JPH03224494A - 生理活性多糖ronの生産法 - Google Patents
生理活性多糖ronの生産法Info
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- JPH03224494A JPH03224494A JP2022023A JP2202390A JPH03224494A JP H03224494 A JPH03224494 A JP H03224494A JP 2022023 A JP2022023 A JP 2022023A JP 2202390 A JP2202390 A JP 2202390A JP H03224494 A JPH03224494 A JP H03224494A
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- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2451—Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
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- C08B37/0009—Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid alpha-D-Glucans, e.g. polydextrose, alternan, glycogen; (alpha-1,4)(alpha-1,6)-D-Glucans; (alpha-1,3)(alpha-1,4)-D-Glucans, e.g. isolichenan or nigeran; (alpha-1,4)-D-Glucans; (alpha-1,3)-D-Glucans, e.g. pseudonigeran; Derivatives thereof
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- Polymers With Sulfur, Phosphorus Or Metals In The Main Chain (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は優れた抗腫瘍活性、免疫調節活性並びに感染防
御活性を有する生理活性多糖RONを蔗糖から生成する
作用を有する該生理活性多糖RON合成酵素および該酵
素を用いて該生理活性多糖RONを生産する方法に関す
る。
御活性を有する生理活性多糖RONを蔗糖から生成する
作用を有する該生理活性多糖RON合成酵素および該酵
素を用いて該生理活性多糖RONを生産する方法に関す
る。
本発明に係る生理活性多糖RONおよび米糠から該生理
活性多糖RONを抽出する方法は既に特公開62−71
73号公報に開示されている。
活性多糖RONを抽出する方法は既に特公開62−71
73号公報に開示されている。
上記従来法では米糠を原料として生理活性多糖RONを
抽出し、精製するものであるため、原料の品質が不安定
で得られる物質の物性、生理活性等に相当なバラツキが
ある上に、収率が低く、しかも多くの工程を必要とし、
時間的、経済的な課題があった。
抽出し、精製するものであるため、原料の品質が不安定
で得られる物質の物性、生理活性等に相当なバラツキが
ある上に、収率が低く、しかも多くの工程を必要とし、
時間的、経済的な課題があった。
そこで、本発明者らは上記課題を解決すべく検討を重ね
た結果、ロイコノストック属に属する微生物が菌体外に
生理活性多糖RONを蔗糖から合成する酵素、すなわち
生理活性多It!RON合成酵素を生産することを見出
し、本酵素を蔗糖に作用させることによって物理化学的
性質や生理活性の安定した生理活性多糖RONを高い収
率で得られることを確認して本発明を完成した。
た結果、ロイコノストック属に属する微生物が菌体外に
生理活性多糖RONを蔗糖から合成する酵素、すなわち
生理活性多It!RON合成酵素を生産することを見出
し、本酵素を蔗糖に作用させることによって物理化学的
性質や生理活性の安定した生理活性多糖RONを高い収
率で得られることを確認して本発明を完成した。
[課題を解決するための手段〕
すなわち、本発明は蔗糖に作用して下記の性質を有する
生理活性多糖RONを生成せしめる生理活性多llRO
M合成酵素および該酵素を蔗糖に作用させて該生理活性
多11RONを生成せしめで回収することを特徴とする
生理活性多11RONの生産法を提供するものである。
生理活性多糖RONを生成せしめる生理活性多llRO
M合成酵素および該酵素を蔗糖に作用させて該生理活性
多11RONを生成せしめで回収することを特徴とする
生理活性多11RONの生産法を提供するものである。
(1)性状:白色の無晶性粉末で無味無臭(2)溶解性
:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠な溶液となる
。ホルムアミド、ジメチルスルホキシドに可溶、アルコ
ール、アセトン、ヘンゼン、酢酸エチル、ヘキサン、ク
ロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性(4)構成糖:
グルコースのみ (5)元素分析値: C: 44.0〜45.0χ+H
:6.1〜6.3χ(6)構造:α−1,6結合を主鎖
としたα−グルカンで少量の1.3.6位分岐構造を有
する。
:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠な溶液となる
。ホルムアミド、ジメチルスルホキシドに可溶、アルコ
ール、アセトン、ヘンゼン、酢酸エチル、ヘキサン、ク
ロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性(4)構成糖:
グルコースのみ (5)元素分析値: C: 44.0〜45.0χ+H
:6.1〜6.3χ(6)構造:α−1,6結合を主鎖
としたα−グルカンで少量の1.3.6位分岐構造を有
する。
(7)蛍白質:殆んど含有せず
(8)分子量二透析膜を通過せず、分子量1万以上と推
定される。
定される。
(9)比旋光度= [α〕r・+190°〜+220゜
(c=0.5. ホルムアミド) aO)呈色反応:アンスロン硫酸反応 フェノール硫酸
反応が陽性、ヒ゛′ウレント反応、ローリー・フォーリ
ン反応、エルソン・モルガン反応、 ヨード反応が陰
性 0υ 融点:明確な融点を示さない。
(c=0.5. ホルムアミド) aO)呈色反応:アンスロン硫酸反応 フェノール硫酸
反応が陽性、ヒ゛′ウレント反応、ローリー・フォーリ
ン反応、エルソン・モルガン反応、 ヨード反応が陰
性 0υ 融点:明確な融点を示さない。
Q2) 紫外部吸収スペクトル:特徴的吸収を有さす
。
。
(13) 赤外部吸収スペクトル:α−グルカンに特
徴的吸収を示す。
徴的吸収を示す。
(+4) 13C−NMRスペクトル:主シグナルと
してα−1,6グルカンに特徴的スペクトルを示す。
してα−1,6グルカンに特徴的スペクトルを示す。
(151 抗腫瘍作用を有す。
本発明の生理活性多11RON合成酵素は、以下の方法
によって製造することができる。
によって製造することができる。
蔗糖に作用して前記の性質を有する生理活性多$1RO
Nを生成せしめる生理活性多糖RON合成酵素を生産す
る能力を有する微生物を培地に培養し、培養物中に該生
理活性多糖RON合成酵素を蓄積せしめ、これを採取す
る。ここで、本酵素を生産する能力を有する微生物とし
てはロイコノストック属に属する微生物がある。具体的
には、生理活性多11RON生産能を有する微生物とし
ては、米糠等より分離されたロイコノストック・メセン
テロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(L
euconostoc mesehteroides
5ubsp、 dextranicus)BL−75株
および同46−1株があり、その菌学的性質は以下の通
りである。
Nを生成せしめる生理活性多糖RON合成酵素を生産す
る能力を有する微生物を培地に培養し、培養物中に該生
理活性多糖RON合成酵素を蓄積せしめ、これを採取す
る。ここで、本酵素を生産する能力を有する微生物とし
てはロイコノストック属に属する微生物がある。具体的
には、生理活性多11RON生産能を有する微生物とし
ては、米糠等より分離されたロイコノストック・メセン
テロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(L
euconostoc mesehteroides
5ubsp、 dextranicus)BL−75株
および同46−1株があり、その菌学的性質は以下の通
りである。
虱コL採
ダラム染色 十
形 態 球〜卵型、0.4〜0.7μm3〜4
連鎖、 クラスクー形成 カタラーゼ 反応 オキシダーゼ反応 遊離酸素要求性 フルギニン の分解 乳酸発酵 へテロ型。
連鎖、 クラスクー形成 カタラーゼ 反応 オキシダーゼ反応 遊離酸素要求性 フルギニン の分解 乳酸発酵 へテロ型。
炭水化物からの酸産生
アラビノース
フラクトース
ガラクトース
グルコース
ラクトース
マンノース
トレハロース
エスクリンの加水分解性
デキストラン産生
