JPH01240187A - 新規ウレアーゼおよびその製造法 - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は酒類の品質改良や、臨床検査等、あるいは食品
中における尿素測定用酵素として有用な新規ウレアーゼ
に関する。
中における尿素測定用酵素として有用な新規ウレアーゼ
に関する。
従来の技術
ウレアーゼ(E、C,3,5,1,5)は尿素をアンモ
ニアと炭酸ガスに分解する酵素であり、植物、動物、微
生物など広く自然界に分布、存在しているが、ナクマメ
やバチルス・バストウリのウレアーゼが工業的に製造さ
れ、実用に供されているほか、コリネバクテリウム・リ
リウム、ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス、アー
スロバフタ−・バラフィネウス、プロテウス・ブルガリ
ス、ミクロバクテリウム・アンモニアゲネスム、ボルデ
テラ・ブロンチセブチカに属する菌株が産生ずる分子量
的440,000のウレアーゼ(特公昭6O−5511
9)、およびバチルス・エスピーU R−155株が産
生ずる分子量的440.00 (1)ウレアーゼ(特開
昭59−17987)、およびシュードモナス・エルギ
ノサおよびノカルデイア・エリスロポリスが産生ずる分
子量的280.000のウレアーゼ(特開昭6l−25
7183)などが知られている。
ニアと炭酸ガスに分解する酵素であり、植物、動物、微
生物など広く自然界に分布、存在しているが、ナクマメ
やバチルス・バストウリのウレアーゼが工業的に製造さ
れ、実用に供されているほか、コリネバクテリウム・リ
リウム、ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス、アー
スロバフタ−・バラフィネウス、プロテウス・ブルガリ
ス、ミクロバクテリウム・アンモニアゲネスム、ボルデ
テラ・ブロンチセブチカに属する菌株が産生ずる分子量
的440,000のウレアーゼ(特公昭6O−5511
9)、およびバチルス・エスピーU R−155株が産
生ずる分子量的440.00 (1)ウレアーゼ(特開
昭59−17987)、およびシュードモナス・エルギ
ノサおよびノカルデイア・エリスロポリスが産生ずる分
子量的280.000のウレアーゼ(特開昭6l−25
7183)などが知られている。
発明が解決しようとする課題
上記のウレアーゼはいずれも、反応の至適pHが中性乃
至アルカリ性に存在し、酸性側では酵素が不安定で失活
しやすいばかりでなく、反応が極めて進行しにくく、と
くに反応温度が室温以上の場合や、アルコールなどの有
機溶媒を含む反応液中での失活が著しいなどの難点があ
る。
至アルカリ性に存在し、酸性側では酵素が不安定で失活
しやすいばかりでなく、反応が極めて進行しにくく、と
くに反応温度が室温以上の場合や、アルコールなどの有
機溶媒を含む反応液中での失活が著しいなどの難点があ
る。
課題を解決するための手段
本発明者らは、至適palが酸性域にあり、安定性の優
れたウレアーゼを産生ずる微生物を鋭意検索した結果、
ラクトバチルス属またはストレフトコッカス属に属する
菌株がその菌体内に、目的とするウレアーゼを蓄積して
いることを見出し、さらに該酵素を単離、精製して研究
を重ねた結果、本発明を完成するに至った。すなわち、
本発明は[1]次の理化学的性質を有する酸性域に至適
pHをもつ新規ウレアーゼ(以下、単に酸性ウレアーゼ
と称することがある)。
れたウレアーゼを産生ずる微生物を鋭意検索した結果、
ラクトバチルス属またはストレフトコッカス属に属する
菌株がその菌体内に、目的とするウレアーゼを蓄積して
いることを見出し、さらに該酵素を単離、精製して研究
を重ねた結果、本発明を完成するに至った。すなわち、
本発明は[1]次の理化学的性質を有する酸性域に至適
pHをもつ新規ウレアーゼ(以下、単に酸性ウレアーゼ
と称することがある)。
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する、(2)基質特異性 尿素に最もよく作用する、 (3)至適p)lおよびp)(安定性 至適叶17!l(1,5乃至5.5であり、37℃、3
0分処理ではpH6乃至8の範囲で安定である、(4)
至適温度および温度安定性 至ipHにおける至適温度が55℃乃至75℃であり、
pH6では、30分処理で50℃まで安定である、 (5)阻害剤 塩化第二水銀およびアセトヒドロキサム酸によって阻害
される、 (6)分子量 ゲルろ過法で測定した分子量は、1o万乃至25万であ
る、 (7)至適pHおよび37℃における比活性が2、OU
/mgたん白質以上である、 および[■]ラクトバチルス属またはストレフトコッカ
ス属に属する上記ウレアーゼ生産菌を培地に培養し、培
養物中に上記ウレアーゼを生成蓄積せしめ、これを採取
することを特徴とする上記ウレアーゼの製造法である。
1モルの炭酸ガスを生成する、(2)基質特異性 尿素に最もよく作用する、 (3)至適p)lおよびp)(安定性 至適叶17!l(1,5乃至5.5であり、37℃、3
0分処理ではpH6乃至8の範囲で安定である、(4)
至適温度および温度安定性 至ipHにおける至適温度が55℃乃至75℃であり、
pH6では、30分処理で50℃まで安定である、 (5)阻害剤 塩化第二水銀およびアセトヒドロキサム酸によって阻害
される、 (6)分子量 ゲルろ過法で測定した分子量は、1o万乃至25万であ
る、 (7)至適pHおよび37℃における比活性が2、OU
/mgたん白質以上である、 および[■]ラクトバチルス属またはストレフトコッカ
ス属に属する上記ウレアーゼ生産菌を培地に培養し、培
養物中に上記ウレアーゼを生成蓄積せしめ、これを採取
することを特徴とする上記ウレアーゼの製造法である。
本発明のウレアーゼの製造に使用される微生物としては
、ラクトバチルス属またはストレフトコッカス属に属す
る酸性ウレアーゼ産生菌があげられる。さらに具体的に
はラフトノ(チルス・ファーメンタム (Lactob
acillus rermentum) J CM5
867(IFO14511,FEr(M P−899
0)、t、actobacillus 「erme
r+tum J CM 586B(IFO1451
2,FERMP−8991)、 Lactobacil
lus fermentumJCM 5869([
FO14513,FERMP−8992)、ラクトバチ
ルス・リウテリイ(Lactobacillus r
euteri)UM−12(IFO14629、FFR
M P−9456)、Lactobacillus
reuteri u M −18(I F 014
630、FERM P−9457)、Lactoba
cillus reuteri Rt−5(IFO
14631゜F E RM P 945 B )、
ラクトバチルス・ルミニス(Lactobacillu
s ruminis) P C−98(IPo 1
4632、FERM P−9459)、ストレプトコ
ッカス・ミチオール(Streptococcusmi
tior)PC−154(IFo 14633、FE
rlM P−9460)、ストレプトコッカス・ボビ
ス(Streptococcus bovis) P
G −186(IFO14634、FERM P−
9461)あるいはストレプトコッカス・サリバリウス
(Streptococcus 5alivariu
s) P C−303W(IPo 14746)など
が例示される。上記のIFO番号は、財団法人発酵研究
所 (Institure For Fermenta
tion、 0saka; I FO)における受託
番号を、またFERM P番号は通商産業省工業技術
院微生物工業技術研究所(FRI)における受託番号を
それぞれ示す。
、ラクトバチルス属またはストレフトコッカス属に属す
る酸性ウレアーゼ産生菌があげられる。さらに具体的に
はラフトノ(チルス・ファーメンタム (Lactob
acillus rermentum) J CM5
867(IFO14511,FEr(M P−899
0)、t、actobacillus 「erme
r+tum J CM 586B(IFO1451
2,FERMP−8991)、 Lactobacil
lus fermentumJCM 5869([
FO14513,FERMP−8992)、ラクトバチ
ルス・リウテリイ(Lactobacillus r
euteri)UM−12(IFO14629、FFR
M P−9456)、Lactobacillus
reuteri u M −18(I F 014
630、FERM P−9457)、Lactoba
cillus reuteri Rt−5(IFO
14631゜F E RM P 945 B )、
ラクトバチルス・ルミニス(Lactobacillu
s ruminis) P C−98(IPo 1
4632、FERM P−9459)、ストレプトコ
ッカス・ミチオール(Streptococcusmi
tior)PC−154(IFo 14633、FE
rlM P−9460)、ストレプトコッカス・ボビ
ス(Streptococcus bovis) P
G −186(IFO14634、FERM P−
9461)あるいはストレプトコッカス・サリバリウス
(Streptococcus 5alivariu
s) P C−303W(IPo 14746)など
が例示される。上記のIFO番号は、財団法人発酵研究
所 (Institure For Fermenta
tion、 0saka; I FO)における受託
番号を、またFERM P番号は通商産業省工業技術
院微生物工業技術研究所(FRI)における受託番号を
それぞれ示す。
上記のLactobacillus ferment
um J CM5867(I FO14511)、L
actobacillusrermentum JCM
5868(IFOl 4512)およびLactob
acillus fermentum J CM5
869(IFO14513)は財団法人発酵研究所発行
の「リサーチ・コミュニイケーションズ(RESEAR
CHCOMMUNICATIONS) No、 13
、第94頁、1987Jに掲載されている公知菌株であ
る。
um J CM5867(I FO14511)、L
actobacillusrermentum JCM
5868(IFOl 4512)およびLactob
acillus fermentum J CM5
869(IFO14513)は財団法人発酵研究所発行
の「リサーチ・コミュニイケーションズ(RESEAR
CHCOMMUNICATIONS) No、 13
、第94頁、1987Jに掲載されている公知菌株であ
る。
なお、上記の各微生物のFRIへの寄託はブダベスト条
約に基づく寄託に切り替えられて、次の受託番号(FE
RM BP番号で同研究所に保管されている。
約に基づく寄託に切り替えられて、次の受託番号(FE
RM BP番号で同研究所に保管されている。
なお、5treptococcus sal+var
ius P G −303Wは1988年4月14日に
FRIへFERM BP−1856として寄託されて
いる。
ius P G −303Wは1988年4月14日に
FRIへFERM BP−1856として寄託されて
いる。
Lactobacillus reutert U
M−12。
M−12。
LactobactLlus reutert (
J M 1 B 。
