JPH1031018A - 還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬およびそれを用いた測定方法並びに測定用試験片 - Google Patents
還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬およびそれを用いた測定方法並びに測定用試験片Info
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Abstract
けず、乾式測定が可能な還元型ニコチンアミド補酵素の
測定用試薬を提供する。 【解決手段】 特定のスチリル色素を含有する還元型ニ
コチンアミド補酵素の測定用試薬である。電子伝達体の
存在下、この還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬
中のスチリル色素と液体試料に含まれる還元型ニコチン
アミド補酵素とを反応させて前記スチリル色素を褪色さ
せ、可視部の吸光度の変化を測定することにより還元型
ニコチンアミド補酵素の測定ができる。前記スチリル色
素の具体例としては2−[1−シアノ−4−(4−ジメ
チルアミノフェニル)−1,3−ブタジエニル]−3−
エチルベンゾチアゾリウム アイオダイドがあり、電子
伝達体としてはジアホラーゼがある。
Description
ミド補酵素の測定用試薬およびそれを用いた測定方法並
びに測定用試験片に関するものである。
ち、還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(N
ADH)および還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドホスフェート(NADPH)は、生体内での酸化
還元反応に関与する補酵素である。したがって、還元型
ニコチンアミド補酵素を測定することにより、これに関
連する酵素または基質の測定ができる。
定方法としては、以下のような方法が知られている。 (1)NADHおよびNADPHの有する紫外部の吸収
または蛍光を直接測定する方法。
DPHとレサズリンの反応によって生成したレゾルフィ
ンの蛍光を測定する方法。 (3)電子伝達体の存在下、NADHおよびNADPH
とNTBやMTT等のテトラゾリウム塩とを反応させて
ホルマザン色素を生成し、その可視部の吸収を測定する
方法。
測定方法は、以下の問題を有する。まず、前記紫外部の
吸収および蛍光を測定する方法(1)は、尿等を測定対
象とする場合には、紫外部に吸収を有するまたは蛍光を
有する共存物質、例えば、リボフラビン等のビタミンB
2 剤、フルオレッセインナトリウム等の蛍光造影剤によ
って妨害を受ける。この問題は、前記(2)の方法も同
様である。
て用いる方法(3)は、試料中に共存するアスコルビン
酸、ビリルビン等の還元性物質による影響で、ブランク
発色を生じるという欠点がある。
の成分を測定する方法として、酸化酵素を用いる方法が
あるが、前記テトラゾリウム塩を用いる方法(3)と同
様に、試料中に共存するアスコルビン酸、ビリルビン等
の還元性物質の影響を受けて発色が阻害されるという欠
点がある。
方法において、測定操作等の観点から乾式測定の実現が
求められている。本発明は、前記従来の問題を解決し、
紫外部に吸収若しくは蛍光を有する共存物質および還元
性物質の影響を受けず、乾式測定が可能な還元型ニコチ
ンアミド補酵素の測定用試薬およびそれを用いた測定方
法並びに測定用試験片の提供を目的とする。
に、本発明の還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬
は、前記の式[化1]で示されるスチリル色素を含有す
る。
存在下で、NADHおよびNADPHの少なくとも一方
と作用させると、紫外部に蛍光等を有する共存物質およ
びアスコルビン酸、ビリルビン等の影響を受けず、高い
選択性でNADH等を測定できる。具体的には、10-6
M以下の微量のNADH等の測定が可能である。さら
に、この特殊なスチリル色素は、乾式測定に供しても高
い反応性を失うことがない。このように、本発明にかか
るスチリル色素は、高い反応性を有し、乾式測定に適用
できるが、これは、スチリル色素の分子構造中のメチン
鎖に酸性官能基が付加されているためと推察される。
を含有してもよい。また、この電子伝達体として、ジア
ホラーゼを用いることが好ましい。また、本発明の測定
方法において、還元型ニコチンアミド補酵素は、通常、
還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドおよび還
元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェー
トの少なくとも一方の補酵素である。
酵素の測定方法は、電子伝達体の存在下、前記本発明の
