JPH0142944B2 - - Google Patents
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、ビタミンD様活性で特徴づけられる
24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミン
D3の合成中間体である24,24−ジフルオロ−25
−ヒドロキシプレビタミンD3に関する。 (従来の技術及び発明が解決しようとする問題
点) ビタミンD3は、カルシウムやリンのホメオス
タシスの制御剤として周知である。この化合物
は、正常な動物又は人間における腸のカルシウム
輸送と骨カルシウム流通を刺激し、くる病の予防
に有効であることが知られている。 また、今では、有効であるためには、ビタミン
D3は生体内ではヒドロキシル化型に変換されな
ければならないということがよく知られている。
例えば、そのビタミンは、初めに肝臓中でヒドロ
キシル化されて、25−ヒドロキシビタミンD3が
形成され、さらに腎臓中でヒドロキシル化され
1α,25−ジヒドロキシビタミンD3又は24,25−
ジヒドロキシビタミンD3を生成する。このビタ
ミンの1α−ヒドロキシル化型は、一般に生理学
的に活性又はホルモン型のビタミンであり、ビタ
ミンD様活性といわれるもの、例えば、腸内のカ
ルシウム及びリン酸塩の吸収増加、骨ミネラルの
流通化及び腎臓中におけるカルシウムの維持のよ
うなビタミンD様活性といわれるものに対して応
答性があると考えられる。 種々のビタミンD誘導体についての言及が特許
及び他の文献中に現存する。例えば、米国特許第
3565924号(25−ヒドロキシコレカルシフエロー
ルについて)、同3697559号(1,25−ジヒドロキ
シコレカルシフエロールについて)、同3741996号
(1α−ヒドロキシコレカルシフエロールについ
て)、同3907843号(1α−ヒドロキシエルゴカル
シフエロールについて)、同3715374号(24,25−
ジヒドロキシコレカルシフエロールについて)、
同3739001号(25,26−ジヒドロキシコレカルシ
フエロールについて)、同3786062号(22−デヒド
ロ−25−ヒドロキシコレカルシフエロールについ
て)、同3847955号(1,24,25−トリヒドロキシ
コレカルシフエロールについて)、同3906014号
(3−デオキシ−1α−ヒドロキシコレカルシフエ
ロールについて)、同4069321号(種々の側鎖フツ
素化ビタミンD3誘導体及び側鎖フツ素化ジヒド
ロタチステロール3類似体について)を参照。 本発明は、優れたビタミンD様活性を発揮する
新規なビタミンD3化合物の前駆体として有用な
プレビタミンD3化合物を提供することを目的と
する。 (問題点を解決するための手段) 優れたビタミンD様活性を現わし、それ故ビタ
ミンD3の種々の公知の適用面での代替品として
役立ち、骨軟化症、変形性骨異栄養症及び副甲状
腺機能不全のような様々の病気の治療に有用であ
る新しいビタミンD3誘導体が見出された。 この誘導体は、24,24−ジフルオロ−25−ヒド
ロキシコレカルシフエロール(24,24−ジフルオ
ロ−25−ヒドロキシビタミンD3又は24F2、25−
OHD3)であることが確認できた。 (発明の効果) 本発明の化合物は、優れたビタミンD様活性を
示す24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミ
ンD3の合成中間体として用いられる。 (実施例) 次に本発明の実施例に基づきさらに詳細に説明
する。 上記の24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビ
タミンD3の原料となる本発明の化合物は、次の
説明及び簡略化した図式に従つて合成できる。 コレニツク アシド1を0゜でp−トルエンスル
ホン酸の存在下で適当な有機溶剤中(CH2Cl2)
ジヒドロピランで処理し、次いで、20゜のエタノ
ール中で1N NaOHで処理してコレニツク アシ
ドテトラヒドロピラニルエーテル(A環中のヒド
ロキシル基の保護)を形成させる。この化合物
は、テトラヒドロフラン(THF)−エチルエーテ
ル中過剰のCH3Liで0℃で4時間処理し、その
後、保護のテトラヒドロピラニル基はCH2Cl2−
