JPH10508204A - イズロン酸を高含有量有する多糖類 - Google Patents

イズロン酸を高含有量有する多糖類

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Abstract

(57)【要約】 a)大腸菌からの多糖K5若しくはヘパラン硫酸のN−脱アセチル化、又はヘパリン若しくはヘパラン硫酸のO−脱硫酸化を行う段階と、b)段階a)から得られた生成物をN−硫酸化する段階と、c)C5エピメラーゼ酵素の存在下、エピマー化する段階と、d)少なくとも幾つかの遊離水酸基を硫酸化する段階とから成り、しかも、段階c)は、HEPES、塩化カリウム、EDTAによって構成される伝統的緩衝液と、TRITON X−100とから成る反応媒体であって、その反応媒体へ適切な添加剤が添加された反応媒体の中で行う、上記方法。

Description

【発明の詳細な説明】 イズロン酸を高含有量有する多糖類 従来技術 グリコサミノグリカンは、例えば、腸粘膜、肺等、種々の起源(origin)を有す る動物組織を抽出することによって得られる物質であり、詳しくは、イズロン酸 を含有する多糖類に属する。ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸及び ヒアルロン酸は、多糖類群に属する。 種々のグリコサミノグリカンは、種々の化学構造を有し、ウロン酸及びヘキソ サミンの繰り返しによって構成される多糖類鎖によって形成される。特に、ヘパ リン及びヘパラン硫酸の場合、ウロン酸はグルクロン酸又はイズロン酸によって 形成され、ヘキソサミンの場合はグリコサミンによって形成される。 グリコサミンは、選択的にN−アセチル化され(ヘパラン硫酸)又は選択的に N−硫酸化され(ヘパリン)、かつ6−0硫酸化される。更に、硫酸基はグリコ サミンの3の位置にも見いだすことができる。ウロン酸は2−0硫酸化される。 ヘパリンは、抗凝固薬(anticoagulant)及び抗血栓症薬(antithrombotic)とし て臨床実務において非常に重要である。 かかる治療上の用途の他に、他の幾つかの病理におけるヘパリン及びヘパラン 硫酸の有用な利用、例えば、抗高脂血症機能、抗増殖機能、抗ウィルス機能、抗 腫瘍機能及び抗血管形成機能に関する利用が期待される。 これらの新規な治療応用において、ヘパリン及びヘパラン硫酸を利用するため には、抽出法とは異なる方法、特に、異なる構造の調製を認めた一層柔軟性のあ る方法によって、これらの生成物又は同等の生成物を入手する必要がある。 また、動物組織からの抽出方法では、ウィールスを含んでいない生成物を入手 することが保証されない。 抗凝固薬のグリコサミノグリカンの、生合成による製法は、特許出願WO 9 2/17507号明細書に記載されている。この方法では、次の反応シーケンス ー N−脱アセチル化、 - N−硫酸化、 - D−グルクロン酸の少なくとも幾らかの残渣をL−イズロン酸の残渣に転化 するためのエピマー化、及び - 少なくとも幾らかの遊離水酸基の硫酸化 を受ける、大腸菌からの多糖類K5は、出発化合物として使用する。 この方法で重要な段階は、最大20%まで制限されるエピマー化によって構成 される。このエピマー化は、HEPES、塩化カリウム、EDTA及びTRIT ON X−100によって構成されるpH7.4までの伝統的反応媒体中の、D −グルクロニル−L−イズロニル−C5−エピメラーゼ酵素の存在下、室温で2 日間行う。ウロン酸の3分の1まで制限されるエピマー化は、従来説明されてき た(M.フック(Hook)等:ザ・ジェイ・オブ・バイオケミ(The J.of Biol.Che m.),249,12 3908〜3915,1974年6月25日)。しかも、 このエピマー化度は、今まで克服できていないように思える。更に、この資料で は、細胞雰囲気におけるエピマー化は、生合成方法に関するあらゆる要因が存在 する条件での、ネズミの肥満細胞腫について記載されていることを考慮する必要 がある。 しかし、既知の技術から得られるようなエピマー化度は、種々の治療処理のた めに要求される諸特性を有する生成物を得ることを可能にしない。 