JPH0689014B2 - トロンビン結合性物質およびその製法 - Google Patents
トロンビン結合性物質およびその製法Info
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- JPH0689014B2 JPH0689014B2 JP61010620A JP1062086A JPH0689014B2 JP H0689014 B2 JPH0689014 B2 JP H0689014B2 JP 61010620 A JP61010620 A JP 61010620A JP 1062086 A JP1062086 A JP 1062086A JP H0689014 B2 JPH0689014 B2 JP H0689014B2
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- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/48—Reproductive organs
- A61K35/50—Placenta; Placental stem cells; Amniotic fluid; Amnion; Amniotic stem cells
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Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、新規なトロンビン結合性物質、更に詳細に
は、血液の凝固に対する抗凝固系、線溶系に関与するこ
とから、医薬品、特に血栓症等の治療剤として有用なト
ロンビン結合性物質、並びにその製法に関する。
は、血液の凝固に対する抗凝固系、線溶系に関与するこ
とから、医薬品、特に血栓症等の治療剤として有用なト
ロンビン結合性物質、並びにその製法に関する。
血液凝固調節機構の中で、蛋白分解酵素としてのトロン
ビンの果たす役割については種々研究がなされ、凝固系
のメカニズムに関してはほぼ解明されている。
ビンの果たす役割については種々研究がなされ、凝固系
のメカニズムに関してはほぼ解明されている。
近年、生体内において、線溶系、抗凝固系に作用すると
言われているプロテインCをトロンビンが活性化するこ
と、その機構に補酵素的に働く因子がウサギ肺組織抽出
物に存在していることが、N.L.Esmon等により報告さ
れ、トロンボモジユリンと命名されている〔J.Biologic
al Chemistry,257(2)859〜864(1982)〕。
言われているプロテインCをトロンビンが活性化するこ
と、その機構に補酵素的に働く因子がウサギ肺組織抽出
物に存在していることが、N.L.Esmon等により報告さ
れ、トロンボモジユリンと命名されている〔J.Biologic
al Chemistry,257(2)859〜864(1982)〕。
また、本発明者の1人である青木らはヒト胎盤より分離
した同様の性質を有する分子量約71,000(非還元状態)
のヒト・トロンボモジユリンを報告した(Thromb.Res.3
7,353−364,1985)。
した同様の性質を有する分子量約71,000(非還元状態)
のヒト・トロンボモジユリンを報告した(Thromb.Res.3
7,353−364,1985)。
更に、I.Maruyamaらはヒト胎盤より分離した分子量約7
5,000のヒト・トロンボモジユリンと、上記ウサギ・ト
ロンボモジユリンの活性を比較し、ヒト・トロンボモジ
ユリンの活性が等しい事を報告している〔J.Clin.Inves
t.75 987〜991,March1985〕。
5,000のヒト・トロンボモジユリンと、上記ウサギ・ト
ロンボモジユリンの活性を比較し、ヒト・トロンボモジ
ユリンの活性が等しい事を報告している〔J.Clin.Inves
t.75 987〜991,March1985〕。
本発明者らは、ヒト胎盤から、上記ヒト・トロンボモジ
ユリンを有利に単離、精製するための研究を行つていた
ところ、その研究の過程において、上記ヒト・トロンボ
モジユリンと異なる低分子量の物質で、これと同じ活性
を有する物質を単離することに成功し、本発明を完成し
た。
ユリンを有利に単離、精製するための研究を行つていた