通性嫌気性
り一乳酸
食塩存在下での生育
3.0χNaC1
6,5χNaC1
各種初発pHでの生育
pH4,8
pH6,5
グルコース培地での最終pH
土旦二土抹
ダラム染色
形 態
十
球〜卵型、0.4〜0.6μm。
ベアおよび短い連鎖
+
+
4.3
カタラーゼ 反応
オキシダーゼ反応
遊離酸素要求性
アルギニン の分解
乳酸発酵 へテロ型。
炭水化物からの酸産生
アラビノース
フラクトース
ガラクトース
グルコース
通性嫌気性
り一乳酸
十
+
+
ラクトース +
マンノース +
トレハロース +
Iスクリンの加水分解性 十
デキストラン産生 十
食塩存在下での生育
3.0χNaC42+
6.5χNaC1
各種初発pHでの生育
pif 4.8
pH6,5+
グルコース培地での最終pf(4,1
以上の性状から両菌株の菌学的性質を要約すると次の通
りになる。すなわち、1:ダラム染色陽性で通性嫌気性
である。2:形態は球〜卵型の連鎖である。3:アラビ
ノースを除き、炭水化物からの酸産生は陽性である。4
:乳酸醗酵のタイプかへテロ型であり、産生ずる乳酸が
0体のみである。5:アルギニン分解反応は陰性である
。
りになる。すなわち、1:ダラム染色陽性で通性嫌気性
である。2:形態は球〜卵型の連鎖である。3:アラビ
ノースを除き、炭水化物からの酸産生は陽性である。4
:乳酸醗酵のタイプかへテロ型であり、産生ずる乳酸が
0体のみである。5:アルギニン分解反応は陰性である
。
BL −75株について「 パージエイズ・マニュアル
・オブ・デターミネティブ・バクテリオロジー」第8版
(1974年) (Bergey’s Manual
of Deteryarnat3veBacterio
logy 8th edition)によれば、上記の
諸性質より本菌株はロイコノストックμμ瓜凹因山瓜)
属に属し、しかもデキストラン産生陽性であり、かつア
ラビノースからの酸産生が陰性であることおよび6.5
χNaCj!存在下で発育しない点からロイコノストッ
ク・デキストラニカム(Leuconos tocde
xtranicum)に属する菌株BL−75株と同定
し、本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所にFER
MBP−2242として寄託した。
・オブ・デターミネティブ・バクテリオロジー」第8版
(1974年) (Bergey’s Manual
of Deteryarnat3veBacterio
logy 8th edition)によれば、上記の
諸性質より本菌株はロイコノストックμμ瓜凹因山瓜)
属に属し、しかもデキストラン産生陽性であり、かつア
ラビノースからの酸産生が陰性であることおよび6.5
χNaCj!存在下で発育しない点からロイコノストッ
ク・デキストラニカム(Leuconos tocde
xtranicum)に属する菌株BL−75株と同定
し、本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所にFER
MBP−2242として寄託した。
その後、ロイコノストック・デキストラニカムの種が名
称変更されたことを知り、新たに見出された46−1株
とともに、「バージエイズ・マニュアル・オブ・システ
マティック・バクテリオロジー第2巻」第9版、 (1
986年)、および「メソッド・イン・マイクロバイオ
ロジー」16巻、147〜178頁(1984年)に従
い、再同定し、両菌株とも、ロイコノストック・メセン
テロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(L
euconostoc mesentero4t3es
subsp、 dextranicum)に属する菌株
と同定された。
称変更されたことを知り、新たに見出された46−1株
とともに、「バージエイズ・マニュアル・オブ・システ
マティック・バクテリオロジー第2巻」第9版、 (1
986年)、および「メソッド・イン・マイクロバイオ
ロジー」16巻、147〜178頁(1984年)に従
い、再同定し、両菌株とも、ロイコノストック・メセン
テロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(L
euconostoc mesentero4t3es
subsp、 dextranicum)に属する菌株
と同定された。
従って、BL−75株は、ロイコノストック・メセンテ
ロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(Le
uconostoc mesenteroides
5ubsp、 dextranicum)BL−7
5株と名称変更し、46−1株は、同46−1株と命名
し、工業技術院微生物工業技術研究所にFERMBP−
2670として寄託されている。
ロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム(Le
uconostoc mesenteroides
5ubsp、 dextranicum)BL−7
5株と名称変更し、46−1株は、同46−1株と命名
し、工業技術院微生物工業技術研究所にFERMBP−
2670として寄託されている。
本発明者らは、生理活性多糖RON生産菌の検索をさら
に続けたところ、公知菌株の中に上記BL−75株、
46−1株と同様な生理活性多糖RON生産能を有して
いる菌株を見出した。すなわち、ロイコノストック・メ
センテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム
NCFB 517株(FERM BP−2711)、同
NCFB 531株(FERM BP−2712)、同
NCFB861株(FERM BP−2713)、同N
CFB 864株(F):RM BP−2714) 、
同NCFB880株(FERM BP−2715)、同
^TCC1956株、同IFO3349株などであり、
これら菌株はBL−75株と同様な方法により、生理活
性多1!RONを生産することができる。
に続けたところ、公知菌株の中に上記BL−75株、
46−1株と同様な生理活性多糖RON生産能を有して
いる菌株を見出した。すなわち、ロイコノストック・メ
センテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラニカム
NCFB 517株(FERM BP−2711)、同
NCFB 531株(FERM BP−2712)、同
NCFB861株(FERM BP−2713)、同N
CFB 864株(F):RM BP−2714) 、
同NCFB880株(FERM BP−2715)、同
^TCC1956株、同IFO3349株などであり、
これら菌株はBL−75株と同様な方法により、生理活
性多1!RONを生産することができる。
したがって、ロイコノストック属に属し、生理活性多糖
RON生産能を有する酵素を生産しうる微生物であれば
、本発明による生理活性多糖RONの製造に利用するこ
とができる。
RON生産能を有する酵素を生産しうる微生物であれば
、本発明による生理活性多糖RONの製造に利用するこ
とができる。
生理活性多waRON生産能を有する酵素を生産しうる
微生物を培養する方法は、原則的には一般の微生物の培
養方法に準ずればよいが、ロイコノストック属に属する
微生物は特に酸素を要求しない通性嫌気性菌であること
から、通常は液体培地による静置培養あるいは温度分布
を均一にする目的で緩和な条件での攪拌培養が有利であ
る。
微生物を培養する方法は、原則的には一般の微生物の培
養方法に準ずればよいが、ロイコノストック属に属する
微生物は特に酸素を要求しない通性嫌気性菌であること
から、通常は液体培地による静置培養あるいは温度分布
を均一にする目的で緩和な条件での攪拌培養が有利であ
る。
培養に用いる培地としては、炭素源として蔗糖が生理活
性多$1RON生産能を有する酵素を生産するために必
須である。そのほか上記酵素生産菌が利用できる他の炭
素源や窒素源、無機物等の栄養源を含有する培地であれ
ば合成培地、半合成培地および天然培地のいずれでも用
いることができる。
性多$1RON生産能を有する酵素を生産するために必
須である。そのほか上記酵素生産菌が利用できる他の炭
素源や窒素源、無機物等の栄養源を含有する培地であれ
ば合成培地、半合成培地および天然培地のいずれでも用
いることができる。
蔗糖としては粗製品から精製品まで任意に使用でき、た
とえば上白糖、黒糖、II蜜、廃塘蜜、試薬用サッカロ
ース等のいずれも利用することができる。蔗糖の濃度は
高い捏水酵素の生産性を向上させるが、同時に生成する
生理活性多$11RONの濃度が高くなって菌体の除去
が困難となるので、通常は1〜3%程度が適当である。
とえば上白糖、黒糖、II蜜、廃塘蜜、試薬用サッカロ
ース等のいずれも利用することができる。蔗糖の濃度は
高い捏水酵素の生産性を向上させるが、同時に生成する
生理活性多$11RONの濃度が高くなって菌体の除去
が困難となるので、通常は1〜3%程度が適当である。
窒素源とじては酵母エキス、ペプトン、グルテンミール
、大豆粉、コーンステイープリカー、乾燥酵母、肉エキ
ス、硫酸アンモニウム、尿素等が使用できる。その他、
無機物としてリン酸塩やマグネシウム、マンガン 鉄、
コバルト、ナトリラムなどの金属塩等を適宜添加するこ
