1, que comprende además el paso de determinar si el individuo tiene una mutación en dicha cadena pesada de clase I del MHC no clásica en, o cerca de, un sitio de fosforilación.
3. Un método de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde dicha cadena pesada de clase I del MHC no clásica es HLA-X, HLA-E, HLA-J, HLA-H, HLA-G, o HLA-F.
4. A método de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde dicha cadena pesada de clase I del MHC no clásica es CD1.
5. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en donde la mutación detectada se encuentra en un dominio \alpha3 de la cadena pesada de clase I del MHC no clásica.
6. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en donde la mutación detectada altera la fosforilación de una serina o una treonina en la cadena pesada de clase I del MHC no clásica.
7. Un método para la identificación de un individuo que tiene, o está predispuesto a tener, hemocromatosis por medio del análisis de una muestra que contiene una molécula de ácido nucleico que codifica una cadena pesada de clase I del MHC no clásica aislada de un individuo a ser examinado, que comprende los pasos de:
a)
detectar una mutación en dicha molécula de ácido nucleico, mutación que da por resultado la capacidad reducida de dicha cadena pesada para asociarse con la microglobulina \beta_{2},
en donde la presencia de la mutación identifica al individuo como teniendo una mutación asociada con la hemocromatosis.
8. Un método de acuerdo con la reivindicación 7, en donde dicha cadena pesada de clase I del MHC no clásica codificada por dicha molécula de ácido nucleico es HLA-X, HLA-E, HLA-J, HLA-H, HLA-G o HLA-F.
9. Un método de acuerdo con la reivindicación 7 u 8, en donde dicha cadena pesada de clase I del MHC no clásica codificada por dicha molécula de ácido nucleico es CD1.
10. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 9, en donde la mutación detectada se encuentra en una secuencia de ácido nucleico que codifica un dominio \alpha3 de la cadena pesada de clase I del MHC no clásica.
11. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 9, en donde la mutación detectada elimina una señal para la adición de un grupo fosfato.
12. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 9, en donde la mutación detectada elimina la capacidad de un grupo fosfato en dicha cadena pesada de desfosforilar en una célula.
13. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 11, en donde la mutación es detectada por hibridación de ácido nucleico.
14. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 11, en donde la mutación es detectada por secuenciación de ácido nucleico.
15. El método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 7 a 11, en donde la mutación en la secuencia de ácidos nucleicos es detectada por reacción en cadena de polimerasa.
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