JPH0222288A - オリゴグルコシド誘導体 - Google Patents
オリゴグルコシド誘導体Info
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- JPH0222288A JPH0222288A JP1084154A JP8415489A JPH0222288A JP H0222288 A JPH0222288 A JP H0222288A JP 1084154 A JP1084154 A JP 1084154A JP 8415489 A JP8415489 A JP 8415489A JP H0222288 A JPH0222288 A JP H0222288A
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- amylase
- oligoglucoside
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H3/00—Compounds containing only hydrogen atoms and saccharide radicals having only carbon, hydrogen, and oxygen atoms
- C07H3/06—Oligosaccharides, i.e. having three to five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/34—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
- C12Q1/40—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving amylase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2334/00—O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases
- C12Q2334/10—O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases p-Nitrophenol derivatives
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、後記の一般式■の化合物、その製造法並びに
a−アミラーゼを測定するための基質としてのその使用
に関する。
a−アミラーゼを測定するための基質としてのその使用
に関する。
従来の技術
血清中のσ−アミラーゼの測定は、すいぞうの機能の重
要な臨床上のパラメータである。αアミラーゼを測定す
るために市場で得られる試薬は、以前には主として基質
としての澱粉又は澱粉誘導体の使用であった。しかしな
がらこの基質は、殊に均一性に関して不十分であること
が判明した。それ故この欠点を除去するために、澱粉及
び澱粉誘導体をオリゴサツカリド及びその光学的に測定
される誘導体に代え、その際殊にマルトテトラオース、
−ペンタオース、ヘキサオース及び−ヘプタオース及び
これらの誘導体によって重要な改良が得られた(ドイツ
公開特許第2741192号明細書、ドイツ公開特許第
2755803号明細書、米国特許第3879263号
明細書、米国特許第4000042号明細書)。
要な臨床上のパラメータである。αアミラーゼを測定す
るために市場で得られる試薬は、以前には主として基質
としての澱粉又は澱粉誘導体の使用であった。しかしな
がらこの基質は、殊に均一性に関して不十分であること
が判明した。それ故この欠点を除去するために、澱粉及
び澱粉誘導体をオリゴサツカリド及びその光学的に測定
される誘導体に代え、その際殊にマルトテトラオース、
−ペンタオース、ヘキサオース及び−ヘプタオース及び
これらの誘導体によって重要な改良が得られた(ドイツ
公開特許第2741192号明細書、ドイツ公開特許第
2755803号明細書、米国特許第3879263号
明細書、米国特許第4000042号明細書)。
前記オリゴグルコシドを使用してのσ−アミラーゼ測定