還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬中のスチリル
色素と液体試料に含まれる還元型ニコチンアミド補酵素
とを反応させて前記スチリル色素を褪色させ、可視部の
吸光度の変化を測定する。
としては、例えば、血液、尿、骨髄液、リコール、胸
水、腹水、汗、涙または唾液があげられる。本発明の測
定方法において、電子伝達体としてジアホラーゼを用い
ることが好ましく、この場合、通常、前記スチリル色素
0.1〜10.0molに対しジアホラーゼ0.12〜
1.20mkatの割合で用いる。
ンアミド補酵素は、通常、還元型ニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドおよび還元型ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドホスフェートの少なくとも一方の補酵素
である。
酵素の測定用試験片は、前記本発明の電子伝達体を含有
する還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬を担体に
付着させたものである。この測定用試験片は、例えば、
前記本発明の電子伝達体を含有する測定用試薬を担体に
含浸する方法、若しくは、前記試薬を担体に塗布、印刷
または噴霧することにより作製できる。
リル色素において、Zによって形成される複素環の具体
例としては、チアゾール系の環(例えば、チアゾール、
4−メチルチアゾール、4−フェニルチアゾール、4,
5−ジフェニルチアゾール)、ベンゾチアゾール系の環
(例えば、ベンゾチアゾール、5−クロロベンゾチアゾ
ール、6−メトキシベンゾチアゾール、5−トリフルオ
ロメチルベンゾチアゾール、5−カルボキシベンゾチア
ゾール、5,6−ジヒドロキシベンゾチアゾール)、ナ
フトチアゾール系の環(例えば、α−ナフトチアゾー
ル、β−ナフトチアゾール、5−ヒドロキシ−β−ナフ
トチアゾール)、オキサゾール系の環(例えば、4−メ
チルオキサゾール、4,5−ジフェニルオキサゾー
ル)、ベンゾオキサゾール系の環(例えば、ベンゾオキ
サゾール、6−ヒドロキシベンゾオキサゾール、5−ク
ロロベンゾオキサゾール、5−フェニルベンゾオキサゾ
ール)、ナフトオキサゾール系の環(例えば、α−ナフ
トオキサゾール、β−ナフトオキサゾール)、セレナゾ
ール系の環(例えば、4−メチルセレナゾール)、ベン
ゾセレナゾール系の環(例えば、ベンゾセレナゾール、
5−ヒドロキシベンゾセレナゾール、5−クロロベンゾ
セレナゾール)、チアゾリン系の環(例えば、チアゾリ
ン)、2−ピリジン系の環(例えば、2−ピリジン、5
−メトキシ−2−ピリジン)、4−ピリジン系の環(例
えば、4−ピリジン、3−クロロ−4−ピリジン)、2
−キノリン系の環(例えば、2−キノリン、6−ヒドロ
キシ−2−キノリン、6−エトキシ−2−キノリン)、
4−キノリン系の環(例えば、4−キノリン、6−メト
キシ−4−キノリン、6−クロロ−4−キノリン)、1
−イソキノリン系の環(1−イソキノリン)、3,3−
ジアルキルインドレニン系の環(例えば、3,3−ジメ
チルインドレニン、5−クロロ−3,3−ジメチルイン
ドレニン、5−カルボキシ−3,3−ジメチルインドレ
ニン、5−スルホキシ−3,3−ジメチルインドレニ
ン、3−シクロヘキシルインドレニン、5−メチルスル
ホニル−3,3−ジメチルインドレニン)、3,3−ジ
アルキルベンゾインドレニン系の環(例えば、3,3−
ジメチル−α−ベンゾインドレニン、3,3−ジメチル
−β−ベンゾインドレニン)、ベンゾイミダゾール系の
環(例えば、ベンゾイミダゾール、1−アルキル−5,
6−ジクロロベンゾイミダゾール、1−アルキル−5−
スルホニルベンゾイミダゾール、1−アルキル−5−ト
リフルオロメチルベンゾイミダゾール)の核含有環を含
む環等の、5員および6員のヘテロ環が挙げられる。
基、イソプロピル基、ブチル基、イソアミル基、オクチ
ル基、2−エチルヘキシル基、ドデシル基等のアルキル
基、これらの置換アルキル基が挙げられる。置換アルキ
ル基の置換基の具体例としては、塩素、臭素、フッ素及
びヨウ素等のハロゲン原子、アリール基(例えば、フェ
ニル基、ナフチル基)、アルコキシ基、水酸基、カルボ
ン酸基、スルホン酸基等が挙げられる。
環の具体例としては、4−ジメチルアミノベンゼン、
1,2,3,4−テトラヒドロキノリン、ユロリジン等
が挙げられる。
フッ素化物およびヨウ素化物等のハロゲン化物があり、
例えば、メタンスルホン酸イオン、p−トルエンスルホ
ン酸イオン等のスルホン酸イオン、メチル硫酸イオンお
よびエチル硫酸イオン等の硫酸イオンが挙げられ、その
他、過塩素酸イオン、硝酸イオン等のイオンも例示でき
る。なお、R1 の置換基がカルボン酸基またはスルホン
酸基等の酸基を含んでおり、スチリル色素が分子内塩を
形成する場合には、Xは必要でない。