メタノール液中のp−TsOHで20℃で24時間処理
して除去された。引き続きアセチル化(Ac2O−
ピリジン−CH2Cl2、20゜、24時間)を行うと、メ
チルケトン2(mp148〜151゜、δ2.12(3H、s、C
−25)、m/e354(M−60))(収率=6%、1から
の通しで)が得られた。 メチルケトン2を、無水酢酸中でp−TsOHの
存在下で7時間環流させ(エノールアセチル化)、
ジアセテート3(mp109〜110゜、δ5.02(1H、m、
C−23)、1.90(3H、s、C−25)m/e396(M−
60)を得た。このジアセテートを次にジグライム
中のクロロジフルオロ酢酸ナトリウムと170゜で
0.5時間加熱して、ジフルオロシクロプロパン4
に変換させた。収率;34%、mp112〜115゜、5.38
(1H、m、C−6)、4.60(1H、m、C−3)、
2.05(3H、s、24−OAc)、2.02(3H、s、3−
OAc)、1.60(3H、m、C−26)、m/e446(M−
60)。 4をTHF−メタノール−水混液中、LiOHで
20℃で2時間処理したのち、引き続きアセチル化
(Ac2O−ピリジン−CH2Cl2、20℃、24時間)を
行つて、シリカゲル上のクロマトグラフイーに付
したところ、ジフルオロケトン5が得られた(収
率9.3%、mp135−136−5゜、δ2.26(3H、t、JHF=
1Hz、C−26)、m/e404(M−60)。そのジフル
オロケトンは、23(E)−及び23(Z)−共役ケトンの
シリカゲル上のクロマトグラフイーによつて分離
されるジフルオロケトンとの混合物として得られ
た。 ジフルオロケトン5は、エチルエーテル中の過
剰量のCH3MgIと0℃で15分間反応させ、次いで
アセチル化(Ac2O−ピリジン−CH2Cl2、20゜、
20時間)して、25−カルビノール、6を収率85%
で供給する(mp163−164−5゜、δ1.28(6H、s、
C−26、27)、m/e420(M−60))。カルビノール
6は、N−ブロモ−スクシンイミドと環流CCl4
中で25分間反応させアリル的に臭素化した。臭素
化した化合物は、次いでs−コリジンで、環流キ
シレン中で15分間処理して脱臭化水素化を行い、
4,6−ジエンと5,7−ジエン7との混合物を
得た。その5,7−ジエン(λmax263、272、
282及び292nm、m/e419(M−59))は、p−
TsOHでアセトン中20゜で15時間処理し、次いで
分離用薄層クロマトグラフイー(ベンゼン−エチ
ルアセテート(15:1)、3回)を行つて28%の
収率で分離された。回収された5,7ジエンは、
5%KOH−メタノールで20℃で15時間処理して
けん化され次いで、エタノールとベンゼンとの混
合物中で2.5分間0℃で照射処理して(ハノービ
ア高圧石英水銀蒸気ランプ モデル654A36;
200W)、溶液の本発明に係る24,24−ジフルオロ
−25−ヒドロキシプレビタミンD3 8を得た。 次に照射した上の溶液を、1時間環流させて、
薄層クロマトグラフイー(シリカゲル、ベンゼン
−エチルアセテート(5:1)、3回)と高圧液
体クロマトグラフイー(ゾーバツクスSIL、25cm
x2.1mm同上デユポン社(ウイルミントン、デラ
ウエア)から入手可能、CH2Cl2)で分別して、 式 で表わされる最終生成物の24,24−ジフルオロ−
25−ヒドロキシビタミンD3、(λmax264nm、
λmin228nm、m/e436(M+)421、418、403、
377、271、253、136、118)を得た。 ステートメント もし、ある目的のために必要ならば、上述のよ
うに回収したのちのアセチル化5,7−ジエンは
周知の手段によつて(MeOH中5%KOH、20゜、
15時間)けん化され、3位のアセトキシ基をヒド
ロキシル基に変換する。 また、もし所望なら、本発明のプレビタミン8
は、5゜で溶剤を蒸発させ、引き続いてシリカゲル
上でクロマトグラフイーを行つて回収でき、その
後ビタミンに変換できる。 24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミン
D3の生物学的活性 雄の乳離れしたねずみを吊下式ワイアーケージ
に収容し、以下の分析に用いる前に、3週間、須