の特に重要な実施形式は、α−グルコシダーゼの存在で
得られた。それというのもオリゴグルコシドのグルコー
スへの完全な分解が得られ、更にグルコースはこのため
の公知方法によって容易に測定することができたからで
ある(ドイツ公開特許第2741192号明細書参照)
。
の特に重要な実施形式は、α−グルコシダーゼの存在で
得られた。それというのもオリゴグルコシドのグルコー
スへの完全な分解が得られ、更にグルコースはこのため
の公知方法によって容易に測定することができたからで
ある(ドイツ公開特許第2741192号明細書参照)
。
しかしながら、助酵素のび一グルコシダーゼは、でき上
がった試薬混合物の保管貯蔵時間を下げることが判明し
た。それというのもこれはσ−アミラーゼの影響を有し
ないで、オリゴグルコシドの一定分解を惹起するからで
ある。
がった試薬混合物の保管貯蔵時間を下げることが判明し
た。それというのもこれはσ−アミラーゼの影響を有し
ないで、オリゴグルコシドの一定分解を惹起するからで
ある。
発明が解決しようとする問題点
それ故、本発明の課題はこれらの欠点を除去し、σ−グ
ルコシダーゼの存在でも十分に保存することができ、σ
−アミラーゼの検出の正確性を改良するα−アミラーゼ
の基質を得ることである。
ルコシダーゼの存在でも十分に保存することができ、σ
−アミラーゼの検出の正確性を改良するα−アミラーゼ
の基質を得ることである。
問題点を解決するための手段
この課題は、本発明によれば、一般式I:[式中R及び
R1は、相互に独立にそれぞれ炭素原子1〜6個を有す
る直鎖状又は分校状のアルキル基又はアルコイル基又は
フェニル基を表わし、R2はグルコース単位2〜7個を
有するオリゴグルコシド基を表わし、Xは水素原子又は
光学的に測定される基を表わす]の化合物によって解決
される。
R1は、相互に独立にそれぞれ炭素原子1〜6個を有す
る直鎖状又は分校状のアルキル基又はアルコイル基又は
フェニル基を表わし、R2はグルコース単位2〜7個を
有するオリゴグルコシド基を表わし、Xは水素原子又は
光学的に測定される基を表わす]の化合物によって解決
される。
本発明による化合物ですぐ使える試薬は、α−グルコシ
ダーゼの存在でも変化をこうむらずそれ故長時間後にも
正確なα−アミラーゼの値が得られる。
ダーゼの存在でも変化をこうむらずそれ故長時間後にも
正確なα−アミラーゼの値が得られる。
アルキル基としては、メチル−二チル
プロピル−イソプロピル−ブチル−イソブチル−t−ブ
チル−〇−ペンチル基、これらの異性体、n−ヘキシル
基、この異性体並びにシクロヘキシル基が挙げられる。
チル−〇−ペンチル基、これらの異性体、n−ヘキシル
基、この異性体並びにシクロヘキシル基が挙げられる。
同じようにして、前記アルキル基に相応するアルコイル
基は、末端グルコシド基の4位及び/又は6位の酸素原
子の置換分として該当する。
基は、末端グルコシド基の4位及び/又は6位の酸素原
子の置換分として該当する。
オリゴグルコシド基R2では、グルコース単位3.4及
び6個を有するものが好ましい。
び6個を有するものが好ましい。
Xが光学的に測定される基の場合には、可視光線又は紫
外線の帯域でも色を有する基であるか又は他の化合物と
の反応により、例えば色素に変換するか又は色素と結合
して光学的に測定される基である。かかる光学的に測定
される基は当業者には明らかであり、詳説は不必要であ
る。好ましくはニトロ基を有するフェニル基、例えばニ
トロフェニル基又は3,4−ジニトロフェニル基である
。
外線の帯域でも色を有する基であるか又は他の化合物と
の反応により、例えば色素に変換するか又は色素と結合
して光学的に測定される基である。かかる光学的に測定
される基は当業者には明らかであり、詳説は不必要であ
る。好ましくはニトロ基を有するフェニル基、例えばニ
トロフェニル基又は3,4−ジニトロフェニル基である
。
本発明による化合物の製造は、末端に場合により光学的
に測定される基Xを有するグルコース単位3〜8個を有
するオリゴグルコシドから出発して、これをエステル化
又はエーテル化の条件下にオルトオキシ化合物、好まし
くはジアルコキシエタン又は相応するベンジル誘導体と
反応させ、R及びR1が一緒になって場合により置換さ
