JPH0249583A - β―D―1,2―グルカナーゼの製造法 - Google Patents
β―D―1,2―グルカナーゼの製造法Info
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- JPH0249583A JPH0249583A JP1136960A JP13696089A JPH0249583A JP H0249583 A JPH0249583 A JP H0249583A JP 1136960 A JP1136960 A JP 1136960A JP 13696089 A JP13696089 A JP 13696089A JP H0249583 A JPH0249583 A JP H0249583A
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- acremonium
- glucanase
- beta
- sophorose
- glucan
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、β−D−1.2−グルカナーゼの製造法に関
する。
する。
(従来の技術)
バイオマスの有効利用という観点から、最近。
セルラーゼが重要視されている。セルラーゼのうちトリ
コデルマ属により生産されるセルラーゼは。
コデルマ属により生産されるセルラーゼは。
ソフォロース(2−0−β−D −Glucopyra
nosyln−glucose)から誘導されることが
知られている〔バイオケミカル アンド バイオフィジ
カルリサーチ コミュニケーションズ; 、 Bioc
hem。
nosyln−glucose)から誘導されることが
知られている〔バイオケミカル アンド バイオフィジ
カルリサーチ コミュニケーションズ; 、 Bioc
hem。
Biophys、 Res、 C01nl11.+1+
338(1959):l 6 このソフォロースは、
2個のグルコースがβ−1,2結合で連結したタイプの
三糖であり2例えば、環状あるいは直鎖の(1→2)−
β−D−グルカンにβD−1,2−グルカナーゼを作用
させて得られる。
338(1959):l 6 このソフォロースは、
2個のグルコースがβ−1,2結合で連結したタイプの
三糖であり2例えば、環状あるいは直鎖の(1→2)−
β−D−グルカンにβD−1,2−グルカナーゼを作用
させて得られる。
β−D−1.2−グルカナーゼとしては、アスペルギル
ス フミガタス(As er 1llus fumi
atus)フザリウム オキシスポラム(Fusari
um 7ペニシリウム プレフェルディアナム(Pe
nicilliumbrefeldianum) 、ペ
ニシリウム フニキュロサム(Penicillium
funiculosum )などの糸状菌由来のβ
−D−1.2−グルカナーゼ(カナデイアンジャーナル
オブ マイクロバイオロジー; Can。
ス フミガタス(As er 1llus fumi
atus)フザリウム オキシスポラム(Fusari
um 7ペニシリウム プレフェルディアナム(Pe
nicilliumbrefeldianum) 、ペ
ニシリウム フニキュロサム(Penicillium
funiculosum )などの糸状菌由来のβ
−D−1.2−グルカナーゼ(カナデイアンジャーナル
オブ マイクロバイオロジー; Can。
J、 Microbiol、、 7.312(196
1))が挙げられる。
1))が挙げられる。
このほか、サイトファーガ アルベンジコーラ(偽1」
ユ互駐−arvensicola ) IAM1264
8株のような細菌由来のβ−D−1.2−グルカナーゼ
も知られている(特開昭59−154985号公報)。
ユ互駐−arvensicola ) IAM1264
8株のような細菌由来のβ−D−1.2−グルカナーゼ
も知られている(特開昭59−154985号公報)。
(発明が解決しようとする問題点)
上記いずれのβ−D−1.2−グルカナーゼも(1→2
)−β−D−グルカンからソフォロースへの変換能が低
く、ソフォロースが高収率で得られない。
)−β−D−グルカンからソフォロースへの変換能が低
く、ソフォロースが高収率で得られない。
(発明の目的)
本発明の目的は、環状または直鎖状(1→2)β−D−
グルカンに作用しソフォロースを高収率で生成しうるβ
−D−1.2−グルカナーゼを生産する新規微生物を得
、それを用いたβ−D−1゜2−グルカナーゼの製造法
を提供することにある。
グルカンに作用しソフォロースを高収率で生成しうるβ
