JPH0371437B2 - - Google Patents
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- JPH0371437B2 JPH0371437B2 JP19769085A JP19769085A JPH0371437B2 JP H0371437 B2 JPH0371437 B2 JP H0371437B2 JP 19769085 A JP19769085 A JP 19769085A JP 19769085 A JP19769085 A JP 19769085A JP H0371437 B2 JPH0371437 B2 JP H0371437B2
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
Description
本発明は、蛍光を発するヌクレオシド又はヌク
レオチドに関する。 生体高分子、特に蛋白質や核酸における構造と
機能の相関を明らかにするために、蛍光プローブ
を利用した研究が広く行なわれている。そして核
酸の研究において、核酸中に存在する蛍光性の微
量塩基をプローブとして用いる方法や、核酸へ蛍
光分子を化学的に導入してこれをプローブとして
用いる方法がある。蛍光性塩基を有するヌクレオ
シドの例としては、アデノシン類やシチジン類を
クロルアセトアルデヒドで化学修飾して得られ
る、下記式で示されるような蛍光性のエテノ誘導
体がある。
レオチドに関する。 生体高分子、特に蛋白質や核酸における構造と
機能の相関を明らかにするために、蛍光プローブ
を利用した研究が広く行なわれている。そして核
酸の研究において、核酸中に存在する蛍光性の微
量塩基をプローブとして用いる方法や、核酸へ蛍
光分子を化学的に導入してこれをプローブとして
用いる方法がある。蛍光性塩基を有するヌクレオ
シドの例としては、アデノシン類やシチジン類を
クロルアセトアルデヒドで化学修飾して得られ
る、下記式で示されるような蛍光性のエテノ誘導
体がある。
【式】1,N6−エテノアデノシン
【式】3,N4−エテノシチジン
特に、エテノアデノシン類は、中性で強く蛍光
を発することから、これをプローブとして用いて
種々の研究が行なわれてきた。しかし、これらは
塩基対形成能を有しない。 本発明者らは、蛍光性を有しグアニンあるいは
アデニンとの塩基対形成が可能な、ビリミジンヌ
クレオシド又はヌクレオチド誘導体を得るべく鋭
意研究を行ない、本発明に到達した。 即ち、本発明は、 一般式()で表わされる蛍光性ヌクレオシド
又はヌクレオチドである。 〔式()において、X1とY1は各々
を発することから、これをプローブとして用いて
種々の研究が行なわれてきた。しかし、これらは
塩基対形成能を有しない。 本発明者らは、蛍光性を有しグアニンあるいは
アデニンとの塩基対形成が可能な、ビリミジンヌ
クレオシド又はヌクレオチド誘導体を得るべく鋭
意研究を行ない、本発明に到達した。 即ち、本発明は、 一般式()で表わされる蛍光性ヌクレオシド
又はヌクレオチドである。 〔式()において、X1とY1は各々
【式】を表わす(nは0,1,2又は
3の整数を示す)。Z1はH−又は
【式】を表わす(mは0,1,2又は
3の整数を示す)。W1はH−又はHO−を表わ
す。〕 一般式()において特に好ましいのは、X1
とY1が共にHO−でZ1がH−又はHO−でW1がH
−の化合物、あるいはX1及び/又はY1が
す。〕 一般式()において特に好ましいのは、X1
とY1が共にHO−でZ1がH−又はHO−でW1がH
−の化合物、あるいはX1及び/又はY1が
【式】(nは1,2又は3の整数を示
す)でZ1がH−又はHO−でW1がH−である。
水酸基が公知の適当な保護基で保護されているも
のも、本発明の範囲に含まれる。 一般式()の化合物の製造法を、X1とY1が
共にHO−で、Z1とW1が共にH−の場合を例に
とつて説明する。 一つの方法は、糖部の水酸基を保護した5−ヨ
ードデオキシシチジンにO−ヨードベンゾイルク
ロライドを作用させ、得られた化合物をDMF中
で、2価のPdの存在下に加熱処理し、次いで保
護基を除去する方法である。 他の方法は、デオキシシチジンから容易に得ら
れるN4−ベンゾイルデオキシシチジン誘導体を、
メタノール中でヨウ素の存在下で光照射し、次い
で常法により脱保護を行なう方法である。 上記の如くして得られた蛍光性ヌクレオシド
は、その3′位又は5′位に後述の如き方法でリン酸
基を導入しヌクレオチドとすることができる。 かくして得らた一般式()の化合物は、蛍光
性でありかつ核酸塩基のグアニンあるいはアデニ
ンと塩基対を形成する能力があるので、これを分