とができる。本酵素の生成にはp)lが影響するので、
特にリン酸塩は培地の緩衝能を高めるために1〜3%程
度添加することが望ましい。
、大豆粉、コーンステイープリカー、乾燥酵母、肉エキ
ス、硫酸アンモニウム、尿素等が使用できる。その他、
無機物としてリン酸塩やマグネシウム、マンガン 鉄、
コバルト、ナトリラムなどの金属塩等を適宜添加するこ
とができる。本酵素の生成にはp)lが影響するので、
特にリン酸塩は培地の緩衝能を高めるために1〜3%程
度添加することが望ましい。
培養温度は、通常の中温菌の培養温度に準ずればよく、
15〜45℃1好ましくは20〜30℃が適当であり、
培養時間は通常10〜30時間であるが、本酵素の生成
が確認されたとき、好ましくは生成が最大に達した後に
培養を停止すればよい。
15〜45℃1好ましくは20〜30℃が適当であり、
培養時間は通常10〜30時間であるが、本酵素の生成
が確認されたとき、好ましくは生成が最大に達した後に
培養を停止すればよい。
本酵素は菌体中にも培地中にも蓄積されるので、培養物
中からの本酵素の回収は、遠心分離等により集めた菌体
から行ってもよいし、菌体を除いた上澄液から行っても
よい。なお、本酵素は培養物自体や上記菌体、上澄液な
どを粗酵素として使用することもできる。本酵素を菌体
から回収する場合、適当な手段、たとえば界面活性剤に
よる抽出や菌体破砕等により本酵素を可溶化後、遠心分
離等の固液分離にて不溶物を除去する。しかし、上澄液
からの回収の方が簡便であるので、通常は上澄液から本
酵素を回収する。
中からの本酵素の回収は、遠心分離等により集めた菌体
から行ってもよいし、菌体を除いた上澄液から行っても
よい。なお、本酵素は培養物自体や上記菌体、上澄液な
どを粗酵素として使用することもできる。本酵素を菌体
から回収する場合、適当な手段、たとえば界面活性剤に
よる抽出や菌体破砕等により本酵素を可溶化後、遠心分
離等の固液分離にて不溶物を除去する。しかし、上澄液
からの回収の方が簡便であるので、通常は上澄液から本
酵素を回収する。
本酵素の精製は、酵素の精製に通常使用される手段、た
とえば有機溶媒沈澱、塩析、各種クロマトグラフィー(
イオン交換、ゲル濾過、疎水クロマト アフィニティク
ロマト、ハイドロキシアパタイト等)、限外濾過などの
単独あるいは組合せにより行うことができるが、限外濾
過による低分子成分(分子量3万以下)の除去だけでも
本酵素は十分に精製される。
とえば有機溶媒沈澱、塩析、各種クロマトグラフィー(
イオン交換、ゲル濾過、疎水クロマト アフィニティク
ロマト、ハイドロキシアパタイト等)、限外濾過などの
単独あるいは組合せにより行うことができるが、限外濾
過による低分子成分(分子量3万以下)の除去だけでも
本酵素は十分に精製される。
次に、本発明の生理活性多糖RON合成酵素の性質を示
す。なお、本酵素の標品としては後記実施例1で得られ
た酵素を用いた。また、酵素力価の測定は以下の方法に
より実施した。
す。なお、本酵素の標品としては後記実施例1で得られ
た酵素を用いた。また、酵素力価の測定は以下の方法に
より実施した。
酵素力価の測定:生理活性多糖RONの生成と同時に遊
離された果糖の量を測定して求める。
離された果糖の量を測定して求める。
あらかじめ30℃に温めた蔗$1 (60% w/v)
酢酸緩衝液(0,3M、 pH5,5)からなる反応試
液に、同じく30℃に温めた酵素液(0,5〜IU/d
)を反応試液の5等量加え、よくかきまぜて30℃で3
0分間反応させる。この反応液に、反応液の4等量の4
0−M水酸化ナトリウム溶液を加えて反応を停止させる
。この反応停止液を適当に希釈し、ソモジー法(Som
ogyi法、 M、 Son+ogyi : J、 B
iol、 Chen+、。
酢酸緩衝液(0,3M、 pH5,5)からなる反応試
液に、同じく30℃に温めた酵素液(0,5〜IU/d
)を反応試液の5等量加え、よくかきまぜて30℃で3
0分間反応させる。この反応液に、反応液の4等量の4
0−M水酸化ナトリウム溶液を加えて反応を停止させる
。この反応停止液を適当に希釈し、ソモジー法(Som
ogyi法、 M、 Son+ogyi : J、 B
iol、 Chen+、。
160.61(1945))により還元糖を果糖として
定量する。対照として蔗糖を加えないで同様に処理した
酵素反応停止液中の還元糖を果糖として定量し、補正を
行う。求めた果糖量から反応に関与した蔗糖量を求める
。生理活性多11IRON合成酵素の力価は、上記の条
件で1分間に1μ+moleの蔗糖を生理活性多糖RO
Nに転換させる(1μmoleの果糖を生成する)酵素
量を1単位として表示する。
定量する。対照として蔗糖を加えないで同様に処理した
酵素反応停止液中の還元糖を果糖として定量し、補正を
行う。求めた果糖量から反応に関与した蔗糖量を求める
。生理活性多11IRON合成酵素の力価は、上記の条
件で1分間に1μ+moleの蔗糖を生理活性多糖RO
Nに転換させる(1μmoleの果糖を生成する)酵素
量を1単位として表示する。
酵素の性質:
(a)作用
1モルの蔗糖を分解し、1モルの果糖を生成すると同時
に受容体となる多糖RONにグルコース部分を転移する
。
に受容体となる多糖RONにグルコース部分を転移する
。
(b)至適pH
各pHにおける相対活性を30℃で求めたところ、本酵
素の至適pHは5,5付近であった。
素の至適pHは5,5付近であった。
(c)安定pn範囲
各puにおける相対残存活性を25’C,18時間で測
定したところ本酵素はpH4,5〜7.0の緩衝液中で
安定であった。
定したところ本酵素はpH4,5〜7.0の緩衝液中で
安定であった。
また、本酵素はpH5,5の溶液でトルエン飽和した場
合、冷蔵(4〜6℃)で2ケ月間は安定である。
合、冷蔵(4〜6℃)で2ケ月間は安定である。
(d)基質特異性
グルコース、果糖、麦芽糖、イソ麦芽糖からの生理活性
多糖RONの生成は認められず、蔗糖とのみ反応して生
理活性多$1RONを生成する。
多糖RONの生成は認められず、蔗糖とのみ反応して生
理活性多$1RONを生成する。
(e)至適温度
酵素力価測定の方法において、温度だけを変化させて酵
素の力価を測定したところ、本酵素の至適温度は40℃
付近にあることが明らかとなった。
素の力価を測定したところ、本酵素の至適温度は40℃
付近にあることが明らかとなった。
(f)安定温度範囲
各温度における相対残存活性を求めたところ、本酵素は
40℃以下の温度で安定であった。
40℃以下の温度で安定であった。
輸)阻害および活性化
濃度1nMの各金属塩化物を添加し、各金属塩化物1m
M添加時の相対活性を表1に示した。
M添加時の相対活性を表1に示した。
表1
(χ)
無添加 1(11)
M g C1z 7 BCaCj2z
110 M n C1275 FeC1z 103 FeCIls 82 Co C72z 95 N i Cf、 9 BCu Ci!、
z 50ZnCIl
93 表から明らかなとおり、本酵素はCa塩によって若干活
性化され、Cu塩によって阻害される。
110 M n C1275 FeC1z 103 FeCIls 82 Co C72z 95 N i Cf、 9 BCu Ci!、
z 50ZnCIl
93 表から明らかなとおり、本酵素はCa塩によって若干活
性化され、Cu塩によって阻害される。
本酵素はゲル濾過を行った場合、排除限界分子1ioo
o万のカラム(トヨバール1(W−75(!l ) テ
IF 際限界で溶出される。しかし、同時に生理活性多
糖RONも溶出することから、本酵素は生理活性多糖R
ONとの親和力が強く、これと結合していると思われる
。多糖RONと分離すると、本酵素の活性が不安定にな
ることが認められる。
o万のカラム(トヨバール1(W−75(!l ) テ
IF 際限界で溶出される。しかし、同時に生理活性多
糖RONも溶出することから、本酵素は生理活性多糖R
ONとの親和力が強く、これと結合していると思われる
。多糖RONと分離すると、本酵素の活性が不安定にな
ることが認められる。
本酵素は蔗糖を分解し生理活性多糖RONを生成する作
用を有する。よって、本酵素を使用することによって生
理活性多11RONの製造が可能である。
用を有する。よって、本酵素を使用することによって生
理活性多11RONの製造が可能である。
また、酵素液は生理活性多1iRON生産菌の培養上澄
程度の純度であっても、生理活性多1iROM生成後の
精製操作によって十分に生理活性多糖RONの純度を上
げることができる。原料となる蔗糖は、純度が高いほど
生理活性多糖の精製操作に有利であるが、実用上は市販
の白糖で十分である。反応液中の蔗糖濃度は高いほど生
成される生理活性多糖RONの量は増えるが、反応に要
する時間が長くなるので、通常は5〜30%、好ましく
は10〜20%の範囲で反応を行う。
程度の純度であっても、生理活性多1iROM生成後の
精製操作によって十分に生理活性多糖RONの純度を上
げることができる。原料となる蔗糖は、純度が高いほど
生理活性多糖の精製操作に有利であるが、実用上は市販
の白糖で十分である。反応液中の蔗糖濃度は高いほど生
成される生理活性多糖RONの量は増えるが、反応に要
する時間が長くなるので、通常は5〜30%、好ましく
は10〜20%の範囲で反応を行う。
また、反応液中の酵素濃度についても高いほど反応に要
する時間が短かくなるが、蔗糖濃度が同じ場合は生成さ