−D−1.2−グルカナーゼを生産する新規微生物を得
、それを用いたβ−D−1゜2−グルカナーゼの製造法
を提供することにある。
(問題点を解決するための手段および作用)本発明で使
用される新菌種アクレモニウムSp15は、アクレモニ
ウム属に属し、麦芽エキス寒天培地、バレイショ・ブド
ウ糖寒天培地またはツアペック寒天培地で培養したとき
、アクレモニウムキリエンスとは2分生子が卵形〜楕円
形である点において菌学的性質が異なる。この菌は、β
−01,2−グルカナーゼを高率で生産する。
用される新菌種アクレモニウムSp15は、アクレモニ
ウム属に属し、麦芽エキス寒天培地、バレイショ・ブド
ウ糖寒天培地またはツアペック寒天培地で培養したとき
、アクレモニウムキリエンスとは2分生子が卵形〜楕円
形である点において菌学的性質が異なる。この菌は、β
−01,2−グルカナーゼを高率で生産する。
本発明のβ−D−1.2−グルカナーゼの製造法は、ア
クレモニウム属菌を培養し、培養物がらβ−D−1.2
−グルカナーゼを得る工程を包含し、そのことにより上
記目的が達成される。
クレモニウム属菌を培養し、培養物がらβ−D−1.2
−グルカナーゼを得る工程を包含し、そのことにより上
記目的が達成される。
上記新菌種アクレモニウムSp1sのうち、特にアクレ
モニウムSp15 DK2015株(微工研菌寄第90
19号)がβ−D−1.2−グルカナーゼ生産能が高い
という理由で好適に利用される。この菌株は発明者らに
より大阪市域東区の土壌から分離・採取された新菌株で
あり、その菌学的性質を次に示す。
モニウムSp15 DK2015株(微工研菌寄第90
19号)がβ−D−1.2−グルカナーゼ生産能が高い
という理由で好適に利用される。この菌株は発明者らに
より大阪市域東区の土壌から分離・採取された新菌株で
あり、その菌学的性質を次に示す。
■学方比1
(1)各培地における生育状態
■麦芽エキス寒天培地
生育は良好で25°C110日間の培養で直径30〜4
0mmのコロニーになる。コロニー表面形かつ平坦で周
辺部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛
状で白色の色状を呈する。コロニー裏面は淡黄色である
。
0mmのコロニーになる。コロニー表面形かつ平坦で周
辺部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛
状で白色の色状を呈する。コロニー裏面は淡黄色である
。
分生子は卵形〜楕円形であり着生状態は良好である。液
滴が見られる。子嚢果その他の有性胞子器官は形成され
ない。
滴が見られる。子嚢果その他の有性胞子器官は形成され
ない。
■バレイショ・ブドウ糖寒天培地
生育は良好で25°C210日間の培養で直径30〜4
0鵬のコロニーになる。コロニーハ円形、平坦で1周辺
部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛状
で白色の色状を呈する。コロニー裏面は淡黄色である。
0鵬のコロニーになる。コロニーハ円形、平坦で1周辺
部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛状
で白色の色状を呈する。コロニー裏面は淡黄色である。
分生子は卵形〜楕円形であり着生状態は良好である。液
滴が見られる。子嚢果その他の有性胞子器官は形成され
ない。
滴が見られる。子嚢果その他の有性胞子器官は形成され
ない。
■ツアペック寒天培地
生育は良好で25°C110日間の培養で直径25〜3
5mmのコロニーになる。コロニーハ円形、平坦で1周
辺部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛
状で、白色の色状を呈する。コロニー裏面は黄色〜茶色
で数本の溝を形成する。茶色の拡散性色素を生成する。
5mmのコロニーになる。コロニーハ円形、平坦で1周
辺部は微細なのこぎり刃状である。コロニー表面は羊毛
状で、白色の色状を呈する。コロニー裏面は黄色〜茶色
で数本の溝を形成する。茶色の拡散性色素を生成する。
分生子は、卵形〜楕円形であり着生状態は良好である。
液滴が見られる。
子嚢果その他の有性胞子器官は形成されない。
(2)生理学的性質
好気性菌であり1次の生理学的性質を有する。
(3)形態学的性質
各種培地上で子嚢果およびその他の有性生殖器官は確認
されず、塊状になったフィアロ型分生子の形成が観察さ
れる。厚膜胞子の形成も観察され、その多くは連鎖状で
ある。菌糸は多種の培地上で形成され、複雑に分枝し1