ところ、その研究の過程において、上記ヒト・トロンボ
モジユリンと異なる低分子量の物質で、これと同じ活性
を有する物質を単離することに成功し、本発明を完成し
た。
従つて、本発明は、新規なヒト由来のトロンビン結合性
物質及びその製法を提供するものである。
物質及びその製法を提供するものである。
本発明のトロンビン結合性物質は、トロンビンと結合し
てプロテインCの活性化を特異的に増強し、血液凝固時
間を延長することから、線溶促進剤、抗凝固剤として有
用である。
てプロテインCの活性化を特異的に増強し、血液凝固時
間を延長することから、線溶促進剤、抗凝固剤として有
用である。
本発明のトロンビン結合性物質は、例えばヒト胎盤破砕
物を非イオン界面活性剤を含む緩衝液で抽出し、その抽
出物より、イオン交換クロマトグラフイー、トロンビン
−担体結合物を用いるアフイニテイクロマトグラフイー
または(および)ゲル過法によって分離した分画を分
子量分画することにより製造される。
物を非イオン界面活性剤を含む緩衝液で抽出し、その抽
出物より、イオン交換クロマトグラフイー、トロンビン
−担体結合物を用いるアフイニテイクロマトグラフイー
または(および)ゲル過法によって分離した分画を分
子量分画することにより製造される。
すなわち、ヒト胎盤をシユークロース、ベンズアミジン
塩酸を含むトリス塩酸緩衝液等で洗浄した後、破砕して
均質化する。次いでこれを遠心分離等に付して沈澱物を
集め、これを上記緩衝液にトリトンX−100(オクトキ
シノールの商標名)、ルブロールPX(LubrolPX)(ポリ
ドカノールの商標名)等を加えたものを抽出する。この
抽出物をジイソプロピルフオスフオロートロンビン−ア
ガロース等のトロンビン−担体結合物を充填したカラム
に通して活性区分を吸着させ、塩化ナトリウム、EDTA、
ベンズアミジン塩酸、トリトンX−100を含むトリス塩
酸緩衝液で溶出することにより活性区分が得られる。ま
た上記抽出物をゲル過に付して活性区分を採取する方
法、あるいは両者を組合せる方法を採用することもでき
る。
塩酸を含むトリス塩酸緩衝液等で洗浄した後、破砕して
均質化する。次いでこれを遠心分離等に付して沈澱物を
集め、これを上記緩衝液にトリトンX−100(オクトキ
シノールの商標名)、ルブロールPX(LubrolPX)(ポリ
ドカノールの商標名)等を加えたものを抽出する。この
抽出物をジイソプロピルフオスフオロートロンビン−ア
ガロース等のトロンビン−担体結合物を充填したカラム
に通して活性区分を吸着させ、塩化ナトリウム、EDTA、
ベンズアミジン塩酸、トリトンX−100を含むトリス塩
酸緩衝液で溶出することにより活性区分が得られる。ま
た上記抽出物をゲル過に付して活性区分を採取する方
法、あるいは両者を組合せる方法を採用することもでき
る。
この活性画分を、例えばLaemmiliの方法(Nature,227,6
80〜685,1970参照)に準じて、SDS−ポリアクリルアミ
ドゲルを用いる電気泳動法による分子量分画を行い、本
発明物質の分子量に相当するものを採取すれば本発明物
質が得られる。
80〜685,1970参照)に準じて、SDS−ポリアクリルアミ
ドゲルを用いる電気泳動法による分子量分画を行い、本
発明物質の分子量に相当するものを採取すれば本発明物
質が得られる。
斯くして得られる本発明のトロンビン結合性物質は次の
性質を有する。
性質を有する。
(a)分子量 還元状態で 47,000±6,000 非還元状態で38,000±6,000 測定法: Laemmliの方法(Nature227,680−685,1970)に準じて、
5%尿素を含む7.5%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポ
リアクリルアミドゲルを用いた電気泳動法により測定し
た。
5%尿素を含む7.5%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポ
リアクリルアミドゲルを用いた電気泳動法により測定し
た。
標準蛋白としては、バイオラツドSDS−PAGEスタンダー
ド高分子用(日本バイオラツドラボラトリー社製)を用
いた。還元処理は、2%ジチオスレイトールを用い、10
0℃で3分間処理した。
ド高分子用(日本バイオラツドラボラトリー社製)を用
