ES2297481T3 - Metodo para purificar macrolidos. - Google Patents
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Abstract
Método para separar un macrólido seleccionado de entre el grupo constituido por tacrolimus, ascomicina, sirolimus, everolimus y pimecrolimus, de las impurezas que contiene, que comprende las etapas siguientes: a) proporcionar una carga del macrólido que tiene un nivel inicial de impurezas, b) cargar la carga en un lecho de resina de sorción, c) eluir con un eluyente el lecho de resina de sorción cargada, eluyente el cual comprende agua y tetrahidrofurano, y adicionalmente, cuando el macrólido es tacrolimus, el eluyente puede comprender agua, acetonitrilo y ácido fosfórico, para obtener un efluente, y d) recoger por lo menos una fracción del efluente que comprende el macrólido.
Description
Método para purificar macrólidos.
La presente invención se refiere a un método
para purificar macrólidos, especialmente tacrolimus, ascomicina,
sirolimus, everolimus, o pimecrolimus, mediante un método de
separación que usa resinas de sorción.
Esta solicitud reivindica los beneficios de la
solicitud provisional US serie nº 60/490.070, presentada el 24 de
julio de 2003, y de la solicitud provisional US serie nº
60/539.363, presentada el 26 de enero de 2004, cuyos contenidos de
las mismas se incorporan aquí como referencia.
Los macrólidos son anillos de lactona de
múltiples miembros que tienen como sustituyentes uno o más
desoxiazúcares. La eritromicina, azitromicina y claritromicina son
macrólidos que tienen actividad bacteriostática y/o bactericida.
El tacrolimus (FK 506) también es un antibiótico
macrólido que es igualmente un agente inmunosupresor. Más potente
que la ciclosporina, el tacrolimus tiene de forma conocida un efecto
inhibidor selectivo sobre linfocitos T.
El pimecrolimus es una macrolactama y un
derivado de ascomicina que inhibe de forma conocida la producción de
citoquinas proinflamatorias mediante células T y mastocitos. The
Merck Index 1331 (Maryadele J. O'Neil et al. eds., 13ª ed.
2001). El pimecrolimus se usa de forma conocida como un
inmunosupresor. Id.
Se ha dado a conocer que el sirolimus, otro
macrólido, es un inmunosupresor. El sirolimus se ha administrado con
ciclosporina y corticosteroides después del transplante, para evitar
el rechazo del injerto. Martindale: The Complete Drug Reference 568
(Sean C. Sweetman ed., Pharmaceutical Press 33ª ed. 2002).
Se ha dado a conocer que el everolimus, un
derivado de sirolimus, es un inmunosupresor usado en el transplante
de órganos. Martindale en 539.
Los macrólidos se obtienen típicamente mediante
fermentación, aunque se conocen rutas sintéticas para algunos. Los
macrólidos, según se obtienen, contienen típicamente varias
impurezas que se pueden detectar por diversos medios, por ejemplo
cromatografía de líquidos de alta presión (HPLC). La presencia de
impurezas en un compuesto farmacéutico es indeseable, y las
autoridades sanitarias en muchas jurisdicciones (por ejemplo, la
Food and Drug Administration de los Estados Unidos de América) han
establecido guías que se refieren a los niveles aceptables de
impurezas en fármacos. La necesidad y la utilidad comercial de
métodos para reducir el nivel de impurezas en cualquier fármaco son
evidentes por sí mismas.
Song, Z. et al., (J. Org. Chem., 1999,
64, 1859-1867) describe un procedimiento que usa la
resina HP-20S y eluyente de
acetonitrilo-agua para la separación del macrólido
sintético L733.735 de la ascomicina, siendo este último un material
de partida en la síntesis de L733.735.
En un aspecto, la presente invención se refiere
a un método para separar impurezas de (es decir, reducir el nivel de
impurezas en) un macrólido seleccionado de tacrolimus, ascomicina,
sirolimus (rapamicina), everolimus y pimecrolimus. El método
comprende las etapas siguientes:
- a)
- proporcionar una carga del macrólido que tiene un nivel inicial de impurezas,
- b)
- cargar la carga en un lecho de resina de sorción,
- c)
- eluir con un eluyente el lecho de resina de sorción cargada, eluyente el cual comprende agua y tetrahidrofurano, y adicionalmente, cuando el macrólido es tacrolimus, el eluyente puede comprender agua, acetonitrilo y ácido fosfórico, para obtener un efluente, y
- d)
- recoger por lo menos una fracción del efluente que comprende el macrólido.
Como se usa aquí, la expresión temperatura
ambiente se refiere a una temperatura de 0º hasta 40ºC,
preferentemente de 10º hasta 35ºC.
Como se usa aquí, la expresión presión reducida
se refiere a una presión menor que 760 mm Hg (101,325 kPa).
Como se usa aquí, el término antidisolvente se
refiere a una sustancia, normalmente líquida a temperatura ambiente,
en la que el macrólido es, en el mejor de los casos, apenas
soluble.
Como se usa aquí, el término "impureza" se
refiere a cualquier compuesto que tiene un tiempo de retención
diferente del macrólido deseado. El tiempo de retención diferente se
puede medir, por ejemplo, mediante el método de HPLC descrito aquí
más abajo.
Como se usa aquí, los términos RRT0.95 y RRT1.25
se refieren a ascomicina y dihidrotacrolimus, respectivamente, que
son impurezas del tacrolimus, que tienen tiempos de retención
relativos (con respecto a tacrolimus) de alrededor de 0,95 y 1,25 en
el análisis de HPLC, tal como el descrito aquí más abajo.
Como se usa aquí en relación con mezclas o
combinaciones de líquidos, la expresión por ciento en volumen o por
ciento por volumen (vol-%) se refiere a la fracción de volumen
calculada según lo siguiente (ilustrada para la
especie A):
especie A):
vol-%_{A} =
Wt_{A} \ x \ \rho_{A}/(Wt_{A} \ x \ \rho_{A} + Wt_{B} \ x \
\rho_{B})
en la
que:
Wt_{A} y Wt_{B} son los pesos en gramos de
la especie A y B, respectivamente, y
\rho_{A} y \rho_{B} son las densidades, en
g/ml, de la especie A y B, respectivamente.
En una forma de realización, la presente
invención proporciona un método cromatográfico para separar
macrólidos, seleccionados de tacrolimus, ascomicina, sirolimus,
everolimus y pimecrolimus, de las impurezas contenidas en ellos (es
decir, para reducir el nivel de impurezas en el macrólido). La
separación (reducción) se efectúa cargando el macrólido sobre un
lecho de resina de sorción, y eluyendo con un eluyente que contiene
THF y agua. Cuando el macrólido es tacrolimus, el eluyente puede
comprender agua, acetonitrilo y ácido fosfórico. Cuando el
macrólido es tacrolimus, las impurezas reducidas incluyen por lo
menos ascomicina y dihidrotacrolimus, cuya cuantificación mediante
HPLC se describe aquí más abajo. Cuando el macrólido es ascomicina,
las impurezas reducidas incluyen por lo menos tacrolimus. El
macrólido usado puede proceder de cualquier fuente.