〜3μmの菌糸幅で縦横に伸長する。分生子柄は単純分
枝をなす。分生子は透明かつ卵形〜楕円形でその大きさ
は、短径が1.0〜1.6μm、長径が2.3〜3.2
μmである。厚膜胞子は透明でその大きさは、短径が3
.0〜1O80μm、長径が3.5〜12.0μmであ
る。
されず、塊状になったフィアロ型分生子の形成が観察さ
れる。厚膜胞子の形成も観察され、その多くは連鎖状で
ある。菌糸は多種の培地上で形成され、複雑に分枝し1
〜3μmの菌糸幅で縦横に伸長する。分生子柄は単純分
枝をなす。分生子は透明かつ卵形〜楕円形でその大きさ
は、短径が1.0〜1.6μm、長径が2.3〜3.2
μmである。厚膜胞子は透明でその大きさは、短径が3
.0〜1O80μm、長径が3.5〜12.0μmであ
る。
1銖少H足
発明者らは1本発明の菌株(Acremonium S
p15DK2015 )を、上記菌学的諸性質をもとに
ザ ジェネラ オブ ファンジャイ スボルレイティ
ング イン ピュアカルチ+ −(The Gener
a of FungiSporulating in
Pure Cu1ture ; A、 R,Gantn
erVerlag KG、 J、 A、 von Ar
x+ 1974)およびコンベンゾイウム オブ ソイ
ル ファンジャイ(Compendium of 5o
il Fungi ; Academic Pre
ss+ 1980 )により同定した。この菌株は
、上記のように、子嚢果その他の有性生殖器官を持たず
1分生子柄からは透明な分生子を生じ、かつ生じた分生
子がフィアロ型の性状であるところから、アインワース
(Ainworth)の分類形式に従い、アクレモニウ
ム属に属する1菌種と同定された。しかも、コロニーが
白色で分生子が透明であり、かつ厚膜胞子を形成すると
いう点からアクレモニウム キリエンス(Acremo
nium kiliense)に近似する。しかし。
p15DK2015 )を、上記菌学的諸性質をもとに
ザ ジェネラ オブ ファンジャイ スボルレイティ
ング イン ピュアカルチ+ −(The Gener
a of FungiSporulating in
Pure Cu1ture ; A、 R,Gantn
erVerlag KG、 J、 A、 von Ar
x+ 1974)およびコンベンゾイウム オブ ソイ
ル ファンジャイ(Compendium of 5o
il Fungi ; Academic Pre
ss+ 1980 )により同定した。この菌株は
、上記のように、子嚢果その他の有性生殖器官を持たず
1分生子柄からは透明な分生子を生じ、かつ生じた分生
子がフィアロ型の性状であるところから、アインワース
(Ainworth)の分類形式に従い、アクレモニウ
ム属に属する1菌種と同定された。しかも、コロニーが
白色で分生子が透明であり、かつ厚膜胞子を形成すると
いう点からアクレモニウム キリエンス(Acremo
nium kiliense)に近似する。しかし。
アクレモニウム キリエンスは上記3種の培地で培養し
たときに形成される分生子がいずれも円筒形であるのに
対して9本菌株は卵形〜楕円形であるため、この種には
属さないアクレモニウム(^cremon i um
)属の新菌種であることが判明した。
たときに形成される分生子がいずれも円筒形であるのに
対して9本菌株は卵形〜楕円形であるため、この種には
属さないアクレモニウム(^cremon i um
)属の新菌種であることが判明した。
暗1条作
上記菌株の培地は格別である必要はな(2通常の培地が
用いられる。炭素源としては、ブドウ糖。
用いられる。炭素源としては、ブドウ糖。
グリセリン、麦芽糖、デンプン、デキストラン乳糖、シ
ヨ糖、糖蜜、粉飴などが用いられる。コーン、馬鈴薯、
甘藷などを用いることもできる。
ヨ糖、糖蜜、粉飴などが用いられる。コーン、馬鈴薯、
甘藷などを用いることもできる。
窒素源としては酵母エキス、ペプトン、乾燥酵母。
大豆粉、コーンステイープリカー、アンモニア態窒素、
硝酸態窒素などが用いられる。無機塩類としては、 K
zHPO4+ KHzPO1+ CaC1z、 Mg5
Oa、 NaJPO4(NH4) JP04などが用い
られる。本面にβ−D1.2−グルカナーゼを有利に生
産させるには。
硝酸態窒素などが用いられる。無機塩類としては、 K
zHPO4+ KHzPO1+ CaC1z、 Mg5
Oa、 NaJPO4(NH4) JP04などが用い
られる。本面にβ−D1.2−グルカナーゼを有利に生
産させるには。
環状または直鎖状(1→2)−β−D−グルカンを0.
