JPH02218698A - 蛋白質性要素物質及びその製造方法 - Google Patents

蛋白質性要素物質及びその製造方法

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JPH02218698A
JPH02218698A JP1139089A JP13908989A JPH02218698A JP H02218698 A JPH02218698 A JP H02218698A JP 1139089 A JP1139089 A JP 1139089A JP 13908989 A JP13908989 A JP 13908989A JP H02218698 A JPH02218698 A JP H02218698A
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誠 田村
Toshi Murai
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Kiyoshi Ito
清 伊藤
Chikanori Tomioka
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、インシュリン分泌増強活性因子の構成成分で
ある新規な蛋白性要素物質に係るものである。更に詳し
くは、ボルデテラ属に属する微生物の国体及び培養上清
中にインシュリン分泌を促進し且つ、血糖値を正常に相
持調整する藁即効宋を有する成分、すなわらボルデテラ
属産生インシュリン分泌増強活性物質(以ド、N−IA
Pと略称す。〉のf+i’1作用を軽減しIcfr規な
蛋白性要素物質に係るものである。
糖尿病薬であるN−I A Pは、その特徴的なインシ
ュリン分泌の促進及び血糖値を正常に維持調整する薬理
作用と併往て、高分子蛋白質であるが故に、N−IAP
を投与した時に発現する抗体産生により、N−IAPを
再び投与すると、アナフィラキシを誘発するという問題
点を有している。
すなわち、糖尿病の治療及び予防に有効であるインシュ
リン分泌増強活性以外の副作用の除去、特にアナフィラ
キシが抑制されたより安全な医薬品の提供が望まれてい
る。
本発明者等は鋭意研究の結果、N−IAPを、高濃度の
尿素水溶液を用いて解離をおこなうことにより新規な蛋
白性要素物質を1111・同定することに成功した。こ
の単離・同定された新規な蛋白性要素物質はそれぞれ単
独では、インシュリン分泌増強作用は不活性であるが、
この蛋白性要素物質をそれぞれ別途に投与すると、驚く
べきことにIAPを投与したときと同等のインシュリン
分泌促進作用及び血糖値を正常に維持調整する作用を有
し、更に、N−IAPの投与したときに発現する抗体産
生ににす、N−IAPを再投与するとアナフィラキシを
誘発する欠点が1しく軽減することが判明した。すなわ
ち、単独では、糖尿病の治療及び予防に有効であるイン
シュリン分泌増強作用は不粘性であるが、それぞれを別
途に投与することによりインシュリン分泌増強活ゼ1を
有し、しかも01作用を大幅に減弱した新規な蛋白性要
素物質の分離・同定を達成したものである。
以下本発明の構成について説明する。
インシュリン 本発明に於ける出発物質であるインシュリン分泌増強活
性物質(以■、”N−IAP”と略称する)は、病源竹
菌として公知のボルデテラ属に属する微生物(百日咳菌
、パラ百日咳菌、気管支敗血症菌)、特に好ましくは百
日咳■相開(Bordetella pertussr
s phase I )を固形培地や液体培地にて培養
し、その菌体もしくは培地から採取、精製して得られる
蛋白性物質である。
菌体ならびに培養物からのN−IAPの有利な採取およ
び精製は、溶解度法、クロマトグラフィー法、分子篩法
、電気泳動法および生物学的方法の一つ又は、これ等の
方法の組合せなど、当該分野で汎用の多くの分別精製方
法により達成され得、従って本発明は特定の採取精製法
に何等限定されるものではない。
N−IAPの極めて有利な採取精製方法の1例として、
カラムクロマトグラフィー的手段を提示し得る。この場
合、微生物の培養上清液は、ハイドロキシアパタイト(
生化学工業■製)、カルボキシメチルセファロース0L
−6B (ファルマシア・ファイン・クミカルズ礼製)
の充填材より成るカラムを通し次いで、セファクリル3
.−200(゛ノアルマシア・ファインケミカルズ礼製
)を用いるゲルろ過払により精製されるN−1ΔPはこ
れらのカラムに極めて選択的に吸着され、次いF 0.
