JPH08208704A - 新規な糖タンパク質複合体、その製造方法、並びに抗腫瘍剤、免疫調節剤及び増殖因子阻害剤 - Google Patents

新規な糖タンパク質複合体、その製造方法、並びに抗腫瘍剤、免疫調節剤及び増殖因子阻害剤

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JPH08208704A
JPH08208704A JP7041230A JP4123095A JPH08208704A JP H08208704 A JPH08208704 A JP H08208704A JP 7041230 A JP7041230 A JP 7041230A JP 4123095 A JP4123095 A JP 4123095A JP H08208704 A JPH08208704 A JP H08208704A
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protein
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稔 大原
Yoshiharu Oguchi
義春 小口
Kenichi Matsunaga
謙一 松永
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 新規な糖タンパク質複合体、その製法、並び
に抗腫瘍剤、免疫調節剤及び増殖因子阻害剤を提供す
る。 【構成】 糖タンパク質複合体は、カワラタケ属担子菌
の菌糸体などの抽出物を化学処理して得られ、ゲルクロ
マトグラフィー測定の分子量が5,000〜1,00
0,000で、フェノール硫酸法の糖質量に対するロー
リー−フォーリン法のタンパク質量(タンパク質/糖
質)が0.7〜5.0で、糖質中グルカンの18〜10
0%が1→3グルカンである。 【効果】 化学処理により生理活性が顕著に上昇するの
で、投与量を減少させながら、抗悪性腫瘍剤、免疫調節
剤又は増殖因子阻害剤として利用できる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、新規の糖タンパク質複
合体、その製造方法、並びにその糖タンパク質複合体を
有効成分とする抗腫瘍剤、免疫調節剤、及び増殖因子阻
害剤に関する。本発明の糖タンパク質複合体は、悪性腫
瘍、免疫系が関与する種々の疾患、及び増殖因子が関与
する種々の疾患の治療や予防に利用することができる。
【0002】
【従来の技術】担子菌由来の種々の多糖体やタンパク多
糖体が、抗腫瘍効果を示すことが知られている(Chihar
a G : Revista Espanda de Entomologia, 4:85-96, 198
4 )。これらの中には、免疫系を主とする生体防御機構
の機能を調節する作用を有することが示されている物質
があり、この調節作用(免疫調節作用)を介して抗腫瘍
効果を発現すると考えられている。従って、現在では、
これらの物質は、生物学的応答修飾物質(Biological R
esponse Modifier:BRM)の一つと位置づけられてい
る。サルノコシカケ科のカワラタケ属に属する担子菌由
来のタンパク多糖体であるクレスチン(商品名:三共:
一般名=PSK)は、すでに臨床的に用いられており、
癌患者の生存期間を延長させる効果のあることが実証さ
れている (NakazatoH, et al.: The Lancet, 343:1122-
1126, 1994 )。その作用機序についても多くの報告が
なされ、サイトカイン産生誘導作用 (Hirose K, et al.
: Lymphokine Res. 9:475-483, 1990)、T細胞活性化
作用(Hirai R, et al. :Int J Immunopharmac. 15:745-
750, 1993)等の免疫調節作用を示すことが明らかにされ
ている。また、最近、PSKが、増殖因子、例えばトラ
ンスフォーミング成長因子β1(Transforming Growth
Factorβ1:TGF−β1)及び血小板由来増殖因子
(Platelet Derived Growth Factor :PDGF)の作
用を阻害する活性を有することが見出された(松永謙
一、他:日本癌学会総会、第53回総会記事、p. 455,
1994) 。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明者は、前記の担
子菌由来のタンパク多糖体の各種誘導体とその生理活性
について鋭意研究を重ねた結果、そのタンパク多糖体
に、化学処理、特に過沃素酸による酸化処理等を施すこ
とにより、抗腫瘍作用、免疫調節作用及び増殖因子阻害
作用が顕著に上昇することを見出した。本発明はこうし
た知見に基づくものである。
【0004】
【課題を解決するための手段】従って、本発明は、カワ
ラタケ属に属する担子菌の菌糸体、培養物又は子実体の
抽出物を化学処理して得られる下記の理化学的性質を有
する糖タンパク質複合体であって、ゲルクロマトグラフ
ィーによる測定で5,000〜1,000,000の範
囲の分子量を示し、フェノール硫酸法で定量した糖質量
に対するローリー−フォーリン(Lowry−Foli
