JP2000228997A - 電解質測定用試薬組成物 - Google Patents
電解質測定用試薬組成物Info
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Abstract
性を備え、かつ正確性、定量性においても優れたα−ア
ミラーゼを利用した電解質測定用試薬組成物を提供す
る。 【解決手段】α−アミラーゼを用いた2試薬からなる電
解質測定用試薬組成物において、電解質により可逆的に
再活性化する不活性化型α−アミラーゼとキレート剤を
別々に処方することを特徴とする電解質測定用試薬組成
物。
Description
たは尿中の電解質、例えばカルシウムイオン、塩素イオ
ンなどの電解質を測定する試薬組成物に関する。更に詳
細には、α−アミラーゼを利用した電解質を測定する試
薬組成物に関する。
謝調節されていることから、体液中の電解質の測定は生
体機能のバロメーターとして生化学的臨床検査の中で最
も一般的な分析であり、これらを測定することにより各
種疾患の診断が行われる。例えば、血清中のカルシウム
イオン量の測定は、低カルシウム血症として、低タンパ
ク血症、低リン血症、腎炎、ネフローゼ、ビタミンD欠
乏症、副甲状腺機能低下症、クル病等の疾患、高カルシ
ウム血症としては、骨腫瘍、アジソン病、肺気腫、副甲
状腺機能亢進症、腎不全等の疾患の診断に用いられる。
また例えば、血清中の塩素イオン量の測定は、低クロー
ル血症として、低張性脱水症、グルココルチコイド過剰
症、呼吸性アシドーシス等の疾患、高クロール血症とし
ては、高張性脱水症、尿細管性アシドーシス、呼吸性ア
ルカローシス等の疾患の診断に用いられる。
は、従来から、(1)滴定法、(2)比色法、(3)原
子吸光法、(4)炎光光度計法、(5)電極法、(6)
酵素法などが知られている。
ートを用いて化学的に滴定する方法であるが、この方法
は煩雑であり、実施者により測定値に差異が生ずる、多
量の試料を短時間に処理できないという欠点を有する。
また、上記(2)の比色法において、発色剤にo−CP
C(オルトクレゾールフタレインコンプラクソン)を用
いる方法は、汎用の自動分析機に適用できる方法である
が、この方法は温度、時間により吸光度が変化する、マ
グネシウムイオンの影響を受ける等の欠点を有する。
釈することが必要である、手技に熟練を要する等の欠点
を有する。上記(4)の炎光光度計法は特異性、再現性
の点に問題を有する。さらに、上記(5)の電極法は、
pHの影響を受ける、機器を一定の状態に維持すること
が煩雑である等の欠点を有する。
スホリパーゼDを利用する方法(特開昭62−1952
97号公報)、(b)カルモジュリンを利用する方法
(特開昭62−36199号公報)、(c)α−アミラ
ーゼを利用する方法(特公平6−87798号公報な
ど)などが挙げられる。
ことが困難であり、反応に時間がかかるという欠点を有
する。上記(b)の方法は検体を希釈する(100〜1
000倍)ことが必要である。また、これに対して、
(c)の方法はカルシウムイオンにより不活性化型α−
アミラーゼが再活性化され、糖基質を分解し、分解した
生成物を測定することにより、体液中のカルシウムイオ
ンを測定するカルシウムイオンにより不活性化型α−ア
ミラーゼが再活性化され、糖基質を分解し、分解した生
成物を測定することにより体液中のカルシウムイオンを
測定する方法であり、上記(1)〜(5)の方法におけ
る問題点を解消し、また(6)の(a)、(b)の方法
よりも正確性かつ簡便性に優れた酵素法として実際に臨
床検査分野で用いられている。
は、従来から(イ)電量滴定法、(ロ)イオン電極法、
(ハ)比色法、(ニ)酵素法などが知られている。上記
(イ)の電量滴定法、(ロ)のイオン電極法は専用の装
置が必要である、機器の保持、管理に注意が必要であ
る、試料の分析効率が悪いなどの問題点がある。また、
(ハ)の比色法はチオシアン酸水銀と硝酸鉄を用いた方
法などがあるが、測定後シアン、水銀を含む廃液を生じ
るため、特別な処理が必要であるといった欠点を有す
る。
ラーゼを利用する方法(特開平3−176000号公
報、特開平4−94698号公報など)、(b)ザルコ
シンオキシダーゼを利用する方法(特開平9−1872
96号公報)などがある。このうち、(a)の方法は塩
素イオンにより不活性化型α−アミラーゼが再活性化さ
れ、糖基質を分解し、分解された生成物を測定すること
により体液中の塩素イオンを測定する方法であるが、現
在実際に臨床検査分野で用いられており、電量滴定法、
イオン電極法、比色法に比べ、正確性、簡便性および分
析効率の点で優れている。
定性向上、またはコスト削減、作業の省力化等の要求に
より、液状化試薬が主流になっている。従来は酵素等液
