JPH10500862A - 核酸のコピーの産生 - Google Patents

核酸のコピーの産生

Info

Publication number
JPH10500862A
JPH10500862A JP8500512A JP50051296A JPH10500862A JP H10500862 A JPH10500862 A JP H10500862A JP 8500512 A JP8500512 A JP 8500512A JP 50051296 A JP50051296 A JP 50051296A JP H10500862 A JPH10500862 A JP H10500862A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
strand
target
copy
copy target
oligonucleotide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
JP8500512A
Other languages
English (en)
Inventor
ミンター,スティーブン・ジョン
Original Assignee
テプネル・メディカル・リミテッド
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from GB9410804A external-priority patent/GB9410804D0/en
Priority claimed from GBGB9502079.8A external-priority patent/GB9502079D0/en
Application filed by テプネル・メディカル・リミテッド filed Critical テプネル・メディカル・リミテッド
Publication of JPH10500862A publication Critical patent/JPH10500862A/ja
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6848Nucleic acid amplification reactions characterised by the means for preventing contamination or increasing the specificity or sensitivity of an amplification reaction
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686Polymerase chain reaction [PCR]

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

(57)【要約】 固相支持体上に固定されたオリゴヌクレオチドを用いる核酸の増幅が開示されている。(分析されるサンプル中の)標的核酸鎖をオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成させ、標的鎖を鋳型として用い、コピー標的鎖(固定されたオリゴヌクレオチドに組み入れる)を産生する。該標的鎖をコピー標的鎖より変性させ、伸長していないオリゴヌクレオチドに再ハイブリッド形成させる。次の工程にて、新たなコピー標的(1)鎖が標的鎖にハイブリッド形成したオリゴヌクレオチドより合成され、同時にコピー標的(2)鎖が前に生成されたコピー標的(1)鎖を用いて合成される。コピー標的(1)およびコピー標的(2)鎖の変性、再ハイブリダイゼーションおよび産生を必要ならば繰り返し、所望の増幅度を得る。