5〜5重量%、好ましくは1重量%程度の割合で添加す
る。上記環状(1→2)−β−D−グルカンは9例えば
、特開昭59−71686号公報に記載のりゾビウム
ファッセオリ(Rhizobium 画且並旦)RA−
4株や特開昭59−82092号公報に記載のアグロバ
クテリウム ラジオバクター(A robacteri
umradtobacter ) Al−5株をグルコ
ースなどを含有する通常の培地で培養することにより生
産される。
5〜5重量%、好ましくは1重量%程度の割合で添加す
る。上記環状(1→2)−β−D−グルカンは9例えば
、特開昭59−71686号公報に記載のりゾビウム
ファッセオリ(Rhizobium 画且並旦)RA−
4株や特開昭59−82092号公報に記載のアグロバ
クテリウム ラジオバクター(A robacteri
umradtobacter ) Al−5株をグルコ
ースなどを含有する通常の培地で培養することにより生
産される。
直鎖状の(1→2)−β−D−グルカンは1例えば、
Amemuraら(ジャーナル オブ ジェネラルマイ
クロバイオロジー; Journal of Gene
ral Micr。
Amemuraら(ジャーナル オブ ジェネラルマイ
クロバイオロジー; Journal of Gene
ral Micr。
biology 131,301(1985))の方
法で、アセトバクター属の菌を通常の培地で培養するこ
とにより生産される。
法で、アセトバクター属の菌を通常の培地で培養するこ
とにより生産される。
β−D−1.2−グルカナーゼを生産する本面の培養p
iは2.0〜10.0.好ましくは4.5〜7.0.培
養温度は15〜30°C2好ましくは20〜30’Cで
ある。
iは2.0〜10.0.好ましくは4.5〜7.0.培
養温度は15〜30°C2好ましくは20〜30’Cで
ある。
好気的に液体培地で撹拌もしくは振盪しながら培養を行
う。固体培地上でも培養を行なえることはいうまでもな
い。例えば、25°Cで24時間液体培養を行うと9本
菌は充分に増殖し、β−D−1.2−グルカナーゼが菌
体外へ放出される。
う。固体培地上でも培養を行なえることはいうまでもな
い。例えば、25°Cで24時間液体培養を行うと9本
菌は充分に増殖し、β−D−1.2−グルカナーゼが菌
体外へ放出される。
上記方法で培養されたアクレモニウム属菌の培養物から
β−D−1.2−グルカナーゼが通常の方法により分離
される。例えば、培養物を遠心分離にかけて菌体を除き
、必要に応じて濃縮して粗酵素液を得る。
β−D−1.2−グルカナーゼが通常の方法により分離
される。例えば、培養物を遠心分離にかけて菌体を除き
、必要に応じて濃縮して粗酵素液を得る。
さらに9例えば、上記菌体を除いた粗酵素液に硫酸アン
モニウムを加えて塩析し、得られた固形分を透析にかけ
2次いで、透析内液をセファデックス力うム、焦点電気
泳動などで精製することにより精製酵素(β−D−1.
2−グルカナーゼ)が得られる。
モニウムを加えて塩析し、得られた固形分を透析にかけ
2次いで、透析内液をセファデックス力うム、焦点電気
泳動などで精製することにより精製酵素(β−D−1.