子中又は分子末端に有するオリゴ又はポリヌクレ
オチドは、蛍光プローブとして利用できる。ある
いは、これらの化合物は、DNA二重らせん中に
組み入れた際に、塩基部分は空間的に適合してお
り、塩基間の水素結合形成能力やスタツキング作
用を増強する可能性も考えられる。 従つて、本発明により、分子中又は分子末端
に、一般式()で表わされる蛍光性ヌクレオチ
ドを、少なくとも1個有するオリゴ又はポリヌク
レオチドを得ることができる。 〔式()において、X2は
水酸基が公知の適当な保護基で保護されているも
のも、本発明の範囲に含まれる。 一般式()の化合物の製造法を、X1とY1が
共にHO−で、Z1とW1が共にH−の場合を例に
とつて説明する。 一つの方法は、糖部の水酸基を保護した5−ヨ
ードデオキシシチジンにO−ヨードベンゾイルク
ロライドを作用させ、得られた化合物をDMF中
で、2価のPdの存在下に加熱処理し、次いで保
護基を除去する方法である。 他の方法は、デオキシシチジンから容易に得ら
れるN4−ベンゾイルデオキシシチジン誘導体を、
メタノール中でヨウ素の存在下で光照射し、次い
で常法により脱保護を行なう方法である。 上記の如くして得られた蛍光性ヌクレオシド
は、その3′位又は5′位に後述の如き方法でリン酸
基を導入しヌクレオチドとすることができる。 かくして得らた一般式()の化合物は、蛍光
性でありかつ核酸塩基のグアニンあるいはアデニ
ンと塩基対を形成する能力があるので、これを分
子中又は分子末端に有するオリゴ又はポリヌクレ
オチドは、蛍光プローブとして利用できる。ある
いは、これらの化合物は、DNA二重らせん中に
組み入れた際に、塩基部分は空間的に適合してお
り、塩基間の水素結合形成能力やスタツキング作
用を増強する可能性も考えられる。 従つて、本発明により、分子中又は分子末端
に、一般式()で表わされる蛍光性ヌクレオチ
ドを、少なくとも1個有するオリゴ又はポリヌク
レオチドを得ることができる。 〔式()において、X2は
【式】又
は
【式】を表わし、X2が
【式】
のときY2又はZ2は−O−を表わし(但し他方は
H−又はHO−を表わす), X2が
H−又はHO−を表わす), X2が
【式】のときY2又はZ2は−O−又
は
【式】を表わす(但し他方はH−又
はHO−を表わす)(rは0,1,2又は3の整
数を示し、sは1,2又は3の整数を示す)。W2
はH−又はHO−を表わす。〕 一般式()において特に好ましいのは、X2
が
数を示し、sは1,2又は3の整数を示す)。W2
はH−又はHO−を表わす。〕 一般式()において特に好ましいのは、X2
が
【式】であり、Y2が−O−でW2がH−
である、オリゴ又はポリヌクレオチドである。
蛍光性ヌクレオシド又はヌクレオチドをDNA
オリゴマーあるはポリマーへ導入するには、有機
化学的に合成する方法と、酵素化学的に導入する
2通りの方法がとられる。 有機化学的に合成する方法は、蛍光性ヌクレオ
シド(F)を含むオリゴヌクレオチドを直接合成する
方法である。Itakuraらが開発した、固相リン酸
トリエステル法を用いて、第1図に示すサイクル
に従つて合成を行なつた。 すなわちステツプ1として、ベンゼンスルホン
酸(BSA)で、5′−水酸基のジメトキシトリチル
基(DNTr基)を除去し、ステツプ2で、ダイマ
ーブロツクをメシチレンスルホン酸ニトロトリア
ゾール(MSNT)で縮合し、固相に担持され
F含有オリゴマーの鎖を伸長した。また、目的と
異なる配列のオリゴマー生成を防ぐために、縮合
反応において未反応の5′−水酸基は、4−ジメチ
ルアミノピリジン(DMAP)存在下無水酢酸
(Ac2O)でキヤツピングを行なつた。 このサイクルをくり返すことによつて、目的と
するオリゴマーを合成した。オリゴマヌクレオチ
ドのポリマー支持体からの切り出しとリン酸の保
護基の除去は、室温でアンモニア水で処理するこ
とにより行なつた。 更にアンモニア水で加熱処理することにより、
塩基部のアシル基を除去した。次いで逆層のシリ
カゲルカラムクロマトグラフイーで精製し、必要
なフラクシヨンを分取し、5′末端のDMTr基を除
去し、更に高速液体クロマトグラフイーで精製し
た。 蛍光性ヌクレオシド又はヌクレオチドをDNA
オリゴマーあるいはポリマーに酵素化学的に導入
する方法としては、例えば、 () DNAポリメラーゼを用いるニツクトラ
ンスレーシヨン (Rigby,P.W.ら,J.Mol.Biol.,113,237
(1977)参照) () 末端デオキシヌクレオチドトランスフエ
ラーゼを用いる3′−末端付加反応 (F.J.Bollum,The Enzymes,(P.D.