En la práctica de la presente invención, la
reducción (separación) se efectúa eluyendo con un eluyente un lecho
de resina de sorción, cargada con una carga de macrólido, para
obtener un efluente. Las resinas de sorción, útiles en la práctica
de la presente invención, son bien conocidas en la técnica, y son
preferentemente materiales de
estireno-divinilbenceno no iónicos, reticulados,
pero pueden estar químicamente modificados. También son conocidas
las resinas de sorción de tipo acrílico. Las resinas de sorción
tienen estructuras muy porosas, cuyas superficies pueden absorber
-y después desorber- diversas especies químicas. La absorción y
desorción están influidas por el entorno, por ejemplo por el
disolvente usado. En presencia de disolventes polares (por ejemplo
agua), las resinas de sorción muestran un comportamiento hidrófobo.
Cuando se usan disolventes no polares (por ejemplo hidrocarburos),
las resinas de sorción pueden mostrar cierto comportamiento polar.
Típicamente, las resinas de sorción tienen una estructura
macrorreticular, y tienen superficies específicas de por lo menos
300 m^{2}/g.
Las resinas de sorción útiles en la práctica de
la presente invención incluyen las resinas Amberlite® XAD,
disponibles de Rohm and Haas; XAD 4, XAD 7 HP, XAD 16 HP, XAD 761, y
XAD 1180, por citar sólo unas pocas. También son útiles las resinas
de sorción de Diaion, disponibles de Mitsubishi: HP10, HP 20, HP 21,
HP 30, HP40, HP 50, SP 800, SP 825, SP 850, SP 875, SP 205, SP 206,
SP 207, HP1MG y HP2MG, por citar sólo unas pocas. Amberlite® XAD
1180 es un ejemplo de una resina de sorción preferible para uso en
la práctica de la presente invención. Amberlite XAD 1180 es un
polímero aromático reticulado macrorreticular. Es un polímero
reticulado, hidrófobo, no iónico, cuyas propiedades adsorbentes
derivan de su estructura macrorreticular patentada (que contiene
tanto una fase polimérica continua como una fase porosa continua),
de su elevada superficie específica, y de la naturaleza aromática
de su superficie. La superficie específica es 500 m2/g o superior.
La porosidad es 0,60 ml/ml o superior. La hoja de datos del
producto de PDS 0205 A - Jan.98-1/2 da información
adicional sobre esta resina.
En una primera etapa del método de la presente
invención, la carga del macrólido se carga sobre un lecho de resina
de sorción. La carga se puede proporcionar como una disolución del
macrólido en un disolvente orgánico, combinado con un
antidisolvente.
Como alternativa, la carga del macrólido se
adsorbe sobre (se deposita sobre) una porción de carga de la resina
de sorción, antes de cargarla sobre el lecho de la resina de
sorción. Una disolución del macrólido en un disolvente orgánico,
que contiene opcionalmente agua, se combina con una porción de la
resina de sorción y con un antidisolvente. La resina de sorción
puede ser la misma que la usada para preparar el lecho, o puede ser
una resina de sorción diferente. La porción de carga de la resina
de sorción puede ser 33% hasta 50% del volumen del lecho. La porción
de carga se yuxtapone entonces a un lecho de sorción húmedo, para
proporcionar un lecho cargado con la carga.
El disolvente orgánico usado para preparar la
disolución a partir de la que se carga o deposita la carga se
selecciona preferentemente de entre el grupo constituido por
tetrahidrofurano (THF), acetona, acetonitrilo (ACN), metanol,
etanol, n-butanol, n-propanol,
iso-propanol, ésteres (por ejemplo acetato de
etilo), y disolventes apróticos dipolares tales como
dimetilformamida (DMF). Lo más preferible, el disolvente orgánico es
THF, acetona o ACN. Cuando el macrólido es tacrolimus, los
disolventes preferidos son THF y ACN. Preferentemente, el
antidisolvente es agua o un alcano de cadena lineal o ramificada, o
un cicloalcano, tal como hexano, heptano o ciclohexano. La adición
de un antidisolvente reduce la solubilidad del macrólido en la
disolución, y, se piensa, facilita la adsorción de la muestra sobre
la porción de carga de la resina de sorción. El antidisolvente se
añade lentamente para evitar grandes gradientes de concentración
que puedan dar como resultado la precipitación parcial en masa del
macrólido, lo que puede conducir al ensuciamiento y obturación.
Preferentemente, la relación de disolvente:antidisolvente es 40% o
menos.
La combinación de disolución de macrólido,
porción de carga de la resina de sorción, y antidisolvente, se puede
hacer en cualquier vasija conveniente equipada con un agitador (por
ejemplo, un reactor de tanque agitado).
En una forma de realización particular, la
porción de carga de resina de sorción está contenida en una columna
y se pone en contacto con un caudal de disolución de macrólido que
pasa a través de la columna en un sistema recirculante.
Gradualmente se introduce un antidisolvente en la corriente de
disolución que fluye a través y alrededor de la porción de carga de
resina de sorción, con lo que la muestra de macrólido se adsorbe
gradualmente sobre la porción de carga de la resina de sorción.
A título de ejemplo, cuando el macrólido es
tacrolimus, la disolución puede ser alrededor de 100 g/l, y el
volumen de antidisolvente puede ser por lo menos cinco veces el
volumen de la disolución. El volumen aparente de la porción de
carga de la resina de sorción puede ser aproximadamente igual al
volumen de la disolución. La persona experta sabrá cómo optimizar
las proporciones, mediante experimentación normal, para obtener la
adsorción del macrólido sobre la porción de carga de la resina de
sorción.
Después de que la adsorción está sustancialmente
terminada, lo cual se puede monitorizar haciendo un seguimiento de
la concentración de macrólido que queda en la disolución, la carga
de alimentación se separa de la disolución que queda. La separación
puede ser mediante filtración. Cuando se usa el método de la columna
recirculante para obtener la carga de alimentada, la columna se
desacopla simplemente del sistema recirculante.
En una etapa subsiguiente de esta forma de
realización, la porción de carga cargada ahora con macrólido se
yuxtapone a un lecho preparado de resina de sorción húmeda. El lecho
está confinado en una vasija adecuada. Preferentemente, el lecho
está confinado en una columna, preferentemente de sección
transversal circular. Para preparar el lecho, se suspende la
cantidad deseada de resina de sorción con agua o con una mezcla de
agua y un disolvente (por ejemplo THF o ACN). Es ventajosa una
combinación de agua con disolvente cuando el lecho tiene un gran
diámetro. La suspensión se transfiere entonces a la vasija deseada,
preferentemente una columna cilíndrica tal como se usa para la
cromatografía en columna. El agua (o la combinación de agua con
disolvente) se extrae para dejar un lecho de resina de sorción
húmeda. La práctica para preparar y empaquetar columnas
cromatográficas es bien conocida por la persona experta y personal
afín, y las prácticas conocidas se adaptan fácilmente a la práctica
de la presente invención.
La porción de carga se puede yuxtaponer al lecho
de resina de sorción húmeda simplemente como una capa sobre el
mismo. Cuando la carga alimentada se prepara en un sistema
recirculante, la vasija que contiene la carga alimentada se puede
acoplar al recipiente que contiene el lecho de resina de sorción
húmeda mediante cualquier medio que establezca una comunicación
fluida entre ellos.
La separación del macrólido (es decir,
tacrolimus, ascomicina, sirolimus, everolimus, o pimecrolimus) e
impurezas, con lo que se reduce el nivel de impurezas en el
macrólido, se efectúa haciendo pasar un eluyente a través de la
carga alimentada, y subsiguientemente a través del lecho de resina
de sorción yuxtapuesto a aquella y en comunicación fluida con
ella.