5M  NaCj!含有の0.1MリンM緩衝液(pH
7、oBgの適切に選定された溶出液に溶離されて精製
物を与える。この精製物に透析操作を適宜施こずことに
より、不要な塩類が除去されて5活性のN−1ΔPtf
i得られる。又、N−1ΔPは菌体内にも存在するので
、所望の場合には、例えば菌体浮遊液にNaC1を添加
して菌体内N−r△1〕を溶液中に浸出せしめる手段な
どを採用してもよい。
N−1ΔPを産生ずるボルアア”う属の微生物は、前記
の通り百日咳菌、パラ百日咳菌及び気管支敗血症菌どし
て周知であるが、他方、これらの病源菌を、培地組成の
変更、紫外線、X線等の各種放射線照射又は変異誘起剤
の適用等の慣用の各種手段で変異せしめて得られる変異
株ら又、N−IAP産生菌として有用である。
培養方法としては、液体振盪培養方法が活性及び収率の
点で好ましいが、他の方法によることも妨げない。
なお、ボルデテラ属に属する微生物の菌学的性質、培養
条件等はBergy’s Manual orDetc
vinative Bacterioloixy第8版
1974年Baltimore : The Will
iams & Willkns CO,。
、1− Exp −Hed、 129: 523〜55
0(1969) 、細菌学実習提要:第3版第6頁以下
、昭和47年(丸首■発行)、等に記載されている。
次に、N−1APの各種物性に付き詳述する。
存在状態及び溶解特性: 脱塩後、凍結乾燥して得られる粉末は、非潮解性白色ま
たは淡褐色粉末であり、約3〜5 #l!F / at
まぐは穿温で水に溶解、6NHCJ!中では不溶性自沈
を生じ、ピリジン、ドデシル硫酸ナトリウム、メルノJ
ブトエタノール、シスアイン溶液に溶解する。冷時(4
℃)、精製活性物質の溶液に硫安、ドライアイス・アセ
トンあるいはエタノール、トリクロル酢酸、塩化亜鉛溶
液及びその他の数種の金属イオンを含む溶液等の添加に
より、各々白濁、沈澱を生ずる。水とり[10ホルムあ
るいはn−ブタノール混合液ぐは不溶性となり両液の界
面に集まる。
N−1ΔPの水溶液を80℃以にに加温すると白濁1J
る。0.5MNaej!含有0.1Mリン酸Vi ’a
j液(pl−17,0)に対し木N−IAPを溶解し、
次いで蒸留水を外液として透析すると、−時白濁するが
透析の続行により完全に再溶液し、白濁は消失する。
また、高濃度溶液゛Cは0.01M酢酸緩衝液(1)H
4,5)に対し、徹底的に透析すると淡褐色に着色して
溶解することもある。
分子量: 10・〜30%の密度匂配のアクリルアミドゲル37:
1の架橋比で、濃縮ゲルのp t−1が6,8、泳Sh
ゲルのpHが8.8、泳!11電IEE:90Vテ16
時間泳動ザる甲板法5DS−ポリアクリルアミドーアイ
スク電気泳動法(ラムクー法)で処理した後、 20%
TCAでIMl?iJ処理し、次いでクマージープルー
ご染色する。尚蛋白質のSDS化を1%SO8で100
℃5分間処理する。5OS−ゲル電気泳動法によるN−
、IAI)の分子ffi G;1105700+ 5(
100r 755 ル。
組  成 : Lowry法による蛋白質98重量%以上ある。尚、各
成分の測定方法は下記各文献に依った。
1−追−1 LOWrV、O,11,、N、J、RO3ObrOu(
Jh、A、L、Farr and R1゜Randa 
i l 。
J、B101.Chell、 193: 265195
1蛋白質成分のアミノ酸組成及び組成比(μM / 1
00μM:6NH(Jで110℃、24時間加水分解、
日立−835高速アミノ酸分析器にて分析): アスパラギン酸(Δ5D)7.5〜7.9、スレオニン
(T h r )6.8−7.8 、 IzリジンSe
r)5.9〜7.6、グルタミン酸(GILJ)8.8
・−9,4、プロリン(P r O)5.5〜6.4 
、グリシン(Gly)8.7〜9.6.7ラニン(△l
 a )9.1−10.8、シスチン/2 (Cys/
2)1.0〜2.o 、バリン(Vat166〜76、
メチA″ニン(M e t 12.5−3.3、イソロ
イシン(I l e )3.G 〜4.1 、c+イシ
ン(t−e LJ )7.5−8.7 、チロシン(T
 y r )5.1〜6.6、フxニルアラ= ン(P
 h e )3.7〜4.5 、リジン(L V S 
)3.1〜4.4 、tニスプシン(Hi s )0.