状状態で不安定なものは凍結乾燥状態で流通し、使用時
に添付の溶解液で溶解し測定に使用していたが、最近の
成分酵素等の耐熱化、またはpH、バッファー条件の至
適化等による成分酵素の安定化により、液状状態での流
通が可能となり、製造側としては凍結乾燥の手間が省
け、また臨床検査現場においては溶解する手間が省け、
臨床検査に関わる省力化に大きく貢献しているものであ
る。
は、これまでの種々の測定法の中でも簡便性、正確性等
の点で優れていることは上述の通りである。この方法に
おいて、α−アミラーゼは、測定対象となるその活性発
現に必要なカルシウムまたは塩素イオンをあらかじめ除
去し、通常不活性化型の状態で用いられる。また、この
方法においては、ブランク反応を抑える、拮抗阻害剤と
して定量性を調節する、または測定対象外の類似共雑イ
オンをマスキングする等の目的で、測定試薬中にキレー
ト剤が処方されている。しかしながら、このような不活
性化型α−アミラーゼはキレート剤の存在下では不安定
であることから、溶液状態で長期の保存ができないとい
う問題を有している。
性化型α−アミラーゼの安定化方法としては、従来から
マルトース、α−シクロデキストリン等の少糖類、また
はこれらの混合物が有用であることが知られている(特
開平6−113894号公報)。しかしながら、この方
法でも、短期間(1〜2ヶ月間)の低温(2〜8℃)保
存には耐えうるが、長期間の保存、あるいは実際の作業
下の室温(18〜37℃)での安定性に関しては未だ十
分とは言えない。
外部からの測定検体以外のものに由来するα−アミラー
ゼの混入の影響がある。これは、例えば人の唾液等が偶
発的に測定試液中に混入することにより、唾液中に含ま
れるα−アミラーゼにより基質が分解され、試薬ブラン
クの上昇、測定感度の低下により定量性、精密性が損な
われるという問題である。特に、測定試液の製造時また
は使用時に混入しやすく、汗、唾液に由来するわずかな
α−アミラーゼの混入によっても、溶液のまま長期間保
存される可能性のある液状試薬では試薬性能に影響を与
えることから、α−アミラーゼに対する安定化が必要で
ある。
ーゼ混入の問題に対しては、特開平6−277096号
公報に記載されるように、α−アミラーゼ基質として用
いられるp−ニトロフェニル−β−ガラクトシル−α−
マルトペンタオシドをpH2.0〜5.5の範囲内の水
溶液とすることで安定化を図る方法が知られている。し
かしながら、この方法ではα−アミラーゼの基質自体の
安定化は図れるが、各試液のpH条件に制約が生じるこ
とから十分ではない。
ミラーゼを利用した電解質測定方法に関しては、今日臨
床検査用試薬で主流になっている液状試薬として流通に
耐えうるような高い溶液安定性は未だ達成されていない
のが現状である。本発明は、上記のような現状に鑑み、
安定性、正確性、定量性に優れた酵素アッセイに用いる
電解質測定用試薬組成物を提供することにある。
を達成するため鋭意検討した結果、測定試薬を2試薬の
構成とし、安定性不良に起因するキレート剤と電解質に
より可逆的に再活性化する不活性化型α−アミラーゼと
を別々に処方することで、従来のような安定化剤をむや
みに使用することなく低温から実使用レベルである室温
での長期的な溶液安定性が得られることを見出し、さら
に、2試薬の構成を少なくとも第一試薬において(a)
α−アミラーゼ基質、(b)キレート剤、第二試薬にお
いて(c)電解質により可逆的に再活性化する不活性化
型α−アミラ−ゼの構成とし、さらに第一試薬に(d)
α−アミラーゼに対し阻害活性を有する物質を含有する
ことで混入α−アミラーゼの影響を回避できることを見
出し、本発明を完成するに至った。
成る。 (1)α−アミラーゼを用いた2試薬からなる電解質測
定用試薬組成物において、電解質により可逆的に再活性
化する不活性化型α−アミラーゼとキレート剤を別々に
処方することを特徴とする電解質測定用試薬組成物。 (2)第一試薬において(a)α−アミラーゼ基質およ
び(b)キレート剤を含有し、かつ第二試薬において
(c)電解質により可逆的に再活性化する不活性化型α
−アミラ−ゼを含有するように処方される(1)の電解
質測定用試薬組成物。 (3)第一試薬において(d)α−アミラーゼに対し阻
害活性を有する物質を含有する(1)または(2)の電
解質測定用試薬組成物。 (4)α−アミラーゼ基質が2−クロロ−4−ニトロフ
ェニル−4−o−β−D−ガラクトピラノシル−α−マ
ルトシドである(1)〜(3)のいずれかの電解質測定
用試薬組成物。 (5)α−アミラーゼに対し阻害活性を有する物質が、
5−ブロモ−5−ニトロ−1,3−ジオキサン、2−ク
ロロアセトアミド、2−ヒドロキシピリジン−N−オキ
サイド、イミダゾリジニルウレア、N−メチルイソチア