れる生理活性多糖RONの量は変らないので、通常は0
.2〜2U/udl、好ましくは0.5〜I U/ld
の範囲で反応を行う。
する時間が短かくなるが、蔗糖濃度が同じ場合は生成さ
れる生理活性多糖RONの量は変らないので、通常は0
.2〜2U/udl、好ましくは0.5〜I U/ld
の範囲で反応を行う。
反応液のpHは酵素の安定pH範囲であればよいが、酵
素の至適p)Iで行うのが最も効率がよいので、pt+
5.5付近にするのが望ましい。また、酵素反応によっ
てp)Iは変化しないが、リン酸緩衝液あるいは酢酸緩
衝液などを使うと、反応液のpH調整を容易に行うこと
ができる。
素の至適p)Iで行うのが最も効率がよいので、pt+
5.5付近にするのが望ましい。また、酵素反応によっ
てp)Iは変化しないが、リン酸緩衝液あるいは酢酸緩
衝液などを使うと、反応液のpH調整を容易に行うこと
ができる。
反応温度は酵素の安定温度範囲であればよいが、酵素反
応は温度が高いほど効率が良いので、30℃付近にする
のが望ましい。
応は温度が高いほど効率が良いので、30℃付近にする
のが望ましい。
反応時間は蔗糖の濃度、酵素の濃度2反応部度反応液の
pH等によって変わってくるが、たとえば、蔗糖濃度1
0χ(292mM) 、酵素濃度11/戚として反応さ
せると、反応時間は6〜7時間とするのが望ましい。
pH等によって変わってくるが、たとえば、蔗糖濃度1
0χ(292mM) 、酵素濃度11/戚として反応さ
せると、反応時間は6〜7時間とするのが望ましい。
反応後、生成した生理活性多糖RONは水に可溶な極性
有機溶媒による有機溶媒沈澱で精製することができる。
有機溶媒による有機溶媒沈澱で精製することができる。
ここで有機溶媒としてはメタノール、エタノール、アセ
トン等の多糖の精製によく使われるものが用いられる。
トン等の多糖の精製によく使われるものが用いられる。
反応液に添加する有機溶媒は生理活性子11RONが沈
澱するまで添加すれば良いが、反応液中の不純物、例え
ば蔗糖果糖、緩衝剤などのまき込みを防ぐため、通常は
最終濃度40〜60%、好ましくは43〜48χ程度と
なるように撹拌しながら注意深く添加するのが望ましい
。生じた沈澱は濾過、遠心分離などによっても回収でき
るが、傾斜濾過による回収が簡便である。
澱するまで添加すれば良いが、反応液中の不純物、例え
ば蔗糖果糖、緩衝剤などのまき込みを防ぐため、通常は
最終濃度40〜60%、好ましくは43〜48χ程度と
なるように撹拌しながら注意深く添加するのが望ましい
。生じた沈澱は濾過、遠心分離などによっても回収でき
るが、傾斜濾過による回収が簡便である。
一般に、1回の溶媒沈澱では不純物をまき込んで純度が
上らないことが多いので、必要に応じてこの操作を数回
くり返すことが望ましい。この様にして精製し、沈澱と
して回収した生理活性子IJ!1RONは再び水に溶解
し、凍結乾燥、噴霧乾燥あるいは極性有機溶媒中に徐々
に添加し脱水された状態にした後、減圧乾燥することに
よって、白色の粉末として回収することができる。また
、多糖RONは該多糖RON合成酵素を利用したバイオ
リアクターによってさらに効率よく製造することができ
る。
上らないことが多いので、必要に応じてこの操作を数回
くり返すことが望ましい。この様にして精製し、沈澱と
して回収した生理活性子IJ!1RONは再び水に溶解
し、凍結乾燥、噴霧乾燥あるいは極性有機溶媒中に徐々
に添加し脱水された状態にした後、減圧乾燥することに
よって、白色の粉末として回収することができる。また
、多糖RONは該多糖RON合成酵素を利用したバイオ
リアクターによってさらに効率よく製造することができ
る。
本発明の生理活性子[RONの製造は、力価の定まった
酵素を使うことができるから、生理活性子11RONの
調製を常に一定の最適条件下で行うことが可能である。
酵素を使うことができるから、生理活性子11RONの
調製を常に一定の最適条件下で行うことが可能である。
したがって、短時間で均一な品質の製品を得ることがで
きる。また、生理活性多$1RON生産菌を直接生理活
性多糖RONの生産に利用しないから、原料の蔗糖が菌
の生育に消費されることがない。したがって、本発明の
方法は原料の利用効率が良い。さらに、酵素によって生
成された生理活性多糖RONは分解を受ける恐れもない
。したがって、収量も発酵生産の場合よりも高い等の利
点がある。
きる。また、生理活性多$1RON生産菌を直接生理活
性多糖RONの生産に利用しないから、原料の蔗糖が菌
の生育に消費されることがない。したがって、本発明の
方法は原料の利用効率が良い。さらに、酵素によって生
成された生理活性多糖RONは分解を受ける恐れもない
。したがって、収量も発酵生産の場合よりも高い等の利
点がある。
このようにして得られた生理活性子IRONの性質を示
す。
す。
(1)性状:白色の無晶性粉末で無味無臭(2)溶解性
:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠な溶液となり
、ホルムアミド ジメチルスルホキシドに可溶、アルコ
ール、アセトン、ベンゼン、酢酸エチル、ヘキサン、ク
ロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性(4)構成糖:
グルコースのみ (5)元素分析値: C: 44.0〜45.0%、
H: 6.1〜6.3X(6)構造:α−1,6結合を
主鎖としたα−グルカンで少量のL3.6位分岐構造を
有する。
:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠な溶液となり
、ホルムアミド ジメチルスルホキシドに可溶、アルコ
ール、アセトン、ベンゼン、酢酸エチル、ヘキサン、ク
ロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性(4)構成糖:
グルコースのみ (5)元素分析値: C: 44.0〜45.0%、
H: 6.1〜6.3X(6)構造:α−1,6結合を
主鎖としたα−グルカンで少量のL3.6位分岐構造を
有する。
(7)蛋白質:殆んど含有せず
(8)分子量:透析膜を通過せず、分子量1万以上と推
定され、後述の実施例2により製造された生理活性子I
!1RONはセファロース2B■ ゲル濾過法による測
定よると分子量2(11)0万以上と推定された。
定され、後述の実施例2により製造された生理活性子I
!1RONはセファロース2B■ ゲル濾過法による測
定よると分子量2(11)0万以上と推定された。
(9)比旋光度: 〔α〕乙’=+190°〜+220
゜(c=0.5.ホルムアミド) (11))呈色反応:アンスロン硫酸反応、フェノール
硫酸反応が陽性、ビウレット反応、ローリー・フォーリ
ン反応、エルソン・モルガン反応、ヨード反応が陰性 (11)融点:明確な融点を示さない。
゜(c=0.5.ホルムアミド) (11))呈色反応:アンスロン硫酸反応、フェノール
硫酸反応が陽性、ビウレット反応、ローリー・フォーリ
ン反応、エルソン・モルガン反応、ヨード反応が陰性 (11)融点:明確な融点を示さない。
02) 第1図のような紫外部吸収スペクトルを示す
如く、特徴的吸収を有さす。
如く、特徴的吸収を有さす。
q9 第2図のような赤外部吸収スペクトルを示す如
く、α−グルカンに特徴的吸収を示す。
く、α−グルカンに特徴的吸収を示す。
q4 第3図のような13C−NMRスペクトルを示
す如く、主シグナルとしてα−1,6グルカンに特徴的
スペクトルを示す。
す如く、主シグナルとしてα−1,6グルカンに特徴的
スペクトルを示す。
(15)抗腫瘍作用を有す。
本発明により得られる生理活性子$1RONは抗腫瘍活
性、免疫調節活性、怒染防御活性等の種々の生理活性を
有していることが判明した。以下にそれぞれの生理活性
についてその検定法および後述する実施例2で得られた
生理活性子$1RON(以下、RONと略記する場合が
ある。)を投与した実験での検定結果について詳述する
。
性、免疫調節活性、怒染防御活性等の種々の生理活性を
有していることが判明した。以下にそれぞれの生理活性
についてその検定法および後述する実施例2で得られた
生理活性子$1RON(以下、RONと略記する場合が
ある。)を投与した実験での検定結果について詳述する
。
(1)抗腫瘍活性について
(イ)同系腫瘍メス−Aに対する生理活性多糖RONの
腹腔投与の効果 6週令メス、平均体重20gのBALB/C−CRJ
?ウスに1週間、同系のマウスの腹腔内で継代した癌細
胞メス−Aをマウス1匹当りlX10’個を腹腔内に移
植し、対照群20匹(1群)、試験群各10匹(3群)
の計4群に分けた。癌細胞を移植した翌日から連続5日
間、試験群には生理食塩水に溶解したRONをマウス1
匹の体重1kg当り各10.30.1(11)■を0.
lll1ずつ腹腔内に投与し、対照群には同様にして生
理食塩水のみを投与した、以後、生存日数を観察し、延
命効果を次式により算出した。
腹腔投与の効果 6週令メス、平均体重20gのBALB/C−CRJ
?ウスに1週間、同系のマウスの腹腔内で継代した癌細
胞メス−Aをマウス1匹当りlX10’個を腹腔内に移
植し、対照群20匹(1群)、試験群各10匹(3群)
の計4群に分けた。癌細胞を移植した翌日から連続5日
間、試験群には生理食塩水に溶解したRONをマウス1
匹の体重1kg当り各10.30.1(11)■を0.