田らの(J.Nutr.100、1049(1970))、低カルシウ
ムのビタミンD欠乏食の餌を随時に与えた。 腸のカルシウム輸送 上記のような5匹又は6匹のねずみのグループ
は、それぞれ犠牲にする8、23又は30時間前に、
95%エタノール中0.05mlに溶解した24,24−ジフ
ルオロ−25−ヒドロキシビタミンD3(24F2、25−
OH2)又は25−ヒドロキシビタミンD3(25−
OHD3)のいずれかが1回分の投薬量
(650pmole)で頚静脈内に与えられた。コントロ
ールグループのねずみは、エタノールビヒクルだ
けが与えられた。それらのねずみを、それぞれの
規定の時間後に首を切り、マーチンとデルーカの
技術(Am.J.Physiology216、1351(1969)によつ
て腸のカルシウム輸送活性を測るために、その十
二指腸が用いられた。結果は下記の表に示す。 【表】 * 平均の標準偏差
腸のカルシウム輸送に関する24F2、25−OHD3
の少量投与の作用を示すため、上に指示したよう
に低カルシウム食を与えられたねずみを5匹又は
6匹のグループとして、これに、0.05mlの95%エ
タノールに溶解した24F2、25−OHD3又は25−
OHD3を1回分の投薬量頚静脈内に与えた。コン
トロールグループのねずみはビヒクルのみ与えら
れた。その投与を受けたのち、20時間又は168時
間後に、ねずみを殺し、その十二指腸を、前述し
たマーチンとデルーカ法によつて腸カルシウム輸
送活性を測定するために使つた。結果を下記の第
2表に示す。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
血清カルシウム濃度 上記のようにして餌を与えられたねずみは、そ
れぞれ6匹のねずみのグループに分けられた。そ
のねずみの1つのグループに1回分投薬量
650pmoleで24F2、25−OHD3が、第2のグルー
プに650pmoleの25−OHD3が(それぞれの場合
ビタミンD3誘導体は0.05mlの95%エタノールに溶
解する)与えられ、そして第3のグループ(コン
トロール)にはビヒクルのみが与えられた。それ
らの物質は、犠牲にする8又は29時間前に、頚静
脈内に投与された。 ねずみは、上記の表示した時間の経過後首を切
つて殺し、血液を集めて遠心分離にかけて血清を
得た。その血清(0.1ml)は1.9mlの0.1%NaCC溶
液と混合され、カルシウム濃度は原子吸収スペク
トロホトメーター(パーキン−エルマーモデル
HO−214)で測定された。結果は下記の表に示
される。 【表】 *平均の標準偏差
くる病予防活性 吊り下げたワイヤーケージ中に維持された雄の
乳離れしたねずみ(ホルツマン社、(マデイソン、
ウイスコンシン州))の6匹のグループごとに、
Am.J.Physiol204、833(1963)(Guroff DeLuca
とSteenbock)に記述された低リン食が餌として
与えられ、同時に、0.1mlのエタノール/プロピ
レングリコール(5/95 v/v)に溶解した
24F2、25−OHD3又は25−OHD3が毎日2週間皮
下に投与された。コントロールグループのねずみ
は同様の方法で餌を与えられたが、ビヒクルのみ
が皮下に投与された。 最後の皮下投与を受けてから24時間後に、ねず
みの首を切り、前記のように腸のカルシウム輸送
の測定のために十二指腸が用いられた。それらの
橈骨と尺骨が広がつた骨端板の測定のため取り出
され、大腿骨は灰分含有量の決定のため(大腿骨
は恒量になるまで乾燥され、マツフル炉中で650
℃で8時間焼いて灰とした。)取り出された。 得られた結果は下記の表に示した。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
雄の乳離れしたねずみに、上述した低リン食を
餌として与え、それぞれ5匹又は6匹のグループ
に分けた。それぞれのグループのねずみは各々1
回分投薬量(下記の表に示すとおり)の24F2、
25−OHD3又は25−OHD3を0.05mlの95%エタノ
ール中に溶解して頚静脈内に与えられた。コント
ロールグループのねずみはエタノールビヒクルの
みを受けた。上記表示の投薬を受けてから168時
間後に、ねずみの首を切つて殺し、各々のグルー
プの血液を集めねずみの線試験(line test)U.S.