Description

【発明の詳細な説明】 核酸のコピーの産生 本発明は核酸鎖の少なくとも一部のコピーの産生方法に関する。 遺伝子工学の分野において、多くの場合、サンプル中にほんの少量だけの核酸 が存在するが、研究または診断テストを目的としていくらか多量の完全なまたは 部分的な配列を必要とする。また、(ヒトが、DNAまたはRNAのいずれかの 特定のウイルスに感染しているか、または核酸中における特定の配列の有無を決 定するために)特定の核酸がいったいサンプル中に存在するかどうかを知る必要 があるかもしれない。核酸の量は、サンプル中にあるとしても、検出可能な限界 より少ないため、(あるとすれば)多量の核酸が産生されるようにそのサンプル を増幅反応に付す必要がある。ついで、核酸の存在あるいはその逆を測定するた めに試験を行ってもよい。その試験が正であるならば、これは核酸が最初のサン プル中に存在したことを確認する。反対に、試験が負であるならば、これは核酸 が最初のサンプル中に不在であったことの確認となる。 本発明は種々の技法であって、その技法によってサンプル中に存在するかまた は存在する可能性のある核酸を多量に産生することのできる技法に関する。 本発明の第一の態様によれば、サンプル中に存在するかまたは存在する可能性 のある核酸鎖(「標的鎖」)の少なくとも一部のコピーの産生方法であって、 (i)その上に標的鎖とハイブリッド形成能を有する複数の一本鎖オリゴヌクレ オチドを固定した固体支持体系を準備し、 (ii)一本鎖形態の標的鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリゴヌクレオチ ドとハイブリッド形成させ(オリゴヌクレオチドの数は実質的に標的鎖の数より 多い)、 (ii)(a)その支持体系を洗浄し、非ハイブリッド形成の物質を除去し、 (iii)その固定されたオリゴヌクレオチドを組み入れ、標的鎖の少なくとも一 部 に相補的な核酸配列を有するコピー標的1鎖を産生し(コピー標的1鎖は標的鎖 を鋳型として用いてコピー標的1配列の少なくとも一部を生成することにより少 なくとも部分的に産生され、必要ならば、コピー標的1配列の形成を完了する) (iv)コピー標的1鎖とハイブリッド形成した鎖を変性させ、所望により先の鎖 の少なくともいくらかをコピー標的1鎖に変換されていない支持体上のオリゴヌ クレオチドに再ハイブリッド形成させてもよく、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1鎖を鋳型として用いて、当 該核酸配列からなるコピー標的2鎖を(コピー標的1鎖とハイブリッド形成させ たプライマーより)生成し、 (b)標的鎖が固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成してい るならば、それを鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を 生成し、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、および (vi)要すれば、工程(iv)および(v)を数回繰り返し、各工程(iv)および (v)の繰り返しにて、コピー標的2鎖を用いてさらなるコピー標的1鎖を生成 する 工程からなる方法を提供する。 前記したように、本発明の方法は、問題の核酸を含有していても、または含有 していなくてもよいサンプルに対して行うことができる。核酸が存在しないなら ば、前記した工程(iii)ないし(vi)がコピー標的1鎖およびコピー標的2鎖 の産生を誘導しないことは明らかであろう。とはいっても、コピー標的2鎖の存 在を測定するのに行われた検出操作での負の結果は標的鎖が最初のサンプル中に 存在しなかったことを立証しているため、コピー標的2鎖が産生されないという 事実は有意義な情報を提供する。 洗浄工程(ii)(a)は、工程(iii)にて用いるために、標的鎖の清澄なサ ンプルが固体支持体系に存在するように、非ハイブリッド形成の物質を支持体系 よ り除去するものである。したがって、最初のサンプル中に存在するかもしれない 夾雑物は本発明の方法と無関係である。 工程(iv)において、標的鎖を支持体上の伸長していないオリゴヌクレオチド と再びハイブリッド形成させることができる。別法として、当初の標的鎖を工程 (v)の前に固体支持体系より除去してもよい。 さらに、固体支持体系を洗浄し、および/または各ハイブリダイゼーション反 応の後に、および/または工程(iii)ないし(vi)のこの全経路内に行われる 各鎖合成反応および/または連結反応の後に試薬を除去することが好ましい。か くして、例えば、工程v(b)で導入される過剰なプライマーは(少なくとも一 部またはさらなる)コピー標的1鎖の生成前に除去される。 オリゴヌクレオチドは、固体支持体に共有結合していることが好ましい。好ま しくは、該固体支持体系は粒状系であり、オリゴヌクレオチドは該粒子上に固定 される。粒状支持体系の使用は本来的に重要な特徴であり、したがって本発明の 第2の態様によれば、サンプル中に存在するかまたは存在する可能性のある核酸 鎖(「標的鎖」)の少なくとも一部のコピーの産生方法であって、 (i)その上に標的鎖とハイブリッド形成能を有する複数の一本鎖オリゴヌクレ オチドを固定した粒状の支持体系を準備し、 (ii)一本鎖形態の標的鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリゴヌクレオチ ドとハイブリッド形成させ(オリゴヌクレオチドの数は実質的に標的鎖の数より 多い)、 (iii)固定されたオリゴヌクレオチドを組み入れ、標的鎖の少なくとも一部に 相補的な核酸配列からなるコピー標的1鎖を産生し(コピー標的1鎖は標的鎖を 鋳型として用いてコピー標的1配列の少なくとも一部を生成することにより少な くとも部分的に産生され、必要ならば、コピー標的1配列の形成を完了する)、 (iv)コピー標的1鎖とハイブリッド形成した鎖を変性させ、所望により先の鎖 の少なくともいくらかをコピー標的1鎖に変換されていない支持体上のオ リゴヌクレオチドと再ハイブリッド形成させ、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1鎖を鋳型として用いて、当 該核酸配列からなるコピー標的2鎖を(コピー標的1鎖にハイブリッド形成され たプライマーより)生成し、 (b)標的鎖が固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成してい るならば、それを鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を 生成し、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、および (vi)要すれば、工程(iv)および(v)を数回繰り返し、各工程(iv)および (v)の繰り返しにて、コピー標的2鎖を用いてさらなるコピー標的1鎖を生成 する 工程からなる方法を提供する。 工程(ii)の後、粒状固体支持体を洗浄し、工程(iii)を実施する前にハイ ブリッド形成されていない物質を除去することが、本発明の第2の態様の好まし い特徴である。 粒子は非多孔姓シリカであることが好ましく、50ないし200(より好まし くは100ないし200)ミクロンの大きさを有することが好ましい。これらの 粒子はまた、オリゴヌクレオチドと反応し、シロキサンマトリックスを介して支 持体上にそれを固定させる反応基(例えば、エポキシ基)を有する架橋シロキサ ンマトリックスを有していてもよい。適当な粒子はWO−A−93/13220 (Tepnel)に記載されている。 固体支持体をカラムに充填することが好ましく、その中におよびそこから液体 を容易に導入し、かつ除去することのできる。このようなカラムの使用により、 試薬(例えば、ハイブリダイゼーションバッファー、ヌクレオチド)が容易に反 応系中に導入されることが可能となる。さらには、いずれの段階の後であっても 、「清澄な」サンプルが次の段階の実施にてカラム上に残るように、このカラム を洗浄し、容易に過剰な試薬などを除去することができる。 適当なカラム配置はWO−A−93/13220に開示されている。 前記の操作にて、コピー標的1鎖は多数の方法にて生成できる。第1に、支持 体上のオリゴヌクレオチドの配向は、コピー標的1鎖を直接産生するように、そ の効果が(鋳型として標的鎖またはその中にハイブリッド形成されたコピー標的 2鎖を用い)工程(v)(b)にて伸長していてもよいプライマーとして供する ものであってもよい。第2に、オリゴヌクレオチドの配向は、それが前文にて限 定されている方式にて伸長できないものであってもよい。この場合、コピー標的 または固定されたオリゴヌクレオチドにハイブリッド形成されたコピー標的2鎖 とハイブリッド形成するであろう別のプライマーを加え、ついで(標的を鋳型と して用い)この鎖をオリゴヌクレオチドに向かって逆に伸長させ、その後、それ に結合させてコピー標的1鎖の調製を完了することが必要である。 工程(ii)にて、ハイブリッド形成する標的鎖よりも固体支持体系上に実質的 により多くのオリゴヌクレオチドがあるのが本発明の方法の特徴である。より具 体的には、支持体上のオリゴヌクレオチドの総数は、好ましくは少なくとも10 のファクター、より好ましくは少なくとも100のファクター、さらにより好ま しくは少なくとも1000のファクターで工程(ii)で導入される標的鎖の数よ りも多いことを意味する。 工程(v)(a)は当該核酸配列からなるコピー標的2鎖の産生を誘導する。 工程(v)(支持体上に固定されたオリゴヌクレオチドに加えて、液相プライマ ーの使用を包含する)の終わりに、コピー標的2鎖をコピー標的1鎖にハイブリ ッド形成させ、最初の工程(v)の操作の後、コピー標的2鎖の数は、伸長して いないオリゴヌクレオチドの数と比較して相対的に少ない。