J M 1 B 。
Lactobacillus reuteri R
t −5およびL actobaci口us rum
inis P G −98の各菌学的性質は次のとお
りである。
t −5およびL actobaci口us rum
inis P G −98の各菌学的性質は次のとお
りである。
細胞の形状 短桿菌 短桿菌
短桿菌運動性 −−− 胞子形成能 −−− グラム染色性 + +
+酸素要求性 微好気性 微好気性
通性嫌気性酸化・発酵テスト 発酵
発酵 発酵カタラーゼ −−− オキシダーゼ − −−硝酸還
元性 −−− ゼラチン液化性 −−− 澱粉の加水分解 −−− エスクリンの分解 −−− Mftテスト + +
+VPテスト − −−
イ8ンドールの生成 −−− 硫化水素の生成 −−− アルギニンからのNl+、生成 十 +
+リドマスミルクの反応 酸形成 酸形
成 酸形成グルコースからのガス生成 +
+ +生育至適温度(’C)
25〜4530〜4525〜4545℃における生育
十 半 +15℃における生
育 −−− pt−r4.oにおける生育 + +
+pH9,6における生育 −−− 3%食塩における生育 + −+6.5
%食塩における生育 −−− 酸の生成 アドニトール − −−アラビノ
ース 十 −−アラビトール
− −−アルブチン
−−− セロビオース −−− ダルシトール −−− フラクトース −−− ガラクトース + +
+グルシコン酸 + +
十グルコース + +
+グリセロール −
−−イノシトール −−− イヌリン −−− ラクトース + 十
−マルトース + +4−マン
ニトール − −−マンノース
− −メレッツイトース
−−− メリビオース + +
+α−メチルグルコシド − −−ラフィ
ノース + + +ラム
ノース − −−リボース
+ −+(微弱)サリンン
− −−ソルビトール
−− ソルボース −−− スターチ − −シュークロ
ース + −1−+トレハロース
−− キシロース + −−キンリト
ール − −栄養要求性 ナイアシン + +
↓チアミン + +
+塩化コリン +
−リボフラビン + −
パントテン酸カルンウム + +
+ピリドキサール − +
−低酸
−DNAのCCC10%)39.11 4
0.7 40.3ペブヂドグリカンの型 L
ys L ys L ysA s
p A sp A spA la
A la A 1aLactoba
cillus ruffi[nis P G −9
8の菌学的性質は次のとおりである。
短桿菌運動性 −−− 胞子形成能 −−− グラム染色性 + +
+酸素要求性 微好気性 微好気性
通性嫌気性酸化・発酵テスト 発酵
発酵 発酵カタラーゼ −−− オキシダーゼ − −−硝酸還
元性 −−− ゼラチン液化性 −−− 澱粉の加水分解 −−− エスクリンの分解 −−− Mftテスト + +
+VPテスト − −−
イ8ンドールの生成 −−− 硫化水素の生成 −−− アルギニンからのNl+、生成 十 +
+リドマスミルクの反応 酸形成 酸形
成 酸形成グルコースからのガス生成 +
+ +生育至適温度(’C)
25〜4530〜4525〜4545℃における生育
十 半 +15℃における生
育 −−− pt−r4.oにおける生育 + +
+pH9,6における生育 −−− 3%食塩における生育 + −+6.5
%食塩における生育 −−− 酸の生成 アドニトール − −−アラビノ
ース 十 −−アラビトール
− −−アルブチン
−−− セロビオース −−− ダルシトール −−− フラクトース −−− ガラクトース + +
+グルシコン酸 + +
十グルコース + +
+グリセロール −
−−イノシトール −−− イヌリン −−− ラクトース + 十
−マルトース + +4−マン
ニトール − −−マンノース
− −メレッツイトース
−−− メリビオース + +
+α−メチルグルコシド − −−ラフィ
ノース + + +ラム
ノース − −−リボース
+ −+(微弱)サリンン
− −−ソルビトール
−− ソルボース −−− スターチ − −シュークロ
ース + −1−+トレハロース
−− キシロース + −−キンリト
ール − −栄養要求性 ナイアシン + +
↓チアミン + +
+塩化コリン +
−リボフラビン + −
パントテン酸カルンウム + +
+ピリドキサール − +
−低酸
−DNAのCCC10%)39.11 4
0.7 40.3ペブヂドグリカンの型 L
ys L ys L ysA s
p A sp A spA la
A la A 1aLactoba
cillus ruffi[nis P G −9
8の菌学的性質は次のとおりである。
細胞の形状 短桿菌運動性
−胞子形成能
−ダラム染色性
十酸素要求性 微好気性酸
化・発酵テスト 発酵発酵型式
ホモL−乳酸カタラーゼ
−オキシダーゼ
−硝酸還元性 −ゼラ
ヂン液化性 −澱粉の加水分解
+(微弱)エスクリンの分解
+Illテスト
+(微弱)VPテスト −
インドールの生成 −硫化水素の生
成 −アルギニンからのNi1.
生成 −リドマスミルクの反応
不変グルコースからのガス生成 −生育
至適温度 ”C30〜37 45℃における生育 =15℃におけ
る生育 −pH4,0における生育
−pH9,6における生育
−3%食塩における生育 −6,5
%食塩における生育 −α−へモリシス
−β−へモリシス
−酸の生成 アドニトール −アラビノース
−アラビトール
− アルブミン −セロビオース
+ダルノトール
−フラクトース +ガ
ラクトース +グルコン酸
−グルコース
+グリセロール − イノシトール −イヌリン
−ラクトース
−マルトース +マンニ
トール −マンノース
+メレチトース
−メリビオース −α−メチル
グリコシド −ラフイノース
+ラムノース −
リボース −サリンン
+ソルビトール
−ソルボース −スター
チ 十ン二一クロース
+トレハロース
−キシロース −キンリト
ール −DNAのGC含It(%
) 45.6ペプチドグリカンの型
−一〇APla 上記のストレプトコッカス・ミチオールPC−154、
ストレプトコッカス・ボビスpc−ts6およびストレ
プトコッカス・サリバリウスPC−303Wは以下の菌
学的性質を有する。
−胞子形成能
−ダラム染色性
十酸素要求性 微好気性酸
化・発酵テスト 発酵発酵型式
ホモL−乳酸カタラーゼ
−オキシダーゼ
−硝酸還元性 −ゼラ
ヂン液化性 −澱粉の加水分解
+(微弱)エスクリンの分解
+Illテスト
+(微弱)VPテスト −
インドールの生成 −硫化水素の生
成 −アルギニンからのNi1.
生成 −リドマスミルクの反応
不変グルコースからのガス生成 −生育
至適温度 ”C30〜37 45℃における生育 =15℃におけ
る生育 −pH4,0における生育
−pH9,6における生育
−3%食塩における生育 −6,5
%食塩における生育 −α−へモリシス
−β−へモリシス
−酸の生成 アドニトール −アラビノース
−アラビトール
− アルブミン −セロビオース
+ダルノトール
−フラクトース +ガ
ラクトース +グルコン酸
−グルコース
+グリセロール − イノシトール −イヌリン
−ラクトース
−マルトース +マンニ
トール −マンノース
+メレチトース
−メリビオース −α−メチル
グリコシド −ラフイノース
+ラムノース −
リボース −サリンン
+ソルビトール
−ソルボース −スター
チ 十ン二一クロース
+トレハロース
−キシロース −キンリト
ール −DNAのGC含It(%
) 45.6ペプチドグリカンの型
−一〇APla 上記のストレプトコッカス・ミチオールPC−154、
ストレプトコッカス・ボビスpc−ts6およびストレ
プトコッカス・サリバリウスPC−303Wは以下の菌
学的性質を有する。
分 離 源 ブタ空腸 ブタ結腸
ブタ空腸細胞の形状 球 閑 球
菌 球 菌(0,8〜1.OX (0,
8〜t、ox (o、8〜1.0×0.8−1.0μ
s) 0.8〜14μs) 0.11−1.0
μs)短鎖状 短鎖状 短鎖状 運動性 −−− 胞子形成能 −−− グラム染色性 + +
+酸素要求性 通性嫌気性 通性
嫌気性 通性峰気性酸化・発酵テスト 発
酵 発 酵 発 酵発酵型式
ホモL−乳酸 ホモL−乳酸 ホモし一乳酸カタ
ラーゼ −−− オキンダーゼ −−− 硝酸還元性 −−− ゼラチン液化性 −−− 椴松の加水分解 −十(微弱)
+エスクリンの分解 −−+ MRテスト + +
+VPテスト +(微弱)+(
微弱) +インドールの生成 −−
NDアルギニンからのIl[1,生成 −−−リド
マスミルクの反応 酸(微弱) 酸(微弱)
NDグルコースらのガス生成 −−ND生
生育適過温度’c an〜3725〜373
0〜3745℃における生育 −−−15℃
における生育 −−−pH4,0における生
育 −−NDpH9,6における生育 −−− 4%食塩における生育 −−− 6,5%食塩における生育 −−− 40%机汁寒天での生育 +(微弱)+(微弱)
+ムコイド生育(シェークロース 培地)−m− a−へモリシス −十(微弱)+(微弱
)β−へモリシス − −
−酸の生成 アドニトール N I) N
D −アラビノース −−− アルブチン +(微弱)
+セロビオース +
+フラクトース + +
ガラクトース + +
+グルコノ酸 −−− グルコース + +グリセ
ロール − −−イノシトール
− −NDエスクリン
− −−ラクトース
+ + +マルトース
+ + 十マ
ンニトール − −−マンノー
ス +
+メレチトース −−− メリビオース − −−ラフ
ィノース + −ラムノース
−−− リボース −−− サリノン + +
+ソルビトール −−− ンユークロース + +
+トレハc1−ス −
−+キンロース −−− キノリトール ND ND
−上表中、Lys、 Asp、 Alal(
du、 Orn、 Ser、m −D A Pはそれぞ
れリジン、アスパラギン酸、アラニン、グルタミン酸、
オルニチン、セリン、メソジアミノピメリン酸を表わす
。また、“ND“は実験を実施していないことを示す。
ブタ空腸細胞の形状 球 閑 球
菌 球 菌(0,8〜1.OX (0,
8〜t、ox (o、8〜1.0×0.8−1.0μ
s) 0.8〜14μs) 0.11−1.0
μs)短鎖状 短鎖状 短鎖状 運動性 −−− 胞子形成能 −−− グラム染色性 + +
+酸素要求性 通性嫌気性 通性
嫌気性 通性峰気性酸化・発酵テスト 発
酵 発 酵 発 酵発酵型式
ホモL−乳酸 ホモL−乳酸 ホモし一乳酸カタ
ラーゼ −−− オキンダーゼ −−− 硝酸還元性 −−− ゼラチン液化性 −−− 椴松の加水分解 −十(微弱)
+エスクリンの分解 −−+ MRテスト + +
+VPテスト +(微弱)+(
微弱) +インドールの生成 −−
NDアルギニンからのIl[1,生成 −−−リド
マスミルクの反応 酸(微弱) 酸(微弱)
NDグルコースらのガス生成 −−ND生
生育適過温度’c an〜3725〜373
0〜3745℃における生育 −−−15℃
における生育 −−−pH4,0における生
育 −−NDpH9,6における生育 −−− 4%食塩における生育 −−− 6,5%食塩における生育 −−− 40%机汁寒天での生育 +(微弱)+(微弱)
+ムコイド生育(シェークロース 培地)−m− a−へモリシス −十(微弱)+(微弱
)β−へモリシス − −
−酸の生成 アドニトール N I) N