El eluyente incluye agua y THF. Adicionalmente,
cuando el macrólido es tacrolimus, el eluyente puede comprender
agua, acetonitrilo y ácido fosfórico. Un eluyente preferido,
especialmente cuando el macrólido es tacrolimus, es esencialmente
una mezcla de THF y agua que tiene 20% en volumen a 50% en volumen,
31% en volumen a 40% en volumen, de THF. Cuando se usa un
disolvente orgánico tal como metanol, acetonitrilo, acetona o
n-butanol con el eluyente de
THF-agua, el contenido de THF es menor que 38% en
volumen, preferentemente entre 4 y 38% en volumen. Otro eluyente
preferido para tacrolimus es una mezcla de acetonitrilo y agua que
tiene 30% en volumen a 70% en volumen, lo más preferible 40% en
volumen a 65% en volumen, de acetonitrilo y ácido fosfórico,
preferentemente 0,0005 a 0,003 partes de fosfórico por 1 parte de
eluyente.
El eluyente se eluye a través de la porción de
carga y del lecho de resina de sorción yuxtapuesto a la misma, a
una velocidad que depende del área de sección transversal total del
lecho (medida perpendicular al flujo del eluyente).
Preferentemente, el caudal (con relación al área de sección
transversal) es menor que 25 cm/h, preferentemente menor que 15
cm/h. Velocidades más bajas de elución aumentan el tiempo, pero
mejoran la eficacia de la separación. Una velocidad preferida de
elución para un aumento de la eficacia de separación es alrededor de
90 ml/hora.
El eluyente que sale del lecho de la resina de
sorción (es decir, el efluente) se recoge en una o más fracciones,
como es normal para la persona experta que usa métodos de
separación, como cromatografía, dependiendo aquéllas de la
retención preferente de la especie química en una fase estacionaria
(por ejemplo, un lecho estático). Se puede añadir al efluente un
ácido inorgánico, tal como ácido fosfórico.
Preferentemente, tras eluir el lecho con una
cantidad de eluyente, el lecho se pone en comunicación fluida con
un segundo lecho, de forma que el efluente del primer lecho eluye a
través del segundo lecho. Después de la elución de los lechos
primero y segundo, el segundo lecho se puede y preferentementemente
se desacopla del primer lecho (es decir, se rompe la comunicación
fluida), y la elución se continúa a través del segundo lecho solo.
El eluyente es una mezcla de TFA y agua que tiene 33% en volumen a
35% en volumen de THF, y es el eluyente preferido.
Opcionalmente, se pueden conectar columnas
adicionales al sistema.
La concentración y composición de las fracciones
se pueden monitorizar por cualquier medio conveniente. La detección
y cuantificación de impurezas en un macrólido, en particular
ascomicina y dihidrotacrolimus en tacrolimus, se pueden llevar a
cabo mediante el método de HPLC descrito aquí más abajo.
Dependiendo, entre otros, de la carga de
la columna y de la composición y caudal del eluyente, se recoge una
fracción principal (la fracción de interés) de efluente que incluye
más de 60%, preferentemente entre 60% en peso y 90% en peso del
macrólido presente originalmente en la disolución. Cuando el
macrólido es tacrolimus, y el eluyente es THF-agua
(31 a 40% en volumen de THF), la fracción principal se recoge de
forma que el producto aislado final tiene 0,1% de área o menos
(mediante HPLC descrita más abajo) de impureza RRT0.95.
Si se desea, el macrólido separado de las
impurezas, y por lo tanto que tiene un nivel reducido de impurezas,
se puede aislar del efluente por cualquier medio convencional (por
ejemplo, extracción, liofilización, evaporación, adición de
antidisolvente). Como antidisolventes útiles, se pueden mencionar
agua, alcanos y cicloalcanos. Los métodos de aislamiento se pueden
combinar. Por ejemplo, el antidisolvente se puede combinar con un
eluyente concentrado.
Un método preferido de aislamiento incluye la
concentración de la fracción principal a 70ºC o menos,
preferentemente 60ºC o menos, preferentemente a la presión de 760
mm Hg, hasta alrededor de 50% de su volumen inicial, con lo que se
obtienen cristales de producto. Preferentemente, antes de la
concentración, se añade un ácido, 1 a 10 ml por litro de eluyente,
para estabilizar el macrólido.
Opcionalmente, la fracción principal concentrada
se mantiene a temperatura ambiente durante un tiempo de reposo.
Cuando se usa un tiempo de reposo, el tiempo de reposo preferido es
1-4 días. Los cristales de macrólido que tienen una
cantidad reducida de impurezas se recuperan por cualquier medio
convencional, por ejemplo nitración (gravedad o vacío).
La reducción adicional de impurezas se puede
lograr sometiendo el producto recuperado a varios tratamientos
adicionales según el método de la presente invención.
La reducción de impurezas en un macrólido,
lograda por el método de la presente invención, se puede monitorizar
mediante el método de HPLC descrito aquí más abajo.
En otra forma de realización, el macrólido es
tacrolimus, y por lo menos se reducen los niveles de impurezas de
ascomicina y dihidrotacrolimus. También se reducen los niveles de
otras impurezas. El método incluye las etapas siguientes: preparar
una carga alimentada de tacrolimus que comprende una disolución de
tacrolimus con o sin una porción de carga de una resina de sorción,
especialmente una resina macrorreticular tal como Amberlite® XAD
1180 y Diaion HP 20; cargar la carga alimentada a una resina de
sorción húmeda, especialmente Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20,
que puede estar contenida en una vasija, especialmente una columna;
eluir la porción de carga y la resina de sorción con un eluyente
que es una mezcla de tetrahidrofurano (THF) y agua, 20% en volumen
a 50% en volumen, especialmente 31% en volumen a 40% en volumen de
THF, o una mezcla de acetonitrilo (ACN), agua y ácido fosfórico, en
la que el acetonitrilo está presente en una cantidad de 30% en
volumen a 70% en volumen, y lo más especialmente 40% en volumen a
65% en volumen; recoger por lo menos una fracción principal
(fracción de interés) de eluyente, que contiene más de 60%,
preferentemente entre 60% y 90% del tacrolimus inicial (dependiendo
de la pureza inicial), y, opcionalmente, aislar de la fracción
principal el tacrolimus que tiene una cantidad reducida de
impurezas, por ejemplo concentrando la o las fracciones principales,
por ejemplo a presión reducida, en presencia de un ácido, y
opcionalmente recuperar el producto así obtenido.
En aún otra forma de realización, el macrólido
es ascomicina, y se reducen por lo menos los niveles de impureza de
tacrolimus. También se reducen los niveles de otras impurezas. El
método incluye las etapas siguientes: preparar una carga de
alimentación de ascomicina que comprende una disolución de
ascomicina con o sin una porción de carga de una resina de sorción,
especialmente una resina macrorreticular tal como Amberlite® XAD
1180 y Diaion HP 20; cargar la carga de alimentación a la resina de
sorción húmeda, especialmente Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20,
que puede estar contenida en una vasija, especialmente una columna;
eluir la porción de carga y la resina de sorción con un eluyente
que es una mezcla de tetrahidrofurano (THF) y agua, 20% en volumen
a 50% en volumen, especialmente 31% en volumen a 40% en volumen de
THF; recoger por lo menos una fracción principal (fracción de
interés) del eluyente, que contiene más de 60%, preferentemente
entre 60% y 90% de la ascomicina inicial (dependiendo de la pureza
inicial), y, opcionalmente, aislar la ascomicina que tiene una
cantidad reducida de impurezas a partir de la fracción principal,
por ejemplo concentrando la fracción o fracciones principales, por
ejemplo a presión reducida en presencia de un ácido, y opcionalmente
recuperar el producto así obtenido.