ゾロン、5−クロロ−2−メチル−4−イソチアゾリン
−3−オンおよびN−エチルマレイミドよりなる群から
選ばれた少なくとも1種類である(1)〜(4)のいず
れかの電解質測定用試薬組成物。 (6)キレート剤が1,2−ビス(o−アミノフェノキ
シ)エタン四酢酸である(1)〜(5)のいずれかの電
解質測定用試薬組成物。 (7)第一試薬がpH7以上であり、かつ第二試薬がp
H6〜7である(1)〜(6)のいずれかの電解質測定
用試薬組成物。 (8)電解質がカルシウムイオンである(1)〜(7)
のいずれかの電解質測定用試薬組成物。 (9)電解質が塩素イオンである(1)〜(7)のいず
れかの電解質測定用試薬組成物。
は、α−アミラーゼの活性化剤であるカルシウム、また
は塩素イオン等によりα−アミラーゼが活性化されるこ
とを利用し、分解された糖基質を測定することにより試
料中の電解質を測定するものであり、次のような測定原
理が考えられる。ここで、電解質とは、水その他の溶媒
に溶解して溶液がイオン電導を行うような物質をいうも
のであり、具体的には、カルシウムイオン、塩素イオ
ン、マグネシウムイオン、バリウムイオン、マンガンイ
オン、亜鉛イオン等を指す。
マルトヘキサオースなどを用い、活性化されたα−アミ
ラーゼ、さらにはα−グルコシダーゼ等の追随酵素の作
用により、これらの基質からグルコースを遊離させ、グ
ルコースの量を測定することでカルシウム等の電解質量
を求める。生成したグルコースの測定方法としては、グ
ルコースオキシダーゼ−ペルオキシダーゼ法、ヘキソキ
ナーゼ−グルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナー
ゼ法等がある。
ゼ法ではグルコースにグルコースオキシダーゼを作用さ
せ、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下フ
ェノール等の酸化発色物質とカプラーを酸化縮合してキ
ノン色素に導き、その吸光度をレート測定する方法であ
る。ヘキソキナーゼ−グルコース6ホスフェートデヒド
ロゲナーゼ法はヘキソキナーゼによりグルコースからグ
ルコース−6−リン酸に導き、続いてグルコース−6−
リン酸にNAD+またはNADP+の存在下グルコース−
6−ホスフェートデヒドロゲナーゼを作用させNADH
またはNADPHの増加反応をレート測定する方法であ
る。
ル基、ナフチル基、またはそれらの誘導体をアグリコン
として結合させた誘導体を基質とする方法 p−ニトロフェニルマルトペンタオシド、p−ニトロフ
ェニルマルトヘキサオシド、p−ニトロフェニルマルト
ヘプタオシド、2,4−ジクロロニトロフェニルマルト
ペンタオシド、2−クロロ−4−ニトロフェニルマルト
トリオシド、2−クロロ−4−ニトロフェニルマルトペ
ンタオシド等を基質として用い、活性化されたα−アミ
ラーゼを作用させ、必要によりα−グルコシダーゼ等の
追随酵素を作用させて、これらの基質からアグリコンを
遊離させ、遊離したアグリコンの量を光学的に測定する
ことによりカルシウム等の電解質量を求める。
ル基、ナフチル基、またはそれらの誘導体をアグリコン
として結合させたマルトオリゴ糖誘導体の非還元末端の
グルコースの4位および6位のヒドロキシル基が何らか
の手段で修飾された誘導体を基質とする方法 (2)に準ずる方法であるが、基質として、非還元末端
グルコースがハロゲン、グルコピラノシル基等で修飾さ
れたタイプの基質(例えば、特開昭60−237998
号公報)あるいは、4位および6位のヒドロキシル基を
アルキル基、アルコイル基またはフェニル基で置換した
タイプの基質(例えば、特開昭60−54395号公
報、特開平1−157996号公報)あるいは4位およ
び6位のヒドロキシル基をβ−ガラクトピラノシル基で
置換したタイプの基質(例えば、特開平3−26459
6号公報、特開平6−315399号公報)を用いる方
法がある。
(3)に示される測定法は原理的に優れている。なかで
も、2−クロロ−4−ニトロフェニル−4−o−β−D
−ガラクトピラノシル−α−マルトシドを用いる方法
は、非還元末端が修飾されていることから内因性α−グ
ルコシダーゼ等による分解による試薬ブランクの上昇が
なく、また、追随酵素を必要としないことから低コスト
であり、しかも、α−アミラーゼの基質親和性が高いた
め好感度であるといったメリットがあり特に好ましい。
オンの測定について示すと、まず第一反応として試料に
α−アミラーゼに対し阻害活性を有する物質、キレート
剤、およびα−アミラーゼの基質として2−クロロ−4
−ニトロフェニル−4−o−β−D−ガラクトピラノシ
ル−α−マルトシドを含む電解質測定用試薬組成物を作
用させ、続いて第二反応として電解質により可逆的に再
活性化する不活性化型α−アミラーゼを含有する電解質