ては、下記の式(化2)に示す2−[1−シアノ−4−
(4−ジメチルアミノフェニル)−1,3−ブタジエニ
ル]−3−エチルベンゾチアゾリウム アイオダイドが
あげられる。
造の一例について説明する。スチリル色素として、2−
[4−(4−ジメチルアミノ)フェニル−1,3−ブタ
ジエニル−1−シアノ]−3−エチルベンゾチアゾリウ
ム アイオダイドを合成した。
エチルベンゾチアゾリウム アイオダイド1.2gおよ
び4−ジメチルアミノシンナムアルデヒド0.7gを1
0mlの無水酢酸に加え混合する。この混合物を、80
℃のウオーターバスで2〜3分間加熱すると、針状結晶
が析出する。さらに、20分間加熱し、析出した針状結
晶を吸引ろ過して分離し、メタノールで洗浄して、つい
でメタノールから再結晶すると前記スチリル色素が1g
得られる。
ルドラブルー、1−メトキシ−5−メチルフェナジニウ
ムメチルサルフェート(1−mPMS)、ジアホラーゼ
等が挙げられるが、ジアホラーゼが好ましい。
およびNADPHの合計1モルに対して、好ましくは
0.1〜10.0モル、より好ましくは0.5〜2.0
モル用いればよい。電子伝達体、例えばジアホラーゼ
は、触媒として作用するので、その量は触媒量でよい。
先に述べたように、通常、0.1〜1.0mkat/l
のような割合で用いる。
ル色素の選択、例えば前記の式(化1)中のnの選択に
より測定波長を400〜900nmまで任意に選択する
ことが可能である。
子伝達体によって制約を受けるので、例えば電子伝達体
がジアホラーゼの場合、通常のpHの範囲は5〜9、好
ましくはpH7〜8であり、温度は通常20〜40℃、
好ましくは30〜37℃である。なお、本発明にかかる
スチリル色素は、反応性が高いため、反応に要する時間
は瞬時に近い極めて短い時間である。
液、例えば血液またはその成分(血漿、血清等)、尿、
髄液または細胞抽出液等であるが、NADHおよびNA
DPHの少なくとも一方を含む液体試料ならいずれも本
発明の対象となる。
の基質等の成分を測定しようとする場合、その酵素と基
質によって生成する物質を還元酵素及び酸化型ニコチン
アミド補酵素とともに反応させ、生成する還元型ニコチ
ンアミド補酵素の量を本発明の方法により測定する。こ
れにより、目的とする液体試料中の成分の量、濃度を測
定することができる。下記の式(化3)に本発明の測定
用試薬の反応の一例を示す。
て、ジアホラーゼ(Diaphorase)存在下、N
ADHにより、本発明にかかるスチリル色素(blue
dye)が褪色する(discolor)するととも
に、前記NADHがNADとなる。また、前記の式(化
3)の左側の反応式は、β−ハイドロキシステロイドデ
ヒドロゲナーゼ(β−HSD)の存在下、NADによ
り、3β−ハイドロキシバイル酸が3−オキソステロイ
ドになるとともに、前記NADがNADHとなる。すな
わち、この反応は、NADを補酵素とするβ−HSDの
酵素反応である。したがって、この場合、本発明による
NADHの測定により、β−HSD等の測定が可能とな
る。
ば、α−ハイドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ア
ルコールデヒドロゲナーゼ、グリセロールデヒドロゲナ
ーゼ、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ、グルコースデヒド
ロゲナーゼなどである。
酵素の測定用試験片に用いる担体としては、例えば、濾
紙、布、不織布、ポリエチレンテレフタレートフィル
ム、ポリエチレンフィルム、ガラス、セラミック等があ
げられ、測定用試験片の種類に応じ適宜選択される。例
えば、測定用試験片を本発明の測定用試薬を担体に含浸
して作製する場合は、吸収可能な担体として濾紙が好適
であり、また、一般的な担体としては、ポリエチレンテ
レフタートフィルムが好適である。
下のとおりである。すなわち、まず血液等の液状試料を
前記測定用試験片に付着させる。すると、この試験片が
褪色するので、この褪色程度を分光光度計若しくはデン
シトメーター等で測定することにより、液状試料中のN
ADH等を測定することができる。
用いるスチリル色素として、前記の式(化2)で表され
る2−[1−シアノ−4−(4−ジメチルアミノフェニ
ル)−1,3−ブタジエニル]−3−エチルベンゾチア
ゾリウム アイオダイドを用いた。以下に、反応液組成
および測定用検体(液状試料)を示す。なお、下記の反
応液および測定用検体の組成は、全て最終濃度を示す。
い検量線を作成した。 (1)反応セルにTris−HCl緩衝液を入れる。こ
の量は、実施例1では2.65mlであり、実施例2で
は2.55mlである。 (2)色素液0.1ml、ジアホラーゼ0.15mlを
反応セルに加えて攪拌した後、25℃で5分インキュベ
ートする。 (3)各濃度の検体を、実施例1では0.1ml、実施
例2では0.2ml、反応セルに加え、攪拌後、直ちに