D −アラビノース −−− アルブチン +(微弱)
+セロビオース +
+フラクトース + +
ガラクトース + +
+グルコノ酸 −−− グルコース + +グリセ
ロール − −−イノシトール
− −NDエスクリン
− −−ラクトース
+ + +マルトース
+ + 十マ
ンニトール − −−マンノー
ス +
+メレチトース −−− メリビオース − −−ラフ
ィノース + −ラムノース
−−− リボース −−− サリノン + +
+ソルビトール −−− ンユークロース + +
+トレハc1−ス −
−+キンロース −−− キノリトール ND ND
−上表中、Lys、 Asp、 Alal(
du、 Orn、 Ser、m −D A Pはそれぞ
れリジン、アスパラギン酸、アラニン、グルタミン酸、
オルニチン、セリン、メソジアミノピメリン酸を表わす
。また、“ND“は実験を実施していないことを示す。
上記の菌学的諸性質をもとに、パーツエイズ・マニュア
ル・オブ・システマティック・バクテリオロジイ・ボリ
ューム2(198G)によって、その分類学的位置を調
べるとUM−12株はフラクトース、片−シロースから
の酸の生成がそれぞれ陰性、陽性である点で、また、t
JM−18株およびRt−5味はアラビノース、フラク
トース、リボースからの酸生成が陰性(ただしrtt−
5株はリボース微陽性)である点でやや異なっているも
のの、3株ともLactobacillus reu
terlとするのが適切である。
ル・オブ・システマティック・バクテリオロジイ・ボリ
ューム2(198G)によって、その分類学的位置を調
べるとUM−12株はフラクトース、片−シロースから
の酸の生成がそれぞれ陰性、陽性である点で、また、t
JM−18株およびRt−5味はアラビノース、フラク
トース、リボースからの酸生成が陰性(ただしrtt−
5株はリボース微陽性)である点でやや異なっているも
のの、3株ともLactobacillus reu
terlとするのが適切である。
なお、UM−12殊とnt−5株は生育温度および栄養
要求性の点で異なるので、互いにその変種と考えられる
。P(、−98株はLactobac i l lus
ruminisとほぼ一致する。また、PG−154株
はα−へモリシスが陰性であり、ソルビトールの発酵性
が陽性である点が異なるものの 5treptococcus m1tiorとするの
が適切であり、PC−186株はエスクリンの加水分解
が陰性である点が異なるものの、5treptococ
cus bovisとするのが適切である。またPG
−303W株は5treptococcus 5al
ivariusとするのが適切である。
要求性の点で異なるので、互いにその変種と考えられる
。P(、−98株はLactobac i l lus
ruminisとほぼ一致する。また、PG−154株
はα−へモリシスが陰性であり、ソルビトールの発酵性
が陽性である点が異なるものの 5treptococcus m1tiorとするの
が適切であり、PC−186株はエスクリンの加水分解
が陰性である点が異なるものの、5treptococ
cus bovisとするのが適切である。またPG
−303W株は5treptococcus 5al
ivariusとするのが適切である。
これらの微生物菌株を培養して酸性ウレアーゼを蓄積さ
せるには、通常の静(4培養、振盪培養、通気攪拌培養
あるいは固体培養などを連続的あるいは間欠的に行なう
ことによって達成されるが、とりわけ静置培養が望まし
い。用いる培地は、使用する微生物の生育しうる通常の
組成のものでよく、炭素源には炭水化物、油脂、詣肪酸
、有機酸あるいはアルコール類などのなかから資化しう
るちのを適宜選択し、単独または混合して使用される。
せるには、通常の静(4培養、振盪培養、通気攪拌培養
あるいは固体培養などを連続的あるいは間欠的に行なう
ことによって達成されるが、とりわけ静置培養が望まし
い。用いる培地は、使用する微生物の生育しうる通常の
組成のものでよく、炭素源には炭水化物、油脂、詣肪酸
、有機酸あるいはアルコール類などのなかから資化しう
るちのを適宜選択し、単独または混合して使用される。
また窒素源には例えばペプトン、大豆粉、綿実粉、コー
ンステイープリカー、酵母エキス、肉エキス、麦芽エキ
ス、ホエーなどの有機窒素源のほか、硫安、塩安、硝安
、燐安などの無機窒素源が必要に応じて、適宜混合して
または単独で用いられろ。培地には炭素源、窒素源のほ
か生育や醪素形成に必要なミネラル、アミノ酸あるいは
ビタミンなどの必須因子や促進物質を添加するのがよい
。さらに酸性ウレアーゼの生成を誘導するために尿素、
チオ尿素などを添加することもある。培養中のpHおよ
び泡の管理の目的で苛性アルカリ液、炭酸ナトリウム液
、カルシウム塩類を適宜補添したり、消泡剤の添加も有
効である。
ンステイープリカー、酵母エキス、肉エキス、麦芽エキ
ス、ホエーなどの有機窒素源のほか、硫安、塩安、硝安
、燐安などの無機窒素源が必要に応じて、適宜混合して
または単独で用いられろ。培地には炭素源、窒素源のほ
か生育や醪素形成に必要なミネラル、アミノ酸あるいは
ビタミンなどの必須因子や促進物質を添加するのがよい
。さらに酸性ウレアーゼの生成を誘導するために尿素、
チオ尿素などを添加することもある。培養中のpHおよ
び泡の管理の目的で苛性アルカリ液、炭酸ナトリウム液
、カルシウム塩類を適宜補添したり、消泡剤の添加も有
効である。
培養の温度は、用いる微生物の生育に適した温度を遣損
すればよく、通常15℃乃至55°C1好ましくは25
℃乃至45℃で培養するのが有利である。また培養の時
間は、用いる微生物の生育および酸性ウレアーゼの生成
に十分な時間続行されるが、通常5乃至120時間を要
する。
すればよく、通常15℃乃至55°C1好ましくは25
℃乃至45℃で培養するのが有利である。また培養の時
間は、用いる微生物の生育および酸性ウレアーゼの生成
に十分な時間続行されるが、通常5乃至120時間を要
する。
このようにして培養後、酸性ウレアーゼは通常、微生物
菌体に含有されている。そこで、培養液から遠心分離、
沈降分離、凝集分離、多孔性膜や高分子膜、セラミック
膜などによるろ過などの方法によって集菌された生菌体
を、凍結融解処理、磨砕処理、超音波処理、浸透圧処理
、細胞壁膜の溶解処理、界面活性剤処理などの方法を単
独もしくは組み合わ仕て行なうことによって、該酵素を
可溶化し、プロタミン処理、塩析、有機溶媒処理、等重
点沈殿、電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、ゲ
ルろ過、アフィニティークロマトグラフィー、品出など
の通常の酵素の精製手段を適宜組み合わせることによっ
て、蛋白質的に単一な酵素標品を得ることができる。
菌体に含有されている。そこで、培養液から遠心分離、
沈降分離、凝集分離、多孔性膜や高分子膜、セラミック
膜などによるろ過などの方法によって集菌された生菌体
を、凍結融解処理、磨砕処理、超音波処理、浸透圧処理
、細胞壁膜の溶解処理、界面活性剤処理などの方法を単
独もしくは組み合わ仕て行なうことによって、該酵素を
可溶化し、プロタミン処理、塩析、有機溶媒処理、等重
点沈殿、電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、ゲ
ルろ過、アフィニティークロマトグラフィー、品出など
の通常の酵素の精製手段を適宜組み合わせることによっ
て、蛋白質的に単一な酵素標品を得ることができる。
酵素活性測定法
本願明細書において、ウレアーゼ活性は、37℃、pH
4,0において次のように測定した。適宜に希釈した酵
素液2Mlを37℃で正確に5分間加温する。この液に
37℃に加温した基質溶液2−を加えて振りまぜ、37
°Cで正確に30分間反応させる。反応終了後、直ちに
10%トリクロル酢酸4−を加え、振りまぜた後、遠心
分離(g、oo。
4,0において次のように測定した。適宜に希釈した酵
素液2Mlを37℃で正確に5分間加温する。この液に
37℃に加温した基質溶液2−を加えて振りまぜ、37
°Cで正確に30分間反応させる。反応終了後、直ちに
10%トリクロル酢酸4−を加え、振りまぜた後、遠心
分離(g、oo。
rpm、 5分間)し、その上清液2−をとり水を加え
て20dとする。この液4dに、発色液A液を2d加え
、静かに混和する。続いて発色液BK!i、を2戒加え
、同様に静かに混和した後、37℃で30分間反応させ
る。次に、室温で、640nmの吸光度を、水を対照液
として測定する。
て20dとする。この液4dに、発色液A液を2d加え
、静かに混和する。続いて発色液BK!i、を2戒加え
、同様に静かに混和した後、37℃で30分間反応させ
る。次に、室温で、640nmの吸光度を、水を対照液
として測定する。
一方、上記酵素液2dに基質溶液のかわりに、0.2M
クエン酸バッファー2〃Jを加えて振りまぜ、37℃で
正確に30分間反応させた液について、上記と同様に操
作し酵素液空試験とする。
クエン酸バッファー2〃Jを加えて振りまぜ、37℃で
正確に30分間反応させた液について、上記と同様に操
作し酵素液空試験とする。
また、硫酸アンモニウム標準液(50gg/d)2d、
to%トリクロル酢酸l蔵および0.2Mクエン酸バッ
ファー0.5!をとり、水を加えて20滅とし、この液
について上記と同様に発色操作し標へへ液とする。また
、10%トリクロル酢酸1蔵、お上び0,2Mクエン酸
バッファー0.5dをとり、水を加えて20#l12と
し、同様に発色操作し標rIlIS液の空試験とする。
to%トリクロル酢酸l蔵および0.2Mクエン酸バッ
ファー0.5!をとり、水を加えて20滅とし、この液
について上記と同様に発色操作し標へへ液とする。また
、10%トリクロル酢酸1蔵、お上び0,2Mクエン酸
バッファー0.5dをとり、水を加えて20#l12と
し、同様に発色操作し標rIlIS液の空試験とする。
次式により、酵素活性を算出する。
なお、1分間当り1μmolのN tl sを生成する
酵素mを1単位(U)とする。上記測定法中の試薬およ
び試液の調製法は以下のとおりである。基質溶液は尿素
1.0gを0.2Mクエン酸バッファーに溶解し、10
0dとする。10%トリクロル酢酸溶液はトリクロル酢
酸logを水に溶解し、100滅とする。発色液A液(
フェノール・ニトロプルジッドナトリウム溶液)はフェ
ノール5gおよびニトロプルジッドナトリウム25mg
を水に溶解し、500−とする。発色液B液(アルカリ
性次亜塩素酸ソーダ溶液)は水酸化ナトリウム5.0g
および次亜塩素酸ナトリウム溶液(有効塩素濃度5%)
7.5mMを水に溶解し、500成とする。
酵素mを1単位(U)とする。上記測定法中の試薬およ
び試液の調製法は以下のとおりである。基質溶液は尿素
1.0gを0.2Mクエン酸バッファーに溶解し、10
0dとする。10%トリクロル酢酸溶液はトリクロル酢
酸logを水に溶解し、100滅とする。発色液A液(
フェノール・ニトロプルジッドナトリウム溶液)はフェ
ノール5gおよびニトロプルジッドナトリウム25mg
を水に溶解し、500−とする。発色液B液(アルカリ
性次亜塩素酸ソーダ溶液)は水酸化ナトリウム5.0g
および次亜塩素酸ナトリウム溶液(有効塩素濃度5%)
7.5mMを水に溶解し、500成とする。
0.2Mクエン酸バッファーはクエン酸(1水塩)25
.18g、およびクエン酸ナトリウム(2水塩)23.