測定用試薬組成物を作用させることで、試料中のカルシ
ウムを得て再活性化したアミラーゼが前記基質を分解
し、遊離する2−クロロ−4−ニトロフェノールを測定
し、試料中のカルシウム量を求めるものである。
活性を有する物質とは、α−アミラーゼのある特定の部
位に結合して反応速度を低下させる物質であり、特に阻
害形式としてはいわゆる拮抗阻害を除く阻害作用を有す
る物質をいうものであり、例えば、蛋白質を構成するチ
オール基、アミノ基等と作用または結合する物質が挙げ
られる。具体的には、5−ブロモ−5−ニトロ−1,3
−ジオキサン、2−クロロアセトアミド、2−ヒドロキ
シピリジン−N−オキサイド、イミダゾリジニルウレ
ア、N−メチルイソチアゾロン、5−クロロ−2−メチ
ル−4−イソチアゾリン−3−オン、N−エチルマレイ
ミド、p−クロロマーキュリ安息香酸、β−ブロモエチ
ルアミン等が挙げられるが、これらに限定されるもので
はなく、また、これらを複数組み合わせて用いても良
い。また、該α−アミラーゼに対し阻害活性を有する物
質の試薬組成中濃度は特に限定されないが、試薬組成物
に含まれる電解質により可逆的に再活性化する不活性化
型α−アミラーゼへの影響を考慮し、第一試薬中に0.
01〜100mMの範囲で好適に用いられる。
物、植物、または動物のいずれの起源のものも用いるこ
とが可能であるが、好適には動物起源のものであり、例
えばブタ膵臓、人膵臓、人唾液由来のα−アミラーゼが
例示される。本発明に用いられるα−アミラーゼは、脱
塩処理によって不活性化型とされている必要がある。そ
して、実際に測定に関与する不活性化型α−アミラーゼ
は、上述のように試料中のカルシウムまたは塩素イオン
等の電解質を得て活性化型α−アミラーゼとなり、α−
アミラーゼの基質と反応する、電解質により可逆的に再
活性化するものである必要がある。該脱塩処理は、例え
ば、透析、限外濾過、イオン交換、カラム除去、電気膜
透析などの方法により行われるのが好ましい。電解質に
より可逆的に再活性化する不活性化型α−アミラーゼの
試薬組成中の濃度は、好ましくは反応液中に0.1〜1
000IU/mlの範囲で用いられる。
択されるための特異性に関しては、測定対象以外のイオ
ンなどの妨害イオンの各濃度範囲を推定し、その他の測
定される検体の性能も考慮したうえで、妨害イオンに特
異的なキレート剤を共存させることにより、該妨害イオ
ンによるα−アミラーゼの活性化を抑える、あるいは、
妨害イオンになりうるイオンを予め組成中に十分量存在
せしめることで、試料中の妨害イオンの濃度レベルでは
妨害を受けないようにするなどの方法により達成され
る。具体的な態様を例示すると、カルシウムイオンを測
定する場合は、塩素イオン等が妨害イオンとなるので、
例えば塩化ナトリウムのような塩素を含む化合物を試薬
組成中に測定に影響を受けないレベルで共存させる。ま
た、塩素イオンを測定する場合は、カルシウムイオン等
が妨害イオンとなりうるので、検体中のカルシウムイオ
ンをトラップするようなキレート剤を加えるなどの方法
が挙げられる。
ば、エチレンジアミン四酢酸、グリコールエーテルジア
ミン四酢酸、1,2−ビス(o−アミノフェノキシ)エ
タン四酢酸、トランス−1,2−ジアミノシクロヘキサ
ン四酢酸ならびにこれらの塩等が挙げられる。なかで
も、本発明における至適pHである中性付近での金属選
択性の点から、1,2−ビス(o−アミノフェノキシ)
エタン四酢酸が特に好ましい。該キレート剤の電解質測
定用試薬組成物中での役割としては、上述のようにブラ
ンク反応を抑える、拮抗阻害剤として定量性を調節す
る、または測定対象外の類似共雑イオンをマスキングす
る等が挙げられる。該キレート剤は、反応液中に好まし
くは0.01〜10mM、より好ましくは0.1〜1m
Mの範囲で用いられる。また、上記に示されるキレート
剤を複数組合わせて用いても良い。
述の通り何ら限定されるものではないが、追随酵素を必
要としないことから低コストであるというメリットよ
り、2−クロロ−4−ニトロフェニルマルトトリオシ
ド、2−クロロ−4−ニトロフェニル4−o−β−D−
ガラクトピラノシルマルトシドが好適である。さらに、
非還元末端が修飾されていることから内因性α−グルコ
シダーゼ等による分解による試薬ブランクの上昇がな
い、α−アミラーゼの基質親和性がより高いため好感度
であるといったメリットがあることから、2−クロロ−
4−ニトロフェニル4−o−β−D−ガラクトピラノシ
ルマルトシドがさらに好適に用いられる。該基質の試薬
組成物中での濃度は、反応液中に好ましくは0.05〜
50mM、より好ましくは0.1〜2mMの範囲で用い
られる。
第一反応、第二反応の2ステップで測定する必要がある
ことから、2試薬により構成させるいわゆる2試薬系で