Pharmacopoeia、15th Rev.、Mack Publishing
Co.、Easton Pa.、1955 p−889)に従いくる病
予防活性を決定するため橈骨と尺骨を取り出し
た。血液を集めたのち、ただちに遠心分離に付
し、血清を得た。チエンら(Anal.Chem.、28、
1756、(1956)の方法により血清中の無機リン量
が決定された。 得られた結果を次表に示す。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
毎日の24F2、25−OHD3投薬量に応じたくる病
予防活性を決定するために、ねずみに前述の低リ
ン食を3週間餌として与えた。それからそれらに
は、24F2、25−OHD3又は25−OHD3を(それぞ
れの場合、650ρmoleを0.1mlのエタノール/プロ
ピレングリコール(5/95 v/v)に溶解した)
皮下に毎日8日間、餌は同じに維持して(各々の
グループに9匹のねずみ)、投与した。コントロ
ールグループのねずみ(4匹のねずみ)は、同様
の方法でエタノール/プロピレングリコールビヒ
クルのみが与えられた。 最後の投薬ののち24時間経過してから、それら
を殺し、橈骨と尺骨を取り出し、くる病予防活性
を測定するために(ねずみ線試験、上のとおり)
用い、一方大腿骨は取り除かれ、前述のようにし
て灰化された。 得られた結果を下記の表に示した。 【表】 * 平均の標準偏差
上記のデータから24,24−ジフルオロ−25−ヒ
ドロキシビタミンD3は、ビタミンD様活性と断
言できる活性を示しこの点で25−ヒドロキシビタ
ミンD3と全く同様に(米国特許第3565924号参
照)効果的であることがわかる。
24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミン
D3の合成中間体である24,24−ジフルオロ−25
−ヒドロキシプレビタミンD3に関する。 (従来の技術及び発明が解決しようとする問題
点) ビタミンD3は、カルシウムやリンのホメオス
タシスの制御剤として周知である。この化合物
は、正常な動物又は人間における腸のカルシウム
輸送と骨カルシウム流通を刺激し、くる病の予防
に有効であることが知られている。 また、今では、有効であるためには、ビタミン
D3は生体内ではヒドロキシル化型に変換されな
ければならないということがよく知られている。
例えば、そのビタミンは、初めに肝臓中でヒドロ
キシル化されて、25−ヒドロキシビタミンD3が
形成され、さらに腎臓中でヒドロキシル化され
1α,25−ジヒドロキシビタミンD3又は24,25−
ジヒドロキシビタミンD3を生成する。このビタ
ミンの1α−ヒドロキシル化型は、一般に生理学
的に活性又はホルモン型のビタミンであり、ビタ
ミンD様活性といわれるもの、例えば、腸内のカ
ルシウム及びリン酸塩の吸収増加、骨ミネラルの
流通化及び腎臓中におけるカルシウムの維持のよ
うなビタミンD様活性といわれるものに対して応
答性があると考えられる。 種々のビタミンD誘導体についての言及が特許
及び他の文献中に現存する。例えば、米国特許第
3565924号(25−ヒドロキシコレカルシフエロー
ルについて)、同3697559号(1,25−ジヒドロキ
シコレカルシフエロールについて)、同3741996号
(1α−ヒドロキシコレカルシフエロールについ
て)、同3907843号(1α−ヒドロキシエルゴカル
シフエロールについて)、同3715374号(24,25−
ジヒドロキシコレカルシフエロールについて)、
同3739001号(25,26−ジヒドロキシコレカルシ
フエロールについて)、同3786062号(22−デヒド
ロ−25−ヒドロキシコレカルシフエロールについ
て)、同3847955号(1,24,25−トリヒドロキシ
コレカルシフエロールについて)、同3906014号
(3−デオキシ−1α−ヒドロキシコレカルシフエ
ロールについて)、同4069321号(種々の側鎖フツ
素化ビタミンD3誘導体及び側鎖フツ素化ジヒド