\newpage
En aún otra forma de realización, el macrólido
es sirolimus. El método para separar impurezas de sirolimus incluye
las etapas siguientes: preparar una carga de alimentación de
sirolimus que comprende una disolución de sirolimus con o sin una
porción de carga de una resina de sorción, especialmente una resina
macrorreticular tal como Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20; cargar
la carga de alimentación a una resina de sorción húmeda,
especialmente Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20, que puede estar
contenida en una vasija, especialmente una columna; eluir la
porción de carga y la resina de sorción con un eluyente que es una
mezcla de tetrahidrofurano (THF) y agua, 20% en volumen a 50% en
volumen, especialmente 31% en volumen a 40% en volumen de THF;
recoger por lo menos una fracción principal (fracción de interés)
de eluyente, que contiene más de 60%, preferentemente entre 60% y
90% del sirolimus inicial (dependiendo de la pureza inicial), y,
opcionalmente, aislar sirolimus que tiene una cantidad reducida de
impurezas a partir de la fracción principal, por ejemplo
concentrando la fracción o fracciones principales, por ejemplo a
presión reducida en presencia de un ácido, y opcionalmente recuperar
el producto así
obtenido.
obtenido.
En aún otra forma de realización, el macrólido
es everolimus. El método para separar impurezas de everolimus
incluye las etapas siguientes: preparar una carga de alimentación de
everolimus que comprende una disolución de everolimus con o sin una
porción de carga de una resina de sorción, especialmente una resina
macrorreticular tal como Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20; cargar
la carga de alimentación a la resina de sorción húmeda,
especialmente Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20, que puede estar
contenida en una vasija, especialmente una columna; eluir la
porción de carga y la resina de sorción con un eluyente que es una
mezcla de tetrahidrofurano (THF) y agua, 20% en volumen a 50% en
volumen, especialmente 31% en volumen a 40% en volumen de THF;
recoger por lo menos una fracción principal (fracción de interés)
de eluyente, que contiene más de 60%, preferentemente entre 60% y
90% del everolimus inicial (dependiendo de la pureza inicial), y,
opcionalmente, aislar everolimus que tiene una cantidad reducida de
impurezas a partir de la fracción principal, por ejemplo
concentrando la fracción o fracciones principales, por ejemplo a
presión reducida en presencia de un ácido, y opcionalmente recuperar
el producto así
obtenido.
obtenido.
En aún otra forma de realización, el macrólido
es pimecrolimus. El método para separar impurezas de pimecrolimus
incluye las etapas siguientes: preparar una carga de alimentación de
pimecrolimus que comprende una disolución de pimecrolimus con o sin
una porción de carga de una resina de sorción, especialmente una
resina macrorreticular tal como Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20;
cargar la carga de alimentación a una resina de sorción húmeda,
especialmente Amberlite® XAD 1180 y Diaion HP 20, que puede estar
contenida en una vasija, especialmente una columna; eluir la
porción de carga y la resina de sorción con un eluyente que es una
mezcla de tetrahidrofurano (THF) y agua, 20% en volumen a 50% en
volumen, especialmente 31% en volumen a 40% en volumen de THF;
recoger por lo menos una fracción principal (fracción de interés)
de eluyente, que contiene más de 60%, preferentemente entre 60% y
90% del pimecrolimus inicial (dependiendo de la pureza inicial), y,
opcionalmente, aislar pimecrolimus que tiene una cantidad reducida
de impurezas a partir de la fracción principal, por ejemplo
concentrando la fracción o fracciones principales, por ejemplo a
presión reducida en presencia de un ácido, y opcionalmente recuperar
el producto así obtenido.
\vskip1.000000\baselineskip
- Columna:
- ZORBAX SB-C18 75 x 4,6 mm; 3,5 \mum
- Precolumna:
- SymmetryShield PP18 3,9 x 20 mm; 5 \mum
- Eluyente:
- A: midánse 200 ml de acetonitrilo en un matraz volumétrico de 2000 ml, dilúyanse después hasta un {}\hskip0,4cm volumen con agua destilada, hasta un volumen total de 2000 ml. Después, añádanse 100 \mul de ácido {}\hskip0,4cm acético al 50%.
- \quad
- B: añádanse 100 \mul de ácido acético al 50% a 2000 ml de acetonitrilo.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
- Caudal:
- 2,3 ml/min.
- Longitud de onda de detección:
- 210 nm
- Volumen inyectado:
- 20 \mul
- Disolvente de la muestra:
- acetonitrilo
- Temp. de la unidad de columna:
- 60ºC
- Tiempo de análisis:
- 27 min.
- Tiempo de retención de tacrolimus:
- aprox. 14 min.
Los tiempos de retención de las impurezas
ascomicina (RRT0.95) y dihidrotacrolimus (RRT1.25) se dan con
relación a tacrolimus, y se expresan como un porcentaje de área con
relación al área de todos los picos en el cromatograma.
Los tiempos de retención de la impureza
tacrolimus (RRT1.00) se dan con relación a ascomicina, y se expresan
como un porcentaje de área con relación al área de todos los picos
en el cromatograma.
El método de la presente invención se puede
ejemplificar mediante los siguientes ejemplos no limitados.
Los porcentajes de área se refieren al
porcentaje de área de cromatogramas de HPLC obtenidos mediante el
método descrito aquí anteriormente.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a una temperatura de 28ºC hasta 32ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción
(Amberlite® XAD 1180) en una columna (diámetro de 45 cm) usando
agua:THF para cargar la columna (aprox. 100 l de resina de sorción
húmeda).
Se añadió lentamente agua (86 l), con agitación,
a una disolución de tacrolimus (1227 g) en acetonitrilo (10 l), en
la que se suspendió con agitación la resina de sorción (Amberlite®
XAD 1180; 9 l). El tacrolimus usado contenía alrededor de 2,6% de
área de RRT0.95, y alrededor de 2,9% de área de RRT1.25. Cuando la
adición del agua estuvo terminada, la carga de alimentación de la
resina de sorción se recogió por filtración.
La carga de alimentación recogida se cargó (se
yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior del lecho de la
resina de sorción húmeda.
La columna se eluyó en primer lugar con aprox.
1800 l de un primer eluyente formado por THF/agua (33% en volumen de
THF). La columna se eluyó entonces con un segundo eluyente formado
por THF/agua (40% en volumen de THF). La velocidad de elución fue
alrededor de 11 a 13 l/h (6,9 a 8,2 cm/h). Se recogió una fracción
principal, aprox. 460 l, que contiene alrededor de 820 g de
tacrolimus (rendimiento 67%). También se recogió una fracción
previa, aprox. 80 l, que contiene aprox. 190 g de tacrolimus.
La fracción principal (460 l) se combinó con
ácido fosfórico, 85% (460 ml), y se concentró a presión reducida
hasta un volumen de alrededor de 230 l. El concentrado se mantuvo a
temperatura ambiente durante un día. (Nota: en experimentos
subsiguientes se intentaron tiempos de reposo más prolongados. Los
cristales obtenidos se filtraron de forma más fácil que los
obtenidos aquí). Los cristales se lavaron con hexano, y se secaron a
40ºC.