したがって、工程( iv)の最初の繰り返しにて、コピー標的2鎖(コピー標的1鎖より変性された) は、コピー標的1鎖と再びハイブリッド形成するよりも、伸長していないオリゴ ヌクレオチドとハイブリッド形成する傾向にある。かくして、工程(v)(b) の繰り返しにおいて、オリゴヌクレオチドとハイブリッド形成したコピー標的2 鎖は別のコピー標的1鎖の生成に供し、一方、さらなるコピー標的2鎖が工程( v) (a)にて (以前に産生されたコピー標的1鎖より)同時に産生される。 工程(iv)および(v)を必要なたびに繰り返す。少なくとも該方法の初期の サイクルの間、工程(v)を繰り返す度に多くのコピー標的2鎖が産生され、も ちろん、伸長していないオリゴヌクレオチドの数が減少するであろう。これらの 初期の段階は、産生されるコピー標的2鎖の数の幾何学的増加をもたらす。その 後の工程(iv)の繰り返しの間、コピー標的1鎖と再びハイブリッド形成するコ ピー標的2鎖の増加する可能性があり、この組み合わせはさらなるコピー標的1 またはコピー標的2鎖の産生を誘導しない。工程(iv)および(v)を十分繰り 返すことで一点となり、その点で支持体上に存在するすべてのまたは実質的にす べての最初のオリゴヌクレオチドは、コピー標的1鎖を産生するように伸長され るであろう。反応はこの点に到達するように行うことが好ましい。 工程(f)の生成物は、それに固定化された2本鎖核酸を有する固体支持体系 からなる。より詳細には、各2本鎖は、1の鎖として、支持体に固定化されそれ にハイブリダイゼーションしたもとのオリゴヌクレオチドを含んでいるコピー標 的1鎖、他方の鎖として、もとの標的鎖由来の対象配列のコピーを含んでいるコ ピー標的2鎖からなっている。もとの配列が再生される実際の程度は、例えば、 (i)工程(ii)においてオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成する標的鎖の 領域、および(ii)工程e(i)においてプライマーがハイブリッド形成するコ ピー標的1鎖の領域に依存する。 工程(f)の生成物を多くの方法で使用することができる。まず、コピー標的 2鎖を固定化コピー標的1鎖から変性させて、量が増加した(もとの標的量と比 較して)の対象配列のコレクションを得ることができる。コピー標的2鎖が変性 され、系から除去されたならば、以下の手順によりさらなる量の対象配列を少な くとも1回得ることに使用できる固体支持体系が残る。 (vii)コピー標的1鎖を鋳型として用いて、プライマー伸長生成物が対象配列 を含むような位置でコピー標的1鎖をプライマーとハイブリッド形成させ、 (viii)コピー標的1鎖を鋳型として用いてプライマーを伸長させ、次いで、 (ix)生成物鎖をコピー標的1鎖から変性させ、生成物鎖を収集する。 好ましくは、工程(vii)〜(ix)を少なくとも1回、好ましくは複数回繰り 返し、工程(vii)〜(ix)の各繰り返しにより実質的に同量の生成物鎖を得る 。それゆえ、累積により、工程(vii)〜(ix)の繰り返しにより量が直線的に 増加する生成物鎖が得られる。得られる生成物鎖の量を最大にするためには、す べてまたは実質的にすべてのもとのオリゴヌクレオチドをコピー標的1鎖に変換 することが明らかに望ましい。 工程(vi)から得られた生成物(または工程(viii)から得られた生成物)に 関するもう1つの使用は、支持体から2本鎖生成物を開裂するために制限酵素を 使用することである。2本鎖生成物をベクター中にクローン化してもよく、ある いは他の方法で使用してもよい。 慣用的方法、例えば、核酸にハイブリダイゼーション可能な酵素標識オリゴヌ クレオチドを用いて、本発明方法により製造された核酸を検出することができる 。 本発明方法は多くの方法において有効でありうる。 第1の具体例において、オリゴヌクレオチドを固体支持体系に固定化して、標 的鎖がそれにハイブリダイゼーションするようにし、適当な酵素系を用いて、オ リゴヌクレオチドが自分自身で伸長してコピー標的1鎖を生成するようにする。 一般的には、このことは、オリゴヌクレオチドがそれらの5'末端を介して固体 支持体系に結合してオリゴヌクレオチドの伸長が5'から3'方向に進行すること を意味するであろう。この具体例において、コピー標的2鎖を得るために工程( v)(a)に用いるプライマーは、支持体から離れた位置においてコピー標的1 鎖にハイブリッド形成し、支持体の後方に伸長してコピー標的2鎖を生成する溶 液相プライマーである。コピー標的2鎖の生成の間、固定化オリゴヌクレオチド の伸長によりさらなるコピー標的1鎖(支持体に固定化されている)が生成され ることが、もちろん、理解されるであろう。 その最も単純な実施において、本発明の第1の具体例は、1のタイプの固定化 オリゴヌクレオチドを含む固体支持体系を用いる(2本鎖配列の1の標的鎖とハ イブリッド形成させるために)。本発明の第1の具体例の発展において、固体支 持体系は2つの異なる固定化オリゴヌクレオチドを含み、1のオリゴヌクレオチ ドは2本鎖核酸の鎖の1つにハイブリッド形成するようになっており、他方のオ リゴヌクレオチドは核酸の他方の鎖にハイブリッド形成するようになっている。 この発展により、互いに相補的であって(ハイブリッド形成する場合には)もと の2本鎖配列の少なくとも一部を再生する、2つのタイプのコピー標的2鎖を得 ることが可能であることが理解されるであろう。 本発明の第2の具体例において、標的鎖がハイブリッド形成する場合に、プラ イマーが標的鎖にハイブリッド形成し、オリゴヌクレオチドの後方に伸長しうる ような方向で、オリゴヌクレオチドを固体支持体に固定化する。この場合、プラ イマー伸長生成物をオリゴヌクレオチドに結合することによってコピー標的1鎖 の完全な調製を完結することが必要である。一般的には、本発明のこの具体例は 、オリゴヌクレオチドがそれらの3'末端を介して固体支持体に結合されてプラ イマー(標的鎖にハイブリッド形成している)の伸長が支持体の後方へ向かって 5'から3'方向へと進行することを意味する。 本発明の第2の具体例において、相補的コピー標的2配列が生じうるように、 固体支持体は単一タイプの固定化オリゴヌクレオチドまたは2つのタイプの固定 化オリゴヌクレオチドのいずれかを含んでいる。 本発明の第1および第2の具体例を一緒にして固体支持体系が2つの固定化オ リゴヌクレオチドを含むようにすることも可能である。すなわち2つのオリゴヌ クレオチドとは、 (i)自分自身で伸長してコピー標的1鎖を生成しうる第1のオリゴヌクレオチ ド(本発明の第1の具体例に関する)および (ii)(コピー標的1鎖を生成する目的で)標的鎖にハイブリッド形成させたプ ライマーの伸長生成物に結合することが必要とされる第2のオリゴヌクレオチド である。 上記のように、固体支持体系は2つの異なる固定化オリゴヌクレオチドを含ん でいてもよく、1のオリゴヌクレオチドは2本鎖核酸の1の鎖にハイブリッド形 成するようになっており、他方のオリゴヌクレオチドは核酸の他方の鎖にハイブ リッド形成するようになっている。このことは本来的に重要な特徴であり、それ ゆえ、本発明の第3の態様によれば、試料中に存在または潜在的に存在する核酸 鎖の少なくとも一部のコピーを製造する方法であって、下記工程 (i)それぞれが2本鎖核酸の2本の相補鎖のそれぞれ1つにハイブリッド形成 させる、固定化された2つの異なる1本鎖オリゴヌクレオチド0および0'のそ れぞれを複数個有する固体支持体系を準備し、該相補鎖は標的1および1'鎖を 生じるものであり、 (ii)1本鎖形態の標的1および1'鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリ ゴヌクレオチドにハイブリダイゼーションさせ、オリゴヌクレオチド数が実質的 に標的数を超えるものであり、 (iii)それぞれ固定されたオリゴヌクレオチド0または0'、およびそれぞれ標 的1または1'鎖の少なくとも一部に相補的な核酸配列を含んでいるコピー標的 1および1'鎖を得て、該コピー標的1および1'鎖は少なくとも部分的に個々の 標的鎖を鋳型として用いてコピー標的1または1'配列の少なくとも一部を得る ことにより得られるものであり、必要な場合には、コピー標的1配列および/ま たはコピー標的1'配列の形成を完了し、 (iv)コピー標的1鎖にハイブリッド形成した鎖を変性させ、次いで、所望によ り前記鎖の少なくともいくつかを、コピー標的1鎖に変換されていない支持体上 のオリゴヌクレオチドに再ハイブリッド形成させ、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定化されたコピー標的1鎖を鋳型として用いて( コピー標的1鎖にハイブリッド形成させたプライマーから)対象の核酸配列から なるコピー標的2鎖を得て、 (b)固定化オリゴヌクレオチドに標的鎖がハイブリッド形成しているな らば、標的鎖を鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を得 て、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、次いで、 (vi)工程(iv)および(v)を必要な回数繰り返し、標的2鎖を用いて工程(i v)および(v)の各繰り返しを行ってさらなるコピー標的1鎖を得るからなる方 法が提供される。 添付図面を参照することによってのみ、一例として本発明をさらに説明する。 図1は、本発明方法が実施されうる装置の1の具体例を説明する。 図2は、本発明の第1の態様による手順をスキーム的に説明する。 図3は、本発明の第1の態様によるさらなる手順をスキーム的に説明する。 図4は、本発明の第2の態様による手順をスキーム的に説明する。 図5は、本発明の第2の態様によるさらなる手順をスキーム的に説明する。 図6は、本発明の第3の態様による手順をスキーム的に説明する。 図7は、本発明の第3の態様によるさらなる手順をスキーム的に説明する。 図8および9は、実施例1の結果を説明するグラフであり、 図10および11は、実施例2の結果を説明するグラフである。 