ロタチステロール3類似体について)を参照。 本発明は、優れたビタミンD様活性を発揮する
新規なビタミンD3化合物の前駆体として有用な
プレビタミンD3化合物を提供することを目的と
する。 (問題点を解決するための手段) 優れたビタミンD様活性を現わし、それ故ビタ
ミンD3の種々の公知の適用面での代替品として
役立ち、骨軟化症、変形性骨異栄養症及び副甲状
腺機能不全のような様々の病気の治療に有用であ
る新しいビタミンD3誘導体が見出された。 この誘導体は、24,24−ジフルオロ−25−ヒド
ロキシコレカルシフエロール(24,24−ジフルオ
ロ−25−ヒドロキシビタミンD3又は24F2、25−
OHD3)であることが確認できた。 (発明の効果) 本発明の化合物は、優れたビタミンD様活性を
示す24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミ
ンD3の合成中間体として用いられる。 (実施例) 次に本発明の実施例に基づきさらに詳細に説明
する。 上記の24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビ
タミンD3の原料となる本発明の化合物は、次の
説明及び簡略化した図式に従つて合成できる。 コレニツク アシド1を0゜でp−トルエンスル
ホン酸の存在下で適当な有機溶剤中(CH2Cl2)
ジヒドロピランで処理し、次いで、20゜のエタノ
ール中で1N NaOHで処理してコレニツク アシ
ドテトラヒドロピラニルエーテル(A環中のヒド
ロキシル基の保護)を形成させる。この化合物
は、テトラヒドロフラン(THF)−エチルエーテ
ル中過剰のCH3Liで0℃で4時間処理し、その
後、保護のテトラヒドロピラニル基はCH2Cl2−
メタノール液中のp−TsOHで20℃で24時間処理
して除去された。引き続きアセチル化(Ac2O−
ピリジン−CH2Cl2、20゜、24時間)を行うと、メ
チルケトン2(mp148〜151゜、δ2.12(3H、s、C
−25)、m/e354(M−60))(収率=6%、1から
の通しで)が得られた。 メチルケトン2を、無水酢酸中でp−TsOHの
存在下で7時間環流させ(エノールアセチル化)、
ジアセテート3(mp109〜110゜、δ5.02(1H、m、
C−23)、1.90(3H、s、C−25)m/e396(M−
60)を得た。このジアセテートを次にジグライム
中のクロロジフルオロ酢酸ナトリウムと170゜で
0.5時間加熱して、ジフルオロシクロプロパン4
に変換させた。収率;34%、mp112〜115゜、5.38
(1H、m、C−6)、4.60(1H、m、C−3)、
2.05(3H、s、24−OAc)、2.02(3H、s、3−
OAc)、1.60(3H、m、C−26)、m/e446(M−
60)。 4をTHF−メタノール−水混液中、LiOHで
20℃で2時間処理したのち、引き続きアセチル化
(Ac2O−ピリジン−CH2Cl2、20℃、24時間)を
行つて、シリカゲル上のクロマトグラフイーに付
したところ、ジフルオロケトン5が得られた(収
率9.3%、mp135−136−5゜、δ2.26(3H、t、JHF=
1Hz、C−26)、m/e404(M−60)。そのジフル
オロケトンは、23(E)−及び23(Z)−共役ケトンの
シリカゲル上のクロマトグラフイーによつて分離
されるジフルオロケトンとの混合物として得られ
た。 ジフルオロケトン5は、エチルエーテル中の過
剰量のCH3MgIと0℃で15分間反応させ、次いで
アセチル化(Ac2O−ピリジン−CH2Cl2、20゜、
20時間)して、25−カルビノール、6を収率85%
で供給する(mp163−164−5゜、δ1.28(6H、s、
C−26、27)、m/e420(M−60))。カルビノール
6は、N−ブロモ−スクシンイミドと環流CCl4
中で25分間反応させアリル的に臭素化した。臭素
化した化合物は、次いでs−コリジンで、環流キ
シレン中で15分間処理して脱臭化水素化を行い、
4,6−ジエンと5,7−ジエン7との混合物を
得た。その5,7−ジエン(λmax263、272、