いた。還元処理は、2%ジチオスレイトールを用い、10
0℃で3分間処理した。
(b)等電点 PH4.9〜5.7 アンフオライトを用いる等電点電気泳働法により等電点
分画を測定した。
分画を測定した。
(c)親和性 トロンビンに対し強い親和性を有する。ジイソプロピル
フオスフオロ−トロンビン−アガロース〔J.Biological
Chemistry:245,3059−3065,(1970)参照〕を用いるク
ロマト処理で本発明物質はほぼ100%吸着した。
フオスフオロ−トロンビン−アガロース〔J.Biological
Chemistry:245,3059−3065,(1970)参照〕を用いるク
ロマト処理で本発明物質はほぼ100%吸着した。
(d)活性 トロンビンと結合してプロテインCを活性化する。
測定法1: プロテインC(7.32μM)5μl、本発明物質溶液5μ
l(0.055A280/ml)、トロンビン(4U/ml)50μlを、
0.1M塩化ナトリウム及び3.5mM塩化カルシウムを含む0.0
2Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)40μlに溶解し、37℃で
0〜30分間インキュベートする。アンチトロンビンIII
(16.1μM)150μlを加え、37℃で15分間インキユベ
ートし反応を停止させる。これにBoc−Leu−Ser−Thr−
Arg−MCA(Boc:t−ブチロキシカルボニル、MCA:4−メチ
ルクマリン−7−アミノ)(以下、MCA基質と称する)1
00μM(蛋白奨励会製)を含む緩衝液溶液250μlを加
え、37℃で10分間反応させた後、20%酢酸500μlを加
え反応を停止させ、遊離したAMC(7−アミノ−4−メ
チルクマリン)濃度を励起波長380nm、発光波長460nmで
螢光分光光度計により測定し、活性化されたプロテイン
C濃度を求めた。その結果を第1図に示す。
l(0.055A280/ml)、トロンビン(4U/ml)50μlを、
0.1M塩化ナトリウム及び3.5mM塩化カルシウムを含む0.0
2Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)40μlに溶解し、37℃で
0〜30分間インキュベートする。アンチトロンビンIII
(16.1μM)150μlを加え、37℃で15分間インキユベ
ートし反応を停止させる。これにBoc−Leu−Ser−Thr−
Arg−MCA(Boc:t−ブチロキシカルボニル、MCA:4−メチ
ルクマリン−7−アミノ)(以下、MCA基質と称する)1
00μM(蛋白奨励会製)を含む緩衝液溶液250μlを加
え、37℃で10分間反応させた後、20%酢酸500μlを加
え反応を停止させ、遊離したAMC(7−アミノ−4−メ
チルクマリン)濃度を励起波長380nm、発光波長460nmで
螢光分光光度計により測定し、活性化されたプロテイン
C濃度を求めた。その結果を第1図に示す。
尚、本発明物質の活性単位は、上記MCA基質を用いる方
法により、単位時間当り1nmol/mlのAMC濃度を示した値
を1単位に設定した。
法により、単位時間当り1nmol/mlのAMC濃度を示した値
を1単位に設定した。
測定法2: プロテインC(7.32μM)5μl、本発明物質0〜5μ
l(0.055A280/ml)、0.1M塩化ナトリウム0.5%LubrolP
X(シグマ社製)を含有する0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH
7.5)5〜0μl及びトロンビン(4U/ml)50μlを、0.
1M塩化ナトリウム、3.5mM塩化カルシウムを含む0.02Mト
リス塩酸緩衝液(pH7.5)40μlに溶解し、37℃で30分
間インキュベートする。次いでアンチトロンビンIII150
μlを加え37℃で15分間インキユベートし反応を停止さ
せる。以下測定法1と同様にしてMCA基質を用いて遊離
したAMC濃度を測定した。その結果を第2図に示す。
l(0.055A280/ml)、0.1M塩化ナトリウム0.5%LubrolP
X(シグマ社製)を含有する0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH
7.5)5〜0μl及びトロンビン(4U/ml)50μlを、0.