n)法で定量したタンパク質の量(タンパク質/糖質)
が0.7〜5.0であり、糖質中グルカンの18〜10
0%が1→3グルカンである構造を有することを特徴と
する、糖タンパク質複合体に関する。また、本発明は、
カワラタケ属に属する担子菌由来の菌糸体、培養物又は
子実体の抽出物であって、1→3、1→4及び/又は1
→6グルカンと約5〜60%のタンパク質を含むタンパ
ク多糖体に、化学処理を施すことを特徴とする、糖タン
パク質複合体の製造方法にも関する。更に、本発明は、
前記の糖タンパク質複合体を有効成分として含有する、
抗腫瘍剤、免疫調節剤、又は増殖因子阻害剤にも関す
る。
【0005】以下、本発明を詳細に説明する。本発明に
よる糖タンパク質複合体を製造する際に用いる、担子菌
由来のタンパク多糖体は、例えば特公昭46−1714
9号、特公昭51−36322号、特公昭56−142
74号、特公昭56−14275号及び特公昭56−1
4276号各公報などに記載されている。前記タンパク
多糖体は、担子菌の一種であるカワラタケ属(Coriolu
s)に属する菌類を培養して得られる菌糸体、培養物
(Broth)、又は子実体からの抽出により得られる
抽出物である。前記タンパク多糖体は、約18〜38%
のタンパク質を含み、分子量(超遠心分離測定法)が5
000以上、好ましくは5000〜1,000,000
である。
【0006】また、前記タンパク多糖体の代表例はPS
Kとも呼称されているものであって、クレスチンという
商品名で三共株式会社から市販されている。また、前記
タンパク多糖体については最近の新薬、第28集第14
〜16頁,1977年及び第29集第96〜101頁,
1978年や、医薬品要覧,第1346頁,昭和54年
5月第6版,薬業時報社発行等にも記載されている。そ
の性状の一端を示せば次のとおりである。PSKは、カ
ワラタケ菌CM101株〔FERM−P2412(AT
CC20547)〕の菌糸体を水系溶媒、例えば、熱水
又はアルカリ溶液(例えば、アルカリ金属の水酸化物、
特には水酸化ナトリウムの水溶液)で抽出し、精製した
後に乾燥して得ることができる。主要画分の糖部分はβ
−D−グルカンで、このグルカン部分の構造はβ1→
3、β1→4及びβ1→6結合を含む分枝構造であり、
主な構成単糖はグルコースやマンノースであり、約18
〜38%のタンパク質を含む。タンパク質の構成アミノ
酸は、アスパラギン酸やグルタミン酸等の酸性アミノ酸
と、バリンやロイシン等の中性アミノ酸が多く、リジン
やアルギニン等の塩基性アミノ酸は少ない。水に可溶で
あるが、メタノール、ピリジン、クロロホルム、ベンゼ
ン又はヘキサンには殆ど溶けない。約120℃から徐々
に分解する。
【0007】なお、本発明の出発原料に関しては、前記
のカワラタケ菌CM101株のみならず、カワラタケ属
に属する他のカワラタケ菌株(例えば、FERM−P
No.2413〜2426)やニクウスバタケ〔Coriol
us consors (Berk.) Imaz.〕、ヤキフタケ
【外1】 ミノタケ〔Corilous biformis (Klotz.) Pat. 〕、アラ
ゲカワラタケ
【外2】 サカズキカワラタケ〔Coriolus conchifer (Schw.) Pa
t. 〕、ハカワラタケ〔Coriolus pargamenus (Fr.) Pa
t.〕等の担子菌菌株も使用可能である。
【0008】前記抽出物を以下のように化学処理するこ
とにより目的の生理活性物質・糖タンパク質複合体を得
ることができる。化学処理は、例えば、酸化処理、還
元、緩和水解、及び生成低分子の除去の各工程からな
る。前記抽出物の酸化処理は、グリコールの開裂処理を
伴うものであり、特には過沃素酸又はその塩類を用いて
実施することができる。具体的には、例えば、0.01
〜0.2Mメタ過沃素酸ナトリウムを含む水溶液又は中
性領域pHの緩衝液に前記の抽出物を溶解し、0〜40
℃で24時間〜60日間処理することにより糖質部の酸
化を行う。次に、還元剤、例えば、水素化硼素ナトリウ
ムで還元して得られるタンパク多糖体ポリアルコールを
4〜80℃にて0.01〜1規定濃度の無機酸(例え
ば、硫酸、塩酸)又は有機酸(例えば、シュウ酸、ギ
酸)を用いて1時間〜96時間程度の緩和水解を行い、
酸化をうけた糖鎖部分を除去する。こうしたメタ過沃素
酸ナトリウムによる酸化から緩和水解に至る一連の操作
を一回〜数回繰り返して行い、1→4、及び1→6結合
した糖質部を減少させ、生成低分子を除去することによ
り、目的の生理活性物質・糖タンパク質複合体を得るこ
とができる。
【0009】本発明による生理活性物質・糖タンパク質
複合体は以下の理化学的性状を有する。すなわち、ゲル
クロマトグラフィー〔例えば、デキストランゲル又はア
ガロースゲル(Superose 6:ファルマシア)
を用いたゲルクロマトグラフィー〕による測定で5,0
00〜1,000,000の範囲の分子量を示し、フェ
ノール硫酸法(J.E.Hodge, B.T.Hofreiter, "Methods i
n carbohydrate chemistry" Vol. 1 ed. by R.L.Whistl
er, M.I.Wolfrom, Academic Press, Inc., NewYork, N.