れているメチレン基を形成する一般式■の化合物を形成
し、続いて場合により例えばベルアセデル化によって遊
離OH基を封鎖し、4位又は6位の酸素原子のメチレン
橋を分解し必要の場合にはこのようにして形成した4位
又は6位の遊離OH基をなおエーテル化又はエステル化
又はエーテル置換又はエステル置換し、最後に他のOH
−封鎖基、例えばアセチル基を脱離することによって行
うことができる。
に測定される基Xを有するグルコース単位3〜8個を有
するオリゴグルコシドから出発して、これをエステル化
又はエーテル化の条件下にオルトオキシ化合物、好まし
くはジアルコキシエタン又は相応するベンジル誘導体と
反応させ、R及びR1が一緒になって場合により置換さ
れているメチレン基を形成する一般式■の化合物を形成
し、続いて場合により例えばベルアセデル化によって遊
離OH基を封鎖し、4位又は6位の酸素原子のメチレン
橋を分解し必要の場合にはこのようにして形成した4位
又は6位の遊離OH基をなおエーテル化又はエステル化
又はエーテル置換又はエステル置換し、最後に他のOH
−封鎖基、例えばアセチル基を脱離することによって行
うことができる。
この合成で中間生成物として生じる、場合により置換さ
れているメチレン橋を有する化合物は、一般式■: R3−X
II[式中Xは前記のものを表わし、R3はグルコース
単位3〜8個を有するオリゴグルコシド基を表わす]の
化合物を、p−ドルオールスルホン酸の存在で一般弐■
: R4−C−(〇−低級アルキル)2 [式中R4及びR5は相互に独立にそれぞれ水素原子又
は炭素原子1〜5個を有するアルキル基又はフェニル基
を表わす1の化合物と極性有機溶剤中で反応させること
によって製造される極性有機溶剤としては、ジメチルホ
ルムアミド又はホルムアミドが好ましいが、比較される
塩基度を有する他の極性有機溶剤も適当である意外なこ
とにも、前記反応によって均一な生成物が得られ、存在
する多くのOH基を保護することは不必要である。場合
により形成した副産物は容易に分離することができる。
れているメチレン橋を有する化合物は、一般式■: R3−X
II[式中Xは前記のものを表わし、R3はグルコース
単位3〜8個を有するオリゴグルコシド基を表わす]の
化合物を、p−ドルオールスルホン酸の存在で一般弐■
: R4−C−(〇−低級アルキル)2 [式中R4及びR5は相互に独立にそれぞれ水素原子又
は炭素原子1〜5個を有するアルキル基又はフェニル基
を表わす1の化合物と極性有機溶剤中で反応させること
によって製造される極性有機溶剤としては、ジメチルホ
ルムアミド又はホルムアミドが好ましいが、比較される
塩基度を有する他の極性有機溶剤も適当である意外なこ
とにも、前記反応によって均一な生成物が得られ、存在
する多くのOH基を保護することは不必要である。場合
により形成した副産物は容易に分離することができる。
反応は好ましくは温度約lO〜70°C1好ましくは室
温で行う。反応では殆ど副産物は形成しないので、十分
な収率を得るためには、好ましくは化学量論的過剰量の
一般弐■の化合物で作業する。
温で行う。反応では殆ど副産物は形成しないので、十分
な収率を得るためには、好ましくは化学量論的過剰量の
一般弐■の化合物で作業する。
一般弐■の化合物の例は、ジメトキシメタンジメトキシ
エタン、ジェトキシエタン、ジプロポキシエタン、ジブ
トキシエタン、ジメトキシプロパン、ジメトキシイソプ
ロパン及びフエニルジメトキシメタンである。
エタン、ジェトキシエタン、ジプロポキシエタン、ジブ
トキシエタン、ジメトキシプロパン、ジメトキシイソプ
ロパン及びフエニルジメトキシメタンである。
一般式■の化合物の例は、マルトテトラオース、マルト
ペンタオース、マルトヘキサオースマルトヘプタオース
及び末端で光学的に測定される基によって置換されてい
るこれらの誘導体、例エハモノニトロフェニルーマルト
ヘスタオ−7,,3,4−’;ニトロフェニルーマルト
ヘプタオースその他である。
ペンタオース、マルトヘキサオースマルトヘプタオース
及び末端で光学的に測定される基によって置換されてい
るこれらの誘導体、例エハモノニトロフェニルーマルト
ヘスタオ−7,,3,4−’;ニトロフェニルーマルト
ヘプタオースその他である。