まず、図1を参照すると、説明される装置は、横切っている仕切り2を有する フロースルーカラム1からなり、仕切りの上部には粒子状支持体PAがあり、仕 切りの下部には粒子状支持体PBがある。かかる支持体PAおよびPBのそれぞれ は、以下に詳細に説明するようにそれらに固定化された各オリゴヌクレオチド3 および4を有している。仕切り2は、液体はそれを通過しうるが粒子PAおよび PBは通過しないようになっている。しかしながら、仕切り2を省き、支持体PA およびPBを混合することが同等に可能である。 図示したように、ハイブリダイゼーション用バッファー、酵素、ヌクレオチド および洗浄溶液の供給流れがカラム2に接続される。カラムから生成物を供給す ることができ、(下記のように)そこから生成物をカラムに戻すことができる貯 蔵装置5がカラムに接続されている。ヒーター6も必要に応じてカラム1を加熱 するように装備される。最後に、図示されたように弁を装備して、図示されたよ うに試薬をカラムに出し入れする。シリンジ、例えば、取り替え可能シリンジを 用いてカラムへの液体の出し入れを行ってもよい。 支持体PAおよびPBはWO−A−93/13220に記載されているようなも のであってもよい。かくして、支持体は、その外表面に(それぞれ)オリゴヌク レオチド3および4が結合しているシロキサンマトリックスを有する固体シリカ であってもよい。オリゴヌクレオチドが支持体に結合する様式はWO−A−93 /13220に記載されているようなものであってもよい。 支持体PAおよびPBは、それらに結合しているオリゴヌクレオチドのみが異な る。DNA分子はハイブリダイゼーションした相補的な鎖AおよびBからなるこ とに留意すること。支持体PAに結合しているオリゴヌクレオチドは、(鎖Bか ら変性される場合に)鎖Aがそれにハイブリダイゼーションし、一方では、支持 体PB上のオリゴヌクレオチドが鎖Bにハイブリダイゼーションできるようなも のである。 今度は、個々の配列XおよびYを有するように示される対象配列の2本鎖配列 のコピーを得るための本発明の第1の具体例の使用を説明する図2を参照する。 カラムは、図2にP1およびP2として示す2タイプの粒子を含んでいる。説明 目的で、鎖XおよびYはそれらの末端領域において示されるような任意の塩基配 列を有すると仮定する。 工程は以下のものを包含する: 1.標的配列を含むDNAを、カラム外部から変性させ、次いで、カラム上に導 入してもよく、あるいは2本鎖DNAをカラム上に導入し、次いで、その位置で 変性させてもよい。両方の場合、DNAを上昇した温度に供するか、あるいはD NAを変性させるための当該分野で知られている化学的手段に供する。いずれの 場合にも、変性したDNAをカラム中で支持体と混合する。次いで、カラムの温 度を低下させ、標的と粒子結合オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーション を可能にする。このハイブリダイゼーション反応は非常に正確な温度で起こる (反応のTm(融解温度)という)。Tmは標的配列中の塩基の比率に支配され る。高いAT比のものは高いCG比を含むDNAよりも低温で融解する(一定の 塩濃度において)。 配列X(標的)の3'末端を、配列AAAAを有するものとして示す。粒子P 1はそれに固定化(それらの5'によって)された、配列TTTT、すなわち、 配列Xの3'末端にハイブリダイゼーションする配列のオリゴヌクレオチドを有 しており、そのことにより、この鎖がトラップされうる(工程(b))。 鎖Z(標的)を、その3'において配列GGGGを有するものとして示す。粒 子P2は、それに固定化(それらの5'末端によって)された、鎖Yの3'領域に ハイブリダイゼーションする配列CCCCを有するオリゴヌクレオチドを有して おり、そのことにより、好ましくは鎖がトラップされうる(工程(b))。 2.カラムを洗浄して不純物(非標的DNAおよび阻害する蛋白を包含する)、 脂質および塩類を除去した後、手順の次の工程にとり理想的なバッファーでカラ ムを洗浄し続ける。次いで、カラム結合オリゴヌクレオチドを伸長させるために ポリメラーゼ酵素およびヌクレオチドを添加し、ヌクレオチドはプライマーとし て役立ち、それにより、トラップされた鎖がプライマーからコピーされ(工程( c))、支持体上に固定化されたコピー標的1鎖が得られる。 3.この反応が完結したら、カラムを洗浄して所望でない(使用しない)試薬を 除去する。 4.次いで、標的鎖を固定化コピー標的1鎖から変性させ(工程(d))、次い で、もとの2本鎖分子の量と比較すると過剰と考えられる未伸長オリゴヌクレオ チドと再度ハイブリダイゼーションさせる(工程(e))。 5.次の工程(工程(f))において、配列TTTTおよびCCCCを有する遊 離(溶液相)プライマーを添加し、図示したように、粒子P1またはP2に共有 結合したそれらの鎖にハイブリダイゼーションさせる。次いで、洗浄工程を用い て過剰な遊離プライマーをカラムから除去する。 6.粒子P1およびP2のそれぞれについて2つの伸長反応、すなわち、 (i)核酸鎖がハイブリッド形成するそれらの共有結合したオリゴヌクレオチド (例えば、P1についてはTTTT)の伸長(これは支持体P1およびP2から 遠ざかる方向で起こる)(それによりコピー標的1鎖が得られる)、および (ii)共有結合的に固定化された鎖にハイブリッド形成する、添加された「遊離 」ブライマーの伸長(これは支持体P1およびP2に向かって起こる)(それに よりコピー標的2鎖が得られる) が同時に起こるように酵素およびヌクレオチドを添加する(工程(g))。 工程(i)は、共有結合的に固定化された配列Zが粒子P1上で合成され、共 有結合的に固定化された配列Xが粒子P2上で合成されるようにする。工程(ii )は、粒子P1上での配列Xの合成および粒子P2上での配列Zの合成を導く。 これは、標的DNAの幾何学的コピーの開始である。 7.次いで、カラムを洗浄して所望でない試薬を除去する。 8.必要な回数だけ(d)〜(g)の手順を繰り返してもよい。 支持体上に大過剰のもとの固定化オリゴヌクレオチドが存在する。そのような ものとして、プロセスの最初のサイクルは以下のように進行するであろう(粒子 P1のみ考慮する)。工程(g)の終わりに、粒子P1は、2つの共有結合固定 化鎖Zおよび固定化鎖Zへのハイブリッド形成により結合した2つの鎖Xを有し ていると仮定する。工程(d)〜(e)の最初の繰り返しによって、対応する形 態は各鎖XおよびZの4本であろう。次の繰り返しによって、8本の各配列が存 在することとなる、等である。しかしながら、この累積的タイプの増加は支持体 上に固定化されたオリゴヌクレオチドの数によって限定される。かくして、工程 (g)において合成されるハイブリッド形成した鎖の量は、最終的には、引き続 いての変性および再ハイブリダイゼーション工程(工程(d)および(e))の 間に、いくつかの鎖Xは未伸長オリゴヌクレオチドとハイブリッド形成するが他 のものは固定化プライマーの伸長物として形成された鎖Zとハイブリダイゼーシ ョンするようなレベルまで増加する。最終的には、すべての固定化プライマーが 伸 長され、粒子P1は2本鎖核酸で飽和される(同様な説明が粒子P2に適用され る)。 2本鎖核酸を支持体から「切断」することができる(適当な制限酵素を用いて )。別法として、コピー標的2生成物を、工程(g)で得られた支持体から変性 させ、次いで、以下の一連の工程を繰り返すことにより量が直線的に増加するコ ピー標的2鎖の生成に用いることができる。 (i)固定化コピー標的1鎖にプライマーCCCCおよびTTTTをハイブリダ イゼーションさせ、 (ii)プライマーを伸長させ、次いで (iii)伸長生成物(すなわち、コピー標的2鎖)を変性させ収集する。 今度は、図2に示す手順の改変を説明する図3について言及する。図3の手順 は、1の鎖Xがそれぞれその5'および3'末端において示される任意の末端配列 AおよびBを有し、他方の鎖Yが任意の末端配列CおよびDを有する2本鎖核酸 (AはCと相補的であり、BはDと相補的である)から開始する。配列Aおよび Bの間において、X鎖の一部は、Y鎖上の配列Mに相補的な配列Lを有している 。 2つのタイプの粒子P1およびP2を準備する。粒子P1は、5'末端を介し て固定化(P1支持体上に)された複数の配列Mのオリゴヌクレオチドを担持し ている。粒子P2は、5'末端を介して固定化された(P2支持体上に)複数の 配列Lのオリゴヌクレオチドを担持している。 図3の手順は図2と同じ全配列を用いるものであり、それゆえ、詳細に再説明 しない。しかしながら、以下の点に留意すべきである。 図2の方法では、2つの固定化オリゴヌクレオチド(TTTTおよびCCCC )があり、この結果、合成されたコピー標的1鎖は、相補的塩基配列を有した。 これは、一方のオリゴヌクレオチド(CCCC)が配列Xの1つの端に対応して おり、他方のオリゴヌクレオチド(TTTT)が配列Zの反対の端に対応してい るためであった。 対照的に、図3の方法では、鎖Xは、その中間領域Lにより、粒子P1上のオ リゴヌクレオチドMにハイブリダイズされ、鎖Zは、その中間配列Mにより、粒 子P2上のオリゴヌクレオチドLに固定化される。次なる伸長反応(工程(c)) の間、粒子P1上で生成されたコピー標的1生成物は、以下の配列: を有しており、一方、粒子P2上で生成されたものは、配列: を有する。 かくして、2つのコピー標的1生成物は、相補的ではない。 工程(e)の間、粒子P1は、オリジナル鎖Xの一部のコピーを表す配列: のコピー標的2生成物を生成し、一方、粒子P2は、配列: のコピー標的2、すなわち、オリジナル鎖Zの一部のコピーを生成する。 図4を用いて、本発明の第2の具体例を説明する。 当該方法は、鎖XおよびYを有する二本鎖DNAを用いて開始する。カラム上 で2つのタイプの粒子P3およびP4が用いられる。 第1のタイプの粒子P3は、鎖Xの5'末端領域にハイブリダイズするであろ うオリゴヌクレオチドGGGGを(その3'末端により)固定化していた。 他のタイプの粒子P4は、鎖Zの5'末端領域に固定化するであろうオリゴヌ クレオチドAAAAを(その3'末端により)固定化していた。 