ある必要がある。そして、キレート剤と電解質により可
逆的に再活性化する不活性化型α−アミラーゼを別々に
処方することを特徴とする。該キレート剤と該不活性化
型α−アミラーゼを別々に処方することにより、該不活
性型α−アミラーゼの長期的な溶液安定性を得ることが
できるものである。また、該電解質測定用試薬組成物の
最終pHを5.0〜8.0の範囲にすることによって、
α−アミラーゼの糖分解反応速度そのものを制御し、測
定範囲をより広げることが可能となる。
ト測定可能な零次反応が得られる、または干渉電解質の
前処理、前消去のの点から、第一試薬において(a)α
−アミラーゼ基質および(b)キレート剤を含有し、か
つ第二試薬において(c)電解質により可逆的に再活性
化する不活性化型α−アミラ−ゼを含有するように処方
される態様が好ましい。さらには、外部からの測定検体
以外のものに由来するα−アミラ−ゼの混入の影響回避
の点から、上記の第一試薬において(d)α−アミラー
ゼに対し阻害活性を有する物質を含有せしめることがよ
り好ましい。
6〜8の中性付近であり、またキレート剤の安定性至適
pHはアルカリ側であることより、本発明の試薬組成物
をpH6〜8の範囲で調製するのが好ましいと考えられ
るが、同時に定量性等の性能を得るには、第一試薬と第
二試薬を混合した際に反応至適pHになるように処方す
ることもできる。好ましくはキレート剤を含む試薬をp
H7以上、より好ましくはpH7〜9、電解質により可
逆的に再活性化する不活性化型α−アミラーゼを含む試
薬をpH6〜7とし、バッファー濃度またはこれら2試
薬の混合比を調整し、反応至適pHになるように処方す
る。試薬pHを保持する方法は、公知の方法であれば何
ら限定されるものではないが、一般的には緩衝剤が用い
られる。該緩衝剤としては、例えば、グッド緩衝剤、ト
リス緩衝剤、リン酸緩衝剤等が挙げられる。第一試薬、
第二試薬各々における緩衝剤は、好ましくは10〜50
0mM、より好ましくは50〜300mMの濃度で用い
られる。
は、上記α−アミラーゼ基質(いわゆるメディエーター
基質)とは別に、レギュレーター基質として、試薬ブラ
ンクを抑える、定量性を向上させる等の目的のため、必
要により最終的な光学的測定法が異なる2つの基質また
は基質とその生成物を組合わせて用いることで、糖分解
反応を競合せしめ、見かけの基質親和性を低下させるこ
とができる。例えば、マルトオリゴ糖、またはその非還
元末端グルコースを修飾したマルトオリゴ糖、またはそ
の還元末端グルコースに非発色源基が結合したマルトオ
リゴ糖より選ばれる基質を競合させ、主反応である還元
末端グルコースに発色源基を結合させるか、あるいは、
さらに非還元末端に置換基を結合させた基質に対するα
−アミラーゼの反応速度を調節する。なかでも、非還元
末端グルコースを修飾したマルトオリゴ糖は内因性α−
グルコシダーゼの分解を受けず測定値に影響を及ぼさな
いことから、好適に用いられる。
ルトース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マ
ルトペンタオース、マルトヘキサオース、マルトヘプタ
オースなどグルコース数が2〜7のマルトオリゴ糖が挙
げられる。非還元末端グルコースを修飾したマルトオリ
ゴ糖としては、ガラクトシルマルトース、ガラクトシル
トリオース、ガラクトシルテトラオース、ガラクトシル
ペンタオースが挙げられ、還元末端グルコースに非発色
源基が結合したマルトオリゴ糖としては、例えば、2,
4−ジクロロフェニル−α−D−マルトトリオシド、
2,4−ジクロロフェニル−(αまたはβ)−D−マル
トペンタオシド、2,4−ジクロロフェニル−(αまた
はβ)−D−マルトトリオシドなどが挙げられる。該マ
ルトオリゴ糖の用いる濃度としては、好ましくは反応液
中で0.01〜250mM、より好ましくは0.1〜2
00mMであり、第一試薬、第二試薬いずれにおいても
用いられ得る。
には、必要に応じてイオノフォア、クラウンエーテル等
の干渉電解質の影響回避、あるいは感度調節のため干渉
電解質または測定対象電解質に対する選択的結合剤を使
用することができる。該選択的結合剤としては、上述の
ようなキレート剤の他に、18−クラウン−6(メルク
社製)、クリプトフィックス221(メルク社製)など
が挙げられる。また、必要に応じて、防腐剤、界面活性
剤、酸化防止剤、プロテアーゼ阻害剤等を測定する電解
質の定量性に影響を及ぼさない範囲で添加することも可
能である。
ーゼの安定性に対する影響の少ないアジ化ナトリウム、
あるいは、セフェム系、ペニシリン系、アミノグリコシ
ド系、キノロン系等の抗生物質等が好適に用いられ、こ
れらを単独あるいは組合わせて使用することができる。
界面活性剤としては、非イオン界面活性剤、陽イオン界