9〜1.4、アルギニン(△rQ)6.1〜6.6であ
った。
等電点pl−1(ポリアクリルアミドゲル等電点電気泳
動法により泳動し、種々の標準蛋白との泳動パターンと
比較測定) :  9.3±0.2ディスク電気泳動パ
ターン: アクリルアミドゲル(ポリアクリルアミドm度7.5%
、INKOH−氷醋酸緩衝液(pH4,3) )、試料
30埒、通電4mA、2時間/ゲル1本、アミドブラッ
ク10Bによる染色、7%酢酸溶液による脱色の条件下
でのディスク電気泳動において、距lil!(スベーナ
・ゲル先端を基準として)2.3±0、.2cmの位置
にルめで先12な単一のバンドを与える。
生物学的性質: 咄乳動物に対しインシュリン分泌増強作用及び耐糖能良
化作用を有し、これらの作用は1回の投与で数週間乃至
数ケ月にわって持続する。急’fi毒性(LD5Q)は
ddy系マウス(静注)で約200M/に9体重である
l−」L−JL−旦 1、前記N −I A Pは、5M尿素の蛋白変性剤の
共存下、カラムクロマドグラフ法等により分別されて2
種の15素物質に分離されることが確認された。
要素物質の右利な111!精製法の1例として、5M尿
素存在下に於けるイオン交換法を程、示し得る。
即わち、N−1ΔPを3〜5M、好しくは4〜5M尿素
存在下p)(5,4−6,8好しくはpH5,86,5
のリン酸I!笥液で12時間−96時間、好しくは24
時門−48時聞インキュベイトし、前記リン酸mm液に
よって平衡化したC M−tファロースカラム り1]
71−グラフにて分離・精製を行なう。
その結果、N−TAPは分子量の異なる二秒の要素物質
(以下、分子Sの大きい順に蛋白性要素物質CP−A及
びPS−1とそれぞれ命名する)に分離され、これらの
要素物質は同一カラムによる+ITグルろ過により、ア
イスフ電気泳動的に単一な物質として得られる。
このようにして得られた要素物質Ps−1は単独では、
インシュリン分泌増強活性を示さない。
またl) S −1は酸性蛋白質(゛あることが確認さ
れた。
2、要素物質Ps−1は単独では殆んど目的とり”るイ
ンシュリン分泌増強活性を示さない、すなわちインタ」
リン分泌増強不活性であるが、要素物質1’) S −
iをもう一つの1!素物質CP−八とn VltrOで
北合するとN−I A Pを再構成し、更にI) S 
−1とCP−Aとを別々に投与、例えばCP−△を3 
n / rat当り布設ll1IIlよりIVで投与し
、8時間経過後PS−1を左股関節静脈より投与すると
、N−IAPと同等のインシュリン分泌増強活性が発現
し、しかも前記N−1AI)を投与したときに発現する
抗体産生が著しく減少し、N−IAPを再投5ケると誘
発されるアナフィラキシの発生が著しく低減されること
が判明した。
3、要素物質の物性: 頭」じニュ 分子ffi:5DS−ゲル1哲気詠動法28000±1
200 等電点:  pH5,a アミノ酸分析 △sp、  9.3±1.0 、Thr、  7.4±
0.8 、 Sep、 TO,6±1.0゜G I L
J、 10.6:)1.0 、 Pr0. 4.4(0
,!i 、 G I y、 11.2:!:1.0 。