標的二本鎖DNAの変性および粒子P3およびP4へのハイブリダイゼーショ ンの後、該粒子を洗浄して、不純物を除去する(前記のとおり)。ハイブリダイ ゼーション反応は、関心のある配列をトラップする。 2つの遊離プライマー(CCCCおよびTTTT)を添加し、粒子に結合した DNAにハイブリダイズさせる。1つのかかるプライマー(TTTT)は、鎖X の3'末端領域にハイブリダイズするであろう。他方のプライマー(CCCC) は、固定化鎖Zの3'末端にハイブリダイズするであろう(工程c)。 次いで、該粒子を洗浄して過剰の試薬を除去する。 酵素およびヌクレオチドを該カラムに添加し(これは、プライマーを用いて同 時に行われる可能性がある)、伸長反応を起こさせて、支持体に向かって、固定 化オリゴヌクレオチドまで(結合しないが)プライマーを伸長させる(工程d) 。工程(d)の生成物における記号「**」は、伸長生成物が固定化オリゴヌクレ オチドに結合されていないことを表す。 DNAリガーゼを添加して、(プライマーの)伸長生成物を固定化オリゴヌク レオチドに連結し、これにより、支持体に固定化したコピー標的1鎖を生成する (工程e)。 変性および再ハイブリダイゼーション(工程f)の後、2つのプライマーTT TTおよびCCCCを再度添加する。プライマーTTTTは、粒子P4上のコピ ー標的1鎖の3'末端にハイブリダイズし、P3上のハイブリダイズした核酸の 3'末端にもハイブリダイズする。同様に、プライマーCCCCは、粒子P3上 の固定化したコピー標的1鎖の3'末端にハイブリダイズし、粒子P4上のハイ ブリダイズした核酸の3'末端にもハイブリダイズする。 次いで、カラムを洗浄して、過剰の試薬を除去する。ポリメラーゼおよびヌク レオチドを添加し、次いで、伸長反応を行う(工程s、gおよびh)。プライマ ーは、示すとおり伸長され(コピー標的2鎖を生成する)、(カラムの洗浄後) 、ライゲーション反応を行い、支持体P3およびP4の各々のコピー標的1鎖の 調製を完了する。 コピー標的1およびコピー標的2鎖の数を増やすのに必要なだけ工程(f)〜( i)を繰り返す。後者は、最終的に、生成物として回収され、前者(それらの支 持体に固定化した)は、前記方法でさらなるコピー標的2生成物の生成のために 用いられる。 図5を用いて、図4の方法の変形例を説明する。 図5の方法は、図3と同一の二本鎖核酸を用いて開始する。さらにまた、図5 の方法は、2つのタイプの粒子、すなわち、3'末端により固定化された配列M のオリゴヌクレオチドを有する粒子P3、および3'末端により固定化された配 列Lのオリゴヌクレオチドを有する粒子P4を用いる。 図5の方法のための反応のシーケンスは、図4の方法のためと同一である。図 5の反応のシーケンスは、図4の方法についてと同一である。図5の方法の生成 物は、配列: の固定化されたコピー標的1鎖を有する支持体からなる。 これらの支持体は、オリジナル二本鎖核酸中に存在する増加した量の配列: を生成するために用いられる。 図6を用いて、実質的に図2および図4で説明した方法の組合せである本発明 の第3の具体例に従った方法を説明する。図6の方法では、第1のタイプの粒子 P5は、その3'末端によって、(オリジナル二本鎖核酸の)配列Xをトラップ する(図2における粒子P1を参照)。第2のタイプの粒子P6は、その5'末 端によって配列Yをトラップする(図4における粒子P4を参照)。 全体の反応スキームは、図6に示すとおりである。粒子P5に対して影響を及 ぼす反応のシーケンスは、粒子P1についての配列に密接に従う。粒子P5およ びP6は、同一のカラム中に提供されるが、P6に対して影響を及ぼす結合反応 は、P5に対する効果を有しない。 図6の方法は、オリジナル核酸中に存在する増加した量の配列XおよびYを生 じるために用いられる支持体を生成する。 図6の方法は、図3に示したタイプの核酸を用いて開始する図7に示すように 作用するように変更されてもよい。図7では、粒子P5は、それらの5'末端を 介してそれに固定化された配列Mのオリゴヌクレオチドを有するが(図3におけ る粒子P1を参照)、一方、粒子P6は、それらの3'末端を介してそれに固定 化された配列Lのオリゴヌクレオチドを有する(図5における粒子P4を参照) 。図7における反応シーケンスは、図5または図6について反応シーケンスと同 一である。このシーケンスの間、粒子P5は、図3における粒子P3と同一の方 法で機能するが、一方、粒子P6は、図5における粒子P4と同一の方法で機能 する。 図7の方法は、オリジナル核酸試料中に存在する場合、増加した量の配列: を生成するために用いられる。 以下の非限定的な実施例を単に用いて、例証として本発明を説明する。 実施例1 この実施例において、「緩衝液」なる用語は、10mMトリス・HCl(pH8. 3)、50mM KClおよび1.5mM MgCl2からなる組成物を意味する。 WO−A−93/13220[テプネル(Tepnel)]に開示されている方法 を用いて、シロキサンマトリックスを介してM−フェーズ(M−phase)なる名 称の下に3Mから入手可能な粒状支持体(サイズ105μm)上に、以下の配列( I): を有する24−merオリゴヌクレオチドをその5'末端を介して固定化した。 内径2mmを有するカラム配置を介して5本の流れの各々に、支持体2mgを置い た。該支持体は、10mm離れて配置された2つのフリットによって正しい位置に 保持された。 次いで、緩衝液中に含有された配列(II): を有するモデル48−merオリゴヌクレオチド25fmolをカラムの各々に導入し 、次いで、まず、95℃で10分間維持した。次いで、該温度を72℃に低下さ せた。この方法の結果、固定化された配列(I)での配列(II)のハイブリダイゼー ションを生じた。 次いで、該カラムを緩衝液で洗浄し、温度を57℃に低下させ、該カラムに、 4つのdNTP各0.2mMおよびポリメラーゼ酵素[サーマス・アクアティカス (Thermas aquaticus)]1.25ユニットを含有するさらなる緩衝液を添加し た。 該カラムを57℃に2分間維持して、鋳型としてハイブリダイズした48−me rオリゴヌクレオチドを用いて、固定化した24−merオリゴヌクレオチド(配列 (I))を伸長させた。 次いで、該カラムの温度を2分間95℃に上昇させて、伸長した配列(I)から 48−mer配列(II)を変性させた。 次いで、該カラムを72℃に冷却し、次いで、該カラムに4つのdNTP各0 .2mM、ポリメラーゼ酵素[サーマス・アクアティカス(Thermas aquaticus) ]1.25ユニットおよび配列(III): を有するビオチニル化した24−merオリゴヌクレオチド25pmolを含有する緩 衝液を導入し、72℃で2分間維持し、これにより、配列(II)を非伸長配列(I) にハイブリダイズさせ、配列(III)を伸長した配列(I)にハイブリダイズさせた 。次いで、該カラムを57℃の温度に冷却し、これを2分間維持し、配列(I)お よび(III)を伸長させた。 次いで、以下に記載の検出方法で用いるために、これらのカラムのうちの1つ における支持体を回収した。 次いで、残りのカラムを、前記に詳述した方法を用いて、95℃での変性(2 分間)、さらなる配列(II)の添加および72℃での再ハイブリダイゼーション( 2分間)および57℃での伸長(2分間)(より短い時間を用いることができた が)のサイクルに付した。4回目、9回目、19回目および29回目に支持体を 回収した(したがって、かかる試料は、各々、合計5回、10回、20回および 30回の伸長反応に付された)。 以下の方法でブランク実験も行った: (a)1つのカラムは、固定化された配列(I)を有する支持体および緩衝液を 含有した。該カラムを、さらなる核酸または試薬を添加せずに、前記方法を介し て循環させた。 全ての回収した試料を以下の検出方法に付した。 回収した粒子をストレプトアビジン・アルカリホスファターゼコンジュゲート と反応させた。洗浄により過剰のコンジュゲートを除去し、次いで、粒子を市販 のアルカリホスファターゼ検出系[Ampak,ex Dako]で処理した。これは、色 を生じ、継時的に490nmでモニターした。結果を、吸光度vs増幅器インキュ ベーション時間のプロットである図8に示す。第9図は、吸光度の変化の速度v s試料が付される伸長サイクルの数のプロットである。 このデータから、増幅が指数関数的であることを明らかに見ることができる。 実施例2 配列(I)、(II)および(III)を各々以下の配列(Ia)、(IIa)および(IIIa)に 代えた以外は、実施例1の方法を繰り返した: さらに対象実験を以下のとおり行った: (b)伸長した配列(I)を含有する1つのカラムを、配列: を有する非相補的(配列(I)に対する)ビオチニル化24merオリゴヌクレオチ ドでプローブした。 カラムを30回循環させた。 (c)伸長した固定化配列(I)を有する支持体を含有する1つのカラムを0回 サイクル対照として4℃で維持した。 結果を、各々図10および図11にプロットした。再度、増幅が指数関数的で あることを見ることができる。 配列(II)および(IIa)が相補的であるということが認識されるであろう。した がって、固定化した配列(I)について準備された粒子と固定化した配列(II)につ いて準備された粒子との組合せを用いて、配列(II)および(IIa)の増幅を行うこ とが可能である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AP(KE,MW,SD,SZ,UG), AM,AT,AU,BB,BG,BR,BY,CA,C H,CN,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,GB ,GE,HU,IS,JP,KE,KG,KP,KR, KZ,LK,LR,LT,LU,LV,MD,MG,M N,MW,MX,NO,NZ,PL,PT,RO,RU ,SD,SE,SG,SI,SK,TJ,TM,TT, UA,UG,US,UZ,VN