59gを水に溶解し、1000威とする(pH4,0に
なる。)。硫酸アンモニウム標準液(50gg/+J)
は硫酸アンモニウム250.0mgを正確にとり、水に
溶解して250−とする。この液5−をとり水を加えて
tooyとする。
.18g、およびクエン酸ナトリウム(2水塩)23.
59gを水に溶解し、1000威とする(pH4,0に
なる。)。硫酸アンモニウム標準液(50gg/+J)
は硫酸アンモニウム250.0mgを正確にとり、水に
溶解して250−とする。この液5−をとり水を加えて
tooyとする。
実施例
以下に実施例をもって、本発明の内容を上り具体的に説
明するが、これは本発明の内容を例示するものにすぎず
、本発明の範囲を限定するものではない。
明するが、これは本発明の内容を例示するものにすぎず
、本発明の範囲を限定するものではない。
実施例1
市販CAM半流動培地(日永製薬)に生育した、Lac
tobacillus reuteri Rt−5
(IFO14631、FERM B’P−1=147
)株をグルコース3%、ポリペプトン1.5%、肉エキ
ス1%、酵母エキス0.8%、食塩0.5%、無水酢酸
ナトリウム0.2%、硫酸マンガン(約4水塩)0.0
05%、硫酸ニッケル(6水塩)0.001%、pH7
,0(30%苛性アルカリにて中和)からなる滅菌シー
ド培地50−を含む200蔵容三角フラスコlO本に接
種して、34℃で24時間、静置培養した。このシード
培養物を同じ組成からなる滅菌培地lQを含む、2Q容
三角フラスコ10本にそれぞれに移植し、32℃で2日
間静置培養したところ、21.6U/dの酸性ウレアー
ゼ活性を示す培養液がlOQ得られた。
tobacillus reuteri Rt−5
(IFO14631、FERM B’P−1=147
)株をグルコース3%、ポリペプトン1.5%、肉エキ
ス1%、酵母エキス0.8%、食塩0.5%、無水酢酸
ナトリウム0.2%、硫酸マンガン(約4水塩)0.0
05%、硫酸ニッケル(6水塩)0.001%、pH7
,0(30%苛性アルカリにて中和)からなる滅菌シー
ド培地50−を含む200蔵容三角フラスコlO本に接
種して、34℃で24時間、静置培養した。このシード
培養物を同じ組成からなる滅菌培地lQを含む、2Q容
三角フラスコ10本にそれぞれに移植し、32℃で2日
間静置培養したところ、21.6U/dの酸性ウレアー
ゼ活性を示す培養液がlOQ得られた。
この培養液を遠心分離して菌体を集め、0.05M燐酸
緩衝液(pH7,2)で2回洗浄後、412の0.05
M燐酸媛衝液(pH7,2)、I+nMのEDTAおよ
び1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁し、径0
.1乃至0.2111mのガラスピーズ2Qを加えて菌
体破砕機で450Orpm、20分間処理をした。これ
を遠心分離し、その上清に80%になるようにエタノー
ルを添加して、その沈殿区分を遠心分離によって集め、
ImMのEDTAおよび2メルカプトエタノールを含む
0.05M)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解後
、セファデックスG−100カラム(径7.5cm×長
さ90cm)に吸着し、同緩衝液で溶出し活性区分を集
液した。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデックスC
−200カラム(径4.5cIIlx長さ150cm)
に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区分を集液し、さら
に同様に緩衝化したDEAEセファデックスCL−6B
に吸着させ、0〜0.7M食塩を含む同緩衝液でグラジ
ェント溶出して、活性区分を集液した。この液をアミコ
ン8200型、UK−50膜(分子量カット50,00
0)の限外ろ過器で濃縮し、緩衝液を1mMの2メルカ
プトエタノールを含む0.005M燐酸緩衝液(pl−
17、0)に交換した。次にアフィプレップ10(バイ
オランド社製)とヒドロキシウレアとで作製したアフィ
ニティーゲルクロマト(径4cIII×長さ50cm)
に吸着させ、0.005M−0,044Mの燐酸緩衝液
でグラジェント溶出して活性区分を集め、上記と同じ限
外ろ過器で濃縮、脱塩し、凍結乾燥して精製酵素粉末1
04mgを得た。この粉末の比活性は336.5 U/
mgであり、ポリアクリルアミドゲル電気泳動で単一の
蛋白質のバンドを示した。これらの精製の経過を第1表
に示した。
緩衝液(pH7,2)で2回洗浄後、412の0.05
M燐酸媛衝液(pH7,2)、I+nMのEDTAおよ
び1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁し、径0
.1乃至0.2111mのガラスピーズ2Qを加えて菌
体破砕機で450Orpm、20分間処理をした。これ
を遠心分離し、その上清に80%になるようにエタノー
ルを添加して、その沈殿区分を遠心分離によって集め、
ImMのEDTAおよび2メルカプトエタノールを含む
0.05M)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解後
、セファデックスG−100カラム(径7.5cm×長
さ90cm)に吸着し、同緩衝液で溶出し活性区分を集
液した。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデックスC
−200カラム(径4.5cIIlx長さ150cm)
に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区分を集液し、さら
に同様に緩衝化したDEAEセファデックスCL−6B
に吸着させ、0〜0.7M食塩を含む同緩衝液でグラジ
ェント溶出して、活性区分を集液した。この液をアミコ
ン8200型、UK−50膜(分子量カット50,00
0)の限外ろ過器で濃縮し、緩衝液を1mMの2メルカ
プトエタノールを含む0.005M燐酸緩衝液(pl−
17、0)に交換した。次にアフィプレップ10(バイ
オランド社製)とヒドロキシウレアとで作製したアフィ
ニティーゲルクロマト(径4cIII×長さ50cm)
に吸着させ、0.005M−0,044Mの燐酸緩衝液
でグラジェント溶出して活性区分を集め、上記と同じ限
外ろ過器で濃縮、脱塩し、凍結乾燥して精製酵素粉末1
04mgを得た。この粉末の比活性は336.5 U/
mgであり、ポリアクリルアミドゲル電気泳動で単一の
蛋白質のバンドを示した。これらの精製の経過を第1表
に示した。
第1表
精製操作
総蛋白質 総活性 比活性 収率
(g) (xto’tl) (U/mgたん (%
)エタノール 5.2 157.6
30.3 86.0セファデックスG−1003
,0140,146,776,4セファデックスG−2
001,078,77g、7 42.9DEAEセ
ファロースCL−6B O,3760,7164,0
33,1アフイニテイーゲル 0.IQ 35
.4 354.0 19.3上記の方法で得られた
凍結乾燥品の酸性ウレアーゼの酵素化学的および理化学
的性質は次のとおりである。
)エタノール 5.2 157.6
30.3 86.0セファデックスG−1003
,0140,146,776,4セファデックスG−2
001,078,77g、7 42.9DEAEセ
ファロースCL−6B O,3760,7164,0
33,1アフイニテイーゲル 0.IQ 35
.4 354.0 19.3上記の方法で得られた
凍結乾燥品の酸性ウレアーゼの酵素化学的および理化学
的性質は次のとおりである。
酸性ウレアーゼA:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モル゛の炭酸ガスを生成する。
1モル゛の炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレット、
メチル尿素、アラントイン酸およびアラントインにも若
干作用する。(第2表)基質 相対活
性(%)尿素 100.0アラン
トイン 1.2アラントイン酸
8.8ビウレツト 64
.lメチル尿素 4.9(3)至適
pHおよびpi−1安定性 第1図に示されろように、至Jap I−rは2乃至4
.5である。また、37℃で各p I−1に30分間保
存した場合の残存活性を、第2図に示した。図から明ら
かなように、plT 6乃至8で安定であり、pt12
乃至10の範囲でかなり安定である。
メチル尿素、アラントイン酸およびアラントインにも若
干作用する。(第2表)基質 相対活
性(%)尿素 100.0アラン
トイン 1.2アラントイン酸
8.8ビウレツト 64
.lメチル尿素 4.9(3)至適
pHおよびpi−1安定性 第1図に示されろように、至Jap I−rは2乃至4
.5である。また、37℃で各p I−1に30分間保
存した場合の残存活性を、第2図に示した。図から明ら
かなように、plT 6乃至8で安定であり、pt12
乃至10の範囲でかなり安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第3図に示されるように、至適温度は60℃乃至70℃
である。また、+111−14およびpH6で各温度に
30分間保持した場合の残存活性を、第4図に示した。
である。また、+111−14およびpH6で各温度に
30分間保持した場合の残存活性を、第4図に示した。
図から明らかなように、pH(iでは60℃まで安定で
あり、pH4では60℃までかなり安定である。
あり、pH4では60℃までかなり安定である。
(5)阻害剤
第3表に示されるように、塩化第二水銀、硝酸銀、ヨー
ド酢酸およびアセトヒドロキサム酸によって阻害される
。
ド酢酸およびアセトヒドロキサム酸によって阻害される
。
第3表
なし 100.0AgN O3
0,05mM O,7MgCis
0.05mM O,6ヨード酢酸 1
mM 15.4アセトヒドロ (6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過去で、約220.0
00である。
0,05mM O,7MgCis
0.05mM O,6ヨード酢酸 1
mM 15.4アセトヒドロ (6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過去で、約220.0
00である。
(7)等電点
ポリアクリルアミドゲルを用いた等電点電気泳動法で約
4,7である。
4,7である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定せず。
(1G) Kn+値
Kmfp’iは1.7mM (pl−t 4.0 、
1 Mクエン酸バッファー)。
1 Mクエン酸バッファー)。
実施例2
1、acLobacNlus fermentum
J CM 5867(II;’0 14511.FE
r(M l3P−1454)を実施例1と同様の方法
で培養して得られたシード培逐物をグルコース4%、ポ
リペプトン1.5%、肉エキス1%、酵母エキス0.8
%、食塩0.5%、無水酢酸ナトリウム0.2%、尿素