282及び292nm、m/e419(M−59))は、p−
TsOHでアセトン中20゜で15時間処理し、次いで
分離用薄層クロマトグラフイー(ベンゼン−エチ
ルアセテート(15:1)、3回)を行つて28%の
収率で分離された。回収された5,7ジエンは、
5%KOH−メタノールで20℃で15時間処理して
けん化され次いで、エタノールとベンゼンとの混
合物中で2.5分間0℃で照射処理して(ハノービ
ア高圧石英水銀蒸気ランプ モデル654A36;
200W)、溶液の本発明に係る24,24−ジフルオロ
−25−ヒドロキシプレビタミンD3 8を得た。 次に照射した上の溶液を、1時間環流させて、
薄層クロマトグラフイー(シリカゲル、ベンゼン
−エチルアセテート(5:1)、3回)と高圧液
体クロマトグラフイー(ゾーバツクスSIL、25cm
x2.1mm同上デユポン社(ウイルミントン、デラ
ウエア)から入手可能、CH2Cl2)で分別して、 式 で表わされる最終生成物の24,24−ジフルオロ−
25−ヒドロキシビタミンD3、(λmax264nm、
λmin228nm、m/e436(M+)421、418、403、
377、271、253、136、118)を得た。 ステートメント もし、ある目的のために必要ならば、上述のよ
うに回収したのちのアセチル化5,7−ジエンは
周知の手段によつて(MeOH中5%KOH、20゜、
15時間)けん化され、3位のアセトキシ基をヒド
ロキシル基に変換する。 また、もし所望なら、本発明のプレビタミン8
は、5゜で溶剤を蒸発させ、引き続いてシリカゲル
上でクロマトグラフイーを行つて回収でき、その
後ビタミンに変換できる。 24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシビタミン
D3の生物学的活性 雄の乳離れしたねずみを吊下式ワイアーケージ
に収容し、以下の分析に用いる前に、3週間、須
田らの(J.Nutr.100、1049(1970))、低カルシウ
ムのビタミンD欠乏食の餌を随時に与えた。 腸のカルシウム輸送 上記のような5匹又は6匹のねずみのグループ
は、それぞれ犠牲にする8、23又は30時間前に、
95%エタノール中0.05mlに溶解した24,24−ジフ
ルオロ−25−ヒドロキシビタミンD3(24F2、25−
OH2)又は25−ヒドロキシビタミンD3(25−
OHD3)のいずれかが1回分の投薬量
(650pmole)で頚静脈内に与えられた。コントロ
ールグループのねずみは、エタノールビヒクルだ
けが与えられた。それらのねずみを、それぞれの
規定の時間後に首を切り、マーチンとデルーカの
技術(Am.J.Physiology216、1351(1969)によつ
て腸のカルシウム輸送活性を測るために、その十
二指腸が用いられた。結果は下記の表に示す。 【表】 * 平均の標準偏差
腸のカルシウム輸送に関する24F2、25−OHD3
の少量投与の作用を示すため、上に指示したよう
に低カルシウム食を与えられたねずみを5匹又は
6匹のグループとして、これに、0.05mlの95%エ
タノールに溶解した24F2、25−OHD3又は25−
OHD3を1回分の投薬量頚静脈内に与えた。コン
トロールグループのねずみはビヒクルのみ与えら
れた。その投与を受けたのち、20時間又は168時
間後に、ねずみを殺し、その十二指腸を、前述し
たマーチンとデルーカ法によつて腸カルシウム輸
送活性を測定するために使つた。結果を下記の第
2表に示す。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
血清カルシウム濃度 上記のようにして餌を与えられたねずみは、そ
れぞれ6匹のねずみのグループに分けられた。そ
のねずみの1つのグループに1回分投薬量
650pmoleで24F2、25−OHD3が、第2のグルー
プに650pmoleの25−OHD3が(それぞれの場合
ビタミンD3誘導体は0.05mlの95%エタノールに溶
解する)与えられ、そして第3のグループ(コン
トロール)にはビヒクルのみが与えられた。それ