本発明による化合物のすぐれた保管貯蔵性は基!、!:
してのp−ニトロフェニルマルトへフタオシド(G7p
NP)での十分に普及した常用のαアミラーゼの呈色試
験の条件下、即ち緩衝液のp H,7,1; NaCl
250 mM ; a−グルコシダーゼ約30U/m1
2;基質5 m Mで、4,6−エチリデン−p−ニト
ロフェニルマルトへブタオシド(Eth −G7pNP
)で25℃で4日間内のラグ相及び線型に関する実際に
同じ反応経過でグルコースは形成しないが、G7pNP
では著しいグルコースへの分解が生じることを示す。4
℃での同じ条件下では、本発明による基質で8日間後に
グルコースの形成は生じなかったが、これに反して公知
比較基質では著しい分解が生じた。
してのp−ニトロフェニルマルトへフタオシド(G7p
NP)での十分に普及した常用のαアミラーゼの呈色試
験の条件下、即ち緩衝液のp H,7,1; NaCl
250 mM ; a−グルコシダーゼ約30U/m1
2;基質5 m Mで、4,6−エチリデン−p−ニト
ロフェニルマルトへブタオシド(Eth −G7pNP
)で25℃で4日間内のラグ相及び線型に関する実際に
同じ反応経過でグルコースは形成しないが、G7pNP
では著しいグルコースへの分解が生じることを示す。4
℃での同じ条件下では、本発明による基質で8日間後に
グルコースの形成は生じなかったが、これに反して公知
比較基質では著しい分解が生じた。
それ数本発明によって、α−アミラーゼの基質としてα
−グルコシダーゼの存在ですぐれた性質を有する新規化
合物が得られる。
−グルコシダーゼの存在ですぐれた性質を有する新規化
合物が得られる。
実施例
例 1
4.6−エチリデン−4−ニトロフェニル−σ−D−マ
ルトヘプタオシドの製造法。
ルトヘプタオシドの製造法。
バッチ:
4−ニトロフェニル=α−D−マルトヘプタオシド
250g (196mモル)アセトアルデヒド−ジ
メチルアセタール31.5m<1(297mモル) バラ−ドルオールスルホン酸・H2O 20g DMF (ジメチルホルムアミド) 1.5Q合
成 : 4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘフタオシl’2
50g及びバラ−ドルオールスルポン酸・H2O20g
をDMF約1.512にとがし、無水にするために回転
蒸発器で回転させて乾燥する。その除水の含量が0.4
%から0.02%に下がる。
250g (196mモル)アセトアルデヒド−ジ
メチルアセタール31.5m<1(297mモル) バラ−ドルオールスルホン酸・H2O 20g DMF (ジメチルホルムアミド) 1.5Q合
成 : 4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘフタオシl’2
50g及びバラ−ドルオールスルポン酸・H2O20g
をDMF約1.512にとがし、無水にするために回転
蒸発器で回転させて乾燥する。その除水の含量が0.4
%から0.02%に下がる。
残渣をDMFl、5ffにとがし、アセトアルデヒド−
ジメチルアセタール31.5m4を添加し、先づ50°
Cで9時間撹拌し、次いで室温で約10時間維持する。
ジメチルアセタール31.5m4を添加し、先づ50°
Cで9時間撹拌し、次いで室温で約10時間維持する。
反応混合物を濃縮乾燥し、残渣を水にとかし、水酸化リ
チウム溶液でpa17.3に調節し、濾過し、750m
(2に濃縮する。
チウム溶液でpa17.3に調節し、濾過し、750m
(2に濃縮する。
HPLC分析によって、原料約20%を有するエチリデ
ン−4−二トロフェニルーα−Dマルトヘプタオシド約
75〜80%の含量が得られる。
ン−4−二トロフェニルーα−Dマルトヘプタオシド約
75〜80%の含量が得られる。
クロマトグラフィーによる精製:
試料溶液(750mff)を、Dowex50 W
X 2(200〜400メツシユ)リチウム+700ヲ
有スる150X25cmのカラムにあけ、水で流量1.
512/時間で溶出する。その際フラクション4.5Q
を採取し、クロマトグラフィーを紫外線検出器を用いて
280nmで行う。
X 2(200〜400メツシユ)リチウム+700ヲ
有スる150X25cmのカラムにあけ、水で流量1.