0.5%、硫酸マンガン(約4水塩)0.05%、硫酸
ニッケル(6水1m)0.002%、硫酸コバルト(7
水塩)0.002%、硫酸第一スズ0.005%、硫酸
ストロンチウム0.001%、pH7,0(30%苛性
アルカリにて中和)からなる滅菌培地IQを含む、2Q
容三角フラスコ10本にそれぞれに移植し、32℃で2
日間静置培養したところ、5.6U/−の酸性ウレアー
ゼ活性を示す培養液が10Q得られた。
J CM 5867(II;’0 14511.FE
r(M l3P−1454)を実施例1と同様の方法
で培養して得られたシード培逐物をグルコース4%、ポ
リペプトン1.5%、肉エキス1%、酵母エキス0.8
%、食塩0.5%、無水酢酸ナトリウム0.2%、尿素
0.5%、硫酸マンガン(約4水塩)0.05%、硫酸
ニッケル(6水1m)0.002%、硫酸コバルト(7
水塩)0.002%、硫酸第一スズ0.005%、硫酸
ストロンチウム0.001%、pH7,0(30%苛性
アルカリにて中和)からなる滅菌培地IQを含む、2Q
容三角フラスコ10本にそれぞれに移植し、32℃で2
日間静置培養したところ、5.6U/−の酸性ウレアー
ゼ活性を示す培養液が10Q得られた。
この培養液を遠心分離して菌体を集め、005M燐酸緩
衝液(pl−17、2)で2回洗浄後、4Qの0.05
M燐酸緩衝液(pH7,2)、1mMのE I) T
Aおよび1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁し
、径0.1乃至0 、2 n+mのガラスピーズ2Qを
加えて菌体破砕機で450Orpm、20分間処理をし
た。これを遠心分離し、その上清に80%になるように
エタノールを添加して、その沈殿区分を遠心分離によっ
て集め、ImMのEDTAおよび2メルカプトエタノー
ルを含む0.05M)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)
に溶解後、セファデックスG−100カラム(径7.5
cn×長さ90cm)に吸着し、同緩衝液で溶出し活性
区分を集液した。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデ
ックスG−200カラム(径4.5cmx長さ150c
m)に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区分を集液し、
さらに同様に緩衝化したDEAEセファデックスA−5
0に吸着させ、0〜0.7Mの食塩を含む同緩衝液でグ
ラジェント溶出して、活性区分を集液して、比活性を測
定したところ、35 、2 U/mgたん白質であり、
活性の収率は43.7%であった。このものの酵素化学
的性質は次のようであった。
衝液(pl−17、2)で2回洗浄後、4Qの0.05
M燐酸緩衝液(pH7,2)、1mMのE I) T
Aおよび1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁し
、径0.1乃至0 、2 n+mのガラスピーズ2Qを
加えて菌体破砕機で450Orpm、20分間処理をし
た。これを遠心分離し、その上清に80%になるように
エタノールを添加して、その沈殿区分を遠心分離によっ
て集め、ImMのEDTAおよび2メルカプトエタノー
ルを含む0.05M)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)
に溶解後、セファデックスG−100カラム(径7.5
cn×長さ90cm)に吸着し、同緩衝液で溶出し活性
区分を集液した。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデ
ックスG−200カラム(径4.5cmx長さ150c
m)に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区分を集液し、
さらに同様に緩衝化したDEAEセファデックスA−5
0に吸着させ、0〜0.7Mの食塩を含む同緩衝液でグ
ラジェント溶出して、活性区分を集液して、比活性を測
定したところ、35 、2 U/mgたん白質であり、
活性の収率は43.7%であった。このものの酵素化学
的性質は次のようであった。
酸性ウレアーゼB:
(+) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレット、
メチル尿素およびアラントイン酸にも若干作用する。(
第4表) 尿素 too、。
メチル尿素およびアラントイン酸にも若干作用する。(
第4表) 尿素 too、。
アラントイン 0,0アラントイン酸
3.7ビウレツト
72.Oメチル尿素 14.0(3
)至適pi−1および1)I−1安定性第5図に示され
るように、至適pHはO,1Mクエン酸バッファーでp
H3である。37℃で各pHに30分間保存した場合の
残存活性を、第6図に示した。図から明らかなように、
pH6乃至8で安定である。
3.7ビウレツト
72.Oメチル尿素 14.0(3
)至適pi−1および1)I−1安定性第5図に示され
るように、至適pHはO,1Mクエン酸バッファーでp
H3である。37℃で各pHに30分間保存した場合の
残存活性を、第6図に示した。図から明らかなように、
pH6乃至8で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第7図に示されるように、至適温度は60℃乃至70℃
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第8図に示した。
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第8図に示した。
図から明らかなように、pi−16では80℃まで、p
H4では60℃まで安定である。
H4では60℃まで安定である。
(5)阻害剤
第5表に示されるように、塩化第二水銀、硝酸銀、硫酸
銅、アセトヒドロキサム酸によって阻害される。
銅、アセトヒドロキサム酸によって阻害される。
第5表
なし 100.0Ag
N O30,05mM O,4CuSO−・51
1*OO,4mM 47.6t1gc It
O,005mM O,8ヨード酢・酸
1 mM 96.2(6)
分子量 セファデックスG−200ゲルろ過性で、約21万乃至
22万である。
N O30,05mM O,4CuSO−・51
1*OO,4mM 47.6t1gc It
O,005mM O,8ヨード酢・酸
1 mM 96.2(6)
分子量 セファデックスG−200ゲルろ過性で、約21万乃至
22万である。
(7)等電点
ポリアクリルアミドゲルを用いた等電点電気泳動法で約
4.8である。
4.8である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分計
結晶化困難のため測定せず。
(10) Km値
Km値は1.0mM (+)H2,0,1Mクエン酸バ
ッファー)。
ッファー)。
実施例3
市販CAM半流動培地(日永製薬)に生育した、5tr
eptococcus bovis P G −1
86(I F 014634、FERM BP−14
49)株をグルコース4%、ポリペプトン1.5%、肉
エキス1%、酵母エキス0,8%、食塩0.5%、無水
酢酸ナトリウム0.2%、尿素0.5%、硫酸マンガン
(約4水塩)0.005%、硫酸ニッケル(6水塩)0
.001%からなる滅菌シード培地50成を含む200
−容三角フラスコlO本に接種して、34℃で24時間
、静置培養した。このシード培養物を同じ組成からなる
滅菌培地lQを含む、212容三角フラスコlO本にそ
れぞれ移植し、32℃で2日間静置培養したところ、7
.6U/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が10Q
得られた。
eptococcus bovis P G −1
86(I F 014634、FERM BP−14
49)株をグルコース4%、ポリペプトン1.5%、肉
エキス1%、酵母エキス0,8%、食塩0.5%、無水
酢酸ナトリウム0.2%、尿素0.5%、硫酸マンガン
(約4水塩)0.005%、硫酸ニッケル(6水塩)0
.001%からなる滅菌シード培地50成を含む200
−容三角フラスコlO本に接種して、34℃で24時間
、静置培養した。このシード培養物を同じ組成からなる
滅菌培地lQを含む、212容三角フラスコlO本にそ
れぞれ移植し、32℃で2日間静置培養したところ、7
.6U/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が10Q
得られた。
この培養液を遠心分離して菌体集め、0.05M燐酸緩
衝液(pH7,2)で2回洗浄後、4Qの0.05M燐
酸緩衝L&(px−r 7 、2 )、1n+MのED
TAおよび1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁
し、径0.1乃至0 、2 mmのガラスピーズ2Qを
加えて菌体破砕機で450Orpm、20分間処理をし
た。これを遠心分離し、その上清に80%になるように
エタノールを添加して、その沈殿区分を遠心分離によっ
て集め、1mMのE D T Aおよび2メルカプトエ
タノールを含む0.05Mトリス・塩酸緩衝液(pH7
,0)に溶解後、セファデックスG−100カラム(径
7.5cmX長さ90cm)に吸着させ、同緩衝液で溶
出し活性区分を集液した。つぎに同緩衝液で緩衝化した
セファデックスG−200カラム(径4.5cmx長さ
150c+++)に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区
分を集液し、さらに同様に緩衝化したDEAEセファデ
ックスCL−6Bに吸着させ、0〜0,7M食塩を含む
同緩衝液でグラジェント溶出して、活性区分を集液した
。この液をアミコン8200型、tJK−50膜(分子
量カット50,000)の限外ろ過器で濃縮し、緩衝液
を1mMの2メルカプトエタノール含む0.005M燐
酸緩衝液(pH7、0)に交換した。次にアフィプレッ
プ!0(バイオラッド社製)とヒドロキシウレアとで作
製したアフィニティーゲルクロマト(径4cmX長さ5
0cm)に吸着させ、0.005M〜0.044Mの燐
酸緩衝液でグラジェント溶出して活性区分を集め、上記
と同じ限外ろ過器で濃縮、脱塩し、凍結乾燥して酵素粉
末50mgを得た。この粉末の比活性は124tJ/m
gたん白質であり、その酵素化学的および理化学的性質
は次のとおりである。
衝液(pH7,2)で2回洗浄後、4Qの0.05M燐
酸緩衝L&(px−r 7 、2 )、1n+MのED
TAおよび1mMのジチオスレイトールを含む液に懸濁
し、径0.1乃至0 、2 mmのガラスピーズ2Qを
加えて菌体破砕機で450Orpm、20分間処理をし
た。これを遠心分離し、その上清に80%になるように
エタノールを添加して、その沈殿区分を遠心分離によっ
て集め、1mMのE D T Aおよび2メルカプトエ
タノールを含む0.05Mトリス・塩酸緩衝液(pH7
,0)に溶解後、セファデックスG−100カラム(径