El producto aislado de la fracción principal
tuvo alrededor de 0,1% de área de RRT0.95, y alrededor de 1,7% de
área de RRT1.25.
El producto aislado de la fracción previa tuvo
alrededor de 3% de área de RRT0.95, y alrededor de 0,3% de área de
RRT1.25.
Se repitió el procedimiento general del ejemplo
1 para investigar el efecto de la composición del eluyente y del
caudal.
A través de estos experimentos, se pudo
establecer que la reducción del caudal de elución aumenta la
eficacia de separación de la cromatografía. El aumento del caudal de
elución reduce la eficacia de la cromatografía. Un caudal de 25
cm/cm^{2}.hora (en lugar de 6,9-8,2
cm/cm^{2}.hora) dio como resultado una reducción significativa de
la eficacia, pero se pudo recoger una fracción principal que tiene
la calidad de aquella descrita en el Ejemplo 1.
Además se estableció que el primer eluyente de
34% en volumen de THF (en lugar de 33% en volumen) incrementó el
rendimiento de la cromatografía. El rendimiento fue 69%. El nivel de
impureza de RRT0.95 de la fracción principal fue 0,10% de área.
Cuando se usó un eluyente que tiene 31% en
volumen de THF, aumentó el tiempo de elución de tacrolimus. Se
encontró que las concentraciones de eluyente mencionadas (31%, 33%,
34%, 40% en volumen de tetrahidrofurano) eran usables para la
elución de tacrolimus, sin incrementar la concentración del
disolvente.
Estos experimentos adicionales también
establecieron que igualmente eran eficaces mezclas de eluyentes
de
agua:tetrahidrofurano:disolventes. Los disolventes ensayados usados para los eluyentes de agua:tetrahidrofurano:di-
solvente fueron metanol, acetonitrilo, acetona, n-propanol y n-butanol. En todos los casos, se obtuvo una calidad adecuada.
agua:tetrahidrofurano:disolventes. Los disolventes ensayados usados para los eluyentes de agua:tetrahidrofurano:di-
solvente fueron metanol, acetonitrilo, acetona, n-propanol y n-butanol. En todos los casos, se obtuvo una calidad adecuada.
Los porcentajes de área se refieren al
porcentaje de área de los cromatogramas de HPLC obtenidos mediante
el método descrito aquí anteriormente.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a 20ºC hasta 25ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción (Diaion
SP 207) en una columna (diámetro de 3,2 cm) que usa agua para cargar
la columna (aprox. 550 ml de resina de sorción húmeda).
Se disolvió tacrolimus (7,2 g) en una mezcla de
acetonitrilo (30 ml) y agua (20 ml). El tacrolimus contenía
alrededor de 2,6% de área de RRT0.95 (ascomicina), y alrededor de
2,9% de área de RRT1.25 (dihidrotacrolimus).
La disolución de tacrolimus se cargó como una
capa sobre la parte superior del lecho de resina de sorción
húmeda.
La columna se eluyó con aprox. 8 l de eluyente
constituido de acetonitrilo/agua/ácido fosfórico (600:400:1). El
caudal de elución fue 90 ml/hora.
Las fracciones 32-45 se
combinaron. Las fracciones combinadas contenían 1,9 g de tacrolimus.
El contenido de impurezas de las fracciones combinadas fue alrededor
de 2,9% de área de RRT0.95 (ascomicina), y alrededor de 1,2% de área
de RRT1.25 (dihidrotacrolimus).
El proceso de purificación descrito es adecuado
para la reducción de dihidrotacrolimus. Preferentemente, el eluyente
tiene un contenido de acetonitrilo de alrededor de 30% hasta 70%,
preferentemente alrededor de 40% hasta 65%.
El contenido de ácido inorgánico se usa para
evitar la descomposición del tacrolimus durante la cromatografía.
Preferentemente, el ácido inorgánico es ácido fosfórico.
Preferentemente, el contenido de ácido fosfórico está entre
alrededor de 0,0005 a 0,003 partes de ácido por 1 parte de
eluyente.
El proceso de purificación descrito aumenta la
eficacia de los procesos descritos por los ejemplos 1 y 2.
Se prepararon dos columnas para cromatografía
según el ejemplo 1. Antes de la cromatografía, se adsorbieron
3000 g de sustancia activa que contiene tacrolimus sobre una resina de sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. El tacrolimus se disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a la disolución, y se añadieron 90 l de agua lentamente a la mezcla de disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación de resina de sorción se colocó encima (se yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción contenida en la primera columna.
3000 g de sustancia activa que contiene tacrolimus sobre una resina de sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. El tacrolimus se disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a la disolución, y se añadieron 90 l de agua lentamente a la mezcla de disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación de resina de sorción se colocó encima (se yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción contenida en la primera columna.
La primera columna se eluyó con una mezcla de
tetrahidrofurano:agua (34% en volumen de THF). El caudal de elución
fue 15 l/hora. Se recogieron fracciones de 20 l cada una. El volumen
de cada fracción fue 20 l. Después de la elución de la 35ª fracción,
la segunda columna se conectó (se acopló de forma fluida) en serie
con la primera columna, y la elución se continuó en las columnas en
serie.
Después de que eluyese la 95ª fracción, se
desconectó la primera columna, y la elución se continuó sólo en la
segunda columna. Las fracciones adecuadas purificadas se
combinaron.
La parte principal de THF se eliminó de las
fracciones combinadas mediante evaporación a presión reducida. El
concentrado se extrajo con acetato de etilo, y las fases se
separaron. La fase de acetato de etilo separada se concentró a
presión reducida (aprox. 1 parte de tacrolimus y 1 parte de acetato
de etilo). Se añadieron lentamente ciclohexano y agua al extracto de
acetato de etilo concentrado. El tacrolimus precipitado se recuperó
de la mezcla a 0-30ºC. Los cristales se filtraron y
se secaron.
La sustancia de partida contenía aprox. 0,5% de
área de ascomicina (RRT0.95) y aprox. 1,3% de dihidrotacrolimus
(RRT1.25). Los cristales producidos contenían menos de 0,1% de área
de ascomicina, y aprox. 0,4% de área de dihidrotacrolimus.
Se disolvió tacrolimus en una mezcla de
agua:tetrahidrofurano (67 volúmenes:33 volúmenes). La concentración
del disolvente lograda fue aprox. 30 g/litro. La disolución se hizo
pasar sobre resina de sorción XAD 1180. La resina de sorción
adsorbió el tacrolimus.
Tras la adsorción, la elución de tacrolimus
continuó como en el ejemplo 1.
Se disolvió tacrolimus en una mezcla de
agua:tetrahidrofurano (67 volúmenes:33 volúmenes). La concentración
de disolvente lograda fue aprox. 30 g/litro. La disolución se hizo
pasar sobre resina de sorción HP20. La resina de sorción adsorbe el
tacrolimus.
Tras la adsorción, la elución de tacrolimus
continúa como en el ejemplo 1.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a una temperatura de 28ºC hasta 32ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción
(Amberlite® XAD 1180) en una columna (diámetro de 45 cm) que usa
agua:THF para cargar la columna (aprox. 100 l de resina de sorción
húmeda).
Se añadió agua (86 l) lentamente, con agitación,
a una disolución de ascomicina (1227 g) en acetonitrilo (10 l), en
la que se suspendió la resina de sorción (Amberlite® XAD 1180; 9 l)
con agitación. La ascomicina usada contenía RRT1.00 (tacrolimus).