1M塩化ナトリウム、3.5mM塩化カルシウムを含む0.02Mト
リス塩酸緩衝液(pH7.5)40μlに溶解し、37℃で30分
間インキュベートする。次いでアンチトロンビンIII150
μlを加え37℃で15分間インキユベートし反応を停止さ
せる。以下測定法1と同様にしてMCA基質を用いて遊離
したAMC濃度を測定した。その結果を第2図に示す。
これらの結果から、本発明物質はトロンビンによるプロ
テインCの活性化を促進することがわかる。
テインCの活性化を促進することがわかる。
血液の凝固時間を延長する。
測定法: 牛トロンビン(持田製薬(株)製)(1U/ml)100μlと
本発明物質又はヒト・トロンボモジユリン(OD280:0、
42,0.84)100μlをフイブロカツプに入れ、37℃で30分
加温する。次いでヒトフイブリーゲン(2mg/ml)100μ
lを添加し、フイブロメーター(ベクトン・デイツキン
ソン社製)を作動させ、凝固時間を測定した。2回測定
した結果を第1表に示す。
本発明物質又はヒト・トロンボモジユリン(OD280:0、
42,0.84)100μlをフイブロカツプに入れ、37℃で30分
加温する。次いでヒトフイブリーゲン(2mg/ml)100μ
lを添加し、フイブロメーター(ベクトン・デイツキン
ソン社製)を作動させ、凝固時間を測定した。2回測定
した結果を第1表に示す。
この結果に示されるように、本発明物質の濃度が高くな
るに従つて凝固時間が延長することから、本発明物質は
血液の抗凝固作用を有することがわかる。
るに従つて凝固時間が延長することから、本発明物質は
血液の抗凝固作用を有することがわかる。
尚、ヒト・トロンボモジユリンと比較して約2倍の活性
を有することがわかる。
を有することがわかる。
(e)安定性 条 件 残存活性 1%β−メルカプトエタノール還元処理 0.2 変性剤 1%SDS 124 8M尿素 90 6Mグアニジウムクロリド 80 pH2 70 pH10 80 ペプシン処理 58 キモトリプシン処理 24 トリプシン処理 80 本物質(0.045OD)を上記各条件下25℃、150分処理し
た。処理後0.02Mトリス緩衝食塩水で100倍に希釈し、活
性を測定した。非処理の活性値から残存活性を算出し
た。ペプシンは終濃度2.5μg/ml(pH2.5)、キモトリプ
シン、トリプシンは終濃度2.5μg/ml(pH7.5)を用い37
℃で8時間処理した。
た。処理後0.02Mトリス緩衝食塩水で100倍に希釈し、活
性を測定した。非処理の活性値から残存活性を算出し
た。ペプシンは終濃度2.5μg/ml(pH2.5)、キモトリプ
シン、トリプシンは終濃度2.5μg/ml(pH7.5)を用い37
℃で8時間処理した。
次に実施例を挙げて説明する。
実施例1 (1)ヒト胎盤約450g(1個分)を、0.25Mシユクロー
ス、1mMベンズアミジン塩酸、アプロチニン(トラジロ
ール)10U/ml,ジイソプロピルフルオロフオスフエート
(DFP)2mMを含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)700m
lで洗浄した後、破砕し均質化する。均質化した溶液を3
0,000×gで40分間遠心分離して得られる沈澱物を分取
し、上記緩衝液に懸濁させ、再度遠心分離して沈澱物を
分取する。以上の操作を5回行つて分取した沈澱物を0.