7.5cmX長さ90cm)に吸着させ、同緩衝液で溶
出し活性区分を集液した。つぎに同緩衝液で緩衝化した
セファデックスG−200カラム(径4.5cmx長さ
150c+++)に吸着後、同緩衝液で溶出して活性区
分を集液し、さらに同様に緩衝化したDEAEセファデ
ックスCL−6Bに吸着させ、0〜0,7M食塩を含む
同緩衝液でグラジェント溶出して、活性区分を集液した
。この液をアミコン8200型、tJK−50膜(分子
量カット50,000)の限外ろ過器で濃縮し、緩衝液
を1mMの2メルカプトエタノール含む0.005M燐
酸緩衝液(pH7、0)に交換した。次にアフィプレッ
プ!0(バイオラッド社製)とヒドロキシウレアとで作
製したアフィニティーゲルクロマト(径4cmX長さ5
0cm)に吸着させ、0.005M〜0.044Mの燐
酸緩衝液でグラジェント溶出して活性区分を集め、上記
と同じ限外ろ過器で濃縮、脱塩し、凍結乾燥して酵素粉
末50mgを得た。この粉末の比活性は124tJ/m
gたん白質であり、その酵素化学的および理化学的性質
は次のとおりである。
酸性ウレアーゼC:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用する(第6表)。
第6表
尿素 too、。
アラントイン酸 0.0ビウレツト
0.0(3)至適pHおよびpH安
定性 第9図に示されるように、至適p i−tは5付近でま
た、37℃で各p I−1に30分間保存した場合の残
存活性を、第1θ図に示した。図から明らかなように、
p[46乃至10で安定である。
0.0(3)至適pHおよびpH安
定性 第9図に示されるように、至適p i−tは5付近でま
た、37℃で各p I−1に30分間保存した場合の残
存活性を、第1θ図に示した。図から明らかなように、
p[46乃至10で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第11図に示されるように、至適温度は60℃乃至70
℃である。また、pH6で各温度に30分間保持した場
合の残存活性を、第12図に示した。図から明らかなよ
うに、pH6では30℃まで安定である。
℃である。また、pH6で各温度に30分間保持した場
合の残存活性を、第12図に示した。図から明らかなよ
うに、pH6では30℃まで安定である。
(5)阻害剤
第7表に示されるように、塩化第二水銀、アセトヒドロ
キサム酸によって阻害される。
キサム酸によって阻害される。
なし 100.0BgC1*
1 mM O,0ヨード酢酸
10 、mM 89.8アセトヒドロ キサム酸 to mM 9.8(6)分
子量 ポリアクリルアミド電気泳動法[エンらの方法、H,E
ng et al: Can、 J、 Micro
biol、、 32.487(1986)]で約19万
である。また、セファデックスG−200ゲルろ過法で
約17万である。
1 mM O,0ヨード酢酸
10 、mM 89.8アセトヒドロ キサム酸 to mM 9.8(6)分
子量 ポリアクリルアミド電気泳動法[エンらの方法、H,E
ng et al: Can、 J、 Micro
biol、、 32.487(1986)]で約19万
である。また、セファデックスG−200ゲルろ過法で
約17万である。
(7)等重点
等重点電気泳動法で約4.7である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定せず。
(10) Kmfpl
Kml’iは0.2mM (+)I−15,0,O,1
Mクエン酸バッファー)。
Mクエン酸バッファー)。
実施例4
実施例3と同様にして、St reptOcOceus
mitior PG−154(IFO14633、F
ERM BP−1448)株を培養したところ、5.
40/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1of2
得られた。
mitior PG−154(IFO14633、F
ERM BP−1448)株を培養したところ、5.
40/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1of2
得られた。
この培養液を遠心分離して菌体を集め、0.05M燐酸
緩衝液(pH7,2)で2回洗浄後、4Qの0.05M
燐酸緩衝液(pH7,2)、1mMのEDTAおよび1
+Mのジチオスレイトールを含む液に懸濁し、径0.1
乃至0.21のガラスピーズ2Qを加えて菌体破砕機で
450Orpm、20分間処理をした。これを遠心分離
し、その上清に80%になるようにエタノールを添加し
て、その沈殿区分を遠心分離によって集め、1mMのE
DTAおよび2メルカプトエタノールを含む0.05M
)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解後、セファデ
ックスG−100カラム(径7.5ca+×長さ90c
n+)に吸着させ、同緩衝液で溶出し活性区分を集液し
た。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデックスG−2
00カラム(径4.5cIIlx長さ150cm)に吸
着後、同vIi衝液で溶出して活性区分を集液し、さら
に同様に緩衝化したDEAEセファデックスA−50に
吸着させ、0〜0.7Mの食塩を含む同緩衝液でグラジ
ェント溶出して、活性区分を集液して、比活性を測定し
たところ、7G、3tJ/111gたん白質であり、活
性の収率は38.7%であった。このものの酵素化学的
性質は次のようであった。
緩衝液(pH7,2)で2回洗浄後、4Qの0.05M
燐酸緩衝液(pH7,2)、1mMのEDTAおよび1
+Mのジチオスレイトールを含む液に懸濁し、径0.1
乃至0.21のガラスピーズ2Qを加えて菌体破砕機で
450Orpm、20分間処理をした。これを遠心分離
し、その上清に80%になるようにエタノールを添加し
て、その沈殿区分を遠心分離によって集め、1mMのE
DTAおよび2メルカプトエタノールを含む0.05M
)リス・塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解後、セファデ
ックスG−100カラム(径7.5ca+×長さ90c
n+)に吸着させ、同緩衝液で溶出し活性区分を集液し
た。つぎに同緩衝液で緩衝化したセファデックスG−2
00カラム(径4.5cIIlx長さ150cm)に吸
着後、同vIi衝液で溶出して活性区分を集液し、さら
に同様に緩衝化したDEAEセファデックスA−50に
吸着させ、0〜0.7Mの食塩を含む同緩衝液でグラジ
ェント溶出して、活性区分を集液して、比活性を測定し
たところ、7G、3tJ/111gたん白質であり、活
性の収率は38.7%であった。このものの酵素化学的
性質は次のようであった。
酸性ウレアーゼD:
(+) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレットに
も若干作用する(第8表)。
も若干作用する(第8表)。
第8表
活質 相対活性(%)尿素
100.0アラントイン酸
0.0ビウレツト 22.0(
3)至適pHおよびp I−I安定性第13図に示され
るように、至Hp t−tはpi−14ないし5である
。37℃で各p Hに30分間保存した場合の残存活性
を、第14図に示した。図から明らかなように、pH4
乃至8で安定である。
100.0アラントイン酸
0.0ビウレツト 22.0(
3)至適pHおよびp I−I安定性第13図に示され
るように、至Hp t−tはpi−14ないし5である
。37℃で各p Hに30分間保存した場合の残存活性
を、第14図に示した。図から明らかなように、pH4
乃至8で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第15図に示されるように、至適温度は60℃付近であ
る。また、pH6で30分間保持した場合の残存活性を
、第16図に示した。図から明らかなように、pH6で
は60℃まで安定である。
る。また、pH6で30分間保持した場合の残存活性を
、第16図に示した。図から明らかなように、pH6で
は60℃まで安定である。
(5)阻害剤
第9表に示されるように、塩化第二水銀、ヨード酢酸、
アセトヒドロキサム酸によって阻害される。
アセトヒドロキサム酸によって阻害される。
阻害剤 濃度 相対活性(%)なし
too、。
too、。
HgC1* l mM O,0ヨー
ド酢酸 1G IIIM O,6アセト
ヒドロ (6)分子量 ポリアクリルアミド電気泳動法で、約16万である。ま
たセファデックスG−200ゲルろ過去で約17万であ
る。
ド酢酸 1G IIIM O,6アセト
ヒドロ (6)分子量 ポリアクリルアミド電気泳動法で、約16万である。ま
たセファデックスG−200ゲルろ過去で約17万であ
る。
(7)等電点
等電点電気泳動法で約4,6である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため1llll定U・ず。
(10) Km値
Km値は0.3mM (pH4,0,1Mクエン酸)
くツファー)。
くツファー)。
実施例5
実施例3と同様に5treptococcus 5a
livariusPG−303W(IFO14746、
FERMBp−t856)iを培a L 7.:ところ
、4.3U/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液力<
1Of2得られた。この培a液から実施例4と同様の方
法で酵素を精製し、比活性を測定したところ、68.2
U/mgたん白質であり、活性の収率(よ412%であ
った。このものの酵素化学的性質は次のようであった。
livariusPG−303W(IFO14746、
FERMBp−t856)iを培a L 7.:ところ
、4.3U/dの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液力<
1Of2得られた。この培a液から実施例4と同様の方
法で酵素を精製し、比活性を測定したところ、68.2
U/mgたん白質であり、活性の収率(よ412%であ
った。このものの酵素化学的性質は次のようであった。
酸性ウレアーゼE:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、アラントイン酸、ビウレッ
ト、エチル尿素にも若干作用する(第1θ表)。
ト、エチル尿素にも若干作用する(第1θ表)。
尿素 100.0アラントイン酸
12.0ビウレツト
60・0(3)至適pHおよびpH安定性 第17図に示されるように、至適pIIはpl(4であ
る。37°Cで各pHに30分間保存した場合の残存活
性を、第 18図に示した。図から明らかなように、p
H6乃至11で安定である。
12.0ビウレツト
60・0(3)至適pHおよびpH安定性 第17図に示されるように、至適pIIはpl(4であ
る。37°Cで各pHに30分間保存した場合の残存活
性を、第 18図に示した。図から明らかなように、p