Y., 1962 p388)で定量した糖質量に対するローリー−
フォーリン(Lowry−Folin)法〔O.H.Lowry,
N.J.Rosebrough, A.L.Farr, and R.J.Randall, J.Rand
all, J.Biol.Chem., 193, 265(1951) 〕で定量したタン
パク質の量(タンパク質/糖質)が0.7〜5.0、糖
質中グルカンの18〜100%は1→3グルカン、特に
はβ1→3グルカンである構造を有する糖タンパク質複
合体である。
【0010】本発明による生理活性物質・糖タンパク質
複合体は、塩酸加水分解物のアミノ酸分析により、アス
パラギン酸、スレオニン、セリン、グルタミン酸、プロ
リン、グリシン、アラニン、システイン、バリン、メチ
オニン、イソロイシン、ロイシン、チロシン、フェニル
アラニン、リジン、ヒスチジン及びアルギニンが検知さ
れ、その中でアスパラギン酸、スレオニン、セリン、グ
ルタミン酸、グリシン、アラニン、フェニルアラニン、
バリン、イソロイシン及びロイシンの占める含量が検知
全アミノ酸量の75モル%以上である。更に、硫酸加水
分解後の糖質分析により、フコース、キシロース、マン
ノース、ガラクトース及びグルコースが検知され、その
中でグルコース、マンノース及びキシロースの占める含
量が検知全糖質量の90重量%以上である。
【0011】本発明による生理活性物質・糖タンパク質
複合体は、担子菌より得られる化学処理前タンパク多糖
体と比較して、抗腫瘍効果、インターロイキン−1β
(IL−1β)誘導能、インターロイキン−6(IL−
6)誘導能、T細胞増殖誘導能、TGF−β1阻害能、
及びPDGF阻害能に関して、2〜10倍以上の活性の
上昇が認められる。すなわち、担子菌カワラタケ属菌か
らの抽出物に、過沃素酸処理を施して、1→4、特にβ
1→4、及び1→6、特にβ1→6結合した糖質部を選
択的に減少させる修飾を加えることにより、高い活性を
有する生理活性物質が得られる。
【0012】PSKは、多くの疾患に対する有効性が示
唆されており、本発明の生理活性物質はPSKよりも低
用量でPSKと同等の活性を示すことから、PSKが有
効である各種疾患に、本発明の生理活性物質・糖タンパ
ク質複合体を適用することができる。例えば、悪性腫
瘍、細菌や真菌、ウイルス、原虫等の感染症、自己免疫
疾患、種々の免疫抑制状態、肺線維症、肝線維化、糸球
体腎炎、汎発性強皮症、動脈硬化などである。
【0013】本発明の生理活性物質・糖タンパク質複合
体を、抗悪性腫瘍剤、免疫調節剤(例えば、IL−1β
誘導剤、IL−6誘導剤、又はT細胞増殖誘導剤)、又
は増殖因子阻害剤(例えば、TGF−β1阻害剤、又は
PDGF阻害剤)としてヒト又は動物に使用する場合に
は、任意慣用の方法で各種経路の投与用に調製すること
ができる。すなわち、舌下投与を含む経口投与、皮下、
静脈内、筋肉内等への注射、経直腸投与(座剤)等であ
る。経口投与は、それに適用される錠剤、顆粒剤、散剤
又はカプセル剤などである。それらの組成物中に結合
剤、包含剤、賦形剤、潤滑剤、崩壊剤又は湿潤剤を含有
していてもよい。また、経口用液体製剤は、内用水剤、
振とう合剤、懸濁液剤、乳剤、シロップ剤の形態であっ
てもよく、あるいは使用する前に再溶解させる乾燥生成
物の形態であってもよい。更に、このような液体製剤
は、添加剤或いは保存剤のいずれを含有していてもよ
い。注射剤、座剤又は軟膏等の非経口投与剤において
は、その組成物が安定剤、緩衝剤、保存剤又は等張化剤
などの添加剤を含んでいてもよい。なお、上記組成物は
水溶液、懸濁液、溶液、油性又は水性ビヒクル中の乳液
のような形態であってもよく、一方、活性成分は使用す
る前に適当なビヒクル(例えば、発熱物質不含の滅菌し
た水)で再溶解させる粉末であってもよい。投与量は、
投与方式、並びに年齢、個人差及び疾患の程度によって
異なるが、一般には体重1kg、一日当たり0. 05〜
500mg、経口投与の場合は2〜500mgを1回か