2−グルカナーゼ)が得られる。
−D−12−グルカナーゼの
■作用および基質特異性: (l→2)−β−Dグルカ
ンに作用し、ソフォロースを生成する。
ンに作用し、ソフォロースを生成する。
■至適pHおよび安定pH範囲:至適pHは4.0〜4
.5である。安定pH範囲は4,5〜6.0であり、4
0°Cにて1時間保持したとき100%安定に存在する
(同条件でpHを3.0としたときの残存活性は80%
、 pHを7〜8としたときの残存活性は70%である
)。
.5である。安定pH範囲は4,5〜6.0であり、4
0°Cにて1時間保持したとき100%安定に存在する
(同条件でpHを3.0としたときの残存活性は80%
、 pHを7〜8としたときの残存活性は70%である
)。
■温度安定性;40°C以下において15分間安定に存
在する(50°Cにおける残存活性は80%、55°C
では65%、そして60°Cでは20%である)。
在する(50°Cにおける残存活性は80%、55°C
では65%、そして60°Cでは20%である)。
■分子量: SDS電気泳動法による分子量は35.0
00である。
00である。
■等電点:9.6
D−12−グルカナーゼの 法
20mM酢酸緩衝液(pH5,6)に環状(1→2)β
−D−グルカンを濃度2.5■/m!になるように溶解
する。この溶液0 、8 mlに適当な濃度の酵素溶液
0.2−を加え、40°Cで1時間反応させる。次いで
、ソモギ銅液1戚を添加して反応を中止させ還元力をソ
モギーネルソン法で定量する。既知濃度のソフォロース
を用いてあらかじめ検量線を作成し、これと比較してソ
フォロースの生成量を算出スる。40°Cで1時間に1
μmoleのソフォロースを生成する酵素量を1単位と
する。
−D−グルカンを濃度2.5■/m!になるように溶解
する。この溶液0 、8 mlに適当な濃度の酵素溶液
0.2−を加え、40°Cで1時間反応させる。次いで
、ソモギ銅液1戚を添加して反応を中止させ還元力をソ
モギーネルソン法で定量する。既知濃度のソフォロース
を用いてあらかじめ検量線を作成し、これと比較してソ
フォロースの生成量を算出スる。40°Cで1時間に1
μmoleのソフォロースを生成する酵素量を1単位と
する。
上記方法で得られた精製β−D−1.2−グルカナーゼ
またはβ−D−1.2−グルカナーゼの粗酵素液を環状
または直鎖状(1→2)−β−Dグルカンに作用させる
とソフォロースが得られる。
またはβ−D−1.2−グルカナーゼの粗酵素液を環状
または直鎖状(1→2)−β−Dグルカンに作用させる
とソフォロースが得られる。
例えば、環状(1→2)−β−D−グルカンを酢酸緩衝
液に溶解させ、β−D−L2−グルカナーゼを加えて4
0°Cで22時間反応させると9反応液中にソフォロー
スが生成する。これを活性炭カラムなどで精製するとソ
フォロースが得られる。
液に溶解させ、β−D−L2−グルカナーゼを加えて4
0°Cで22時間反応させると9反応液中にソフォロー
スが生成する。これを活性炭カラムなどで精製するとソ
フォロースが得られる。
ソフォロースの ′、
ソフォロースは、従来技術の項で述べたように。
セルラーゼの誘導基質として有効に利用されうる。
このほか、ソフォロースは9発明者らにより良質の甘味
を有することが発見されており、蔗糖の代わりに食品用
の甘味料として用いられうる。特に。
を有することが発見されており、蔗糖の代わりに食品用
の甘味料として用いられうる。特に。
ソフォロースは摂取してもほとんどノンカロリーである
(動物はグルコースのβ−1,2結合を切断する酵素を
持たない)ため、ダイエツト食品用に好適に利用される
。
(動物はグルコースのβ−1,2結合を切断する酵素を
持たない)ため、ダイエツト食品用に好適に利用される
。
(実施例)
以下に本発明を実施例につき説明する。
実施炎上1皿朱Ω分離Y
大阪市域東区の土壌から分離した菌株のうち。
表1に示す培地に生育しうる菌株を検索した。表1の培
地成分のうち環状(1→2)−β−D−グルカンはジャ
ーナル オブ ジェネラル マイクロバイオロジー(J
、 Gen、 Microbiol、、 128.18
73(1982) )に記載の方法で調製し、精製を行
った。
地成分のうち環状(1→2)−β−D−グルカンはジャ
ーナル オブ ジェネラル マイクロバイオロジー(J
、 Gen、 Microbiol、、 128.18
73(1982) )に記載の方法で調製し、精製を行
った。
(以下余白)
表1
得た菌をそれぞれ同組成の液体培地にて30°Cで2日
間培養した。培養液を濾紙にスポットし、ブタノール−