面活性剤、陰イオン界面活性剤などを単独あるいは組合
わせて使用することができる。
は、アルカリ金属のハロゲン化物、例えば、塩化ナトリ
ウム、塩化カリウムなどを3〜300mMの濃度で添加
することが好ましい。また測定する電解質が塩素イオン
の場合は、2価カチオン、例えば、カルシウム、マグネ
シウム、バリウム、亜鉛等を0.01〜200mMの濃
度で添加することができる。
びその塩、ソルボース等の糖類、カタラーゼ等が挙げら
れる。プロテアーゼ阻害剤としてはフッ化フェニルメチ
ルスルホニル等が挙げられる。
再活性化する不活性化型α−アミラーゼが、上述のよう
に試料中のカルシウムまたは塩素イオン等の電解質を得
て活性化型α−アミラーゼとなり、α−アミラーゼの基
質と反応することを利用し、上述のような測定方法に基
づき測定することができる。例えば、カルシウムの測定
の場合は、第一反応として試料にα−アミラーゼに対し
阻害活性を有する物質、キレート剤、およびα−アミラ
ーゼの基質として2−クロロ−4−ニトロフェニル−4
−o−β−D−ガラクトピラノシル−α−マルトシドを
含む第一試薬を作用させ、続いて第二反応として電解質
により可逆的に再活性化する不活性化型α−アミラーゼ
を含有する第二試薬を作用させることで、試料中のカル
シウムに依存して再活性化したアミラーゼの反応により
2−クロロ−4−ニトロフェノールを生成する。
自体400nm付近に吸収があることから、遊離後40
0nm付近の吸光度の変化を測定し、既知濃度の試料の
吸光度を対照に、試料中のカルシウムの濃度を求める。
上記2−クロロ−4−ニトロフェノールの測定方法とし
ては、アミラーゼの反応を連続的に追跡するレート法お
よび一定時間反応させた後反応を止めて測定するエンド
ポイント法のいずれもが適用されうる。
測定について示すと、第一反応として試料にα−アミラ
ーゼに対し阻害活性を有する物質、キレート剤およびα
−アミラーゼの基質として2−クロロ−4−ニトロフェ
ニル−4−o−β−D−ガラクトピラノシル−α−マル
トシドを含む第一試薬を作用させ、続いて第二反応とし
て電解質により可逆的に再活性化する不活性化型α−ア
ミラーゼを含有する第二試薬を作用させることで、試料
中の塩素イオンに依存して再活性化したアミラーゼの反
応により、生成する2−クロロ−4−ニトロフェノール
を測定し、試料中の塩素イオン量を求めるものである。
明する。なお、本発明はこれら実施例に限定されるもの
でない。
ミラーゼを含む第二試薬を35℃で14日間保存した。
そして、調製直後5、10、14日目の試液中のα−ア
ミラーゼ活性を市販のα−アミラーゼ活性測定試薬(ダ
イヤカラー・AMYネオレート:東洋紡績(株)製)を
用いて測定し、残存活性(%)を求めた。その結果を表
1に示す。
ミラーゼを含む第一試薬を35℃で14日間保存し、実
施例1と同様に35℃保存後の残存活性(%)を求め
た。その結果を表1に示す。
の残存活性が39.4%に対し、実施例1では97.2
%とほとんど劣化がなく、安定性が良好であることが確
認された。
14日間保存し、調製直後とあわせて、下記に示すカル
シウム量の測定方法に従い、試料として精製水、10m
g/dl標準液及び酢酸カルシウム水溶液(Caイオン
換算で50mg/dl)の10水準の希釈系列を測定
し、高値直線性を検討した。
備加温した後、さらに第二試薬90μlを加えて反応を
開始させ、該基質試液添加後2分後からの3分間におけ
る1分あたりの吸光度変化を求め、精製水およびカルシ
ウム10mg/dl標準液での2点検量線に基づき試料
中のカルシウム量を求めた。尚、測定装置は日立717
0形自動分析装置を使用し、測定波長は、主波長405
nm、副波長546nmとし、測定温度は37℃で実施
した。
14日間保存し、調製直後とあわせて、実施例2と同様
に高値直線性を検討した。
おいて顕著にそり上がっているのに対し、実施例2では
ほとんどそり上りがなく、良好な直線性が得られ安定性
が良好であることが確認された。
として、(ア)5−ブロモ−5−ニトロ−1,3ジオキ
サン、(イ)2−クロロアセトアミド、(ウ)2−ヒド
ロキシピリジン−N−オキサイド、(エ)イミダゾリジ
ニルウレア、(オ)N−メチルイソチアゾロン、(カ)
5−クロロ−2−メチル−4−イソチアゾリン−3−オ
ン、(キ)N−エチルマレイミドを各々0.05%添加
した7試薬、及び(ク)α−アミラーゼに対し阻害活性
を有する物質を含有しない試薬の計8種のカルシウム測
定試薬を調製し、各試薬にヒト唾液由来α−アミラーゼ
を試薬中で3IU/Lになるように混入させ、35℃で
14日間保存した。また、各試薬ともα−アミラーゼ未
混入の試薬について同様に保存した。測定は実施例2の
カルシウム量の測定方法に従い、試料として精製水を測