ら3回に分けて投与する。
【0014】
【作用】担子菌カワラタケ属由来のタンパク多糖体、特
にPSKは、糖質部とタンパク質部を有している。その
主要構成糖はグルコースであり、糖質とタンパク質はO
−グリコシド結合及びN−グリコシド結合で互いに結合
していると考えられている。グルカン部のNMRによる
分析の結果、β1→3、β1→4、β1→6等の種々の
結合様式を含むポリマーであることが明らかになってい
る。すなわち、PSKは、同一分子中に種々の構造を含
む複合体であると考えられる。この中で、抗腫瘍作用を
はじめとするPSKの作用が、いずれの構造に由来する
のかは、現在のところ充分には解明されていないが、前
記のタンパク多糖体を過沃素酸酸化することにより、1
→4、特にβ1→4、及び1→6、特にβ1→6結合し
た糖質部が減少し、それに伴って、生理活性が顕著に上
昇するものと考えられる。従って、PSKは臨床的には
通常1日あたり3gが1〜3回に分けて内服されている
のに対し、本発明による化学処理により、その投与量を
減少させることができる。
【0015】
【実施例】以下、実施例によって本発明を具体的に説明
するが、これらは本発明の範囲を限定するものではな
い。実施例1:本発明による糖タンパク質複合体S1の調製 PSK(商品名クレスチン)5gを0. 04Mメタ過沃
素酸ナトリウム(NaIO4 :213.9)水溶液2リ
ットルに溶解し、4℃で暗所にて14日間、時々撹拌し
ながら、糖質部の沃素酸酸化を行った後、エチレングリ
コール20gを添加して数時間撹拌することにより、過
剰のメタ過沃素酸ナトリウムを分解して反応を停止させ
た。得られた反応液に希酢酸を加えて中和した後、水素
化硼素ナトリウム5gを加えて還元反応を一夜行わせる
ことにより、アルデヒド・タンパク多糖体を安定なアル
コール・タンパク多糖体に変換させた後、ビスキング透
析チューブを用いて流水中で透析し、低分子物を除去し
た。その後、透析内液に硫酸を加えてその濃度が0. 1
Nになるようにし、室温にて24時間緩和加水分解を行
うことにより開裂糖鎖部分を除去し、水酸化ナトリウム
水溶液で中和した後に濃縮し、Sephadex G2
5カラムを用いたゲル濾過により低分子を除き、次いで
凍結乾燥を行い、目的物(以下、S1と呼ぶ)1.7g
を得た。
【0016】実施例2:本発明の糖タンパク質複合体S
2の調製 カワラタケ菌CM101株〔FERM−P2412(A
TCC20547)〕を、グルコース5%、ペプトン
0.2%、酵母エキス0.3%、KH2 PO4 0.1%
及びMgSO4 ・7H2 Oの0.1%(いずれも重量
%)からなる培地に接種し、10日間培養し、培地表面
に発育した菌苔を生理食塩水とともにホモゲナイズした
ものを種菌とした。この種菌を上記と同一組成の培地2
00mlの入った1リットル容の培養用フラスコ100
本にそれぞれ接種し、25〜27℃で25日間培養した
後、乾燥器中で乾燥し、乾燥菌糸体を得た。乾燥菌糸体
収量は培養器一本当たり2. 0〜4. 5gであった。こ
の菌糸体100gに0. 1規定の水酸化ナトリウム水溶
液3リットルを加え、97℃で1時間、撹拌しながら抽
出した。抽出終了後、室温にまで冷却し、濾紙濾過によ
り、抽出液を回収した。次いで、希塩酸で中和し、エバ
ポレーターで液を濃縮した。濃縮液1リットルに対し飽
和溶液となるように硫酸アンモニウムを加え、塩析を行
い、生じた沈殿を遠心分離により分取した。分取した沈
殿は蒸留水に再溶解し、透析及び限外濾過処理し、分子
量5000以下の低分子物質を除去した。次いで、凍結
乾燥して、タンパク多糖体粉末15gを得た。以下、こ
のタンパク多糖体をPPと呼ぶ。タンパク多糖体PP5
gを0. 08Mメタ過沃素酸ナトリウム (NaIO4
水溶液2リットルに溶解し、22℃の暗所にて7日間、
時々撹拌することにより、糖質部の過沃素酸酸化を行っ
た。実施例1と同様の方法にて還元、緩和水解、脱塩及
び凍結乾燥を行い、目的物質(以下、S2と呼ぶ)1.