lll1ずつ腹腔内に投与し、対照群には同様にして生
理食塩水のみを投与した、以後、生存日数を観察し、延
命効果を次式により算出した。
(El)同系腫瘍メス−Aに対する生理活性多11RO
Nの経口投与の効果 6週令メス、平均体重20gのBALB/C−CRJマ
ウスに1週間、同系のマウスの腹腔内で継代した癌細胞
メス−Aをマウス1匹当り6X10’個を右腋下皮下に
移植し、対照群20匹(1群)、試験群各10匹(3群
)の計4群に分けた。癌細胞を移植した翌日から連続1
0日間、試験群には生理食塩水に溶解したRONをマウ
ス1匹の体重1kg当り各10.30,1(11)■を
0.2dずつ経口ゾンデを用いて胃内に投与し、対照群
には同様にして生理食塩水のみを投与した。癌細胞を移
植してから35日後に各マウスを層殺し、増殖した腫瘍
を切り出し重量を測定した。なお、阻止率は次式により
算出した。
Nの経口投与の効果 6週令メス、平均体重20gのBALB/C−CRJマ
ウスに1週間、同系のマウスの腹腔内で継代した癌細胞
メス−Aをマウス1匹当り6X10’個を右腋下皮下に
移植し、対照群20匹(1群)、試験群各10匹(3群
)の計4群に分けた。癌細胞を移植した翌日から連続1
0日間、試験群には生理食塩水に溶解したRONをマウ
ス1匹の体重1kg当り各10.30,1(11)■を
0.2dずつ経口ゾンデを用いて胃内に投与し、対照群
には同様にして生理食塩水のみを投与した。癌細胞を移
植してから35日後に各マウスを層殺し、増殖した腫瘍
を切り出し重量を測定した。なお、阻止率は次式により
算出した。
上記(V) 、 (I+)の方法により検定したへの抗
腫瘍効果は下表の通りであった。
腫瘍効果は下表の通りであった。
上表より明らかなように腹腔投与、経口投与ともに30
11gZkg付近を至適投与量としてRONは強い抗腫
瘍活性を有していることが判明した。
11gZkg付近を至適投与量としてRONは強い抗腫
瘍活性を有していることが判明した。
その他にRONは同系腫瘍ルイス肺癌、メラノーマB−
16.同種腫瘍ザルコーマ180.エールリッヒ腫瘍等
に対し、投与量10〜1(11)■/驕の範囲で腹腔投
与または経口投与により腫瘍阻止率30〜70%の効果
が確認されている。また、RONを適当なプライマーと
組合わせてマウスに投与すると、その血清中にL−92
9細胞に対する細胞傷害活性やメスーA固形腫瘍に対す
る壊死作用を誘導し、また担癌マウスの生体内にも腫瘍
壊死因子を自己誘導することが確認された。したがって
、RONは後述するように毒性が全くみられない点とも
合わせて極めて有効な抗腫瘍剤となりうると考えられる
。
16.同種腫瘍ザルコーマ180.エールリッヒ腫瘍等
に対し、投与量10〜1(11)■/驕の範囲で腹腔投
与または経口投与により腫瘍阻止率30〜70%の効果
が確認されている。また、RONを適当なプライマーと
組合わせてマウスに投与すると、その血清中にL−92
9細胞に対する細胞傷害活性やメスーA固形腫瘍に対す
る壊死作用を誘導し、また担癌マウスの生体内にも腫瘍
壊死因子を自己誘導することが確認された。したがって
、RONは後述するように毒性が全くみられない点とも
合わせて極めて有効な抗腫瘍剤となりうると考えられる
。
(2)免疫調節活性について
(イ)カーボンクリアランステスト(cCT)本性は免
疫調節作用のうち細網内皮系の先進作用について調べる
方法である。
疫調節作用のうち細網内皮系の先進作用について調べる
方法である。
4週令メス、平均体重20gのICR−CRJマウス1
群6匹に、生理食塩水に溶解したAを2日間腹腔投与し
く対照群は生理食塩水のみを投与)、3日目にカーボン
液(ペリカン製黒インク、商品名:ファウント インデ
ィアを生理食塩水で5倍に希釈した液)をマウス尾静脈
より0.2511i!注入し、注入直後および10分後
に眼窩静脈叢より0.025m採血し、3.5tdの0
.01モル炭酸ナトリウム溶液に懸濁溶解させ、650
n−にて吸光度(ODbs。)を測定し、血中カーボン
濃度の減少率を調べた。効果は次式に示す賞食係数で表
わした。
群6匹に、生理食塩水に溶解したAを2日間腹腔投与し
く対照群は生理食塩水のみを投与)、3日目にカーボン
液(ペリカン製黒インク、商品名:ファウント インデ
ィアを生理食塩水で5倍に希釈した液)をマウス尾静脈
より0.2511i!注入し、注入直後および10分後
に眼窩静脈叢より0.025m採血し、3.5tdの0
.01モル炭酸ナトリウム溶液に懸濁溶解させ、650
n−にて吸光度(ODbs。)を測定し、血中カーボン
濃度の減少率を調べた。効果は次式に示す賞食係数で表
わした。
※T1時における0DasoをCt 、 T z時にお
ける0DbsoをC2とする。
ける0DbsoをC2とする。
なお、担癌マウスについてはRONの投与開始より7日
前にザルコーマ180細胞をI X 10’個大腿部筋
肉に移植し、以下同様に試験した。結果は下表の通りで
あり、正常マウス、担癌マウスともにRONのlO〜3
0■/kg、特に30■/kgの投与によりマウスの細
網内皮系の機能が光道していることが判明した。
前にザルコーマ180細胞をI X 10’個大腿部筋
肉に移植し、以下同様に試験した。結果は下表の通りで
あり、正常マウス、担癌マウスともにRONのlO〜3
0■/kg、特に30■/kgの投与によりマウスの細
網内皮系の機能が光道していることが判明した。
(ロ)プラークフォーミングセル法(PFC)本性は免
疫調節作用のうち、宿主のB細胞の賦活による抗体産生
能の増強効果を調べるものである。
疫調節作用のうち、宿主のB細胞の賦活による抗体産生
能の増強効果を調べるものである。
4週令メス、平均体重20gのICR−CRJマウス1
群6匹に、生理食塩水に溶解したRONを3日間連続し
て腹腔内に投与しく対照群は生理食塩水のみを投与)、
4日目と111日目それぞれ羊赤血球4X10”個を尾
静脈より注入感作せしめ、その4日後にカニンガムの方
法でマウス牌細胞のプラーク形成能を測定した。
群6匹に、生理食塩水に溶解したRONを3日間連続し
て腹腔内に投与しく対照群は生理食塩水のみを投与)、
4日目と111日目それぞれ羊赤血球4X10”個を尾
静脈より注入感作せしめ、その4日後にカニンガムの方
法でマウス牌細胞のプラーク形成能を測定した。
結果は下表の通りであり、RONは10−1(11)■
/kgの投与により抗体産生能を著しく増強しているこ
とが示された。
/kgの投与により抗体産生能を著しく増強しているこ
とが示された。
(ハ)遅延型皮膚反応法(DHR)
本性は免疫調節作用のうち宿主のT細胞の賦活による細
胞性免疫の作用の増強効果を調べるものである。
胞性免疫の作用の増強効果を調べるものである。
8週令メス2平均体重27gのICR−CRJマウス1
群6匹に、生理食塩水に溶解したRONを8日間連続し
て経口投与しく対照群は生理食塩水のみを投与)、投薬
開始後4日目にマウスの刺毛腹部に5%塩化ビクリルエ
タノール溶液を塗布して一次感作し、111日目1%と
クリルオリーブ油溶液をマウス両耳の表裏に塗布して二
次感作し、その24時間後に篤厚の増加をゲージで測定
し、塗布前の篤厚との差から篤厚の増加量をみた。一方
、担癌マウスについてはザルコーマ18011水型腫瘍
細胞をlXl0’個を投薬開始前日にマウス腹腔内に移
植し、以下同様に試験した。
群6匹に、生理食塩水に溶解したRONを8日間連続し
て経口投与しく対照群は生理食塩水のみを投与)、投薬
開始後4日目にマウスの刺毛腹部に5%塩化ビクリルエ
タノール溶液を塗布して一次感作し、111日目1%と
クリルオリーブ油溶液をマウス両耳の表裏に塗布して二
次感作し、その24時間後に篤厚の増加をゲージで測定
し、塗布前の篤厚との差から篤厚の増加量をみた。一方
、担癌マウスについてはザルコーマ18011水型腫瘍
細胞をlXl0’個を投薬開始前日にマウス腹腔内に移
植し、以下同様に試験した。
結果は下表の通りであり、RONは試験した30〜5(
11)■/kgの経口投与により、正常マウス、担癌マ
ウスおもに細胞性免疫能を著しく増強していることが示
された。
11)■/kgの経口投与により、正常マウス、担癌マ
ウスおもに細胞性免疫能を著しく増強していることが示
された。
以上、(イ)、(17)、(ハ)の各免疫実験により生
理活性多糖RONはメカニズムの異なる免疫作用をそれ
ぞれ顕著に亢進させていることがわかった。免疫調節剤
は一般には生体の免疫機能が低下したり、異種抗原認識
機能が弱い場合などに使用され得ることから、特に微生
物感染症や悪性腫瘍の治療剤。
理活性多糖RONはメカニズムの異なる免疫作用をそれ
ぞれ顕著に亢進させていることがわかった。免疫調節剤
は一般には生体の免疫機能が低下したり、異種抗原認識
機能が弱い場合などに使用され得ることから、特に微生
物感染症や悪性腫瘍の治療剤。
治療補強剤または併用剤、予防剤あるいは術後回復促進
剤としての薬剤用途が期待される。以上の免疫賦活回復
機能の他にも、免疫調節剤は異常に冗進した生体免疫反
応を正常化し、たとえばリウマチ、膠原病、アレルギー
等の自己免疫疾患にも適用できる場合が考えられる。
剤としての薬剤用途が期待される。以上の免疫賦活回復
機能の他にも、免疫調節剤は異常に冗進した生体免疫反
応を正常化し、たとえばリウマチ、膠原病、アレルギー
等の自己免疫疾患にも適用できる場合が考えられる。
(3)感染防御活性について
一般には生体はこれら異種細菌の侵入に対しては充分な
防御作用を持っているが、担癌状態、特に癌の末期には
著しく防御作用が低下することが知られており、通常宿
主と共生している非病原菌によってさえ重篤な結果を招
来することが知られている。
防御作用を持っているが、担癌状態、特に癌の末期には
著しく防御作用が低下することが知られており、通常宿
主と共生している非病原菌によってさえ重篤な結果を招
来することが知られている。
そこで、生理活性多1iRONがこれらの細菌の感染症
に対して宿主の防御活性を増強するかどうかをエシェリ
ヒア・コリ(Escherichia co上ひおよび
リステリア・モノサイトゲネス(Listeria肌匹
肛旦■u針感染に対するAの効果で調べた。
に対して宿主の防御活性を増強するかどうかをエシェリ
ヒア・コリ(Escherichia co上ひおよび
リステリア・モノサイトゲネス(Listeria肌匹
肛旦■u針感染に対するAの効果で調べた。
7週令メス、平均体重26gのICR−CRJマウスを
1群20匹ずつ用い、生理食塩水に溶解したRONを1
0〜1(11)I1g/kg (対照群は生理食塩水の