△l a、 10.6±1.0 、 Cys/21.3
±0.3 、 Va 1.6.7±O1γ。
Met、  1.6t0.3 、  I l e、  
3.2−!:0.4 、 Leu、  5.5±0,6
i’yr、4.6±0.5.Phe、3.5±0.4 
、lys、2.2±0.3゜1−1is、  17±0
,3.Δr(J、  5.9±0.6組成: towry法による蛋白質98千吊%以上ニーX−り二
A 分子量: 5OS−ゲル電気泳動法 75000±5000 塩基性蛋白質 アミノ酸分析: △s p、   6.4 二10.7  、  Thr
、   7.3±0.8  、 3er、   8.2
 ±0.9 。
Glu、 9.3±1.0 、 Pro、 6.3±0
.7 、 G I V、 11.1±1.0゜ΔIa、
9.0±0.9 、 Cys/21.2±0.3 、 
Va +、 6.2±056゜Met、2.7±0.4
. Ile、 3.4±0.4. leu、 8.4±
0.9゜7yr、 5.6±0.6 、 phe、 3
.6±0.5 、1−ys、4.7±0,5゜ト(is
、   1.1±0.3  、  Aro、   4.
9±0.5組成: towry法による蛋白質98重11%以上笈1拠」 N−IAPのlit造及び精製 1、 百日咳I相開前野株lID513(Bordet
ella pertussis phase ■、Ha
eno 5train11D513)の凍結乾燥保存菌
株(北里大学桑学NS 微生物学教室提供)をBord
et−Gengou l根培地で37℃、2日間培養後
、下記第1表に組成を示すイオン交換樹脂加Cohen
−Wheelerの変法培地(CW培地’)  200
rrtlを分注した500m1! (1) m tM 
コルベンに1白金且接種し、37℃、20−22時間振
盪培養した。この培養液の菌那を、分光光度計(波長6
!10nlll)C’測測定、加えた時の菌徂が最終哨
度約0、 IX 109個/#112となるように、イ
オン交換樹脂加CW培地1Rを分注した21の振盪コル
ベンに加え、37℃、48時間i虐培養(振鏝回数97
回/分)を行った。
尚、上記菌株の菌学的性質は、先にあげた百[」咳I相
開に関する文献の記載と一致した。
l−」−一五 カザミノ酸 酵母エキス リン酸二水素カリウム 可溶性製粉 0.5%硫酸銅液 1%塩化カルシウム液 4%塩化マグネシウム液 ポリペプトン 1%シスヂン液 0.5%硫酸鉄液 塩化ナトリウム (蒸留水を加えた総量10001dとし、1.09 1g 015g 1g 1  戒 ae   d 1g 2.5− 1ai! 2.5g 20%N a O+−1 水溶液でpl47.2に調整後、 (ダイヤイオン5A−20AP りを加え、121℃で15分間、 陰イオン交換樹脂 二二菱化成■製)3 ^圧蒸気滅菌して使 用に供した。) 1qられた48時間撮揺培養液を、56℃で30分間;
J11温した摂、4℃で遠心分離(15,OOOrpm
)シて培養上清液と菌体とに分離した。得られた培養清
液をN−I A I)の精製単離のための出発材料とし
た。。
10fiの培養上清液を1N塩酸でpH6,0に調整後