Boyer,ed.),3rd Ed.Vol.10,pp.145−171,
Academic Press,New York,N.Y.(1974)
参照) の2つが、通常用いられる。 いずれの酵素を用いる場合にも、基質として
は、好ましくは、ヌクレオシド5′−トリリン酸が
用いられる。蛍光性ヌクレオシドの5′−モノリン
酸の合成は、Yoshikawaら(Tetrahedron
Lett.,5065(1967))の方法に従つて合成できる。
また、5′−モノリン酸をイミダゾリドとした後ジ
リン酸と反応させる、5′−トリリン酸の合成は、
Ottoらの方法(J.An.Chem.Soc.,87,1785−
1788(1965))に従つて行なうことができる。 次に合成した5′−トリリン酸を基質として用
い、DNAポリメラーゼを用いて、ニツク・トラ
ンスレーシヨンを行なうと、シチジンの代りに、
蛍光性ヌクレオチドが導入され蛍光標識されたオ
リゴマーあるいはポリマーを調整することができ
る。また、末端デオキシヌクレオチドトランスフ
エラーゼを用いると、3′−末端に蛍光性ヌクレオ
チドポリマーを付加することができる。 以下、実施例、参考例により本発明を詳述す
る。 実施例 1 (1) 5−ヨードデオキシシチジン(a)500mgを無水
ピリジン10mlに、懸濁させ、これに1,1,
3,3−テトライソプロピル−1,3−ジクロ
ルジシロキサン0.57ml(1.2当量)を氷冷下で
加え、その後室温で2時間反応させた。 氷冷下で、水2mlを加えて反応を停止し、10
分間放置した後、溶媒を減圧下留去した。残渣
を水−クロロホルム系で抽出し、クロロホルム
層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。クロロホ
ルムを留去した後、シリカゲルクロマトグラフ
イーにより精製し、メタノールで再結晶して、
3′,5′−0−(1,1,3,3−テトライソプ
ロプルジシロキサン−1,3−ジイル)−5−
ヨードデオキシシチジン(b)750mgを得た。物性
値は次の通りであつた。 m.p. 210−211℃ UV λメタノ哀
オリゴマーあるはポリマーへ導入するには、有機
化学的に合成する方法と、酵素化学的に導入する
2通りの方法がとられる。 有機化学的に合成する方法は、蛍光性ヌクレオ
シド(F)を含むオリゴヌクレオチドを直接合成する
方法である。Itakuraらが開発した、固相リン酸
トリエステル法を用いて、第1図に示すサイクル
に従つて合成を行なつた。 すなわちステツプ1として、ベンゼンスルホン
酸(BSA)で、5′−水酸基のジメトキシトリチル
基(DNTr基)を除去し、ステツプ2で、ダイマ
ーブロツクをメシチレンスルホン酸ニトロトリア
ゾール(MSNT)で縮合し、固相に担持され
F含有オリゴマーの鎖を伸長した。また、目的と
異なる配列のオリゴマー生成を防ぐために、縮合
反応において未反応の5′−水酸基は、4−ジメチ
ルアミノピリジン(DMAP)存在下無水酢酸
(Ac2O)でキヤツピングを行なつた。 このサイクルをくり返すことによつて、目的と
するオリゴマーを合成した。オリゴマヌクレオチ
ドのポリマー支持体からの切り出しとリン酸の保
護基の除去は、室温でアンモニア水で処理するこ
とにより行なつた。 更にアンモニア水で加熱処理することにより、
塩基部のアシル基を除去した。次いで逆層のシリ
カゲルカラムクロマトグラフイーで精製し、必要
なフラクシヨンを分取し、5′末端のDMTr基を除
去し、更に高速液体クロマトグラフイーで精製し
た。 蛍光性ヌクレオシド又はヌクレオチドをDNA
オリゴマーあるいはポリマーに酵素化学的に導入
する方法としては、例えば、 () DNAポリメラーゼを用いるニツクトラ
ンスレーシヨン (Rigby,P.W.ら,J.Mol.Biol.,113,237
(1977)参照) () 末端デオキシヌクレオチドトランスフエ
ラーゼを用いる3′−末端付加反応 (F.J.Bollum,The Enzymes,(P.D.