4gを得た。
【0017】実施例3:本発明の糖タンパク質複合体S
3の調製 実施例2で調製したタンパク多糖体PP5gを0. 04
Mメタ過沃素酸ナトリウム (NaIO4 )水溶液2リッ
トルに溶解し、25℃の暗所にて14日間、時々撹拌す
ることにより、糖質部の過沃素酸酸化を行い、実施例1
と同様の方法で還元した後、緩和水解、脱塩及び凍結乾
燥を行い、目的物質(以下、S3と呼ぶ)1. 6gを得
た。
【0018】実施例4:本発明の糖タンパク質複合体の
理化学分析 (1)元素分析 Yanaco CHN コーダーMT−3型を用いて行
った。 (2)タンパク質/糖質比 本発明による糖タンパク質複合体を蒸留水に溶解した
後、そのタンパク質量をLowry−Folin法(ア
ルブミンを標準物質)で、その糖質量をフェノール硫酸
法(グルコースを標準物質)で各々測定した。 (3)糖組成 本発明による糖タンパク質複合体を1規定硫酸中にて1
00℃で16時間加水分解を行い、生成物についてDI
ONEX社製のBio−LCを用いた陽イオン交換(A
S6カラム)クロマトグラフィーを行い、パルスアンペ
ロメトリー検出器により糖の検出・同定及び定量を行っ
た。結果を重量%で示した。 (4)アミノ酸組成 本発明による糖タンパク質複合体を6規定の塩酸中にて
110℃で22時間加水分解し、分解生成物についてア
ミノ酸分析計(日立L−8500) を用いニンヒドリン
発色法により測定した。モル%で算出した。 (5)β1,3グルカンの定量 本発明による糖タンパク質複合体をD2 Oに溶解し、重
水素置換を行なった後、ナトリウム−3−トリメチルシ
リルプロピオネート−2,2,3,3,−D4(TS
P)を内部標準として、90℃で日本電子製NMR(J
NM−GSX500型により500HzでNMRを測定
し、グルカンのプロトンに起因するシグナル(α1,4
結合:5.35±0.01ppm,α1,3結合:5.
27±0.01ppm,α1,6結合:5.00±0.