25Mシユクロース、1mMベンズアミジン塩酸,トラジロー
ル10U/ml,DFP2mM及び0.5%(v/v)トリトンX−100(シ
グマ社製)を含有する0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)
1で抽出する。
ス、1mMベンズアミジン塩酸、アプロチニン(トラジロ
ール)10U/ml,ジイソプロピルフルオロフオスフエート
(DFP)2mMを含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)700m
lで洗浄した後、破砕し均質化する。均質化した溶液を3
0,000×gで40分間遠心分離して得られる沈澱物を分取
し、上記緩衝液に懸濁させ、再度遠心分離して沈澱物を
分取する。以上の操作を5回行つて分取した沈澱物を0.
25Mシユクロース、1mMベンズアミジン塩酸,トラジロー
ル10U/ml,DFP2mM及び0.5%(v/v)トリトンX−100(シ
グマ社製)を含有する0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)
1で抽出する。
抽出液の吸光度は、A280:33.5、比活性は1.1単位/OD280
であつた。
であつた。
(2)得られた抽出液500mlを、予め抽出に用いた緩衝
液で平衡化したDEAE−セフアデツクスカラム(φ2.5cm
×70cm)に付し、同緩衝液1.2lで洗浄する。
液で平衡化したDEAE−セフアデツクスカラム(φ2.5cm
×70cm)に付し、同緩衝液1.2lで洗浄する。
次いで溶出液として、1M塩化ナトリウム、0.1mM EDTA、
1mMベンズアミジン塩酸及び0.5%(v/v)LubrolPX(シ
グマ社製)を含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)1
を用いて溶出した。
1mMベンズアミジン塩酸及び0.5%(v/v)LubrolPX(シ
グマ社製)を含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)1
を用いて溶出した。
(3)得られた溶出液1を0.1M塩化ナトリウム,0.1mM
EDTA,0.5%(v/v)LubrolPXを含む0.02Mトリス塩酸緩
衝液10lに対し3回透析した。透析液を、同緩衝液で平
衡化したジイソプロピルフオスフオロートロンビン−ア
ガロースカラム(φ2.5cm×20cm)に付し、同緩衝液2l
で洗浄する。
EDTA,0.5%(v/v)LubrolPXを含む0.02Mトリス塩酸緩
衝液10lに対し3回透析した。透析液を、同緩衝液で平
衡化したジイソプロピルフオスフオロートロンビン−ア
ガロースカラム(φ2.5cm×20cm)に付し、同緩衝液2l
で洗浄する。
次いで、0.1mM EDTA,1mMベンズアミジン塩酸,0.5%(v/
v)LubrolPXを含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)の
0.1M〜1M塩化ナトリウムの濃度勾配で溶出し、1分画14
mlずつ分取し活性区分を集めた。
v)LubrolPXを含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.5)の
0.1M〜1M塩化ナトリウムの濃度勾配で溶出し、1分画14
mlずつ分取し活性区分を集めた。
活性区分の吸光度はA280=0.294,比活性は21.4単位/OD
280であつた。
280であつた。
(4)活性区分100mlをミリポアCX−10(ミリポア社製
の吸引式限外濾過膜)を用い約5mlに濃縮し、次いで0.1
M塩化ナトリウム0.1mM EDTA,0.5%(v/v)LubrolPX及び
1mMベンズアミジン塩酸を含む0.02Mトリス塩酸緩衝液で
平衡化したウルトロゲルAcA34(LKB社製カラム(φ2.7c
m×100cm)に付し、同緩衝液で溶解出した。1分画10ml
づつ分取し活性区分を集めた。活性区分の吸光度はA280
=0.008,比活性は540単位/OD280であつた。
の吸引式限外濾過膜)を用い約5mlに濃縮し、次いで0.1
M塩化ナトリウム0.1mM EDTA,0.5%(v/v)LubrolPX及び
1mMベンズアミジン塩酸を含む0.02Mトリス塩酸緩衝液で