Cuando la adición de agua estuvo terminada, la carga de alimentación
de resina de sorción se recogió por filtración.
La carga de alimentación recogida se cargó (se
yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior del lecho de resina
de sorción húmeda.
La columna se eluye en primer lugar con
aproximadamente 1800 l de un primer eluyente constituido de THF/agua
(33% en volumen de THF). La columna se eluyó entonces con un segundo
eluyente constituido de THF/agua (40% en volumen de THF). El caudal
de elución es alrededor de 11 a 13 l/h (6,9 a 8,2 cm/h). Se recogió
una fracción principal, aprox. 460 l, que contiene ascomicina.
También se recogió una fracción previa, aprox. 80 l, que contiene
ascomicina.
La fracción principal (460 l) se combinó con
ácido fosfórico, 85% (460 ml), y se concentró a presión reducida
hasta un volumen de alrededor de 230 l. El concentrado se mantuvo a
temperatura ambiente durante un día. Los cristales se lavaron con
hexano y se secaron a 40ºC.
Se prepararon dos columnas para cromatografía
según el ejemplo 1.
Antes de la cromatografía, se adsorbieron 3000 g
de sustancia activa, que contiene ascomicina, sobre la resina de
sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. La ascomicina se
disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a la
disolución, y se añadieron lentamente 90 l de agua a la mezcla de
disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación
de resina de sorción se puso en la parte superior (se yuxtapuso)
como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción
contenida en la primera columna.
La primera columna se eluyó con una mezcla de
tetrahidrofurano:agua (34% en volumen de THF). El caudal de elución
es 15 l/hora. Se recogieron fracciones de 20 l cada una. El volumen
de cada fracción fue 20 l. Después de la elución de la 35ª fracción,
se conectó la segunda columna (se acopló de forma fluida) en serie a
la primera columna, y la elución se continuó en las columnas en
serie.
Después de que eluyese la 95ª fracción, se
desconectó la primera columna, y la elución se continuó sólo en la
segunda columna. Las fracciones adecuadas purificadas se
combinaron.
La mayor parte del THF se eliminó de las
fracciones combinadas mediante evaporación a presión reducida. El
concentrado se extrajo con acetato de etilo, y las fases se
separaron. La fase de acetato de etilo separada se concentró a
presión reducida (aprox. 1 parte de ascomicina y 1 parte de acetato
de etilo). Se añadieron lentamente ciclohexano y agua al extracto de
acetato de etilo concentrado. La ascomicina precipitada se recuperó
de la mezcla a 0-30ºC. Los cristales se filtraron y
se secaron.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a una temperatura de 28ºC hasta 32ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción
(Amberlite® XAD 1180) en una columna (diámetro de 45 cm) usando
agua:THF para cargar la columna (aprox. 100 l de resina de sorción
húmeda).
Se añadió agua (86 l) lentamente, con agitación,
a una disolución de sirolimus (1227 g) en acetonitrilo (10 l), en la
que la resina de sorción (Amberlite® XAD 1180; 9 l) se suspendió con
agitación. El sirolimus usado contiene impurezas. Cuando la adición
de agua estuvo terminada, la carga de alimentación de resina de
sorción se recogió por filtración.
La carga de alimentación recogida se cargó (se
yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior del lecho de resina
de sorción húmeda.
La columna se eluye en primer lugar con aprox.
1800 l de un primer eluyente constituido de THF/agua (33% en volumen
de THF). La columna se eluyó entonces con un segundo eluyente
constituido de THF/agua (40% en volumen de THF). El caudal de
elución es alrededor de 11 a 13 l/h (6,9 a 8,2 cm/h). Se recogió una
fracción principal, aprox. 460 l, que contiene sirolimus. También se
recogió una fracción previa, aprox. 80 l, que contiene
sirolimus.
La fracción principal (460 l) se combinó con
ácido fosfórico, 85% (460 ml), y se concentró a presión reducida
hasta un volumen de alrededor de 230 l. El concentrado se mantuvo a
temperatura ambiente durante un día. Los cristales se lavaron con
hexano y se secaron a 40ºC.
Se prepararon dos columnas para cromatografía
según el ejemplo 1.
Antes de la cromatografía, se adsorbieron 3000 g
de sustancia activa, que contiene sirolimus, sobre la resina de
sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. El sirolimus se
disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a la
disolución, y se añadieron lentamente 90 l de agua a la mezcla de
disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación
de resina de sorción se puso en la parte superior (se yuxtapuso)
como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción
contenida en la primera columna.
La primera columna se eluyó con una mezcla de
tetrahidrofurano:agua (34% en volumen de THF). El caudal de elución
es 15 l/hora. Se recogieron fracciones de 20 l cada una. El volumen
de cada fracción fue 20 l. Después de la elución de la 35ª fracción,
se conectó la segunda columna (se acopló de forma fluida) en serie a
la primera columna, y la elución se continuó en las columnas en
serie.
Después de que eluyese la 95ª fracción, se
desconectó la primera columna, y la elución se continuó sólo en la
segunda columna. Las fracciones adecuadas purificadas se
combinaron.
La mayor parte del THF se eliminó de las
fracciones combinadas mediante evaporación a presión reducida. El
concentrado se extrajo con acetato de etilo, y las fases se
separaron. La fase de acetato de etilo separada se concentró a
presión reducida (aprox. 1 parte de sirolimus y 1 parte de acetato
de etilo). Se añadieron lentamente ciclohexano y agua al extracto de
acetato de etilo concentrado. El sirolimus precipitado se recuperó
de la mezcla a 0-30ºC. Los cristales se filtraron y
se secaron.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a una temperatura de 28ºC hasta 32ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción
(Amberlite® XAD 1180) en una columna (diámetro de 45 cm) usando
agua:THF para cargar la columna (aprox. 100 l de resina de sorción
húmeda).
Se añadió agua (86 l) lentamente, con agitación,
a una disolución de everolimus (1227 g) en acetonitrilo (10 l), en
la que la resina de sorción (Amberlite® XAD 1180; 9 l) se suspendió
con agitación. El everolimus usado contiene impurezas. Cuando la
adición de agua estuvo terminada, la carga de alimentación de resina
de sorción se recogió por filtración.
La carga de alimentación recogida se cargó (se
yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior del lecho de resina
de sorción húmeda.
La columna se eluye en primer lugar con aprox.
1800 l de un primer eluyente constituido de THF/agua (33% en volumen
de THF). La columna se eluyó entonces con un segundo eluyente
constituido de THF/agua (40% en volumen de THF). El caudal de
elución es alrededor de 11 a 13 l/h (6,9 a 8,2 cm/h). Se recogió una
fracción principal, aprox. 460 l, que contiene everolimus. También
se recogió una fracción previa, aprox. 80 l, que contiene
everolimus.
La fracción principal (460 l) se combinó con
ácido fosfórico, 85% (460 ml), y se concentró a presión reducida
hasta un volumen de alrededor de 230 l. El concentrado se mantuvo a
temperatura ambiente durante un día. Los cristales se lavaron con
hexano y se secaron a 40ºC.
Se prepararon dos columnas para cromatografía
según el ejemplo 1.