み)マウスの背中皮下に細菌感染1日前、−日後に各1
回投与した。エシェリヒア・コリの場合は2×107個
を背中皮下に、リステリア・モノサイトゲネスの場合は
2X10’個を腹腔内に感染させ、それぞれ1遇間観察
して、生残マウス数を比較した。防御効果は次式により
算出した。
1群20匹ずつ用い、生理食塩水に溶解したRONを1
0〜1(11)I1g/kg (対照群は生理食塩水の
み)マウスの背中皮下に細菌感染1日前、−日後に各1
回投与した。エシェリヒア・コリの場合は2×107個
を背中皮下に、リステリア・モノサイトゲネスの場合は
2X10’個を腹腔内に感染させ、それぞれ1遇間観察
して、生残マウス数を比較した。防御効果は次式により
算出した。
防御効果(%)=
結果は下表の通りであり、ROMの10−1(11)■
/kgの事前投与により、エシェリヒア・コリ感染に対
しては非常に強い防御作用が生じ、リステリア・モノサ
イトゲネス感染に対しても有意な防御作用の増強効果が
みられた。また、感染後投与の場合でも両感染菌に対し
て有意な治療効果を示した。
/kgの事前投与により、エシェリヒア・コリ感染に対
しては非常に強い防御作用が生じ、リステリア・モノサ
イトゲネス感染に対しても有意な防御作用の増強効果が
みられた。また、感染後投与の場合でも両感染菌に対し
て有意な治療効果を示した。
後述するように、生理活性多1!RONは毒性が全く見
られない点とも合わせて、極めて有効な感染症予防治療
剤となりうると考えられる。
られない点とも合わせて、極めて有効な感染症予防治療
剤となりうると考えられる。
/
2−′
/
次に、生理活性多[RONの急性毒性について言及する
。5週令オスのSD −CRJラット体重120〜15
0g、1群io匹を用いてRONの物理的投与限界であ
る15g/kgを経口投与し観察を続けたところ、金側
死亡例がなく体重増加も対照と変わらず、しかも外観上
や剖検上も全く異常が認められなかった。したがって、
LD、。>x5g/−と考えられ、急性毒性はないもの
と判断されるQさらに、RONはマウスの肺臓細胞由来
のナチュラルキラー細胞の傷害活性を増強したり、マウ
スの腹腔常在性マクロファージのL−929111胞に
対する傷害活性を賦活する作用を有している。また、法
尻な免疫賦活活性を有し、かつインターフェロンなどの
サイトカイン生産能がみられることカラヘルペス、イン
フルエンザ、エイズ等のウィルス性疾患に対する発症予
防治療効果が期待できるほか、慢性肝炎等の肝炎・肝疾
患に対する予防・治療剤としても有用であると考えられ
る。
。5週令オスのSD −CRJラット体重120〜15
0g、1群io匹を用いてRONの物理的投与限界であ
る15g/kgを経口投与し観察を続けたところ、金側
死亡例がなく体重増加も対照と変わらず、しかも外観上
や剖検上も全く異常が認められなかった。したがって、
LD、。>x5g/−と考えられ、急性毒性はないもの
と判断されるQさらに、RONはマウスの肺臓細胞由来
のナチュラルキラー細胞の傷害活性を増強したり、マウ
スの腹腔常在性マクロファージのL−929111胞に
対する傷害活性を賦活する作用を有している。また、法
尻な免疫賦活活性を有し、かつインターフェロンなどの
サイトカイン生産能がみられることカラヘルペス、イン
フルエンザ、エイズ等のウィルス性疾患に対する発症予
防治療効果が期待できるほか、慢性肝炎等の肝炎・肝疾
患に対する予防・治療剤としても有用であると考えられ
る。
したがって、RONは経口的または非経口的に投与でき
るので、極めて有用な抗腫瘍荊、免疫調節剤あるいは感
染症予防治療剤として期待される。
るので、極めて有用な抗腫瘍荊、免疫調節剤あるいは感
染症予防治療剤として期待される。
したがって、RONは経口的または非経口的に投与でき
るので、極めて有用な抗腫瘍剤、免疫調節剤あるいは感
染症予防治療剤として期待される。
るので、極めて有用な抗腫瘍剤、免疫調節剤あるいは感
染症予防治療剤として期待される。
なお、実際の製剤化についてはRONは賦形剤(水、生
理食塩水、ポリエチレングリコール、グリセロゼラチン
、澱粉、デキストリン、乳糖など)と組み合わせて水剤
、火剤1錠剤、散剤、串刺なとの剤型にて製造すること
ができる。
理食塩水、ポリエチレングリコール、グリセロゼラチン
、澱粉、デキストリン、乳糖など)と組み合わせて水剤
、火剤1錠剤、散剤、串刺なとの剤型にて製造すること
ができる。
さらに、生理活性多糖RONは医薬品用途のほか、毒性
が認められないこと、経口投与で健康維持に有用な種々
の生理活性機能を有すること、無味無臭で加工し易いこ
と等から疾病予防用または保健用途の飲食品、飲食品添
加物等として使用することもできる。
が認められないこと、経口投与で健康維持に有用な種々
の生理活性機能を有すること、無味無臭で加工し易いこ
と等から疾病予防用または保健用途の飲食品、飲食品添
加物等として使用することもできる。
一方、後述の実施例2により製造された本発明の生理活
性多$1RONは分子量2.(11)0万以上の高分子
であるが、酸加水分解等によって一定限度まで低分子化
したものも元の生理活性多糖RONと同程度の生理活性
を有することを見出した。
性多$1RONは分子量2.(11)0万以上の高分子
であるが、酸加水分解等によって一定限度まで低分子化
したものも元の生理活性多糖RONと同程度の生理活性
を有することを見出した。
すなわち、本物質を0.5〜5%、好ましくは1〜3χ
の硫酸−ギ酸溶液中で30〜70℃0、好ましくは50
〜60℃で2〜24時間、好ましくは3〜6時間加水分
解し、分解液に炭酸バリウムを加えて中和し遠心分離に
て上澄液を得、濃縮後セファロースCL−2B■、セフ
ァデックスG−2(11)■ 等のカラムにてゲル濾過
を行ない、分子量に応した数両分を得てそれぞれの両分
について生物活性を測定したところ、分子量約1万以上
の両分には元の生理活性子1iRONと同程度の活性が
あることが判明した。
の硫酸−ギ酸溶液中で30〜70℃0、好ましくは50
〜60℃で2〜24時間、好ましくは3〜6時間加水分
解し、分解液に炭酸バリウムを加えて中和し遠心分離に
て上澄液を得、濃縮後セファロースCL−2B■、セフ
ァデックスG−2(11)■ 等のカラムにてゲル濾過
を行ない、分子量に応した数両分を得てそれぞれの両分
について生物活性を測定したところ、分子量約1万以上
の両分には元の生理活性子1iRONと同程度の活性が
あることが判明した。
[実施例]
次に本発明の実施例によりさらに詳細に説明する。
実施例1
0イコノストツク・メセンテロイデス・サブスピーシー
ズ・デキストラニカム(Leuconos tocme
senteroides 5ubsp、dextran
icum) BL−75株(FERMBP−2242)
の穿刺培養から5厩の前培養培地(蔗糖2%、酵母エキ
スo、sx、 トリプトン0.25X、リン酸水素二
カリウム0.5%、pH7,4)に接種し、25℃で2
4時間静置培養した。この培養液を2(11)mの本培
養培地〔蔗糖2%、酵母エキス0.5%、リン酸水素二
カリウム2%、硫酸マグネシウム0.02%、塩化ナト
リウムo、ooi%、硫酸第−鉄0.(11)1%、硫
酸マンガフ0.(11)1%、 pH7,4)に加え、
25°cで17時間静置培養した。
ズ・デキストラニカム(Leuconos tocme
senteroides 5ubsp、dextran
icum) BL−75株(FERMBP−2242)
の穿刺培養から5厩の前培養培地(蔗糖2%、酵母エキ
スo、sx、 トリプトン0.25X、リン酸水素二
カリウム0.5%、pH7,4)に接種し、25℃で2
4時間静置培養した。この培養液を2(11)mの本培
養培地〔蔗糖2%、酵母エキス0.5%、リン酸水素二
カリウム2%、硫酸マグネシウム0.02%、塩化ナト
リウムo、ooi%、硫酸第−鉄0.(11)1%、硫
酸マンガフ0.(11)1%、 pH7,4)に加え、
25°cで17時間静置培養した。
得られた培養物を遠心分離(10,0OOG、15分間
)して上澄液を得た。上澄液中の酵素活性は0.74U
/−9液量は180mであった。この上澄液を限外濾過
膜(アミコン・ホローファイバー■1分画分子量1万)
で濃縮し、さらに5mM酢酸緩衝液pH5,5と置換し
た。これにトルエンを飽和し、最終的に2U/mlの酵
素液80dを得た。
)して上澄液を得た。上澄液中の酵素活性は0.74U
/−9液量は180mであった。この上澄液を限外濾過
膜(アミコン・ホローファイバー■1分画分子量1万)
で濃縮し、さらに5mM酢酸緩衝液pH5,5と置換し
た。これにトルエンを飽和し、最終的に2U/mlの酵
素液80dを得た。
実施例2
実施例1で得られた酵素液10d(20U)を30−の
10χ蔗塘を含む50mM酢酸緩衝液pi(5,5に添
加、攪拌した後、30℃で反応させた。反応終了時間は
酵素量と蔗糖から7.3時間と計算できるので、9時間
で反応を終了させた。反応終了は、二の反応液に33d
のメタノール(最終濃度45χ)を攪拌しながら徐々に
添加し、生理活性子[RONを沈澱させることで行った
。生理活性多糖RONの精製はさらに再度メタノール沈
澱を行った。沈澱物は水に溶解後、凍結乾燥を行った。
10χ蔗塘を含む50mM酢酸緩衝液pi(5,5に添
加、攪拌した後、30℃で反応させた。反応終了時間は
酵素量と蔗糖から7.3時間と計算できるので、9時間
で反応を終了させた。反応終了は、二の反応液に33d
のメタノール(最終濃度45χ)を攪拌しながら徐々に
添加し、生理活性子[RONを沈澱させることで行った
。生理活性多糖RONの精製はさらに再度メタノール沈
澱を行った。沈澱物は水に溶解後、凍結乾燥を行った。
その結果、白色の粉末として1.20gの生理活性多糖
RONを得た(理論収率の85χ)。
RONを得た(理論収率の85χ)。
実施例3
実施例1で得られた酵素5d (10U)を、15−の
20%蔗糖を含む50mM酢酸緩衝液pH5,5に添加
し、攪拌後30℃で反応させた。反応時間は18時間と
した。この反応液に16−のメタノール(最終濃度45
χ)を攪拌しながら徐々に添加し、生理活性多糖RON
を沈澱させた。さらに再度同様にメタノール沈澱を行っ
て、生理活性子IIRONを精製し、水に溶解して凍結
乾燥を行った。その結果、白色の粉末として1 、16
gの生理活性子I!RONを得た(理論収率の82z)
。
20%蔗糖を含む50mM酢酸緩衝液pH5,5に添加
し、攪拌後30℃で反応させた。反応時間は18時間と
した。この反応液に16−のメタノール(最終濃度45