定して、調製直後35℃で5,10,14日の試薬の初
期吸光度(精製水を測定したときの測光開始ポイントの
吸光度)を求めた。結果を表2に示す。
薬を調製して、実施例3と同様の用法で同様の試料を測
定し、調製直後35℃で5,10,14日の試薬の初期
吸光度を求めた。結果を表2に示す。
混入試薬の初期吸光度が未混入試薬に対し明らかに上昇
しているのに対し、実施例3においてはいずれの試薬に
関しても初期吸光度の上昇が抑えられる。なかでも、第
一試薬にさらにα−アミラーゼに対し阻害活性を有する
物質を含有する試薬において初期吸光度の上昇が顕著に
改善されることが確認された。
保存し、調製直後より1、4、7日後の試薬を用い、実
施例2と同様の測定方法に従い、試料として精製水、1
0mg/dl標準液及び市販管理血清モニトロールI
X、モニトロールIIXを測定し、10mg/dl標準
液感度、血清値の経日変化を調製直後を対照に相対値
(%)を求めた。結果を表3、4に示す。
と同様の検討を行った。結果を表3、4に示す。 (1)第一試薬組成 トリス−塩酸緩衝液(pH7.1) 50mM NaCl 200mM 1,2−ビス(o−アミノフェノキシ)エタン四酢酸 0.8mM ガラクトシルマルトース 2.3mM ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル 0.05% 2−ヒドロキシピリジン−N−オキサイド 0.05% 不活性化型α−アミラーゼ(ブタ膵臓由来) 2.1IU/ml (2)第二試薬組成 グッド緩衝液(pH6.5) 300mM NaCl 200mM ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル 0.05% 2−クロロ−4−ニトロフェニル−4−o−β−D−ガラクトピラノシル−α −マルトシド 1.8mM
と同様の検討を行った。結果を表3、4に示す。
と同様の検討を行った。結果を表3、4に示す。
日変化では比較例4と実施例4、比較例5と実施例5の
比較において実施例4、5の40℃保存経日後の感度低
下が小さいことがわかった。また実施例4と5の比較よ
りブタ膵臓由来α−アミラーゼよりも人唾液由来を用い
た試薬の感度低下が小さく、保存安定性が優れているこ
とがわかった。また、表4より、血清値の経日変化では
比較例4、5においてモニトロールIXの相対値(%)
に低下傾向がみられ、モニトロールIIXに上昇傾向が
みられるのに対し、実施例4、5ではほとんど変動はみ
られなかった。
測定用試薬組成物は、測定試薬を2試薬の構成とし、安
定性不良に起因するキレート剤と電解質により可逆的に
再活性化する不活性化型α−アミラーゼとを別々に処方
することにより、従来のような安定化剤をむやみに使用
することなく低温から実使用レベルである室温での長期
的な溶液安定性が得られる。さらに、2試薬の構成を少
なくとも第一試薬において(a)α−アミラーゼ基質お
よび(b)キレート剤、第二試薬において(c)電解質
により可逆的に再活性化する不活性化型α−アミラ−ゼ
を含有する構成とし、さらに第一試薬において(d)α
−アミラーゼに対し阻害活性を有する物質を含有するこ
とにより、混入α−アミラーゼの影響を回避できること
から、安定性、正確性および定量性に優れた電解質測定
用試薬組成物を提供することができる。
日間保存した試薬を用いて〜50mg/dlのカルシウ
ム水溶液10水準を測定した結果を、X軸に希釈水準、
Y軸にカルシウム濃度(mg/dl)でプロットした図
である。
日間保存した試薬を用いて〜50mg/dlのカルシウ
ム水溶液10水準を測定した結果を、X軸に希釈水準、
Y軸にカルシウム濃度(mg/dl)でプロットした図
である。
Claims (9)
- 【請求項1】 α−アミラーゼを用いた2試薬からなる
電解質測定用試薬組成物において、電解質により可逆的
に再活性化する不活性化型α−アミラーゼとキレート剤
を別々に処方することを特徴とする電解質測定用試薬組
成物。 - 【請求項2】 第一試薬において(a)α−アミラーゼ
基質および(b)キレート剤を含有し、かつ第二試薬に
おいて(c)電解質により可逆的に再活性化する不活性
化型α−アミラ−ゼを含有するように処方された請求項
1記載の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項3】 第一試薬において(d)α−アミラーゼ
に対し阻害活性を有する物質を含有する請求項1または
2に記載の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項4】 α−アミラーゼ基質が2−クロロ−4−
ニトロフェニル−4−o−β−D−ガラクトピラノシル
−α−マルトシドである請求項1〜3のいずれかに記載