、第1粘装丁程としてハイドに1ヤシアバタイ1−カラ
ム(2,5X 4 cm >に流速200d/+115
闇で流した。
大部分の蛋白質は成性されずそのままカラムを通過し、
l]的とりるインシュリン分泌増強活ヤF(後記活性測
定法参照)も殆lυど検知されなかった。尚、蛋白質濃
度の測定は侵記第2表註記の10Wryの方法による。
その後、吸着された物質についてはまず0.OIMリン
Fi!2緩衝液(pH6,0)でカラムを洗い、次いで
リン酸緩衝液のモルf1度を0.1にpl−1を7.0
に人々上げて成性された蛋白質を順次溶出づる。しかし
目的の11−IAPはまだこの条件では溶出されず:更
に同じ条件のリン酸緩衝液に0.5MのNa(Jを含む
同組成のリン酸緩衝液で溶出した。この条件で溶出され
た蛋白質に一致して目的N−IAPを効率よく回収する
ことができた。
得られた粗N・−IAPを濃縮し、ついで透過分子間限
界a、 oooの透析膜(rhomas社製Cat、N
a 3787−F25>に入れた後蒸留水に対して2回
(計12時間) 0.01Mリン酸緩衝液(pt−+6
.0)に対して2回(iml−12時間)夫々透析した
。更に精製を進める為に、上記透析後のI’m−IAI
)を含む溶液を0.OIMリンI!l!211笥液(1
)l−16,0)で平衡化されたカルポキシメチールセ
フ70−スCL 、−6Bカラム(1,5X 10cm
 )に通した。このカラムに吸着されない物質には全く
活性は存在しなかったが、次いでリン酸緩衝液のモル濃
度を0,1にI)Hを7,0に上げ、更にfi塩0.5
Mを加えた溶出液で溶出してN−IAPを4Qた。
この部分は、ディスク電気泳動法的には未だわずかな不
純物を含むため、このN−IAPを含む溶液を濃縮し、
セファクリルS −200によりゲルろ過払をおこなう
以上の精製工程によって精製されたN−IAPの活性の
回収率、精製度等は第2表に示す通りである。
第2表 (注)蛋白質!!度はLowryの方法(Lorry、
 0. lt、 、 NJ、  Rosenbroug
h、A。L、Farr、and  R,J、Randa
lt(1951)J、Biol、Chei+、1932
65)に従って測定し、対照に牛血清フルIミンを用い
た。
上記最終工程で得られた物質の純度をポリアクリルアミ
ドゲル(ポリアクリルアミドm度 7.5%。
1NにOl−氷酢酸緩衝液(pi−14,3) )ディ
スク電気泳朔払によって検定した。
実験方法は、J、V、HaiZel、Jrの方法(Bi
ochc+nBiophys、Rcs、Comm、 1
963.13483>によった。
尚、ゲル1本当りの試料は30/11 (蛋白質として
)、通電は4mAで2時間、染色はアミド・ブラック1
0B1脱色は7%酢酸溶液による。
−2,百日咳I相開束浜株110510(Bordet
ella  Pcrtussis  phasel、 
 丁ohama  5train110510)の凍結
乾燥保存菌株(北1人学薬学部微生物学教室提供)を用
いて、実施例1−1と同様の方法にてN−IAPを生成
した。
本生成物のディスク電気泳動(+))−14,3ゲル使
用)で単一なバンドを与え、苦゛電点pHは93±0.