H6乃至11で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第19図に示されるように、至適温度は60℃乃至70
℃である。また、pH6で30分間保持した場合の残存
活性を、第20図に示した。図から明らかなように、p
H6では60℃まで安定である。
℃である。また、pH6で30分間保持した場合の残存
活性を、第20図に示した。図から明らかなように、p
H6では60℃まで安定である。
(5)阻害剤
第1!表に示されるように、塩化第二水銀、アセトヒド
ロキサム酸によって阻害される。
ロキサム酸によって阻害される。
阻害剤 濃度 相対活性(%)なし
too、。
too、。
HgC1x 0.05mM 2.0ヨー
ド酢酸 10 IIIM 100.0アセ
トヒドロ (6)分子量 ポリアクリルアミド電気泳動法で、約11万である。ま
たセファデックスG−200ゲルろ過法で約14万であ
る。
ド酢酸 10 IIIM 100.0アセ
トヒドロ (6)分子量 ポリアクリルアミド電気泳動法で、約11万である。ま
たセファデックスG−200ゲルろ過法で約14万であ
る。
(7)等電点
等電点電気泳動法で約4,7である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定せず。
(to) Ka+値
Km(直は0.2mM (pH4,0,1Mクエン酸バ
ッファー)。
ッファー)。
実施例6
実施例1と同様にLactobacillus、rum
inis PG−98(IFO14632、FERM
BP−1906)株を培養したところ、5.2U/
1nlの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1072得
られた。この培養液から実施例2と同様の方法で酵素を
精製し、比活性を測定したところ、36.7U/ll1
gたん白質であり、活性の収率は42.8%であった。
inis PG−98(IFO14632、FERM
BP−1906)株を培養したところ、5.2U/
1nlの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1072得
られた。この培養液から実施例2と同様の方法で酵素を
精製し、比活性を測定したところ、36.7U/ll1
gたん白質であり、活性の収率は42.8%であった。
この乙のの酵素化学的および理化学的性質は次のとおり
である。
である。
酸性ウレアーゼF:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2) Jl11’質特穴性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレツトに
ら若干作用する(第12表)。
ら若干作用する(第12表)。
尿素 too、。
アラントイン酸 0.0ビウレツト
26.0(3)至適pHおよびpl−
1安定性 第21図に示されるように、至適pl(はpH5である
。37°Cで各p I−1に30分間保存した場合の残
存活性を、第 22図に示した。図から明らかなように
、pl−14乃至8で安定である。
26.0(3)至適pHおよびpl−
1安定性 第21図に示されるように、至適pl(はpH5である
。37°Cで各p I−1に30分間保存した場合の残
存活性を、第 22図に示した。図から明らかなように
、pl−14乃至8で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第23図に示されるように、至適X度は55乃至60℃
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第24図に示した。図から明らかな
ように、pH6では55℃まで、pl−14では30℃
まで安定である。
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第24図に示した。図から明らかな
ように、pH6では55℃まで、pl−14では30℃
まで安定である。
(5)阻害剤
第13表に示されるように、塩化第二水銀、ヨード酢酸
およびアセトヒドロキサム酸によって阻害される。
およびアセトヒドロキサム酸によって阻害される。
なし too、。
HgCIs O,05mM
O,0ヨード酢酸 to mM 5
0.0(6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過法で、約15万であ
る。
O,0ヨード酢酸 to mM 5
0.0(6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過法で、約15万であ
る。
(7)等電点
等電点電気泳動法で約4.7である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定せず。
(1G) Km値
Km値は1.2mMである(pl−15,0,1Mクエ
ン酸バッファー)。
ン酸バッファー)。
実施例7
実施例1と同様にLactobacillus re
uteriU’M−12(IFO14629、FERM
BP−1904)味を培養したところ、3.6 t
J/威の酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が10Q得ら
れた。この培a液から実施例2と同様の方法で酵素を精
製し、比活性を測定したところ、33.40/mgたん
白質であり、活性の収率は45.3%であった。このも
のの酵素化学的および理化学的性質は次のとおりである
。
uteriU’M−12(IFO14629、FERM
BP−1904)味を培養したところ、3.6 t
J/威の酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が10Q得ら
れた。この培a液から実施例2と同様の方法で酵素を精
製し、比活性を測定したところ、33.40/mgたん
白質であり、活性の収率は45.3%であった。このも
のの酵素化学的および理化学的性質は次のとおりである
。
酸性ウレアーゼG:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレットに
も若干作用する(第14表)。
も若干作用する(第14表)。
尿素 ioo、。
アラントイン酸 0.0ビウレツト
7.9(3)至適pHおよびpH安
定性 第25図に示されるように、至適pHはpH4である。
7.9(3)至適pHおよびpH安
定性 第25図に示されるように、至適pHはpH4である。
37℃で各pHに30分間保存した場合の残存活性を、
第 26図に示した。図から明らかなように、pH4乃
至8で安定である。
第 26図に示した。図から明らかなように、pH4乃
至8で安定である。
(4)至適温度および温度安定性
第27図に示されるように、至適温度は70乃至75℃
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第28図に示した。図から明らかな
ように、pH6では75°Cまで安定てあり、pH4で
は65℃まで安定である。
である。また、pH4およびpH6で30分間保持した
場合の残存活性を、第28図に示した。図から明らかな
ように、pH6では75°Cまで安定てあり、pH4で
は65℃まで安定である。
(5)阻害剤
第15表に示されるように、塩化第二水銀、アセトヒド
ロキサム酸によって阻害される。
ロキサム酸によって阻害される。
なし 100.0t1
gc l* 0.05mM
O,0ヨード酢酸 10 mM ’
100.0(6)分子m セファデックスG−200ゲルろ過法で、約21万であ
る。
gc l* 0.05mM
O,0ヨード酢酸 10 mM ’
100.0(6)分子m セファデックスG−200ゲルろ過法で、約21万であ
る。
(7)等電点
等電点電気泳動法で約4.8である。
(8)結晶構造
本酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定せず。
(10) Km値
Km値は1.3mMである(pH4,0,1Mクエン酸
バッファー)。
バッファー)。
実施例8
実施例Iと同様にLactobacillus re
uteriUM−18(IFo 14630、FEI
’1M [3F−1905)株を培養したところ、4
.50/mMの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1o
f2得られた。この培養液から実施例2と同様の方法で
酵素を精製し、比活性を測定したところ、39,8U/
mgたん白質であり、活性の収率は41.7%であった
。このものの酵素化学的および理化学的性質は次のとお
りである。
uteriUM−18(IFo 14630、FEI
’1M [3F−1905)株を培養したところ、4
.50/mMの酸性ウレアーゼ活性を示す培養液が1o
f2得られた。この培養液から実施例2と同様の方法で
酵素を精製し、比活性を測定したところ、39,8U/
mgたん白質であり、活性の収率は41.7%であった
。このものの酵素化学的および理化学的性質は次のとお
りである。
酸性ウレアーゼH:
(1) 作用
1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。
1モルの炭酸ガスを生成する。
(2)基質特異性
尿素に最もよく作用するが、エチル尿素、ビウレットお
よびアラントイン酸にも若干作用する(第16表)。
よびアラントイン酸にも若干作用する(第16表)。
第16表
基質 相対活性(%)尿素
100.0アラントイン酸
12.3ビウレヅト 82.4(
3)至適pHおよびl) I−1安定性第29図に示さ
れるように、至適pHはpH3である。37℃で各pX
tに30分間保存した場合の残存活性を、第30図に示
した。図から明らかなように、pH5乃至8で安定であ
る。
100.0アラントイン酸
12.3ビウレヅト 82.4(
3)至適pHおよびl) I−1安定性第29図に示さ
れるように、至適pHはpH3である。37℃で各pX
tに30分間保存した場合の残存活性を、第30図に示
した。図から明らかなように、pH5乃至8で安定であ
る。
(4)至適温度および温度安定性
第31図に示されるように、至適温度は70乃至75℃
である。また、pT(4およびpH6で30分間保持し
た場合の残存活性を、第32図に示した。図から明らか
なように、pH6では70℃まで安定であり、p!]4
では65℃まで安定である。
である。また、pT(4およびpH6で30分間保持し
た場合の残存活性を、第32図に示した。図から明らか
なように、pH6では70℃まで安定であり、p!]4
では65℃まで安定である。
(5)阻害剤
第17表に示されるように、塩化第二水銀、アセトヒド
ロキサム酸によって阻害される。
ロキサム酸によって阻害される。
なし 100.OHg
Cl* 0.05mM O,
0ヨード酢酸 10 mM 99.
0(6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過法で、約23万であ
る。
Cl* 0.05mM O,
0ヨード酢酸 10 mM 99.