01,β1,3結合:4.77±0.01,β1,4結
合:4.55±0.01ppm,β1,6結合:4.5
2±0.01ppm)を測定した。1,3グルカンのう
ちβ1,3グルカン量(%)は、これら結合量に対する
百分率で表示した。 (6)分子量の測定 本発明による糖タンパク質複合体を蒸留水に溶解し、S
uperose 6(ファルマシア)を用いたゲルクロ
マトグラフィーを行い、その溶出位置から算出した。本
発明の糖タンパク質複合体S1、S2及びS3の測定値
を下表に示す。
【0019】
【表1】 測定値 測定項目 S1 S2 S3 1.元素分析 C% 44.4 43.7 46.8 H% 5.9 6.2 6.0 N% 6.7 5.0 8.9 2.タンパク質/糖質比 1.7 1.3 3.3 3.糖組成 a.ク゛ルコース % 78 69 80 b.マンノース % 18 21 14 c.カ゛ラクトース% 0 2 1 d.キシロース % 3 4 3 e.フコース% 1 4 2 a+b+d/総計% 99 94 97
【0020】
【表2】 測定値 測定項目 S1 S2 S3 4.アミノ酸組成 a.アスハ゜ラキ゛ン酸% 12.2 10.4 16.2 b.スレオニン % 4.6 3.8 1.8 c.セリン % 4.6 3.0 2.7 d.ク゛ルタミン 酸% 13.1 10.7 10.7 e.ク゛リシン% 11.5 11.6 24.3 f.アラニン% 13.1 12.2 15.0 g.ハ゛リン % 8.6 8.7 3.2 h.1/2シスチン% 0.0 0.2 1.3 i.メチオニン % 0.2 0.8 0.6 j.イソロイシン% 5.9 6.6 2.1 k.ロイシン% 9.9 12.1 3.9 l.チロシン% 0.6 1.7 1.7 m.フェニルアラニン% 4.2 5.7 4.6 n.リシ゛ン % 3.3 2.5 0.7 o.ヒスチチ゛ン % 0.9 1.3 0.9 p.アルキ゛ニン % 1.7 2.1 0.6 q.フ゜ロリン% 5.8 6.7 8.8 a+b+c+d+e+f+g+j+k+m/総計% 87.7 84.8 84.5 5.β1,3ク゛ルカン量(総ク゛ルカン%) 65 100 266.分子量 5,000 − 1,000,000 同左 同左
【0021】実施例5:抗腫瘍活性 5週齢の雌Jcl:ICRマウス(日本クレア株式会社
より購入;一群10匹)の皮下にサルコーマ180細胞
(北里研究所より入手し、Jcl:ICRマウスの腹腔
内で継代している腫瘍細胞株)を1×106 個移植して
担癌マウスとした。一定量の本発明糖タンパク質複合体
S1又はタンパク多糖体(PSK)を生理食塩水に溶解
し、移植翌日から週3回、合計10回、マウス一匹の体
重10g当たり0.1mlとなるように腹腔内投与し
た。なお、担癌・コントロール群のマウスには、生理食
塩水を、マウス一匹の体重10g当たり0.1mlの量
で腹腔内投与した。移植25日目にマウスをと殺し、腫
瘍を取り出し、その重量を天秤にて測定した。検体の抗
腫瘍活性は下記の式(1)から算出した。
【0022】
【式1】
【0023】図1に示すように、本発明による糖タンパ
ク質複合体S1の抗腫瘍活性(図1のB)は、PSKの
抗腫瘍活性(図1のA)に比し、明らかに優れていた。
一方、S2及びS3の抗腫瘍活性も、表3に示すよう
に、出発物質PPの抗腫瘍活性よりも高かった。
【0024】
【表3】抗腫瘍活性(投与量0.3mg/kg) PP 28% S2 78%S3 80%
【0025】実施例6:免疫調節活性(T細胞の増殖促
進効果) PSKで免疫したBALB/cマウスのリンパ節から分
離し、in vitroで培養でき、PSKに反応して
増殖するT細胞クローンKOA−2(FERM−BP4
985)に対する本発明糖タンパク質複合体の作用を検
討した。96ウエルの培養用マイクロプレート(ファル
コン3072、日本ベクトンデイッキンソン社)の各ウ
エルに、KOA−2の2×104 個及びマイトマイシン
C処置BALB/cマウス脾細胞(脾細胞とマイトマイ
シンC50μg/mlを37℃で30分間反応させるこ
とにより増殖能を失わせた細胞)の5×105 個と、本
発明糖タンパク質複合体S1又はPSK溶液とを加え、
全体の培養液( 10%牛胎児血清添加RPMI 164
0)の量を200μl/ウエルになるようにして、37
℃の5%炭酸ガス培養器中で3日間培養した。培養終了
6時間前に、 3H−標識チミジン(アマシャム社)を1
8.5KBq/ウエル加えた。なお、前記の実験におい
てマイトマイシンC処置BALB/cマウス脾細胞を使
用する理由は、以下のとおりである。すなわち、脾細胞
中に含まれる抗原提示能を有する細胞(例えば、B細
胞、マクロファージ)が、PSK又は本発明糖タンパク
質複合体S1を取り込み、PSK又は本発明糖タンパク
質複合体S1の抗原部分をクラスII組織適合性抗原と結
合した形でそれらの細胞の表面上に提示する。KOA−
2は組織適合性抗原に結合したPSK又は本発明糖タン
パク質複合体S1の抗原部分に反応し、増殖する。従っ
て、KOA−2の増殖には抗原提示細胞の存在が必要で
ある。また、脾細胞をマイトマイシンCで処理してある