ピリジン−水(6: 4 : 3)を展開溶媒としてペ
ーパークロマトグラフィーを行った。
間培養した。培養液を濾紙にスポットし、ブタノール−
ピリジン−水(6: 4 : 3)を展開溶媒としてペ
ーパークロマトグラフィーを行った。
ソフォロースのスポットの特に大きい培養液に生育する
菌を取り出して平板培地で培養を行った。
菌を取り出して平板培地で培養を行った。
この菌は本発明のアクレモニウムSp15 DK201
5株であることが、その生育状態、生理学的性質および
形態学的性質から確認された。
5株であることが、その生育状態、生理学的性質および
形態学的性質から確認された。
この菌を麦芽エキス寒天培地に1週間に1度の割合で植
え継ぎ、2ケ月を経過した菌について目視観察したとこ
ろ、菌の形態が変化していないことが確認された。
え継ぎ、2ケ月を経過した菌について目視観察したとこ
ろ、菌の形態が変化していないことが確認された。
2 の および の
表2に示す培地を調製し、 500mI!、の坂ロフラ
スコ10本にこの培地を60m lずつ分注し、滅菌を
行った。
スコ10本にこの培地を60m lずつ分注し、滅菌を
行った。
表2
この滅菌培地10本に実施例1で得られたアクレモニウ
ム5T115 DK2015株を一白金耳ずつ植菌し、
30°Cにて48時間振盪培養を行った。次に、それぞ
れの培地に滅菌した環状(1→2)−β−D−グルカン
を1%の濃度となるように添加し、さらに24時間培養
を行った。
ム5T115 DK2015株を一白金耳ずつ植菌し、
30°Cにて48時間振盪培養を行った。次に、それぞ
れの培地に滅菌した環状(1→2)−β−D−グルカン
を1%の濃度となるように添加し、さらに24時間培養
を行った。
この培養物を遠心分離しく5000rpm 、 10分
間)。
間)。
菌体を除去した。このようにして合計500m lの粗
酵素液が得られた。この粗酵素液の酵素活性は10U/
dであった。
酵素液が得られた。この粗酵素液の酵素活性は10U/
dであった。
上記粗酵素液に硫酸アンモニウムをその飽和濃度の約8
0%となるように加え、析出した固形分を濾取した。こ
れを20+nM酢酸緩衝液(pH5,6) 50m1l
に溶解し、セルロースフィルムを用い同緩衝液に対して
透析処理を行った。透析内液をsp−セファデックス充
填カラムにかけて吸着させた後、201酢酸緩衝液(p
H5,6)中、0〜0.5MのNaC1濃度勾配法で溶
出を行った。溶出するフラクションを集めセファデック
スG−75充填カラムでゲル濾過を行い さらにSP−
セファデックス充填カラムで精製を行った。これを焦点
電気泳動にかけ、β−D1.2−グルカナーゼ3■を得
た。このβ−D1.2−グルカナーゼの比活性は50U
/■蛋白質であった。
0%となるように加え、析出した固形分を濾取した。こ
れを20+nM酢酸緩衝液(pH5,6) 50m1l
に溶解し、セルロースフィルムを用い同緩衝液に対して
透析処理を行った。透析内液をsp−セファデックス充
填カラムにかけて吸着させた後、201酢酸緩衝液(p
H5,6)中、0〜0.5MのNaC1濃度勾配法で溶
出を行った。溶出するフラクションを集めセファデック
スG−75充填カラムでゲル濾過を行い さらにSP−
セファデックス充填カラムで精製を行った。これを焦点
電気泳動にかけ、β−D1.2−グルカナーゼ3■を得
た。このβ−D1.2−グルカナーゼの比活性は50U
/■蛋白質であった。
3−D−12−グルカナーゼを い
たソフォロースのfi。1
20mM酢酸緩衝液(pH5,6) 50dに環状(1
→2)β−D−グルカン2gおよび実施例2で得られた
精製β−n−1,2−グルカナーゼ135Uを加えた。
→2)β−D−グルカン2gおよび実施例2で得られた
精製β−n−1,2−グルカナーゼ135Uを加えた。
これを40°Cにて22時間保持した後、活性炭カラム
にかけて吸着させた。このカラムに10%エタノール水
溶液を流して吸着物を溶離させた。溶離液からは精製ソ
フォロース960■が得られた。
にかけて吸着させた。このカラムに10%エタノール水
溶液を流して吸着物を溶離させた。溶離液からは精製ソ
フォロース960■が得られた。
環状(l→2)−β−D−グルカンの代わりに直鎖状(
1→2)−β−D−グルカン(Amemuraらの方法
により調製)3gを用いたこと以外は実施例3と同様に
操作したところ、精製ソフォロース1400■が得られ
た。
1→2)−β−D−グルカン(Amemuraらの方法
により調製)3gを用いたこと以外は実施例3と同様に