512/時間で溶出する。その際フラクション4.5Q
を採取し、クロマトグラフィーを紫外線検出器を用いて
280nmで行う。
約100Qによって未反応の4−二トロフェニルーα−
D−マルトヘプタオシドが溶出し、約200Qによって
求める生成物が溶出する。
D−マルトヘプタオシドが溶出し、約200Qによって
求める生成物が溶出する。
生成物を含有するフラクションを合し、濃縮乾燥する。
残渣をメタノール1.5Qにとかし、濾過し、0°Cで
イソプロパツール4a及び石油エーテル1012で沈殿
させる。4°C′?ls1夜撹拌後に、生成物を吸引濾
過し、イソプロパツール及び石油エーテルで洗浄し、乾
燥基中で30°Cで乾燥する。
イソプロパツール4a及び石油エーテル1012で沈殿
させる。4°C′?ls1夜撹拌後に、生成物を吸引濾
過し、イソプロパツール及び石油エーテルで洗浄し、乾
燥基中で30°Cで乾燥する。
収量:150g (理論量の58%)、無色の粉末、分
子量1300゜ 分析: H2O[フイシャ−(K、 Fischer)による1
4.5% イソプロパツール(ガスクロマトグラフィーによる)
5%酸性加水分解(酵素
)によるアセトアルデヒド91 % [αID25°C(乾燥物質に対する)−77°(C−
1,H2O) HPLCn面の%99(−NH2−柱5μ;アセトニト
リル/水1:l、c−燐酸1mモル/Q、305nmで
検波)。
子量1300゜ 分析: H2O[フイシャ−(K、 Fischer)による1
4.5% イソプロパツール(ガスクロマトグラフィーによる)
5%酸性加水分解(酵素
)によるアセトアルデヒド91 % [αID25°C(乾燥物質に対する)−77°(C−
1,H2O) HPLCn面の%99(−NH2−柱5μ;アセトニト
リル/水1:l、c−燐酸1mモル/Q、305nmで
検波)。
例 2
4.6−ニチリデンーマルトヘプタオースの製造法。
バッチ:
マルトヘプタオース IQg(8,7mモル)アセトア
ルデヒド−ジメチルアセタール1.8 mQ (17m
モル) パラ−ドルオールスルホン酸・H2O1gDMF
75mQ合 成 : マルトヘプタオース109及びバラ−ドルオールスルホ
ン酸−H201gをDMF100m12にとかし、濃縮
乾燥する。この方法で残渣を無水にする。残渣をDMF
75m12にとかし、アセトアルデヒド−ジメチルアセ
タール1.7肩12を加え、密閉して50℃で15時間
撹拌する。次いで反応溶液を濃縮乾燥し、残渣を水にと
かし、水酸化リチウムでpH7に中和し、濾過し、50
raQに濃縮する。
ルデヒド−ジメチルアセタール1.8 mQ (17m
モル) パラ−ドルオールスルホン酸・H2O1gDMF
75mQ合 成 : マルトヘプタオース109及びバラ−ドルオールスルホ
ン酸−H201gをDMF100m12にとかし、濃縮
乾燥する。この方法で残渣を無水にする。残渣をDMF
75m12にとかし、アセトアルデヒド−ジメチルアセ
タール1.7肩12を加え、密閉して50℃で15時間
撹拌する。次いで反応溶液を濃縮乾燥し、残渣を水にと
かし、水酸化リチウムでpH7に中和し、濾過し、50
raQに濃縮する。
クロマトグラフィーによる精製:
試料溶液50mQを、Dovex50 WX 2 (
200〜400メツシユ)L+ 3.5Qを有するクロ
マトグラフィーのカラム(180X5cm)にあけ水で
流量150 mQ/時間で溶出する。紫外線検波器(2
80nm)を通るフラクション30+IlQを採取する
。
200〜400メツシユ)L+ 3.5Qを有するクロ
マトグラフィーのカラム(180X5cm)にあけ水で
流量150 mQ/時間で溶出する。紫外線検波器(2
80nm)を通るフラクション30+IlQを採取する
。
1.8Qによりマルトヘプタオースが溶出し、2.25
Qによりエチリデン−マルトヘプタオースが溶出する。
Qによりエチリデン−マルトヘプタオースが溶出する。
主要7ラクシタンを合し、回転させて乾燥し水を若干添
加してメタノール200mQにとかしイソプロパツール
200m(2を加え、4°Cで撹拌する。その際生成物
が沈殿し、これを吸引濾過しインプロパツール及び石油
エーテルで洗浄し、真空中で25°CでP2O5によっ
て乾燥する。
加してメタノール200mQにとかしイソプロパツール
200m(2を加え、4°Cで撹拌する。その際生成物
が沈殿し、これを吸引濾過しインプロパツール及び石油
エーテルで洗浄し、真空中で25°CでP2O5によっ
て乾燥する。
収量:6.2g (理論量の60%)
分析:
水[フィシャー(K、 Fischer)による17.