のは、PSK又は本発明糖タンパク質複合体S1が脾細
胞自身の増殖をも促進する作用を有しているので、本測
定(KOA−2の増殖を測定する)において、脾細胞の
増殖する反応を回避するためである。
【0026】培養終了後、セルハーベスターにてウエル
内の細胞をフィルター上に回収・洗浄した。前記フィル
ターを乾燥させた後、バイアルに入れ、液体シンチレー
ターを加え、液体シンチレションカウンターにて細胞に
取り込まれた放射活性を測定した。その結果、図2に示
すように、PSK(図2のA)の至適添加濃度300μ
g/mlに比して、本発明糖タンパク質複合体S1(図
2のB)の至適添加濃度は100μg/mlであり、1
/3の濃度でほぼ同等の活性を示すことが判明した。一
方、S2及びS3の活性も、表4に示すように、PPの
活性よりも高かった。
【0027】
【表4】 100μg/ml添加時のKOA−2細胞の増殖3H−標識チミジンの取り込み,dpm) PP 41,500 S2 160,800S3 155,000
【0028】実施例7:免疫調節活性〔免疫調節性サイ
トカイン産生誘導効果〕 健常人(48才、男子)から採取した末梢血液(ヘパリ
ン加)30mlに等量のハンクス液を加えて混和し、試
験管内に前もって添加しておいたFicoll−Paq
ue液(ファルマシア)に重層し、2000r.p.m
で15分間遠心分離し、中間層の単核球画分を採取し
た。その単核球画分の細胞をハンクス液にて3回洗浄し
た後、10%の牛胎児血清を添加したRPMI 164
0培地に懸濁させ、1×106 /mlに調整した。96
ウエルの培養用マイクロプレート(ファルコン307
2、日本ベクトンデイッキンソン社)の各ウエルに上記
細胞を0.1mlずつ分注し、ついで本発明糖タンパク
質複合体S1又はPSK溶液を加え、全体の培養液(1
0%牛胎児血清添加RPMI 1640)の量を200
μl/ウエルになるようにして、37℃の5%炭酸ガス
培養器中で24時間培養した。培養終了後、遠心分離に
より培養上清を分離し、市販の酵素免疫測定キット(イ
ンターロイキン1βは大塚製薬製、インターロイキン6
はResearch and Diagnostic System社製)を用いてサイ
トカイン量を定量した。その結果、図3及び図4に示す
ように、本発明糖タンパク質複合体S1添加によるイン
ターロイキン1β産生(図3のB)及びインターロイキ
ン6産生(図4のB)は、PSK添加のインターロイキ
ン1β産生(図3のA)及びインターロイキン6産生
(図4のA)に比して有意に高値を示した。一方、S2
及びS3の活性も、表5に示すように、PPの活性より
も高かった。
【0029】
【表5】 500μg/ml添加培養群上清中の含量(ng/ml) インターロイキン1β インターロイキン6 PP 0.6 1.3 S2 1.5 2.8 S3 1.4 2.6
【0030】実施例8:増殖因子阻害活性 0.2%牛血清アルブミン添加燐酸緩衝液 (pH7.
4) にヒト由来遺伝子組換えTGF−β1(Research a
nd Diagnostic System社製)又はPDGF(Research a
nd Diagnostic System社製)を加え、100ng/ml
になるように調整した。試験管に上記溶液を0.2m
l、次いで一定量の本発明糖タンパク質複合体S1又は
PSKを0.2%牛血清アルブミン添加燐酸緩衝液に溶
解させた溶液を0.2ml加え、22℃で3時間反応さ
せた。反応終了後、市販の酵素免疫測定キット(TGF
−β1はアマシャム社製、PDGFはResearch and Dia
gnostic System社製)を用いて、反応液中のTGF−β
1又はPDGFを定量した。検体のTGF−β1又はP
DGF結合活性は下記の式(2)から算出した。
【0031】
【式2】
【0032】その結果、図5(TGF−β1)及び図6
(PDGF)に示すように、本発明糖タンパク質複合体
S1のTGF−β1及びPDGFの直接結合能(図5及
び図6のB)は、PSKの直接結合能(図5及び図6の
A)に比して明らかに高かった。一方、S2及びS3の
活性も、表6に示すように、PPの活性よりも高かっ
た。
【0033】
【表6】
【0034】
【発明の効果】本発明による新規な糖タンパク質複合
体、担子菌カワラタケ属由来のタンパク多糖体を過沃素
酸酸化することにより、1→4及び1→6結合した糖質
部が減少し、それに伴って、生理活性が顕著に上昇す
る。従って、本発明による酸化処理により、前記のタン
パク多糖体よりも投与量を減少させながら、抗悪性腫瘍
剤、免疫調節剤(例えば、IL−1β誘導剤、IL−6
誘導剤、又はT細胞増殖誘導剤)、又は増殖因子阻害剤
(例えば、TGF−β1阻害剤、又はPDGF阻害剤)
として用いることができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】実施例5において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1の抗腫瘍活性とPSKの抗腫瘍活性
とを対比して示すグラフである。
【図2】実施例6において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1のT細胞増殖促進活性とPSKのT