2を示した。またその組成は、蛋白質的98重j%以上
であり、かつアミノ酸組成および組成比は、第4表に示
ず通りであった。
東−三り一五 アミノ酸組成f8N−塩酸110℃16時闇加水分解)
μM/100μM 実施例「 要素物質の製造及び精製 精製したインシュリン分泌増強活性物質(N−IAP)
10りを5M尿素含有の0.05MリンM緩衝液(pl
−16,4)で24時間透析した後、同じ*i液で平衡
化したCM−セファ[1−スCL−6Bカラム(16φ
200ae+)に装填し、流速:2d/時及び3g/フ
ラクシフンの条件にて0,1Mリン酸、0.5M塩化ナ
トリークム及び5M尿素を含む水溶液を用い食塩密度勾
配にて溶出する。この結果を第1図に示した。インシュ
リン分泌増強物質はこの操作により2種の分子前1の異
なる要素物質(@記の通り分子mの大きい順にCP−A
及びP s−1と命名)に分離された。
これ等の構成成分を更に精製度を高めるために、まず、
P s −1分画を、集めて濃縮後、セファクリルS−
200カラム(16φX1100m+)を用いて、ゲル
ろ過をおこなった。この結果、純粋なps−1を1.2
〜得た。要素物質ps−1とCP−Aの缶内質成分のア
ミノ酸組成及び組成比率(μM /1100Lt )は
1・記の通りである。
As p、 9.3 、 Th r、 ?、4 、 S
e r、10.6゜GRu、 10.6. Pro、 
4.4 、 Gft y、 11.2゜AJ!a、 1
0.6. Cys、 /2 1.3 、 Va16.7
 。
Mat、1.6.11e、3.2 、Lcu、5.5 
Tyr、4.6 、Phe、3.5 、L ys、’2
.2 。
ト1   i   s、   1.7   、   A
rg  、  5.9CP−八 Asp、6.4 、Thr、7.3 、Ser、8.2
 。
Gft u、 9.3 、 Pro、 6.3 、 G
l y、 11.1゜Aj!a、 9.0 、 Cys
、 /2 1.2. Vaj!、 6.2 。
Met、2.7 、  I lie、 3.4 、 L
eu、 8.4 。
Tyr、5.6 、Phe、3.6 、Lys、4.7
 。
Hi   !3.  1.1   、   Arq  
、  4.9−3.上記各例でtit *+精製された
要素物質Ps−1及びCP−へは、第2図に示す通り、
ディスク電気泳動的に単一物質であることが確認された
又、インシュリン分泌堆強活性囚子と要素物質P s−
1及びCP−Aとを5DS−:Fイスク電気泳動法によ
り比較機関した結果を、第3図に示す。
尚、要素物質P s−1及びCP−への物性1よ、前記
゛″T15索物質の物性゛′の項に詳記した通りである
。又、各電気泳動の実験条件は実施例工に型する。
支LLII  薬理効果 −1,インシュリン分泌増強活性測定法名粘性物質の当
該活性は種々のインシュリン分泌刺激物質に対する動物
の反応性で測定出来るが、通常はグル」−スを刺激物質
として用いる。
0検定用使用動物 ウィスター系雄性ラット(体重130〜140g)O試
験方法 各力価の活性物質を生理食塩液に溶解し、その0.2d
をエーテル麻酔ドで股静脈内に注入し、3日侵にインシ
ュリン分泌増強活性を測定する。なお実験開始前18〜
20時間絶食させる。測定方法は、ラット尾静脈より0
.1−の血液を採取後、直ちに30%グルコース溶液を
体11001J当りlai!腹腔内に投与し、正確に1
5分後、0.1711!!の血液を再び採取する。イン
シュリン分泌増強活性は、グルコース投与前、後の血糖
値および血中インシュリン値の差より求める。血糖値は
グル」−スオキシダーゼ法、インシュリンは二抗体法に
て測定する。血糖値及びインシュリンの測定方法は夫々
下記文献及びキットによる。
血糖値ニゲルコースオキシダーゼ法 8ergmcyer、II、−Il、、and  Bc
rr+ar、I:、  in“Methods or 
cnzya+atic analysis ”Berg
meyer、H,−U、、  eds、  Hem Y
ork  Academicpress  P、123