操作したところ、精製ソフォロース1400■が得られ
た。
ル較拠
アクレモニウム クレソゲナム(ATCC14615)
を実施例2と同様の方法で培養したところ2合計500
戚のβ−n−1,2−グルカナーゼの粗酵素液が得られ
た。その酵素活性は3U/mlであった。
を実施例2と同様の方法で培養したところ2合計500
戚のβ−n−1,2−グルカナーゼの粗酵素液が得られ
た。その酵素活性は3U/mlであった。
(発明の効果)
本発明によれば、このように、新菌種アクレモニウムS
p15を利用して、β−D−12−グルカナーゼを高率
で生産することが可能となる。β−D−1.2−グルカ
ナーゼは菌体外に放出されるため容易に採取・精製され
得る。得られたβD−1,2−グルカナーゼは環状また
は直鎖状(1→2)−β−D−グルカンに作用し、ソフ
ォロースを効果的に生成する。ソフォロースはセルラー
ゼの誘導基質として、さらに各種食品の甘味剤として利
用され得る。
p15を利用して、β−D−12−グルカナーゼを高率
で生産することが可能となる。β−D−1.2−グルカ
ナーゼは菌体外に放出されるため容易に採取・精製され
得る。得られたβD−1,2−グルカナーゼは環状また
は直鎖状(1→2)−β−D−グルカンに作用し、ソフ
ォロースを効果的に生成する。ソフォロースはセルラー
ゼの誘導基質として、さらに各種食品の甘味剤として利
用され得る。
以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、アクレモニウム属に属し、β−D−1,2−グルカ
ナーゼ生産能を有する菌を培養し、培養物からβ−D−
1,2−グルカナーゼを得る工程を包含するβ−D−1
,2−グルカナーゼの製造法。 2、前記アクレモニウム属菌がアクレモニウムSp15
であり、 該アクレモニウムSp15が、麦芽エキス寒天培地、バ
レイショ・ブドウ糖寒天培地またはツァペック寒天培地
で培養したとき、アクレモニウムキリエンスとは、分生
子が卵形〜楕円形である点において菌学的性質が異なる
新菌種である、 特許請求の範囲第1項に記載の製造法。 3、前記アクレモニウム属菌がアクレモニウムSp15
DK2015株(微工研菌寄第9019号)である特許
請求の範囲第2項に記載の製造法。 4、前記β−D−1,2−グルカナーゼが(1→2)−
β−D−グルカンに作用しソフォロースを生成する能力
を有する特許請求の範囲第1項に記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1136960A JPH0249583A (ja) | 1989-05-29 | 1989-05-29 | β―D―1,2―グルカナーゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1136960A JPH0249583A (ja) | 1989-05-29 | 1989-05-29 | β―D―1,2―グルカナーゼの製造法 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61264761A Division JPS63116690A (ja) | 1986-11-06 | 1986-11-06 | 新菌種アクレモニウムSp15 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0249583A true JPH0249583A (ja) | 1990-02-19 |
| JPH0251595B2 JPH0251595B2 (ja) | 1990-11-07 |
Family
ID=15187519
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1136960A Granted JPH0249583A (ja) | 1989-05-29 | 1989-05-29 | β―D―1,2―グルカナーゼの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0249583A (ja) |
-
1989
- 1989-05-29 JP JP1136960A patent/JPH0249583A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0251595B2 (ja) | 1990-11-07 |
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