0(6)分子量 セファデックスG−200ゲルろ過法で、約23万であ
る。
(7)等電点
等重点電気泳動法で約4.5である。
(8)結晶構造
木酵素は結晶化が困難である。
(9)元素分析
結晶化困難のため測定U−ず。
(10) K m(直
Km値は4.8mMである(pH3,0,1Mクエン酸
バッファー)。
バッファー)。
試験例1
実施例3.4および5でえられた酸性ウレアーゼC,D
およびEの各酵素活性を、20%または50%濃度のエ
タノールを含む反応中で測定したところ、第18表に示
すように、いずれの酵素もエタノール存在下であっても
尿素をよく分解した。
およびEの各酵素活性を、20%または50%濃度のエ
タノールを含む反応中で測定したところ、第18表に示
すように、いずれの酵素もエタノール存在下であっても
尿素をよく分解した。
ウレアーゼ エタノール濃度(%)酸性
ウレアーゼCIoo g4.2 51.6酸性
ウレアーゼD 100 85.0
5G、4(注)エタノールO%の場合の各酵素活性を1
00とする。
ウレアーゼCIoo g4.2 51.6酸性
ウレアーゼD 100 85.0
5G、4(注)エタノールO%の場合の各酵素活性を1
00とする。
試験例2
実施例1’ 、 2 、6 、7および8でそれぞれ得
られた酸性ウレアーゼA、I3.F、GおよびI]なら
びに市販ナタ豆起源のウレアーゼ(P、L、バイオケミ
カルズ社製、至適 pl(7、0)ヲI OU/dノ
e度1ご調製しエタノール20%存在下で、反応温度2
0℃で尿素分解活性を比較したところ、第19表に示す
ように、ナタ豆ウレアーゼに較べ、いずれの酸性ウレア
ーゼもエタノール存在下で強い尿素分解能を示した。
られた酸性ウレアーゼA、I3.F、GおよびI]なら
びに市販ナタ豆起源のウレアーゼ(P、L、バイオケミ
カルズ社製、至適 pl(7、0)ヲI OU/dノ
e度1ご調製しエタノール20%存在下で、反応温度2
0℃で尿素分解活性を比較したところ、第19表に示す
ように、ナタ豆ウレアーゼに較べ、いずれの酸性ウレア
ーゼもエタノール存在下で強い尿素分解能を示した。
第19表
(注)ナタ豆ウレアーゼの酵素活性を100.とする。
発明の効果
本発明の新規ウレアーゼは、従来のウレアーゼに比べて
、酸性域に活性の至適pl(を有し、酸性p■および温
度安定性にすぐれている点で、工業的に利用性の高いウ
レアーゼである。特に、本ウレアーゼはエタノールによ
る阻害を受けにくく、かつ比活性が20U/mgたん白
質以上であり、従って酒類中の尿素分解除去に少量でも
効果があり、酒類の品質改良の目的により有利に使用で
きる。一方、本ウレアーゼは臨床検査において血液ある
いは尿中の尿素や、食品分析等における尿素定m用の試
薬としても極めて有効である。たとえば、酒類中の尿素
を定mする場合に、本ウレアーゼで尿素をアンモニアに
分解したのちインドフェノール法を適用することにより
精度よく尿素の定量ができる。
、酸性域に活性の至適pl(を有し、酸性p■および温
度安定性にすぐれている点で、工業的に利用性の高いウ
レアーゼである。特に、本ウレアーゼはエタノールによ
る阻害を受けにくく、かつ比活性が20U/mgたん白
質以上であり、従って酒類中の尿素分解除去に少量でも
効果があり、酒類の品質改良の目的により有利に使用で
きる。一方、本ウレアーゼは臨床検査において血液ある
いは尿中の尿素や、食品分析等における尿素定m用の試
薬としても極めて有効である。たとえば、酒類中の尿素
を定mする場合に、本ウレアーゼで尿素をアンモニアに
分解したのちインドフェノール法を適用することにより
精度よく尿素の定量ができる。
第1.2.3および4図は実施例1で得られたウレアー
ゼについてのp I−rおよび温度と酵素活性との関係
を示す。 第1図は37°Cで測定した、pt−を活性曲線を表わ
し、図中・はO,1Mクエン酸バッファー、○は0.1
M酢酸バッファー、×は0.1Mベロナール・酢酸・塩
酸バッファー中で、それぞれ測定した結果を示す。第2
図はpH安定性を調べたもので、37℃、30分間処理
した場合の残存活性を表わす。第3図はpH4の0.1
Mクエン酸バッファー中での温度活性曲線を表わす。第
4図は温度安定性を調べたもので、各温度で30分間処
理した場合の残存活性を表わし、図中○はpH4の場合
、・はpH6の場合を示す。以下、第5.6.7および
8図は実施例2、第9.1O111および12図は実施
例3、第13.14、!5および16図は実施例4、第
17.18.19および20図は実施例5、第21,2
2.23お上び24図は実施例6、第25.26.27
および28図は実施例7、第29.30.31および3
2図は実施例8でそれぞれ得られたウレアーゼについて
のI)Hおよび温度と酵素活性との関係を示1し、pH
安定性の試験以外は全て0.1Mクエン酸バッファ中で
試験を行なった。 代理人 弁理士 岩 1) 弘pH pH 爬 な ?!$ 籠 営仲戴程 2 兵蓄渋ゼ・ 2 pH $6 ぼ pH 竿7図 湿炭(0C) $8図 温S曵(0C) 七ψ蓋曝 2 晃X−9,壇 2 に典波場 2 典架渋″$ 2 ヤ仲栗づ 2 呉架票閘 2 上物9!蓼 2 昇 實 謔ゴ 2 判な9″4z (喪派罷 2 票架柴要 2 忠實波箋 ? 鷺枠栗堤 2 々 宋 票 贈 t ヤ嫂衆堤 2 潰宋票壜 2 (嘘蓋蘭 2 震 裳 票謙 2 $31図 3/fL炙(0C) 某32図
ゼについてのp I−rおよび温度と酵素活性との関係
を示す。 第1図は37°Cで測定した、pt−を活性曲線を表わ
し、図中・はO,1Mクエン酸バッファー、○は0.1
M酢酸バッファー、×は0.1Mベロナール・酢酸・塩
酸バッファー中で、それぞれ測定した結果を示す。第2
図はpH安定性を調べたもので、37℃、30分間処理
した場合の残存活性を表わす。第3図はpH4の0.1
Mクエン酸バッファー中での温度活性曲線を表わす。第
4図は温度安定性を調べたもので、各温度で30分間処
理した場合の残存活性を表わし、図中○はpH4の場合
、・はpH6の場合を示す。以下、第5.6.7および
8図は実施例2、第9.1O111および12図は実施
例3、第13.14、!5および16図は実施例4、第
17.18.19および20図は実施例5、第21,2
2.23お上び24図は実施例6、第25.26.27
および28図は実施例7、第29.30.31および3
2図は実施例8でそれぞれ得られたウレアーゼについて
のI)Hおよび温度と酵素活性との関係を示1し、pH
安定性の試験以外は全て0.1Mクエン酸バッファ中で
試験を行なった。 代理人 弁理士 岩 1) 弘pH pH 爬 な ?!$ 籠 営仲戴程 2 兵蓄渋ゼ・ 2 pH $6 ぼ pH 竿7図 湿炭(0C) $8図 温S曵(0C) 七ψ蓋曝 2 晃X−9,壇 2 に典波場 2 典架渋″$ 2 ヤ仲栗づ 2 呉架票閘 2 上物9!蓼 2 昇 實 謔ゴ 2 判な9″4z (喪派罷 2 票架柴要 2 忠實波箋 ? 鷺枠栗堤 2 々 宋 票 贈 t ヤ嫂衆堤 2 潰宋票壜 2 (嘘蓋蘭 2 震 裳 票謙 2 $31図 3/fL炙(0C) 某32図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 [ I ]次の理化学的性質を有する新規ウレアーゼ(1
)作用 1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する。 (2)基質特異性 尿素に最もよく作用する。 (3)至適pHおよびpH安定性 至適pHが1.5乃至5.5であり、37℃、30分処
理ではpH6乃至8の範囲で安定である。 (4)至適温度および温度安定性 至適pHにおける至適温度が55℃乃至75℃であり、
pH6では、30分処理で50℃まで安定である。 (5)阻害剤 塩化第二水銀およびアセトヒドロキサム酸によって阻害
される。 (6)分子量 ゲルろ過法で測定した分子量は、10万乃至25万であ
る。 (7)至適pHおよび37℃における比活性が20U/
mgたん白質以上である。 [II]ラクトバチルス属またはストレフトコッカス属に
属し次の理化学的性質を有する新規ウレアーゼ (1)作用 1モルの尿素と1モルの水から、2モルのアンモニアと
1モルの炭酸ガスを生成する、 (2)基質特異性 尿素に最もよく作用する、 (3)至適pHおよびpH安定性 至適pHが1.5乃至5.5であり、37℃、30分処
理ではpH6乃至8の範囲で安定である。 (4)至適温度および温度安定性 至適pHにおける至適温度が55℃乃至75℃であり、
pH6では、30分処理で50℃まで安定である、 (5)阻害剤 塩化第二水銀およびアセトヒドロキサム酸によって阻害
される、 (6)分子量 ゲルろ過法で測定した分子量は、10万乃至25万であ
る、 (7)至適pHおよび37℃における比活性が20U/
mgたん白質以上である、 を生産する能力を有する微生物を培地に培養し、培養物
中に上記ウレアーゼを生成蓄積せしめ、これを採取する
ことを特徴とする上記ウレアーゼの製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63169761A JPH01240187A (ja) | 1987-07-09 | 1988-07-07 | 新規ウレアーゼおよびその製造法 |
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62-171750 | 1987-07-09 | ||
| JP17175087 | 1987-07-09 | ||
| JP63-92356 | 1988-04-14 | ||
| JP63169761A JPH01240187A (ja) | 1987-07-09 | 1988-07-07 | 新規ウレアーゼおよびその製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01240187A true JPH01240187A (ja) | 1989-09-25 |
Family
ID=26493002
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63169761A Pending JPH01240187A (ja) | 1987-07-09 | 1988-07-07 | 新規ウレアーゼおよびその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01240187A (ja) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63196261A (ja) * | 1987-02-06 | 1988-08-15 | Kyoichi Kobashi | 醗酵食品中の尿素を分解する方法 |
-
1988
- 1988-07-07 JP JP63169761A patent/JPH01240187A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63196261A (ja) * | 1987-02-06 | 1988-08-15 | Kyoichi Kobashi | 醗酵食品中の尿素を分解する方法 |
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