  (1963)グルコスタット インシュリン:二抗体法 Morgan、 C,lt、、 and Ilazar
ow、^、DiabQtcS  12インシ」リンリア
キット−ダイナポット社製まず以下の式に従っ又活性物
質投与群及び対照群ラットのΔI/ΔC値を求める。
Δ■/ΔG(μIJ/R9> グルコース投与後の血[1]インシユリンW1(μU/
瀬)グルコース投与前の血中インシュリン値(μU/d
)グルコース投与前の血糖値(R9/ nl! )尚、
血糖値を活性の計算に用いるのは分泌さ゛れるインシュ
リンmが血糖値によって大きく影響されるためである。
次に活性物質の力価は、 で求める。
各物質の比活性は力価単位を、重量で除したものとする
−3,インシュリン分泌増強活性 本発明者が単離、精製したインシュリン分泌増強活性物
質は哺乳動物のインシュリン分泌を促進し、且つ血糖値
を正常値に維持調整する作用を示し、さらに抗体産生を
増強し、II胞付性免疫高める作用をも示す。本活性因
子は也めて微量でこれ等の作用を承り事から各種糖尿病
の治療おにび予防薬として、或いは免疫機能の異常によ
る疾患(例えば、悪性腫瘍、再生不良性貧血、リュウ7
チ関節炎等)に対する医薬として有用である。
本発明者は、この様な有効な活性を示すNIAPを、ぞ
の要糸物質に分離すると、薬理作用が不h!i性となる
が、これ等の要素物質をそれぞれ別途に投与することに
よって、その薬理活性を承り新規な単一物質を得ること
に成功した。要素物質PS−1及びCP−Aのインシュ
リン分泌増強活性を第6表に示す。
−4,副作用および重性 本発明者が単離、精製したインシュリン分泌11つ強活
性vIJ質は、きわめて微量で、インシュリン分泌増強
粘性を示し、各種糖尿病の治療および予防薬として極め
て有用と考えられる。しかしこのインシュリン分泌増強
活性物質には、本来の活性とは別に、白血球数を増加さ
せる作用、ヒスタミンに対する感受性を増加させる作用
等のいわゆる副作用を示し、さらに強い抗体産生の発現
、すなわち抗原性を示す事が判明した。特に抗原性は、
二回目以炭の投与時にアナフィラキシ−ショック笠の重
篤な結果をもたらしかねない。インシュリン分泌増強活
性物質は極めて徴用で、本来の効果を示すことから、こ
の副作用が発現する可能性は少ないものと考えられるが
、より安全で有効な医薬品と言う意味からは、本来の効
果を低下させないで、副作用を除去する事が望ましい事
は言うまでもない。
本発明者はインシュリン分泌増強活性物質を要素物質に
分離し、これ等要素物質をそれぞれ別途に投与すること
によって、インシュリン分泌増強活性はインシュリン分
泌増強物質と同程度の活性を有し、更に抗原性が173
0以下に減弱し、急性毒性値(1−D5(1値)も減少
することが確認された。
要素物質P s−1及びCP−Aの抗原性を第6表に示
す。
O抗原性の測定法 ハートレイ系に!!性モルモット(体重250g ) 
−8T6匹に、試料を連日3回投与し、投与後22日目
釘、同じ試料11Ipgを静脈内に注射し、その後のア
ナフィラギシーショックによる死亡数を観察した。
第   6   表 (注) N−IAP:インシュリン分泌増強活性物質[AP  
 :インシュリン分泌増強活性ASA   :抗原性 要素物質Ps〜1及びCP−への静注LD5o値を第7
表に示す。
要素物質PS−1はもう一つの要素物質c p −Aと
組合わせて主に糖尿病治療薬として有用と考えられる。
現在糖尿病に対する薬物療法は、インシュリン注射ある
いは血糖降下薬の経口投与のみでいずれも対症療法にす
ぎず、殆んど不治の病と苦ってさしつかえない。しかも
インシュリン注射のために旬日通院しなければならない
繁雑さがあり、血糖降下薬の投ちでは血糖値の異常低下
の発現が常に危険視されている。要素物質p s −i
の特徴は、もう一つの要素物質CP−Aと組合けると、
インシ」リン分泌活性を有づるのみならず白糖値をいろ
いろな条件で高めI、:時(高血糖状態、特に摂食時に
類りるグル」−ス負傭時)にのみ血中インシュリンを増
加さけて血糖値をすみやかに正常に戻す作用を発現する