χ)を攪拌しながら徐々に添加し、生理活性多糖RON
を沈澱させた。さらに再度同様にメタノール沈澱を行っ
て、生理活性子IIRONを精製し、水に溶解して凍結
乾燥を行った。その結果、白色の粉末として1 、16
gの生理活性子I!RONを得た(理論収率の82z)
。
実施例4
実施例1で用いた前培養培地の培養液1(lをさらに前
培養培地5(11)−に添加し25℃で24時間静置培
養した。これを本培養培地25fの入った30j2容ジ
ャーファーメンタ−に添加し、ゆるやかに攪拌して25
℃で20時間本培養を行った。得られた培養物を連続遠
心分離機で遠心分離して(13,0OOG 、流速60
i/時間)、0.7U/dの粗酵素液20I2を得た。
培養培地5(11)−に添加し25℃で24時間静置培
養した。これを本培養培地25fの入った30j2容ジ
ャーファーメンタ−に添加し、ゆるやかに攪拌して25
℃で20時間本培養を行った。得られた培養物を連続遠
心分離機で遠心分離して(13,0OOG 、流速60
i/時間)、0.7U/dの粗酵素液20I2を得た。
実施例5
実施例4で得られた粗酵素液5 f (35(11)1
J)に蔗糖5(11)gを攪拌しながら溶かし込み、3
0℃で17時間反応させた。反応後、4i!、のメタノ
ール(最終濃度45χ)を攪拌しながら徐々に添加し、
生理活性多糖RONを沈澱させた。この沈澱物を再度メ
タノール沈澱を行い精製した。これを水に溶解し噴霧乾
燥することにより、白色粉末として生理活性多糖RON
174gを得た(理論収率の74χ)。
J)に蔗糖5(11)gを攪拌しながら溶かし込み、3
0℃で17時間反応させた。反応後、4i!、のメタノ
ール(最終濃度45χ)を攪拌しながら徐々に添加し、
生理活性多糖RONを沈澱させた。この沈澱物を再度メ
タノール沈澱を行い精製した。これを水に溶解し噴霧乾
燥することにより、白色粉末として生理活性多糖RON
174gを得た(理論収率の74χ)。
実施例6
実施例1においてロイコノストック・メセンテロイデス
・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株(
FERM BP−2242)の代わりにロイコノストッ
ク・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラ
ニカム46−1株(FERM BP−2670)に変え
たこと以外は同様の操作を行い、2U/111の酵素液
70−を得た。
・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株(
FERM BP−2242)の代わりにロイコノストッ
ク・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラ
ニカム46−1株(FERM BP−2670)に変え
たこと以外は同様の操作を行い、2U/111の酵素液
70−を得た。
実施例7
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 517(FERM BP−2711
)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/WIl
の酵素液30Idを得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 517(FERM BP−2711
)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/WIl
の酵素液30Idを得た。
実施例8
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FER?I BP−2242)の代わりにロイコノス
トック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキス
トラニカムNCFB 531(FERM BP−271
2)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/rr
dlの酵素液45戚を得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FER?I BP−2242)の代わりにロイコノス
トック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキス
トラニカムNCFB 531(FERM BP−271
2)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/rr
dlの酵素液45戚を得た。
実施例9
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FUR阿BP−2242)の代わりにロイコノストッ
ク・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラ
ニカムATCC1956に変えたこと以外は同様の操作
を行い、211/meの酵素液50−を得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FUR阿BP−2242)の代わりにロイコノストッ
ク・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキストラ
ニカムATCC1956に変えたこと以外は同様の操作
を行い、211/meの酵素液50−を得た。
実施例10
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 861株(FERM BP−271
3)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2 U /
ttrRの酵素液30aeを得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 861株(FERM BP−271
3)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2 U /
ttrRの酵素液30aeを得た。
実施例11
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 864株(FERM BP−271
4)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/dの
酵素液30戚を得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムNCFB 864株(FERM BP−271
4)に変えたこと以外は同様の操作を行い、2U/dの
酵素液30戚を得た。
実施例12
実施例1において、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムIFO3349株に変えたこと以外は同様の操
作を行い、2U/dの酵素液50dを得た。
ス・サブスピーシーズ・デキストラニカムBL−75株
(FERM BP−2242)の代わりにロイコノスト
ック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・デキスト
ラニカムIFO3349株に変えたこと以外は同様の操
作を行い、2U/dの酵素液50dを得た。
実施例13
実施例6で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の操
作を行いi、 i s gの生理活性多糖RONを得た
。
作を行いi、 i s gの生理活性多糖RONを得た
。
実施例14
実施例7で得られた酵素液の2倍希釈液を用いて実施例
2と同様の操作を行い1.20gの生理活性多糖RON
を得た。
2と同様の操作を行い1.20gの生理活性多糖RON
を得た。
実施例15
実施例8で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の操
作を行い1.17gの生理活性多糖RONを得た。
作を行い1.17gの生理活性多糖RONを得た。
実施例16
実施例9で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の操
作を行い1.18gの生理活性多糖RONを得た。
作を行い1.18gの生理活性多糖RONを得た。
実施例17
実施例10で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の
操作を行い1.10gの生理活性子IRONを得た。
操作を行い1.10gの生理活性子IRONを得た。
実施例18
実施例11で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の
操作を行い1.13gの生理活性多糖RONを得た。
操作を行い1.13gの生理活性多糖RONを得た。
実施例19
実施例12で得られた酵素液を用いて実施例2と同様の
操作を行い1.21gの生理活性多糖RONを得た。
操作を行い1.21gの生理活性多糖RONを得た。
実施例20
実施例2で製造した生理活性多糖RONの白色粉末1g
に2%の硫酸−ギ酸混液1(11)altを加え、60
℃で4時間加水分解を行なった。分解液に炭酸バリウム
を加えて中和し、遠心分離にて上澄液を得、この半量を
セファロースCL −2B■のカラムにかけてゲル濾過
を行ない、ボイドボリュームに溶出する画分Fl(分子
量2(11)0万以上)、中間分子量約1(11)万の
画分F2を得た。また、残り半量をセファデックス■G
−20にかけ中間分子量約10万、約1万の画分Fs、
Faを得た。それぞれの両分を凍結乾燥してFli2(
11)■、Fz:160mg1F:+:150■、Fa
:1201gの白色粉末を得た。
に2%の硫酸−ギ酸混液1(11)altを加え、60
℃で4時間加水分解を行なった。分解液に炭酸バリウム
を加えて中和し、遠心分離にて上澄液を得、この半量を
セファロースCL −2B■のカラムにかけてゲル濾過
を行ない、ボイドボリュームに溶出する画分Fl(分子
量2(11)0万以上)、中間分子量約1(11)万の
画分F2を得た。また、残り半量をセファデックス■G
−20にかけ中間分子量約10万、約1万の画分Fs、
Faを得た。それぞれの両分を凍結乾燥してFli2(
11)■、Fz:160mg1F:+:150■、Fa
:1201gの白色粉末を得た。
このようして得られた各両分の生物活性について以下に