Boyer,ed.),3rd Ed.Vol.10,pp.145−171,
Academic Press,New York,N.Y.(1974)
参照) の2つが、通常用いられる。 いずれの酵素を用いる場合にも、基質として
は、好ましくは、ヌクレオシド5′−トリリン酸が
用いられる。蛍光性ヌクレオシドの5′−モノリン
酸の合成は、Yoshikawaら(Tetrahedron
Lett.,5065(1967))の方法に従つて合成できる。
また、5′−モノリン酸をイミダゾリドとした後ジ
リン酸と反応させる、5′−トリリン酸の合成は、
Ottoらの方法(J.An.Chem.Soc.,87,1785−
1788(1965))に従つて行なうことができる。 次に合成した5′−トリリン酸を基質として用
い、DNAポリメラーゼを用いて、ニツク・トラ
ンスレーシヨンを行なうと、シチジンの代りに、
蛍光性ヌクレオチドが導入され蛍光標識されたオ
リゴマーあるいはポリマーを調整することができ
る。また、末端デオキシヌクレオチドトランスフ
エラーゼを用いると、3′−末端に蛍光性ヌクレオ
チドポリマーを付加することができる。 以下、実施例、参考例により本発明を詳述す
る。 実施例 1 (1) 5−ヨードデオキシシチジン(a)500mgを無水
ピリジン10mlに、懸濁させ、これに1,1,
3,3−テトライソプロピル−1,3−ジクロ
ルジシロキサン0.57ml(1.2当量)を氷冷下で
加え、その後室温で2時間反応させた。 氷冷下で、水2mlを加えて反応を停止し、10
分間放置した後、溶媒を減圧下留去した。残渣
を水−クロロホルム系で抽出し、クロロホルム
層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。クロロホ
ルムを留去した後、シリカゲルクロマトグラフ
イーにより精製し、メタノールで再結晶して、
3′,5′−0−(1,1,3,3−テトライソプ
ロプルジシロキサン−1,3−ジイル)−5−
ヨードデオキシシチジン(b)750mgを得た。物性
値は次の通りであつた。 m.p. 210−211℃ UV λメタノ哀
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 一般式()で表わされる蛍光性ヌクレオシ
ド又はヌクレオチド。 [式()において、X1とY1は各々
【式】を表わす(nは0,1,2又は 3の整数を示す)。Z1はH−又は
【式】を表わす(mは0,1,2又は 3の整数を示す)。W1はH−又はHO−を表わ
す。] 2 一般式()において、X1とY1が共にH0−
でZ1がH−又はHO−でW1がH−である、特許
請求の範囲第1項記載の蛍光性ヌクレオシド。 3 一般式()において、X1及び/又はY1が
【式】(nは1,2又は3の整数を示 す)でZ1がH−又はHO−でW1がH−である、
特許請求の範囲第1項記載の蛍光性ヌクレオチ
ド。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19769085A JPS6259293A (ja) | 1985-09-09 | 1985-09-09 | 螢光性ヌクレオシド又はヌクレオチド |
| JP3144090A JPH0798834B2 (ja) | 1985-09-09 | 1991-05-21 | 螢光性ポリヌクレオチド |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19769085A JPS6259293A (ja) | 1985-09-09 | 1985-09-09 | 螢光性ヌクレオシド又はヌクレオチド |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3144090A Division JPH0798834B2 (ja) | 1985-09-09 | 1991-05-21 | 螢光性ポリヌクレオチド |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6259293A JPS6259293A (ja) | 1987-03-14 |
| JPH0371437B2 true JPH0371437B2 (ja) | 1991-11-13 |
Family
ID=16378729
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP19769085A Granted JPS6259293A (ja) | 1985-09-09 | 1985-09-09 | 螢光性ヌクレオシド又はヌクレオチド |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6259293A (ja) |
Families Citing this family (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| CA2145750A1 (en) * | 1993-08-18 | 1995-02-23 | Michael J. Conrad | Applications of fluorescent n-nucleosides and fluorescent structural analogs of n-nucleosides |
| US5502177A (en) * | 1993-09-17 | 1996-03-26 | Gilead Sciences, Inc. | Pyrimidine derivatives for labeled binding partners |
| US6007992A (en) * | 1997-11-10 | 1999-12-28 | Gilead Sciences, Inc. | Pyrimidine derivatives for labeled binding partners |
| US6028183A (en) | 1997-11-07 | 2000-02-22 | Gilead Sciences, Inc. | Pyrimidine derivatives and oligonucleotides containing same |
| US7144995B2 (en) | 2002-03-08 | 2006-12-05 | Glen Research Corporation | Fluorescent nitrogenous base and nucleosides incorporating same |
| AU2003262008A1 (en) * | 2002-11-18 | 2004-06-15 | Akimitsu Okamoto | Polynucleotide derivative and use thereof |
-
1985
- 1985-09-09 JP JP19769085A patent/JPS6259293A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6259293A (ja) | 1987-03-14 |
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