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.サンプル中に存在するかまたは存在する可能性のある核酸鎖(「標的鎖」 )の少なくとも一部のコピーの産生方法であって、 (i)その上に標的鎖とハイブリッド形成能を有する複数の一本鎖オリゴヌクレ オチドを固定した固体支持体系を準備し、 (ii)一本鎖形態の標的鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリゴヌクレオチ ドとハイブリッド形成させ(オリゴヌクレオチドの数は実質的に標的鎖の数より 多い)、 (ii)(a)その支持体系を洗浄し、非ハイブリッド形成の物質を除去し、 (iii)その固定されたオリゴヌクレオチドを組み入れ、標的鎖の少なくとも一 部に相補的な核酸配列を有するコピー標的1鎖を産生し(コピー標的1鎖は標的 鎖を鋳型として用いてコピー標的1配列の少なくとも一部を生成することにより 少なくとも部分的に産生され、必要ならば、コピー標的1配列の形成を完了する ) (iv)コピー標的1鎖とハイブリッド形成した鎖を変性させ、所望により先の鎖 の少なくともいくらかをコピー標的1鎖に変換されていない支持体上のオリゴヌ クレオチドに再ハイブリッド形成させてもよく、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1鎖を鋳型として用い、当該 核酸配列からなるコピー標的2鎖を(コピー標的1鎖とハイブリッド形成させた プライマーより)生成させ、 (b)標的鎖が固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成してい るならば、それを鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を 生成し、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、および (vi)要すれば、工程(iv)および(v)を数回繰り返し、各工程(iv)および (v)の繰り返しにて、コピー標的2鎖を用いてさらなるコピー標的1鎖 を生成する ことを特徴とする方法。 2.固体支持体系が粒状系であり、オリゴヌクレオチドが粒子上に固定されて いる請求項1記載の方法。 3.サンプル中に存在するかまたは存在する可能性のある核酸鎖(「標的鎖」 )の少なくとも一部のコピーの産生方法であって、 (i)その上に標的鎖とハイブリッド形成能を有する複数の一本鎖オリゴヌクレ オチドを固定した粒状の支持体系を準備し、 (ii)一本鎖形態の標的鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリゴヌクレオチ ドとハイブリッド形成させ(オリゴヌクレオチドの数は実質的に標的鎖の数より 多い)、 (iii)固定されたオリゴヌクレオチドを組み入れ、標的鎖の少なくとも一部に 相補的な核酸配列からなるコピー標的1鎖を産生し(コピー標的1鎖は標的鎖を 鋳型として用いてコピー標的1配列の少なくとも一部を生成することにより少な くとも部分的に産生され、必要ならば、コピー標的1配列の形成を完了する)、 (iv)コピー標的1鎖とハイブリッド形成した鎖を変性させ、所望により先の鎖 の少なくともいくらかをコピー標的1鎖に変換されていない支持体上のオリゴヌ クレオチドと再ハイブリッド形成させ、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1鎖を鋳型として用い、当該 核酸配列からなるコピー標的2鎖を(コピー標的1鎖にハイブリッド形成された プライマーより)生成し、 (b)標的鎖が固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成してい るならば、それを鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を 生成し、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、および (vi)要すれば、工程(iv)および(v)を数回繰り返し、各工程(iv)および (v)の繰り返しにて、コピー標的2鎖を用いてさらなるコピー標的1鎖を生成 する ことを特徴とする方法。 4.工程(ii)の後、支持体系を洗浄し、工程(iii)の操作の前にハイブリ ッド形成していない物質を除去する請求項3記載の方法。 5.粒子が非多孔性シリカの粒子である請求項2ないし4のいずれか1つに記 載の方法。 6.粒子が50ないし200ミクロンの大きさを有する請求項2ないし5のい ずれか1つに記載の方法。 7.オリゴヌクレオチドがシロキサンマトリックスを介して支持体に結合して いる請求項2ないし6のいずれか1つの方法。 8.粒子をカラム中に供給し、液体をその中に導入し、かつそこから取り出す ことができる請求項2ないし7のいずれか1つに記載の方法。 9.支持体上に固定されたすべてのまたは実質的にすべての最初のオリゴヌク レオチドをコピー標的1鎖に変換する請求項1ないし8のいずれか1つに記載の 方法。 10.支持体上のオリゴヌクレオチドの配向が、オリゴヌクレオチドが標的鎖ま たはその中にハイブリッド形成されたコピー標的2鎖を鋳型として用いて伸長し 、コピー標的1鎖を産生するようになっている請求項1ないし9のいずれか1つ に記載の方法。 11.固体支持体系がその各々が請求項10に記載されているように配向した2 つの異なる固定されたオリゴヌクレオチドを有し、1のオリゴヌクレオチドが2 本鎖核酸の鎖の1つにハイブリッド形成するようになっており、他方のオリゴヌ クレオチドが二本鎖核酸の他方の鎖にハイブリッド形成するようになっている請 求項2記載の方法。 12.コピー標的1鎖が、プライマーをコピー標的または固定されたオリゴヌク レオチドにハイブリッド形成されたコピー標的2鎖にハイブリッド形成させるこ とにより産生され、ついで工程(v)(b)にて、それが連結するオリゴヌクレ オチドに向かってプライマーを逆に伸長させ、コピー標的1鎖の調製を完了する 請求項1ないし9のいずれか1つに記載の方法。 13.固体支持体系が請求項12に記載されているように配向した2つの異なる 固定されたオリゴヌクレオチドを有し、1のオリゴヌクレオチドが2本鎖核酸の 鎖の1つにハイブリッド形成するようになっており、他方のオリゴヌクレオチド が核酸の他方の鎖にハイブリッド形成するようになっている請求項11記載の方 法。 14.固体支持体系が、 (i)自分自身で伸長してコピー標的1鎖を産生しうる第1のオリゴヌクレオチ ド、 (ii)(コピー標的1鎖を生成する目的で)標的鎖にハイブリッド形成させたプ ライマーの伸長生成物に結合することが必要とされる第2のオリゴヌクレオチド からなる2つの固定されたオリゴヌクレオチドを有する請求項1ないし13記載 のいずれか1つの方法。 15.サンプル中に存在するかまたは存在する可能性のある核酸鎖の少なくとも 一部のコピーの産生方法であって、 (i)それぞれが2本鎖核酸の2本の相補鎖の各1つとハイブリッド形成能を有 する、複数の各2つの異なる1本鎖オリゴヌクレオチド0および0'をその上に 固定した固体支持体系を準備し、該相補鎖は標的1および1'鎖を生じるもので あり、 (ii)1本鎖形態の標的1および1'鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリ ゴヌクレオチドにハイブリッド形成させ、オリゴヌクレオチド数が実質的に標的 数を超えるものであり、 (iii)それぞれ固定されたオリゴヌクレオチド0または0'、およびそれぞれ標 的1または1'鎖の少なくとも一部に相補的な核酸配列を有するコピー標 的1および1'鎖を得、該コピー標的1および1'鎖が個々の標的鎖を鋳型として 用いてコピー標的1または1'配列の少なくとも一部を生成することにより少な くとも部分的に得、必要な場合には、コピー標的1配列および/またはコピー標 的1'配列の形成を完了し、 (iv)コピー標的1および1'鎖にハイブリッド形成した標的1および1'鎖を変 性させ、所望によりコピー標的1または1'鎖に変換されていない支持体上の標 的1および1'鎖の少なくともいくつかを再ハイブリッド形成させ、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1および1'鎖を鋳型として 用いて(コピー標的1および1'鎖にハイブリッド形成させたプライマーから) 、各々、コピー標的2および2'鎖を生成し、 (b)固定されたオリゴヌクレオチドにコピー標的1および1'鎖がハイ ブリッド形成しているならばコピー標的1および1'鎖を鋳型として用いてさら なるコピー標的1および1'鎖の少なくとも一部を生成し、(必要ならば)コピ ー標的1鎖の形成を完了し、および、 (vi)工程(iv)および(v)を必要な回数繰り返し、標的2および2'鎖を用い て工程(iv)および(v)を各繰り返し行ってさらなるコピー標的1および1'鎖 を産生する ことを特徴とする方法。 16.さらに、以下の工程: (vii)コピー標的1鎖を鋳型として用いてプライマー伸長生成物が当該配列を 含むような位置でプライマーをコピー標的1鎖とハイブリッド形成させ、 (viii)コピー標的1鎖を鋳型として用いてプライマーを伸長させ、および、 (ix)生成物鎖をコピー標的1鎖から変性させ、生成物鎖を収集する ことからなる前記した請求項のいずれか1つに記載の方法。 17.サンプル中に存在するかまたは存在する可能性のある核酸鎖(「標的鎖」 )の少なくとも一部のコピーの産生方法であって、 (i)その上に標的鎖とハイブリッド形成能を有する複数の一本鎖オリゴヌクレ オチドを固定した固体支持体系を準備し、 (ii)一本鎖形態の標的鎖を準備し、その標的鎖を支持体上のオリゴヌクレオチ ドとハイブリッド形成させ(オリゴヌクレオチドの数は実質的に標的鎖の数より 多い)、 (iii)その固定されたオリゴヌクレオチドを組み入れ、標的鎖の少なくとも一 部に相補的な核酸配列を有するコピー標的1鎖を産生し(コピー標的1鎖は標的 鎖を鋳型として用いてコピー標的1配列の少なくとも一部を生成することにより 少なくとも部分的に産生され、必要ならば、コピー標的1配列の形成を完了する )、 (iv)コピー標的1鎖とハイブリッド形成した鎖を変性させ、所望により先の鎖 の少なくともいくらかをコピー標的1鎖に変換されていない支持体上のオリゴヌ クレオチドに再ハイブリッド形成させてもよく、 (v)同時に、 (a)固体支持体上に固定されたコピー標的1鎖を鋳型として用い、当該 核酸配列からなるコピー標的2鎖を(コピー標的1鎖とハイブリッド形成させた プライマーより)生成させ、 (b)標的鎖が固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリッド形成してい るならば、それを鋳型として用いてさらなるコピー標的1鎖の少なくとも一部を 生成し、(必要ならば)コピー標的1鎖の形成を完了し、および (vi)要すれば、工程(iv)および(v)を数回繰り返し、各工程(iv)および (v)の繰り返しにて、コピー標的2鎖を用いてさらなるコピー標的1鎖を生成 し、 (vii)コピー標的1鎖を鋳型として用いてプライマー伸長生成物が当該配列を 含むような位置でプライマーをコピー標的1鎖とハイブリッド形成させ、 (viii)コピー標的1鎖を鋳型として用いてプライマーを伸長させ、および、 (ix)生成物鎖をコピー標的1鎖から変性させ、生成物鎖を収集する ことを特徴とする方法。
JP8500512A 1994-05-28 1995-05-30 核酸のコピーの産生 Ceased JPH10500862A (ja)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB9410804.0 1994-05-28
GB9410804A GB9410804D0 (en) 1994-05-28 1994-05-28 Producing copies of nucleic acids
GB9502079.8 1995-02-02
GBGB9502079.8A GB9502079D0 (en) 1995-02-02 1995-02-02 Producing copies of nucleic acids
PCT/GB1995/001237 WO1995033073A1 (en) 1994-05-28 1995-05-30 Producing copies of nucleic acids