6% 酸性加水分解(酵素)によるアセトアルデヒド91.2
% [αID25°C(乾燥物質に対する)=69° (c
−1,H2O) HPLC(例1の条件参照):面の% 96テトラゾリ
ウムブルーとの反応は、還元性末端が存在しないことを
示す。
6% 酸性加水分解(酵素)によるアセトアルデヒド91.2
% [αID25°C(乾燥物質に対する)=69° (c
−1,H2O) HPLC(例1の条件参照):面の% 96テトラゾリ
ウムブルーとの反応は、還元性末端が存在しないことを
示す。
例 3
試薬:
エチリデン−G7pNP 682.5mg(5,25m
モル/Q)を、塩化ナトリウム(52,5mモル/Q)
並びにアルファーグルコシダーゼ(42U/mQ)を含
有する燐酸ナトリウム緩衝液100m(1(105mモ
ル/4)にとかし、pH7,10に調節した。
モル/Q)を、塩化ナトリウム(52,5mモル/Q)
並びにアルファーグルコシダーゼ(42U/mQ)を含
有する燐酸ナトリウム緩衝液100m(1(105mモ
ル/4)にとかし、pH7,10に調節した。
試験の最終濃度:
燐酸塩緩衝液100mモル/ Q%NaCQ50 m−
E:Ay/QS MW 5 mモル/Q1 アルファー
グルコシダーゼ40U/mQ。
E:Ay/QS MW 5 mモル/Q1 アルファー
グルコシダーゼ40U/mQ。
試験バッチ:
25℃に加熱した試薬2.0mQに試料0 、 l r
aQを添加し、混合物を25°Cに加熱した。予培養時
間4分間(ラグ相)後に、吸光の増大をHg405nm
でエッペンドルフ(Eppendorf )光度計で記
録した。毎分の吸光の変化(ΔE/分)から、試料中の
アミラーゼの活性を次式によって計算した。
aQを添加し、混合物を25°Cに加熱した。予培養時
間4分間(ラグ相)後に、吸光の増大をHg405nm
でエッペンドルフ(Eppendorf )光度計で記
録した。毎分の吸光の変化(ΔE/分)から、試料中の
アミラーゼの活性を次式によって計算した。
ΔE/分・V−1000・3
一ΔE/分・7000 [U/QI
−V−d
アルファーアミラーゼの再発見:
活性の測定を、4°C及び25℃で保存した試薬で一定
の時間間隔でくり返し、次の値が得られ lこ 。
の時間間隔でくり返し、次の値が得られ lこ 。
最初の値
4時間(25°C)
8時間 //
24時間 //
32時間 〃
48時間 //
8時間(4℃)
24時間 //
48時間 l/
72時間 !/
80時間 〃
平均値/VK
+21
3.2%
3.0%
個々の値は、手工による酵素の活性の測定に対する通常
の変動中である。
の変動中である。
2.0%
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一般式 I : ▲数式、化学式、表等があります▼ I [式中R及びR_1は、相互に独立にそれぞれ炭素原子
1〜6個を有する直鎖状又は分枝状のアルキル基又はア
ルコール基又はフェニル基を表わし、R_2はグルコー
ス単位2〜7個を有するオリゴグルコシド基を表わし、
Xは水素原子又は光学的に測定される基を表わす]の化
合物。
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