Antes de la cromatografía, se adsorbieron 3000 g
de sustancia activa, que contiene everolimus, sobre la resina de
sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. El everolimus se
disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a la
disolución, y se añadieron lentamente 90 l de agua a la mezcla de
disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación
de resina de sorción se puso en la parte superior (se yuxtapuso)
como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción
contenida en la primera columna.
La primera columna se eluyó con una mezcla de
tetrahidrofurano:agua (34% en volumen de THF). El caudal de elución
es 15 l/hora. Se recogieron fracciones de 20 l cada una. El volumen
de cada fracción fue 20 l. Después de la elución de la 35ª fracción,
se conectó la segunda columna (se acopló de forma fluida) en serie a
la primera columna, y la elución se continuó en las columnas en
serie.
Después de que eluyese la 95ª fracción, se
desconectó la primera columna, y la elución se continuó sólo en la
segunda columna. Las fracciones adecuadas purificadas se
combinaron.
La mayor parte del THF se eliminó de las
fracciones combinadas mediante evaporación a presión reducida. El
concentrado se extrajo con acetato de etilo, y las fases se
separaron. La fase de acetato de etilo separada se concentró a
presión reducida (aprox. 1 parte de everolimus y 1 parte de acetato
de etilo). Se añadieron lentamente ciclohexano y agua al extracto de
acetato de etilo concentrado. El everolimus precipitado se recuperó
de la mezcla a 0-30ºC. Los cristales se filtraron y
se secaron.
El procedimiento a continuación se llevó a cabo
a una temperatura de 28ºC hasta 32ºC.
Se preparó un lecho de resina de sorción
(Amberlite® XAD 1180) en una columna (diámetro de 45 cm) usando
agua:THF para cargar la columna (aprox. 100 l de resina de sorción
húmeda).
Se añadió agua (86 l) lentamente, con agitación,
a una disolución de pimecrolimus (1227 g) en acetonitrilo (10 l), en
la que la resina de sorción (Amberlite® XAD 1180; 9 l) se suspendió
con agitación. El pimecrolimus usado contiene impurezas. Cuando la
adición de agua estuvo terminada, la carga de alimentación de resina
de sorción se recogió por filtración.
La carga de alimentación recogida se cargó (se
yuxtapuso) como una capa sobre la parte superior del lecho de resina
de sorción húmeda.
La columna se eluye en primer lugar con aprox.
1800 l de un primer eluyente constituido de THF/agua (33% en volumen
de THF). La columna se eluyó entonces con un segundo eluyente
constituido de THF/agua (40% en volumen de THF). El caudal de
elución es alrededor de 11 a 13 l/h (6,9 a 8,2 cm/h). Se recogió una
fracción principal, aprox. 460 l, que contiene pimecrolimus. También
se recogió una fracción previa, aprox. 80 l, que contiene
pimecrolimus.
La fracción principal (460 l) se combinó con
ácido fosfórico, 85% (460 ml), y se concentró a presión reducida
hasta un volumen de alrededor de 230 l. El concentrado se mantuvo a
temperatura ambiente durante un día. Los cristales se lavaron con
hexano y se secaron a 40ºC.
Se prepararon dos columnas para cromatografía
según el ejemplo 1.
Antes de la cromatografía, se adsorbieron 3000 g
de sustancia activa, que contiene pimecrolimus, sobre la resina de
sorción XAD 1180 según el siguiente procedimiento. El pimecrolimus
se disolvió en 15 l de acetona. Se añadió resina de sorción (33 l) a
la disolución, y se añadieron lentamente 90 l de agua a la mezcla de
disolución/resina, con agitación continua. La carga de alimentación
de resina de sorción se puso en la parte superior (se yuxtapuso)
como una capa sobre la parte superior de la resina de sorción
contenida en la primera columna.
La primera columna se eluyó con una mezcla de
tetrahidrofurano:agua (34% en volumen de THF). El caudal de elución
es 15 l/hora. Se recogieron fracciones de 20 l cada una. El volumen
de cada fracción fue 20 l. Después de la elución de la 35ª fracción,
se conectó la segunda columna (se acopló de forma fluida) en serie a
la primera columna, y la elución se continuó en las columnas en
serie.
\newpage
Después de que eluyese la 95ª fracción, se
desconectó la primera columna, y la elución se continuó sólo en la
segunda columna. Las fracciones adecuadas purificadas se
combinaron.
La mayor parte del THF se eliminó de las
fracciones combinadas mediante evaporación a presión reducida. El
concentrado se extrajo con acetato de etilo, y las fases se
separaron. La fase de acetato de etilo separada se concentró a
presión reducida (aprox. 1 parte de pimecrolimus y 1 parte de
acetato de etilo). Se añadieron lentamente ciclohexano y agua al
extracto de acetato de etilo concentrado. El pimecrolimus
precipitado se recuperó de la mezcla a 0-30ºC. Los
cristales se filtraron y se secaron.
Claims (31)
1. Método para separar un macrólido seleccionado
de entre el grupo constituido por tacrolimus, ascomicina, sirolimus,
everolimus y pimecrolimus, de las impurezas que contiene, que
comprende las etapas siguientes:
- a)
- proporcionar una carga del macrólido que tiene un nivel inicial de impurezas,
- b)
- cargar la carga en un lecho de resina de sorción,
- c)
- eluir con un eluyente el lecho de resina de sorción cargada, eluyente el cual comprende agua y tetrahidrofurano, y adicionalmente, cuando el macrólido es tacrolimus, el eluyente puede comprender agua, acetonitrilo y ácido fosfórico, para obtener un efluente, y
- d)
- recoger por lo menos una fracción del efluente que comprende el macrólido.
2. Método según la reivindicación 1, en el que
la carga de un macrólido contiene además una porción de carga de una
resina de sorción.
3. Método según la reivindicación 2, en el que
la carga se deposita sobre la porción de carga a partir de su
disolución en un disolvente orgánico, en una etapa que incluye
combinar la disolución con un antidisolvente.
4. Procedimiento según la reivindicación 3, en
el que el disolvente orgánico se selecciona de entre el grupo
constituido por tetrahidrofurano, acetona, acetonitrilo, metanol,
etanol, n-butanol, n-propanol,
iso-propanol, ésteres, y disolventes apróticos
dipolares.
5. Procedimiento según la reivindicación 4, en
el que el disolvente orgánico se selecciona de entre el grupo
constituido por tetrahidrofurano, acetona y acetonitrilo.
6. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 3 a 5, en el que el antidisolvente se selecciona de
entre el grupo constituido por agua, alcanos lineales o ramificados,
o cicloalcanos.
7. Procedimiento según la reivindicación 6, en
el que el antidisolvente es agua.
8. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 3 a 7, en el que la relación de disolución
combinada a antidisolvente combinado es 40% o menos.
9. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-8, que comprende además la etapa
de aislar el macrólido de dicha por lo menos una fracción, en el que
el macrólido tiene un nivel final de impurezas que es menor que el
nivel inicial de impurezas.
10. Método según la reivindicación 9, en el que
el aislamiento comprende la etapa de concentrar dicha por lo menos
una fracción a presión atmosférica (alrededor de 101.300 Pa) o a una
presión menor que 101.300 Pa, y una temperatura de 70ºC o menor,
preferentemente 60ºC o menor.
11. Método según la reivindicación 10, que
comprende además la etapa de, antes de concentrar, combinar dicha
por lo menos una fracción con un ácido inorgánico.
12. Método según la reivindicación 11, en el que
el ácido inorgánico es ácido fosfórico.