らの物質は、犠牲にする8又は29時間前に、頚静
脈内に投与された。 ねずみは、上記の表示した時間の経過後首を切
つて殺し、血液を集めて遠心分離にかけて血清を
得た。その血清(0.1ml)は1.9mlの0.1%NaCC溶
液と混合され、カルシウム濃度は原子吸収スペク
トロホトメーター(パーキン−エルマーモデル
HO−214)で測定された。結果は下記の表に示
される。 【表】 *平均の標準偏差
くる病予防活性 吊り下げたワイヤーケージ中に維持された雄の
乳離れしたねずみ(ホルツマン社、(マデイソン、
ウイスコンシン州))の6匹のグループごとに、
Am.J.Physiol204、833(1963)(Guroff DeLuca
とSteenbock)に記述された低リン食が餌として
与えられ、同時に、0.1mlのエタノール/プロピ
レングリコール(5/95 v/v)に溶解した
24F2、25−OHD3又は25−OHD3が毎日2週間皮
下に投与された。コントロールグループのねずみ
は同様の方法で餌を与えられたが、ビヒクルのみ
が皮下に投与された。 最後の皮下投与を受けてから24時間後に、ねず
みの首を切り、前記のように腸のカルシウム輸送
の測定のために十二指腸が用いられた。それらの
橈骨と尺骨が広がつた骨端板の測定のため取り出
され、大腿骨は灰分含有量の決定のため(大腿骨
は恒量になるまで乾燥され、マツフル炉中で650
℃で8時間焼いて灰とした。)取り出された。 得られた結果は下記の表に示した。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
雄の乳離れしたねずみに、上述した低リン食を
餌として与え、それぞれ5匹又は6匹のグループ
に分けた。それぞれのグループのねずみは各々1
回分投薬量(下記の表に示すとおり)の24F2、
25−OHD3又は25−OHD3を0.05mlの95%エタノ
ール中に溶解して頚静脈内に与えられた。コント
ロールグループのねずみはエタノールビヒクルの
みを受けた。上記表示の投薬を受けてから168時
間後に、ねずみの首を切つて殺し、各々のグルー
プの血液を集めねずみの線試験(line test)U.S.
Pharmacopoeia、15th Rev.、Mack Publishing
Co.、Easton Pa.、1955 p−889)に従いくる病
予防活性を決定するため橈骨と尺骨を取り出し
た。血液を集めたのち、ただちに遠心分離に付
し、血清を得た。チエンら(Anal.Chem.、28、
1756、(1956)の方法により血清中の無機リン量
が決定された。 得られた結果を次表に示す。 【表】 【表】 * 平均の標準偏差
毎日の24F2、25−OHD3投薬量に応じたくる病
予防活性を決定するために、ねずみに前述の低リ
ン食を3週間餌として与えた。それからそれらに
は、24F2、25−OHD3又は25−OHD3を(それぞ
れの場合、650ρmoleを0.1mlのエタノール/プロ
ピレングリコール(5/95 v/v)に溶解した)
皮下に毎日8日間、餌は同じに維持して(各々の
グループに9匹のねずみ)、投与した。コントロ
ールグループのねずみ(4匹のねずみ)は、同様
の方法でエタノール/プロピレングリコールビヒ
クルのみが与えられた。 最後の投薬ののち24時間経過してから、それら
を殺し、橈骨と尺骨を取り出し、くる病予防活性
を測定するために(ねずみ線試験、上のとおり)
用い、一方大腿骨は取り除かれ、前述のようにし
て灰化された。 得られた結果を下記の表に示した。 【表】 * 平均の標準偏差
上記のデータから24,24−ジフルオロ−25−ヒ
ドロキシビタミンD3は、ビタミンD様活性と断
言できる活性を示しこの点で25−ヒドロキシビタ
ミンD3と全く同様に(米国特許第3565924号参
照)効果的であることがわかる。
Claims (1)
- 1 24,24−ジフルオロ−25−ヒドロキシプレビ
タミンD3。
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