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH10500862A true JPH10500862A (ja) 1998-01-27

Family

ID=26304963

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP8500512A Ceased JPH10500862A (ja) 1994-05-28 1995-05-30 核酸のコピーの産生

Country Status (11)

Country Link
US (1) US5922574A (ja)
EP (1) EP0763135B1 (ja)
JP (1) JPH10500862A (ja)
CN (1) CN1152946A (ja)
AT (1) ATE220424T1 (ja)
AU (1) AU707391B2 (ja)
CA (1) CA2191426A1 (ja)
DE (1) DE69527355T2 (ja)
FI (1) FI964735A7 (ja)
NZ (1) NZ287118A (ja)
WO (1) WO1995033073A1 (ja)

Families Citing this family (91)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
USRE43097E1 (en) 1994-10-13 2012-01-10 Illumina, Inc. Massively parallel signature sequencing by ligation of encoded adaptors
GB9503808D0 (en) * 1995-02-24 1995-04-12 Univ Nottingham Detection assay
GB2308188A (en) * 1995-12-14 1997-06-18 Tepnel Medical Ltd Assaying immobilised nucleic acid by primer extension
JP2002503954A (ja) 1997-04-01 2002-02-05 グラクソ、グループ、リミテッド 核酸増幅法
GB9707980D0 (en) 1997-04-21 1997-06-11 Brax Genomics Ltd Characterising DNA
JP4294740B2 (ja) * 1997-05-23 2009-07-15 ソレクサ・インコーポレイテッド 分析物の系列的プロセシングのためのシステムおよび装置
CN1265156A (zh) 1997-07-22 2000-08-30 拉普吉恩公司 核酸阵列上进行的扩增及其它酶反应
HUP0003296A3 (en) 1997-07-22 2001-09-28 Qiagen Genomics Inc Bothell Apparatus and methods for arraying solution onto a solid support
US5916776A (en) * 1997-08-27 1999-06-29 Sarnoff Corporation Amplification method for a polynucleotide
EP1090293B2 (en) 1998-06-24 2019-01-23 Illumina, Inc. Decoding of array sensors with microspheres
US20040157256A1 (en) * 1998-09-17 2004-08-12 Taisho Pharmaceutical Co., Ltd. Immobilized cDNA libraries
AR021833A1 (es) 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
JP2002539849A (ja) * 1999-03-26 2002-11-26 ホワイトヘッド インスチチュート フォアー バイオメディカル リサーチ ユニバーサルアレイ
JP2003530817A (ja) 1999-06-01 2003-10-21 ベイラー カレッジ オブ メディスン 聴覚障害、変形性関節症および細胞の異常増殖に関するatonal関連配列の治療用途のための組成物および方法
AR031640A1 (es) 2000-12-08 2003-09-24 Applied Research Systems Amplificacion isotermica de acidos nucleicos en un soporte solido
ATE439454T1 (de) * 2001-04-02 2009-08-15 Point 2 Point Genomics Ltd Analyse von polynukleotiden mittels kombinatorischer pcr
US20060009409A1 (en) 2002-02-01 2006-01-12 Woolf Tod M Double-stranded oligonucleotides
ATE556714T1 (de) 2002-02-01 2012-05-15 Life Technologies Corp Doppelsträngige oligonukleotide
EP1572902B1 (en) 2002-02-01 2014-06-11 Life Technologies Corporation HIGH POTENCY siRNAS FOR REDUCING THE EXPRESSION OF TARGET GENES
US7211382B2 (en) * 2002-04-09 2007-05-01 Orchid Cellmark Inc. Primer extension using modified nucleotides
AU2003304195B8 (en) 2002-07-15 2008-08-28 Board Of Regents, The University Of Texas System Combinatorial protein library screening by periplasmic expression
KR20120002613A (ko) 2002-08-12 2012-01-06 제네렉스, 인코포레이티드 폭스바이러스 및 암과 관련된 방법 및 조성물
WO2005054466A2 (en) 2003-07-25 2005-06-16 Ambion, Inc. Methods and compositions for preparing rna from a fixed sample
US20050059024A1 (en) 2003-07-25 2005-03-17 Ambion, Inc. Methods and compositions for isolating small RNA molecules
CA2581086C (en) 2004-09-14 2023-11-07 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Method for treatment with bucindolol based on genetic targeting
GB0514935D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Methods for sequencing a polynucleotide template
GB0514910D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Method for sequencing a polynucleotide template
KR101772375B1 (ko) * 2005-09-07 2017-08-29 신라젠(주) Gm-csf를 발현하는 폭스바이러스를 사용한 전이성 및/또는 전신 파종성 암의 전신 치료법
US8980246B2 (en) 2005-09-07 2015-03-17 Sillajen Biotherapeutics, Inc. Oncolytic vaccinia virus cancer therapy
GB0522310D0 (en) 2005-11-01 2005-12-07 Solexa Ltd Methods of preparing libraries of template polynucleotides
GB0524069D0 (en) 2005-11-25 2006-01-04 Solexa Ltd Preparation of templates for solid phase amplification
AU2007281934B2 (en) 2006-01-18 2012-11-15 University Of Chicago Compositions and methods related to Staphylococcal bacterium proteins
SG169356A1 (en) 2006-02-08 2011-03-30 Illumina Cambridge Ltd Method for sequencing a polynucleotide template
WO2009016433A2 (en) 2006-09-15 2009-02-05 Ottawa Health Research Institute Oncolytic rhabdovirus
US7754429B2 (en) 2006-10-06 2010-07-13 Illumina Cambridge Limited Method for pair-wise sequencing a plurity of target polynucleotides
DK2102239T3 (da) 2006-11-30 2012-05-29 Res Dev Foundation Forbedrede immunoglobulin-biblioteker
WO2008093098A2 (en) 2007-02-02 2008-08-07 Illumina Cambridge Limited Methods for indexing samples and sequencing multiple nucleotide templates
EP2155789B1 (en) 2007-05-01 2013-07-24 Research Development Foundation Immunoglobulin fc libraries
US20090093378A1 (en) * 2007-08-29 2009-04-09 Helen Bignell Method for sequencing a polynucleotide template
US12060554B2 (en) 2008-03-10 2024-08-13 Illumina, Inc. Method for selecting and amplifying polynucleotides
WO2010038042A1 (en) 2008-10-02 2010-04-08 Illumina Cambridge Ltd. Nucleic acid sample enrichment for sequencing applications
EP2341929B1 (en) 2008-10-06 2017-01-25 University Of Chicago Compositions and methods related to bacterial emp proteins
HUE026855T2 (en) 2009-04-03 2016-07-28 Univ Chicago Compositions and methods related to protein a (spa) variants
US9587270B2 (en) 2009-06-29 2017-03-07 Luminex Corporation Chimeric primers with hairpin conformations and methods of using same
US9409983B2 (en) 2009-07-23 2016-08-09 The Board Of Trustess Of The University Of Illinois Methods and compositions involving PBEF inhibitors for lung inflammation conditions and diseases
PT2669387T (pt) 2009-08-25 2016-09-20 Illumina Inc Métodos para selecção e amplificação de polinucleótidos
US9512481B2 (en) 2009-09-11 2016-12-06 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Polymorphisms in the PDE3A gene
ES2848650T3 (es) 2009-09-14 2021-08-11 Sillajen Biotherapeutics Inc Terapia combinada contra el cáncer con virus vaccinia oncolítico
US8182994B2 (en) 2009-09-15 2012-05-22 Illumina Cambridge Limited Centroid markers for image analysis of high denisty clusters in complex polynucleotide sequencing
WO2011070440A2 (en) 2009-12-10 2011-06-16 Ottawa Hospital Research Institute Oncolytic rhabdovirus
ES2587191T3 (es) 2009-12-23 2016-10-21 Arca Biopharma, Inc. Métodos y composiciones para enfermedades y afecciones cardiovasculares
EP2555794A4 (en) 2010-04-05 2014-01-15 Univ Chicago COMPOSITIONS AND METHODS RELATING TO PROTEIN A (SPA) ANTIBODIES AS IMMUNE REACTION AMPLIFIERS
CA2803298C (en) 2010-07-02 2020-07-14 The University Of Chicago Compositions and methods related to protein a (spa) variants
EP2614074A1 (en) 2010-09-09 2013-07-17 The University of Chicago Methods and compositions involving protective staphylococcal antigens
AU2012204467B2 (en) 2011-01-04 2016-08-18 Sillajen, Inc. Generation of antibodies to tumor antigens and generation of tumor specific complement dependent cytotoxicity by administration of oncolytic vaccinia virus
US8952132B2 (en) 2011-02-07 2015-02-10 Research Development Foundation Engineered immunoglobulin FC polypeptides
EP2681566A2 (en) 2011-02-28 2014-01-08 University of Iowa Research Foundation Anti-müllerian hormone changes in pregnancy and prediction ofadverse pregnancy outcomes and gender
AU2012226530B2 (en) 2011-03-08 2016-12-01 King Abdullah University Of Science And Technology Molecular biomarker set for early detection of ovarian cancer
US9085631B2 (en) 2011-04-08 2015-07-21 Nov Vac APS Proteins and nucleic acids useful in vaccines targeting Staphylococcus aureus
US8945588B2 (en) 2011-05-06 2015-02-03 The University Of Chicago Methods and compositions involving protective staphylococcal antigens, such as EBH polypeptides
EP2718427B1 (en) 2011-06-08 2017-01-11 Children's Hospital of Eastern Ontario Research Institute Inc. Compositions for glioblastoma treatment
WO2013036799A2 (en) 2011-09-09 2013-03-14 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods and compositions involving nkg2d inhibitors and cancer
EP2766388A1 (en) 2011-10-12 2014-08-20 Møller, Niels Iversen Peptides derived from campylobacter jejuni and their use in vaccination
ES2645418T3 (es) 2011-12-22 2017-12-05 Ibis Biosciences, Inc. Amplificación de una secuencia de un ácido ribonucleico
US9701959B2 (en) 2012-02-02 2017-07-11 Invenra Inc. High throughput screen for biologically active polypeptides
JP6670106B2 (ja) 2012-04-26 2020-03-18 ザ・ユニバーシティ・オブ・シカゴThe University Of Chicago ブドウ球菌コアグラーゼ抗原およびその使用方法
US10125373B2 (en) 2013-01-22 2018-11-13 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Geminiviral vector for expression of rituximab
JP2016513115A (ja) 2013-02-21 2016-05-12 チルドレンズ ホスピタル オブ イースタン オンタリオ リサーチ インスティチュート インコーポレイテッド ワクチン組成物
MX2016004283A (es) 2013-10-03 2016-10-12 Oklahoma Med Res Found Biomarcadores para la actividad, e intesidad y arrebato de la enfermedad lupus eritematoso sistemico.
EP3077820B1 (en) 2013-12-03 2025-02-26 Evaxion Biotech A/S Proteins and nucleic acids useful in vaccines targeting staphylococcus aureus
EP3777883A1 (en) 2014-11-13 2021-02-17 Evaxion Biotech ApS Peptides derived from acinetobacter baumannii and their use in vaccination
CA2969145A1 (en) 2014-11-26 2016-06-02 The Regents Of The University Of California Therapeutic compositions comprising transcription factors and methods of making and using the same
WO2016113252A2 (en) 2015-01-12 2016-07-21 Evaxion Biotech Aps Proteins and nucleic acids useful in vaccines targeting klebsiella pneumoniae
WO2016130516A1 (en) 2015-02-09 2016-08-18 Research Development Foundation Engineered immunoglobulin fc polypeptides displaying improved complement activation
EP3070178B1 (en) 2015-03-20 2020-02-12 Albert-Ludwigs-Universität Freiburg Method for diagnosing breast cancer
EP4116316A1 (en) 2015-07-04 2023-01-11 Evaxion Biotech A/S Proteins and nucleic acids useful in vaccines targeting pseudomonas aeruginosa
US10526408B2 (en) 2015-08-28 2020-01-07 Research Development Foundation Engineered antibody FC variants
EP3419654B1 (en) 2016-02-22 2022-04-27 Evaxion Biotech A/S Proteins and nucleic acids useful in vaccines targeting staphylococcus aureus
WO2018127545A1 (en) 2017-01-05 2018-07-12 Evaxion Biotech Aps Vaccines targeting pseudomonas aeruginosa
AU2018213315A1 (en) 2017-01-26 2019-07-25 Oklahoma Medical Research Foundation Biomarkers for systemic lupus erythematosus disease activity, and intensity and flare
US12140592B2 (en) 2017-06-16 2024-11-12 Oklahoma Medical Research Foundation Biomarkers for assessing risk of transitioning to systemic lupus erythematosus classification and disease pathogenesis
US20210349088A1 (en) 2018-10-18 2021-11-11 Oklahoma Medical Research Foundation Biomarkers For A Systemic Lupus Erythematosus (SLE) Disease Activity Immune Index That Characterizes Disease Activity
US12510539B2 (en) 2018-10-18 2025-12-30 Progentec Diagnostics, Inc. Biomarkers for a systemic lupus erythematosus (SLE) disease activity immune index that characterizes disease activity
WO2020083904A1 (en) 2018-10-22 2020-04-30 Evaxion Biotech Aps Vaccines targeting m. catharrhalis
WO2020174044A1 (en) 2019-02-27 2020-09-03 Evaxion Biotech Aps Vaccines targeting h. influenzae
US12514914B2 (en) 2019-05-14 2026-01-06 The University Of Chicago Methods and compositions comprising Staphylococcus protein a (SpA) variants
EP3772543B1 (en) 2019-08-09 2023-09-27 Albert-Ludwigs-Universität Freiburg Method for diagnosing breast cancer
US20220296622A1 (en) 2019-09-16 2022-09-22 The Children's Hospital Of Philadelphia Compositions and methods for the treatment of swi-snf mutant tumors
US20230050225A1 (en) 2020-01-06 2023-02-16 Evaxion Biotech A/S Vaccines targeting Neisseria gonorrhoeae
JP2024526293A (ja) 2021-07-05 2024-07-17 エヴァクシオン・バイオテック・アクティエセルスカブ 淋菌を標的とするワクチン
EP4536276A1 (en) 2022-06-10 2025-04-16 Research Development Foundation Engineered fcriib selective igg1 fc variants and uses thereof