細胞増殖促進活性とを対比して示すグラフである。
【図3】実施例7において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1のIL−1β産生誘導活性とPSK
のIL−1β産生誘導活性とを対比して示すグラフであ
る。
【図4】実施例7において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1のIL−6産生誘導活性とPSKの
IL−6産生誘導活性とを対比して示すグラフである。
【図5】実施例8において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1のTGF−β1との結合活性とPS
KのTGF−β1との結合活性とを対比して示すグラフ
である。
【図6】実施例8において測定した、本発明による糖タ
ンパク質複合体S1のPDGFとの結合活性とPSKの
PDGFとの結合活性とを対比して示すグラフである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C07K 14/375 8517−4H C12P 21/00 A //(C12P 21/00 C12R 1:645)

Claims (11)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
    培養物又は子実体の抽出物を化学処理して得られる下記
    の理化学的性質を有する糖タンパク質複合体であって、
    ゲルクロマトグラフィーによる測定で5,000〜1,
    000,000の範囲の分子量を示し、フェノール硫酸
    法で定量した糖質量に対するローリー−フォーリン(L
    owry−Folin)法で定量したタンパク質の量
    (タンパク質/糖質)が0.7〜5.0であり、糖質中
    グルカンの18〜100%が1→3グルカンである構造
    を有することを特徴とする、糖タンパク質複合体。
  2. 【請求項2】 塩酸加水分解物のアミノ酸分析により、
    アスパラギン酸、スレオニン、セリン、グルタミン酸、
    プロリン、グリシン、アラニン、システイン、バリン、
    メチオニン、イソロイシン、ロイシン、チロシン、フェ
    ニルアラニン、リジン、ヒスチジン及びアルギニンが検
    知され、その中でアスパラギン酸、スレオニン、セリ
    ン、グルタミン酸、グリシン、アラニン、フェニルアラ
    ニン、バリン、イソロイシン及びロイシンの占める含量
    が検知全アミノ酸量の75モル%以上である、請求項1
    に記載の糖タンパク質複合体。
  3. 【請求項3】 硫酸加水分解後の糖質分析により、フコ
    ース、キシロース、マンノース、ガラクトース及びグル
    コースが検知され、その中でグルコース、マンノース及
    びキシロースの占める含量が検知全糖質量の90重量%
    以上である、請求項1に記載の糖タンパク質複合体。
  4. 【請求項4】 カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
    培養物又は子実体の抽出物が、熱水又はアルカリ溶液に
    よる抽出物であり、それを化学処理して得られる、請求
    項1に記載の糖タンパク質複合体。
  5. 【請求項5】 カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
    培養物又は子実体の抽出物が、熱水又はアルカリ溶液に
    よる抽出物であって、1→3、1→4及び/又は1→6
    グルカンと約5〜60%のタンパク質を含むタンパク多
    糖体であり、それを化学処理して得られる、請求項1に
    記載の糖タンパク質複合体。
  6. 【請求項6】 化学処理に、過沃素酸又はその塩類によ
    る酸化処理が含まれる、請求項1に記載の糖タンパク質
    複合体。
  7. 【請求項7】 カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
    培養物又は子実体の抽出物がPSKである、請求項5に
    記載の糖タンパク質複合体。
  8. 【請求項8】 カワラタケ属に属する担子菌由来の菌糸
    体、培養物又は子実体の抽出物であって、1→3、1→
    4及び/又は1→6グルカンと約5〜60%のタンパク
    質を含むタンパク多糖体に、化学処理を施すことを特徴
    とする、糖タンパク質複合体の製造方法。
  9. 【請求項9】 請求項1に記載の糖タンパク質複合体を
    含有することを特徴とする、抗腫瘍剤。
  10. 【請求項10】 請求項1に記載の糖タンパク質複合体
    を含有することを特徴とする、免疫調節剤。
  11. 【請求項11】 請求項1に記載の糖タンパク質複合体
    を含有することを特徴とする、増殖因子阻害剤。
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