示す。
示す。
(1) 抗腫瘍活性について
同系腫瘍メス−Aに対する投与量30■/kg、経口投
与での効果は次表の通りであった。
与での効果は次表の通りであった。
(2)免疫調節活性について
(イ)カーボンクリアランステスト(cCT)担癌マウ
スを用い、投与量30■/kg、腹腔投与での効果は次
表の通りであった。
スを用い、投与量30■/kg、腹腔投与での効果は次
表の通りであった。
(U)プラークフォーミングセル(PFC)正常マウス
を用い、投与量30x/kg、 ltl腔投与で4日目
に羊赤血球で感作した場合の結果は次表の通りであった
。
を用い、投与量30x/kg、 ltl腔投与で4日目
に羊赤血球で感作した場合の結果は次表の通りであった
。
(ハ)遅延型皮膚反応(DHR)
担癌マウスを用い、投与量3omg/b、)1腔投(3
) 感染防御活性について 感染1日前に30■/kgを皮下投与した場合の防御活
性は次表に示す通りであった。
) 感染防御活性について 感染1日前に30■/kgを皮下投与した場合の防御活
性は次表に示す通りであった。
また、
感染1日後に30■/kgを皮下投与した場合の防御活
性は次表に示す通りであった。
性は次表に示す通りであった。
/′
以上の結果から、本発明の生理活性多糖RONは加水分
解により分子量約1万程度まで小さくしても各種生物活
性はもとの生理活性多糖RONと同程度に維持されてい
ることが判明した。
解により分子量約1万程度まで小さくしても各種生物活
性はもとの生理活性多糖RONと同程度に維持されてい
ることが判明した。
一方、低分子化した生理活性多糖RONの毒性について
マウスを用いて調べたところ、経口投与による急性毒性
はいずれの画分にも元の生理活性多糖RONと同様認め
られず、静脈内注射した場合は、元の生理活性多1iR
ONがLDs。;3(11)■/kgであったのに対し
、分子量が小さくなるに従い毒性が減少し、分子量約1
万のF4画分はLDS。〉1g/kgであり、毒性は認
められなかった。
マウスを用いて調べたところ、経口投与による急性毒性
はいずれの画分にも元の生理活性多糖RONと同様認め
られず、静脈内注射した場合は、元の生理活性多1iR
ONがLDs。;3(11)■/kgであったのに対し
、分子量が小さくなるに従い毒性が減少し、分子量約1
万のF4画分はLDS。〉1g/kgであり、毒性は認
められなかった。
このように低分子化された生理活性多糖RONが毒性も
なく、各種生物活性を有することは、例えば注射剤とし
て本物質を利用するとき、大変有利な性質と考えられる
。
なく、各種生物活性を有することは、例えば注射剤とし
て本物質を利用するとき、大変有利な性質と考えられる
。
生理活性多糖RONは従来、天然物からの抽出により得
られていたが、本発明の生理活性多$1RON合成酵素
は、蔗糖から生理活性多糖RONを生成する作用を有す
る。また、本発明の生理活性多糖RONの製造方法は、
この酵素を利用する方法である。したがって、蔗糖を原
料とし力価の定まった本酵素を使用することにより、常
に一定の最適条件下で生理活性多$1RONの製造を行
うことが可能である。このことにより、製品の品質を均
一に出来る。しかも、精製も簡単であるため、収量も高
い。
られていたが、本発明の生理活性多$1RON合成酵素
は、蔗糖から生理活性多糖RONを生成する作用を有す
る。また、本発明の生理活性多糖RONの製造方法は、
この酵素を利用する方法である。したがって、蔗糖を原
料とし力価の定まった本酵素を使用することにより、常
に一定の最適条件下で生理活性多$1RONの製造を行
うことが可能である。このことにより、製品の品質を均
一に出来る。しかも、精製も簡単であるため、収量も高
い。
生物活性の面からも抗腫瘍活性、免疫調節活性および感
染防御活性ともに従来の製法での最も活性の高いものに
匹適する活性をもつ生理活性多糖RONを安定して製造
できるようになり、量的。
染防御活性ともに従来の製法での最も活性の高いものに
匹適する活性をもつ生理活性多糖RONを安定して製造
できるようになり、量的。
質的にみて大幅な改良が見られ産業上大変有利である。
第1図は本発明で得られた生理活性多糖RONの紫外線
吸収スペクトル、第2図は本物質の赤外線吸収スペクト
ル、第3図は同物質の13c−核磁気共鳴スペクトルで
ある。
吸収スペクトル、第2図は本物質の赤外線吸収スペクト
ル、第3図は同物質の13c−核磁気共鳴スペクトルで
ある。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)下記の性質を有する生理活性多糖RONの合成酵素
を蔗糖に作用させて該生理活性多糖RONを生成せしめ
て回収することを特徴とする生理活性多糖RONの生産
法。 (1)性状:白色の無晶性粉末で無味無臭 (2)溶解性:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠
な溶液となる。ホルムアミド、ジメチルスルホキシドに
可溶、アルコール、アセトン、ベンゼン、酢酸エチル、
ヘキサン、クロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性 (4)構成糖:グルコースのみ (5)元素分析値:C:44.0〜45.0%、H:6
.1〜6.3%(6)構造:α−1,6結合を主鎖とし
たα−グルカンで少量の1,3,6位分岐構造を有する
。 (7)蛋白質:殆んど含有せず (8)分子量:透析膜を通過せず、分子料1万以上と推
定される。 (9)比旋光度:〔α〕^2^5_D=+190°〜+
220°(c=0.5、ホルムアミド) (10)呈色反応:アンスロン硫酸反応、フェノール硫
酸反応が陽性、ビウレット反応、ローリー・フォーリン
反応、エルソン・モルガン反応、ヨード反応が陰性 (11)融点:明確な融点を示さない。 (12)紫外部吸収スペクトル:特徴的吸収を有さず。 (13)赤外部吸収スペクトル:α−グルカンに特徴的
吸収を示す。 (14)^1^3C−NMRスペクトル:主シグナルと
してα−1,6グルカンに特徴的スペクトルを示す。 (15)抗腫瘍作用を有す。 2)生理活性多糖RON合成酵素が、ロイコノストック
属に属する該生理活性多糖RON生産能を有する微生物
に由来するものである請求項1記載の生理活性多糖RO
Nの生産法。 3)生理活性多糖RONの生産能を有する微生物がロイ
コノストック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・
デキストラニカムBL−75株(FERMBP−224
2)、同NCFB517株(FERMBP−2711)
、同NCFB531株(FERMBP−2712)、同
NCFB861株(FERMBP−2713)、同NC
FB864株(FERMBP−2714)、同NCFB
880株(FERMBP−2715)、同46−1株(
FERMBP−2670)、同ATCC1956株、同
IFC3349株およびそれらの変異株からなる群から
選ばれる1種の微生物である請求項2記載の生産法。 4)生理活性多糖RONの生産能を有する微生物が、ロ
イコノストック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ
・デキストラニカムBL−75株(FERMBP−22
42)または同46−1株(FERMBP−2670)
である請求項2記載の生産法。 5)生理活性多糖RON合成酵素が、下記の性質を有す
るものである請求項1の生産法。(a)作用:1モルの
蔗糖を分解し、1モルの果糖を生成すると同時に受容体
となる多糖RONにグルコース部分を転移する。 (b)至適pH:5.5付近 (c)安定pH:4.5〜7.0 (d)基質特異性:グルコース、果糖、麦芽糖、イソ麦
芽糖からは多糖RONの生成は認められず、蔗糖とのみ
反応して多糖RONを生成する。 (e)至適温度:40℃付近 (f)安定温度範囲:40℃以下で安定 6)蔗糖に作用して下記の性質を有する生理活性多糖R
ONを生成せしめる生理活性多糖RON合成酵素。 (1)性状:白色の無晶性粉末で無味無臭 (2)溶解性:水に可溶、濃度を上げると乳白色で粘稠
な溶液となる。ホルムアミド、ジメチルスルホキシドに
可溶、アルコール、アセトン、ベンゼン、酢酸エチル、
ヘキサン、クロロホルム、四塩化炭素に不溶 (3)水溶液のpH:中性ないし弱酸性 (4)構成糖:グルコースのみ (5)元素分析値:C:44.0〜45.0%、H:6
.1〜6.3%(6)構造:α−1,6結合を主鎖とし
たα−グルカンで少量の1,3,6位分岐構造を有する
。 (7)蛋白質:殆んど含有せず (8)分子量:透析膜を通過せず、分子量1万以上と推
定される。 (9)比旋光度:〔α〕^2^5_D=+190°〜+
220°(c=0.5、ホルムアミド) (10)呈色反応:アンスロン硫酸反応、フェノール硫
酸反応が陽性、ビウレット反応、ローリー・フォーリン
反応、エルソン・モルガン反応、ヨード反応が陰性 (11)融点:明確な融点を示さない。 (12)紫外部吸収スペクトル:特徴的吸収を有さず。 (13)赤外部吸収スペクトル:α−グルカンに特徴的
吸収を示す。 (14)^1^3C−NMRスペクトル:主シグナルと
してα−1,6グルカンに特徴的スペクトルを示す。 (15)抗腫瘍作用を有す。 7)酵素が、ロイコノストック属に属する該生理活性多
糖RON生産能を有する微生物に由来するものである請
求項6記載の生理活性多糖RONの合成酵素。 8)生理活性多糖RONの生産能を有する微生物がロイ
コノストック・メセンテロイデス・サブスピーシーズ・
デキストラニカムBL−75株(FERMBP−224
2)、同NCFB517株(FERMBP−2711)
、同NCFB531株(FERMBP−2712)、同
NCFB861株(FERMBP−2713)、同NC
FB864株(FERMBP−2714)、同NCFB
880株(FERMBP−2715)、同46−1株(
FERMBP−2670)、同ATCC1956株、同
IFO3349株およびそれらの変異株からなる群から
選ばれる1種の微生物である請求項7記載の生理活性多
糖RONの合成酵素。 9)生理活性多糖RONの生産能を有する微生物が、ロ
イコノストック、メセンテロイデス、サブスピーシーズ
・デキストラニカムBL−75株(FERMBP−22
42)または同46−1株(FERMBP−2670)
である請求項7記載の生理活性多糖RON合成酵素。
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