Family Cites Families (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4734363A (en) * 1984-11-27 1988-03-29 Molecular Diagnostics, Inc. Large scale production of DNA probes
US4683195A (en) * 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
US4683202A (en) * 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
CH663728A5 (fr) * 1985-06-10 1988-01-15 Battelle Memorial Institute Procede de purification de substances bioactives par adsorption biospecifique.
US4800159A (en) * 1986-02-07 1989-01-24 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or cloning nucleic acid sequences
CA1317535C (en) * 1987-06-30 1993-05-11 Nanibhushan Dattagupta Assay of sequences using amplified genes
AU2735988A (en) * 1987-12-21 1989-07-13 Amoco Corporation Target and background capture methods with amplification for affinity assays
SE8801070D0 (sv) * 1988-03-23 1988-03-23 Pharmacia Ab Method for immobilizing a dna sequence on a solid support
US5153166A (en) * 1988-08-18 1992-10-06 Trustees Of At Biochem Chromatographic stationary supports
US5066584A (en) * 1988-09-23 1991-11-19 Cetus Corporation Methods for generating single stranded dna by the polymerase chain reaction
GB8827160D0 (en) * 1988-11-21 1988-12-29 Apothekernes Lab Detection & quantitative determination of rna & dna
DK175170B1 (da) * 1988-11-29 2004-06-21 Sangtec Molecular Diagnostics Fremgangsmåde og reagenskombination til bestemmmelse af nukleotidsekvenser
CA2004326A1 (en) * 1988-12-23 1990-06-23 Nanibushan Dattagupta Assay of sequences using amplified genes
IE66572B1 (en) * 1989-02-13 1996-01-24 Geneco Pty Ltd Detection of a nucleic acid sequence or a change therein
CA2011818A1 (en) * 1989-03-17 1990-09-17 Fred T. Oakes Methods for purification, amplification and detection of a nucleic acid
US5219727A (en) * 1989-08-21 1993-06-15 Hoffmann-Laroche Inc. Quantitation of nucleic acids using the polymerase chain reaction
EP0519016A1 (en) * 1990-03-07 1992-12-23 F.Hoffmann-La Roche & Co. Aktiengesellschaft Method for diagnosis of lyme disease
ES2116977T3 (es) * 1990-05-11 1998-08-01 Microprobe Corp Soportes solidos para ensayos de hibridacion de acidos nucleicos y metodos para inmovilizar oligonucleotidos de modo covalente.
US5210015A (en) * 1990-08-06 1993-05-11 Hoffman-La Roche Inc. Homogeneous assay system using the nuclease activity of a nucleic acid polymerase
CA2055755A1 (en) * 1990-11-22 1992-05-23 Toshihiko Kishimoto Method of immobilizing single-stranded dna on carrier at terminal
US5437976A (en) * 1991-08-08 1995-08-01 Arizona Board Of Regents, The University Of Arizona Multi-domain DNA ligands bound to a solid matrix for protein and nucleic acid affinity chromatography and processing of solid-phase DNA
WO1993004199A2 (en) * 1991-08-20 1993-03-04 Scientific Generics Limited Methods of detecting or quantitating nucleic acids and of producing labelled immobilised nucleic acids
BR9206705A (pt) * 1991-11-01 1995-11-21 Adelaide Children S Hospital Processo de amplificação de fase sólida
FI943054A7 (fi) * 1991-12-24 1994-08-22 Tepnel Medical Ltd Nukleiinihapposekvenssien manipulointi
WO1993015228A1 (en) * 1992-01-29 1993-08-05 Hitachi Chemical Co., Ltd. Polynucleotide immobilized support
WO1994009156A1 (en) * 1992-10-08 1994-04-28 The Regents Of The University Of California Pcr assays to determine the presence and concentration of a target
GB9322723D0 (en) * 1993-11-04 1993-12-22 Tepnel Medical Ltd Determining nucleic acids
US5641658A (en) * 1994-08-03 1997-06-24 Mosaic Technologies, Inc. Method for performing amplification of nucleic acid with two primers bound to a single solid support

Also Published As

Publication number Publication date
DE69527355D1 (de) 2002-08-14
NZ287118A (en) 1999-01-28
DE69527355T2 (de) 2003-03-06
CA2191426A1 (en) 1995-12-07
EP0763135A1 (en) 1997-03-19
AU2572895A (en) 1995-12-21
FI964735A7 (fi) 1997-01-27
ATE220424T1 (de) 2002-07-15
US5922574A (en) 1999-07-13
FI964735A0 (fi) 1996-11-27
CN1152946A (zh) 1997-06-25
AU707391B2 (en) 1999-07-08
EP0763135B1 (en) 2002-07-10
WO1995033073A1 (en) 1995-12-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH10500862A (ja) 核酸のコピーの産生
EP0868530B1 (en) A cascade nucleic acid amplification reaction
US7052841B2 (en) Systems, tools and methods of assaying biological materials using spatially-addressable arrays
EP0672189B1 (en) A method of processing nucleic acid samples
US20030186256A1 (en) Method for carrying out the parallel sequencing of a nucleic acid mixture on a surface
JP2021100429A (ja) 標的核酸の検出方法
KR20010085860A (ko) 핵산 증폭과 서열분석 방법
US20050064432A1 (en) Nucleic acid amplification and detection
WO2005021786A1 (en) A method of sequencing nucleic acids by ligation of labelled oligonucleotides
WO2017096394A1 (en) High-efficiency hybrid capture compositions, and methods
US20040137439A1 (en) Nucleic acid amplification
CN102634507A (zh) 多基因多区域的特异性捕获方法
PL171810B1 (pl) Sposób przeprowadzania manipulacji na sekwencji kwasu nukleinowego PL PL PL PL
EP1114185B1 (en) Method of isolating primer extension products with modular oligonucleotides
RU2803202C2 (ru) Панель и способ получения пространственной информации о нуклеиновых кислотах
RU2803202C9 (ru) Панель и способ получения пространственной информации о нуклеиновых кислотах
JP4731081B2 (ja) 核酸を選択的に単離するための方法
AU773108B2 (en) Method of isolation primer extension products with modular oligonucleotides
JP5128031B2 (ja) RecAタンパク質を用いて標識が導入された核酸を製造する方法
WO2004050916A1 (en) Recovery of original template
JP2004073064A (ja) 核酸断片、核酸プローブ固定化基体およびアッセイキット
JP2004073065A (ja) 核酸断片、核酸プローブ固定化基体およびアッセイキット
JPH03210196A (ja) 合成オリゴヌクレオチドと不溶性担体の結合方法およびその結合体
JP2004154121A (ja) 標的核酸の検出方法および伸長方法、並びにアッセイキット
JP2002360246A (ja) 核酸固定化物

Legal Events

Date Code Title Description
A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20050419

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20050715

A602 Written permission of extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A602

Effective date: 20050829

A313 Final decision of rejection without a dissenting response from the applicant

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A313

Effective date: 20060223

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20060314