の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項5】 α−アミラーゼに対し阻害活性を有する
物質が、5−ブロモ−5−ニトロ−1,3−ジオキサ
ン、2−クロロアセトアミド、2−ヒドロキシピリジン
−N−オキサイド、イミダゾリジニルウレア、N−メチ
ルイソチアゾロン、5−クロロ−2−メチル−4−イソ
チアゾリン−3−オンおよびN−エチルマレイミドより
なる群から選ばれた少なくとも1種類である請求項1〜
4のいずれかに記載の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項6】 キレート剤が1,2−ビス(o−アミノ
フェノキシ)エタン四酢酸である請求項1〜5のいずれ
かに記載の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項7】 第一試薬がpH7以上であり、かつ第二
試薬がpH6〜7である請求項1〜6のいずれかに記載
の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項8】 電解質がカルシウムイオンである請求項
1〜7のいずれかに記載の電解質測定用試薬組成物。 - 【請求項9】 電解質が塩素イオンである請求項1〜7
のいずれかに記載の電解質測定用試薬組成物。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34062099A JP4022799B2 (ja) | 1998-12-11 | 1999-11-30 | 電解質測定用試薬組成物 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10-353267 | 1998-12-11 | ||
| JP35326798 | 1998-12-11 | ||
| JP34062099A JP4022799B2 (ja) | 1998-12-11 | 1999-11-30 | 電解質測定用試薬組成物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2000228997A true JP2000228997A (ja) | 2000-08-22 |
| JP4022799B2 JP4022799B2 (ja) | 2007-12-19 |
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ID=26576754
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP34062099A Expired - Fee Related JP4022799B2 (ja) | 1998-12-11 | 1999-11-30 | 電解質測定用試薬組成物 |
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| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4022799B2 (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2006129801A (ja) * | 2004-11-08 | 2006-05-25 | Toyobo Co Ltd | 測定再現性向上方法 |
| JP2006129802A (ja) * | 2004-11-08 | 2006-05-25 | Toyobo Co Ltd | 電解質測定用組成物 |
| JP2006129800A (ja) * | 2004-11-08 | 2006-05-25 | Toyobo Co Ltd | 電解質測定用試薬のα−アミラーゼKm値維持剤 |
| JP2006180742A (ja) * | 2004-12-27 | 2006-07-13 | Toyobo Co Ltd | 電解質測定試薬の定量域拡大方法 |
| JP2007116977A (ja) * | 2005-10-27 | 2007-05-17 | Toyobo Co Ltd | 他測定項目への影響低減方法 |
| JP2014156510A (ja) * | 2013-02-14 | 2014-08-28 | Bridgestone Corp | 変性シリカの製造方法及び変性シリカ |
-
1999
- 1999-11-30 JP JP34062099A patent/JP4022799B2/ja not_active Expired - Fee Related
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