13. Método según la reivindicación 11 ó 12, en
el que la cantidad del ácido es 1 a 10 ml por litro de eluyente.
14. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 9 a 13, en el que el aislamiento comprende la etapa
de combinar un antidisolvente con dicha por lo menos una fracción de
eluyente.
15. Método según la reivindicación 14, en el
que, antes de la combinación, dicha por lo menos una fracción de
efluente se concentra a una presión menor que 101.300 Pa.
16. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 15, en el que la resina de sorción es una
resina macrorreticular.
17. Método según la reivindicación 16, en el que
la resina macrorreticular se selecciona de entre el grupo
constituido por resinas Amberlite® XAD y resinas de sorción de
Diaion.
18. Método según la reivindicación 17, en el que
la resina macrorreticular es Amberlite® XAD 1180.
19. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 18, en el que el lecho de resina de sorción
está confinado en una columna.
20. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 19, en el que el volumen de efluente recogido
en por lo menos una fracción comprende 60% a 90%, en peso, del
macrólido inicialmente presente en la carga.
21. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 20, en el que el caudal del eluyente es menor
que 25 cm/h.
22. Método según la reivindicación 21, en el que
el caudal del eluyente es menor que 15 cm/h.
23. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-22, en el que el macrólido es
tacrolimus.
24. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 23, en el que el eluyente comprende una mezcla
de tetrahidrofurano y agua que tiene 20% en volumen a 50% en volumen
de tetrahidrofurano.
25. Método según la reivindicación 24, en el que
el eluyente tiene 31% en volumen a 40% en volumen de
tetrahidrofurano, preferentemente 33% en volumen a 35% en volumen de
tetrahidrofurano.
26. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 23, en el que el eluyente comprende una mezcla
de acetonitrilo y agua que tiene 30% en volumen a 70% en volumen de
acetonitrilo, preferentemente 40% en volumen a 65% en volumen de
acetonitrilo.
27. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 26, en el que el eluyente incluye hasta 0,003
partes de ácido fosfórico por 1 parte de eluyente, en volumen.
28. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 27, en el que la carga se carga sobre la
porción de carga de resina de sorción en un sistema
recirculante.
29. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que se conecta por lo menos un
lecho adicional de resina de sorción al lecho de resina de sorción
de la etapa b.
30. Método según la reivindicación 29, en el
que, tras una serie adicional de fracciones de eluyente, se
desconecta el lecho de resina de la etapa b.
31. Método según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el macrólido es tacrolimus, y
las impurezas en él son ascomicina y dihidrotacrolimus.
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Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1697383B1 (en) * | 2003-12-05 | 2014-04-23 | Biocon Limited | Process for the purification of tacrolimus |
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| CA2586692A1 (en) * | 2004-12-22 | 2006-06-29 | Teva Gyogyszergyar Zartkoruen Mukodo Reszvenytarsasag | Method of purifying macrolides |
| WO2007067566A2 (en) * | 2005-12-07 | 2007-06-14 | Wyeth | Methods for preparing crystalline rapamycin and for measuring crystallinity of rapamycin compounds using differential scanning calorimetry |
| KR100859670B1 (ko) * | 2006-09-13 | 2008-09-23 | 동국제약 주식회사 | 타크로리무스를 고수율 및 고순도로 정제하는 방법 |
| TW200837067A (en) * | 2006-11-06 | 2008-09-16 | Teva Gyogyszergyar Zartkoruen Mukodo Reszvenytarsasag | Ascomycin and pimecrolimus having reduced levels of desmethylascomycin and 32-deoxy-32-epichloro-desmethylascomycin respectively, and methods for preparation thereof |
| KR100891313B1 (ko) * | 2007-08-17 | 2009-03-31 | (주) 제노텍 | 담체로 작용하는 흡착성 수지의 제공에 의한 트리사이클로화합물의 생산 및 추출 방법 |
| EP2792254B1 (en) | 2009-04-16 | 2016-10-05 | Ocean Spray Cranberries, Inc. | Phenolics extraction and their use in compositions with fumaric acid |
| CN106478664B (zh) * | 2016-08-29 | 2017-12-05 | 广东蓝宝制药有限公司 | 一种发酵液中提取纯化他克莫司的方法 |
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|---|---|---|---|---|
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| US3993749A (en) * | 1974-04-12 | 1976-11-23 | Ayerst Mckenna And Harrison Ltd. | Rapamycin and process of preparation |
| US4160861A (en) * | 1977-10-03 | 1979-07-10 | Merck & Co., Inc. | Method for the separation of antibiotic macrolides |
| US4894366A (en) * | 1984-12-03 | 1990-01-16 | Fujisawa Pharmaceutical Company, Ltd. | Tricyclo compounds, a process for their production and a pharmaceutical composition containing the same |
| JP2639737B2 (ja) * | 1990-01-23 | 1997-08-13 | 寳酒造株式会社 | 新規r106類化合物 |
| US5116756A (en) * | 1991-01-28 | 1992-05-26 | Merck & Co., Inc. | Process for producing FK-506 |
| WO1992018506A1 (en) | 1991-04-11 | 1992-10-29 | Pfizer, Inc. | Novel immunosuppressant agent from streptomyces braegensis |
| US5091389A (en) * | 1991-04-23 | 1992-02-25 | Merck & Co., Inc. | Lipophilic macrolide useful as an immunosuppressant |
| WO1993018042A1 (en) * | 1992-03-02 | 1993-09-16 | Pfizer Inc. | Desosamino derivatives of macrolides as immunosuppressants and antifungal agents |
| UA41884C2 (uk) * | 1993-11-05 | 2001-10-15 | Амерікан Хоум Продактс Корпорейшн | Спосіб відокремлення рапаміцину від кислотних, основних та неполярних нейтральних домішок, присутніх в концентраті екстрактів ферментаційного бульйону або маточних розчинів |
| US5622866A (en) * | 1994-06-23 | 1997-04-22 | Merck & Co., Inc. | Expression cassettes useful in construction of integrative and replicative expression vectors for Streptomyces |
| GB9618952D0 (en) | 1996-09-11 | 1996-10-23 | Sandoz Ltd | Process |
| GB9826882D0 (en) | 1998-12-07 | 1999-01-27 | Novartis Ag | Organic compounds |
| TW553946B (en) * | 1999-09-08 | 2003-09-21 | Fujisawa Pharmaceutical Co | Method for separating lactone-containing high-molecular weight compounds |
| ES2177373B1 (es) | 1999-11-26 | 2003-11-01 | Astur Pharma Sa | Preparacion de azitromicina en su forma no cristalina |
| FR2803307A1 (fr) * | 1999-12-30 | 2001-07-06 | Centre Nat Rech Scient | Lignees de lymphocytes t cd4 specifiques de type th1 et procede pour leur induction ex vivo |
| HRP20020683A2 (en) * | 2000-02-24 | 2004-12-31 | Biogal Gyogyszergyar | Method of purifying a fermentation broth |
| AUPQ801700A0 (en) * | 2000-06-07 | 2000-06-29 | Peplin Research Pty Ltd | Enzyme and viral activation |
| AUPQ923100A0 (en) * | 2000-08-07 | 2000-08-31 | Peplin Research Pty Ltd | Treatment of prostate cancer |
| MXPA04007847A (es) * | 2002-02-13 | 2005-02-24 | Biogal Gyogyszergyar | Metodo para extraer un macrolido de biomateria. |
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Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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