640nmにおける吸光度を測定し、検量線を作成す
る。
例2の検量線を図2のグラフに示す。このように、本発
明の実施例では、反応後、直ちに測定に供することがで
きるため、迅速な測定が可能であった。また、実施例2
の結果より、還元物質であるアスコルビン酸が共存して
いても、この影響を受けることなくNADHの測定が可
能であるといえる。
し、これを10×10cmの濾紙(Whatman社
製、3MM,Chr)に含浸し、ついで乾燥機(YAM
ATO社製、DF62)を用い50℃、15分間の条件
で乾燥させた。そして、この濾紙を、幅5mmに裁断
し、両面テープを用いてポリエチレンテレフタレートフ
ィルムに貼着し、さらにこれを5mmに裁断し5×5m
mの測定用試験片を作製した。
(濃度:0μmol/L,20μmol/L,50μm
ol/L,100μmol/L)を準備した。
NADH水溶液を点着し、色差計(Σ90、日本電色社
製)を用い、測定時間120秒(エンドポイント)およ
び測定温度25℃の条件で640nmでの反射率を測定
した。この測定結果を、図3のグラフに示す。
する検量線が得られた。また、この実施例は、乾式測定
の実施例であるが、測定において高い反応性を確認する
ことができた。
アミド補酵素の測定用試薬は、前記の式[化1]で示さ
れるスチリル色素を含有する。この特殊なスチリル色素
は、電子伝達体の存在下で、NADHおよびNADPH
の少なくとも一方と作用させると、高い選択性でNAD
H等を測定できる。しかも、この測定では、紫外部に蛍
光等を有する共存物質およびアスコルビン酸、ビリルビ
ン等の影響を受けない。このため、本発明の測定用試薬
を用いれば、前処理等をせずに、高い精度で簡単に試料
中のNADH等を測定できる。また、この特殊なスチリ
ル色素は、乾式測定に供しても高い反応性を失うことが
ないため、これを用いれば、測定用試験片を作成するこ
とが可能となる。この測定用試験片を用いることによ
り、NADH等の測定がさらに容易となる。
示すグラフである。
量線を示すグラフである。
Hの検量線を示すグラフである。
Claims (10)
- 【請求項1】 下記の式[化1]で示されるスチリル色
素を含有する還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試
薬。 【化1】 - 【請求項2】 電子伝達体を含有する請求項1記載の還
元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬。 - 【請求項3】 電子伝達体が、ジアホラーゼである請求
項1または2記載の還元型ニコチンアミド補酵素の測定
用試薬。 - 【請求項4】 還元型ニコチンアミド補酵素が、還元型
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドおよび還元型ニ
コチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェートの少
なくとも一方の補酵素である請求項1〜3のいずれか一
項に記載の還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬。 - 【請求項5】 電子伝達体の存在下、請求項1に記載の
還元型ニコチンアミド補酵素の測定用試薬中のスチリル
色素と液体試料に含まれる還元型ニコチンアミド補酵素
とを反応させて前記スチリル色素を褪色させ、可視部の
吸光度の変化を測定する還元型ニコチンアミド補酵素の
測定方法。 - 【請求項6】 液体試料が、血液、尿、骨髄液、リコー
ル、胸水、腹水、汗、涙または唾液である請求項5に記
載の還元型ニコチンアミド補酵素の測定方法。 - 【請求項7】 電子伝達体としてジアホラーゼを用いる
請求項5または6記載の還元型ニコチンアミド補酵素の
測定方法。 - 【請求項8】 スチリル色素0.1〜10.0molに
対しジアホラーゼ0.12〜1.20mkatの割合で
ある請求項7記載の還元型ニコチンアミド補酵素の測定
方法。 - 【請求項9】 還元型ニコチンアミド補酵素が、還元型
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドおよび還元型ニ
コチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェートの少
なくとも一方の補酵素である請求項5〜8のいずれか一
項に記載の還元型ニコチンアミド補酵素の測定方法。 - 【請求項10】 請求項2に記載の還元型ニコチンアミ
ド補酵素の測定用試薬を担体に付着させた還元型ニコチ
ンアミド補酵素の測定用試験片。
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1996
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