平衡化したウルトロゲルAcA34(LKB社製カラム(φ2.7c
m×100cm)に付し、同緩衝液で溶解出した。1分画10ml
づつ分取し活性区分を集めた。活性区分の吸光度はA280
=0.008,比活性は540単位/OD280であつた。
(5)得られた活性区分をミリポアCX−10を用いて約5m
lまで濃縮し、これに20%SDS溶液5ml,0.01%ブロムフエ
ノールブルー1ml及び50%グリセロール1mlを加え100℃
で2分間加熱した。次いで、Laemmliの方法(Nature22
7,680〜685.1970)に準じて、5%尿素を含む7.5%SDS
ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動に付し、活性
部分を切り取つた。これを、1%ツイーン80(ポリソル
ベート80)及び0.1M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸
緩衝液(pH7.5)に浸し、4℃で24時間溶出した。
lまで濃縮し、これに20%SDS溶液5ml,0.01%ブロムフエ
ノールブルー1ml及び50%グリセロール1mlを加え100℃
で2分間加熱した。次いで、Laemmliの方法(Nature22
7,680〜685.1970)に準じて、5%尿素を含む7.5%SDS
ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動に付し、活性
部分を切り取つた。これを、1%ツイーン80(ポリソル
ベート80)及び0.1M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸
緩衝液(pH7.5)に浸し、4℃で24時間溶出した。
溶出液をミリポアCX−10を用いて約5mlまで濃縮した。
蛋白濃度140μg/ml(Brad fordの方法;Anal.Biochem.72
248.1976参照)。
蛋白濃度140μg/ml(Brad fordの方法;Anal.Biochem.72
248.1976参照)。
実施例2 実施例1の(2)工程の溶出剤を、1M塩化ナトリウム,
0.5%LubnolPX,0.1mM EDTA及び6M尿素を含む0.02Mトリ
ス塩酸緩衝液(pH7.5)1に変えて溶出した。
0.5%LubnolPX,0.1mM EDTA及び6M尿素を含む0.02Mトリ
ス塩酸緩衝液(pH7.5)1に変えて溶出した。
溶出液の吸光度A280=5.9,比活性3.1単位/OD280であつ
た。
た。
尚、上記以外は実施例1と同様に処理して本発明物質を
得た。
得た。
第1図及び第2図は本発明トロンビン結合性物質のトロ
ンビンによるプロテインCの活性化促進作用を示す。
ンビンによるプロテインCの活性化促進作用を示す。
Claims (2)
- 【請求項1】次の性質を有するヒト由来のトロンビン結
合性物質。 (a) 分子量:還元状態で 47,000±6,000 非還元状態で38,000±6,000 (b) 等電点:pH4.9〜5.7 (c) 親和性:トロンビンに対し強い親和性を有す
る。 (d) 活 性:トロンビンと結合してプロテインC
を活性化する。血液の凝固時間を延長する。 (e) 安定性:変性剤(ドデシル硫酸ナトリウム,尿
素)に対して安定。 トリプシン処理(2.5μg/mlのトリプシンを用い37℃で
8時間)で80%の残存活性を示す。 - 【請求項2】ヒト胎盤破砕物を非イオン界面活性剤を含
む緩衝液で抽出し、その抽出物より、イオン交換クロマ
トグラフイー、トロンビン−担体結合物を用いるアフイ
ニテイクロマトグラフイーまたは(および)ゲル過法
によって分離した分画を分子量分画することを特徴とす
る次の性質を有するトロンビン結合性物質の製法。 (a) 分子量:還元状態で 47,000±6,000 非還元状態で38,000±6,000 (b) 等電点:pH4.9〜5.7 (c) 親和性:トロンビンに対し強い親和性を有す
る。 (d) 活 性:トロンビンと結合してプロテインC
を活性化する。血液の凝固時間を延長する。 (e)安定性:変性剤(ドデシル硫酸ナトリウム,尿
素)に対して安定。 トリプシン処理(2.5μg/mlのトリプシンを用いて37℃
で8時間)で80%の残存活性を示す。
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