。要素物質ps−1をもう一つの要素物質CP−Δと別
々に投与する和自としては、1回投与で数週間から数ケ
月にわたって活性が持続することがあり、更に特に、特
願昭52−1039γ号及び特願昭52−49641号
に開示されているインシュリン分泌増強活性物質の、抗
体産生の発現により連続投与することができなかった欠
点を解決し、連続投与可能ならしめたことである。
更に、要素物質PS−1はもう−っの要素物質CP−A
と組合せることによって糖尿病、糖尿病の合併症及び糖
尿病が起因となる様々な成人病の治療部としてばかりで
なく、前糖尿病状態への適用や、現在全く治療法がなく
悲惨な状態にある若年型糖尿病の予防及び治療部ならび
に診断薬として有用である。
以上、詳述の通り、本発明要素物質Ps−1はもう一つ
のg5素物質CP−Aと組合せることによって、糖尿病
の治療および予防薬、免疫調節剤として穫めて有用であ
り、人体に対する有効用は、活性物質の比活性に応じて
固形物として、インシュリン分泌増強活性用途において
は約数1o IJnitS/Kg<体重)〜数万Uni
ts/Kg(重量)の範囲であり、免疫増強活性用途に
ついては約数10 Units/に9<体fJi)〜数
カtlnits/?(9(体ff1)(7)flflr
ある。
患者に対する投与方法は、各活性用途とも静脈内投与が
最も有効であり、その地腹腔内、筋肉内および皮下投与
、あるいは消化管内への直接投与、経口投与、直腸内投
与および舌下、皮肉、鼻粘膜、動脈、リンパ乃至気管投
与も有効である。
投与形態としては、各活性用途とも注射液、坐剤、腸溶
・胃溶剤、舌下錠および吸入剤・等を例示し得る。注射
液の最も単純な組成を例示すれば、インク1リン分泌増
強話性10,000 Units、 N aCj!9■
および滅菌蒸溜水で11riとしたものをあげ得る。
又、薬剤に調合り−る際に、活性を劣化せしめることの
ない任意の他成分を混合し得ることも当栗者にとり自明
であろう。
【図面の簡単な説明】
第1乃至第3図は、本発明実験説明図であり、第1図は
、CM−セファ0−スCL −6Bカラムクロマトグラ
フィーである。 第2図は、Disc−電気泳動図である。 第3図は要素物質の5O8−Disc″心気泳動図であ
る。 CM−セファロース CL−68カラム70マ)−7゛
ラフイーフラクション魯号 第2図 Disc−電気デ永初図 P−A Ps −/ −IAP P−A Ps−/

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)SDS−ゲル電気泳動法による分子量が2800
    0±1200;Lowry法による蛋白質98重量%以
    上であり、且つ蛋白質成分のアミノ酸組成及び組成比(
    μM/100μM)は、 Asp、9.3±1.0、Thr、7.4±0.8、S
    er、10.6±1.0、Glu、10.6±1.0、
    Pro、4.4±0.5、Gly、11.2±1.0、
    Ala、10.6±1.0、Cys/21.3±0.3
    、Val、6.7±0.7、Met、1.6±0.3、
    Ile、3.2±0.4、Leu、5.5±0.6、T
    yr、4.6±0.5、Phe、3.5±0.4、Ly
    s、2.2±0.3、His、1.7±0.3及びAr
    g、5.9±0.6であり;且つ、等電点pH5.8で
    ありCP−Aとの組合せによりインシュリン分泌増強活
    性の発現に係わることを特徴とする蛋白性要素物質Ps
    −1。 のボルデテラ属に属する微生物を精製して得られたイン
    シュリン分泌増強活性物質を3M〜5M尿素含有リン酸
    緩衝液(pH5.4−6.8)で12−96時間インキ
    ユベイトし、次いで、リン酸緩衝液(pH5.4−6.
    8)によって平衡化したCM−セフアロースCL−6B
    カラムにて分離・精製をおこなうことを特徴とする蛋白
    性要素物質Ps−1の製造方法。
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