実際、イズロン酸はグルクロン酸に関する生成物に優れた適応性(flexibility ,柔軟性)を与える[カズ(Casu)B.,ペチト(Petitou)M.,プロファゾリ(Prov asoli)M.及びジネイ(Sinay)P.(1988),「配座適応性(Conformational flexibility):イズロン酸含有グリコサミノグリカンの結合特性及び生物特性 を説明するための新しい概念」,トレンド・バイオケミ科学(Trends Biochem.S ci.13,221〜225]。ヘパラン硫酸に比べてヘパリンの一層大きい抗凝 固性と抗血栓症活性と、基礎線維母細胞成長要因(basic fibroblast growth fac tor)(bFGF)に関するものの他の活性とによって指摘されている通り、イズ ロン酸を高い率で含有する生成物は、グルクロン酸を含有するものと比べ一層活 性であるという結果になり、しかも、イズロン酸は、活性点の極めて重要な部分 であることが認識されている[マッカラナ(Maccarana)M.,カズ(Casu)B. 及びリンダール(Lindahl)U.(1993),「基礎線維母細胞成長要因の結合 のために必要なヘパリン/ヘパラン硫酸の最小シーケンス(Minimal sequence in Heparin/Heparan Sulfate Required for Binding of Basic Fibroblast Growth Factor)」,J.バイオケミ(Biol.chem.),268,23898〜23905 ]。従って、工業的観点に従って受け入れられる収率と時間とを満たす、高いエ ピマー化度を有する生成物を得ることを可能にする方法を見いだす課題が存在す る。 概要 a)多糖K5若しくはヘパラン硫酸のN−脱アセチル化、又はヘパリン若しく はヘパラン硫酸のO−脱硫酸化を行う段階と、 b)段階a)から得られた生成物をN−硫酸化する段階と、 c)D−グルクロニル−L−イズロニル−C5−エピメラーゼ酵素の存在下、 1回以上のエピマー化処理を行う段階と、 d)少なくとも幾つかの遊離水酸基を硫酸化する段階と から成る方法であって、前記エピマー化段階は、HEPES、塩化カリウム及び EDTAによって形成されるpH7.4の伝統的緩衝液から成る反応媒体であっ て、その反応媒体へ、エチレングリコール、グリセロール、ポリビニルピロリド ン、ポリエチレングリコール及びホスファチジルコリンから成る群から選ばれた 1種以上の添加剤及びTRITON X−100が添加された反応媒体の中で行 うことを特徴とする方法によって、大腸菌からの多糖K5から、又はヘパリン若 しくはヘパラン硫酸から出発して、大きい含有量のイズロン酸を有する多糖類が 得られることを、我々は見いだした。 本発明の方法によって、ウロン酸全含有量に基づき50%よりも大きい含有量 のイズロン酸を有する多糖類が得られる。 発明の詳細な説明 本発明の方法と得られた多糖類との特徴及び利点は、次の詳細な説明の中にほ とんど示される。 マンゾニ(Manzoni)M.,ベルゴミ(Bergomi)S.,カバゾニ(Cavazzoni)V. [ジャーナル・オブ・バイオアクティブ・アンド・コンパティブル・ポリマーズ (Journal of Bioactive and Compatible Polymers),第VIII巻,1993年7月 ,251〜257]に説明されている、大腸菌からの多糖K5は、本発明の方法 のための出発物質として使用するのに特に適した物質である。 ヘパリン及びヘパラン硫酸は、プロセスの第1段階の操作条件の幾らかの変動 はあるが、出発物質として使用することもできる。 出発物質は、2,000〜50,000以上の範囲に及ぶ分子量を持っていて もよい。 多糖K5を使用するとき、その構造は先ずN−脱アセチル化によって変性され る。N−脱アセチル化は、ヒドラジンと硫酸ヒドラジンとの混合物で処理するこ とによって、又は水酸化ナトリウム又は水酸化カリウムの塩基雰囲気中で処理す ることによって行う。 そこで、N−硫酸化は、トリエチルアミン−三酸化イオウ又はトリメチルアミ ン−三酸化イオウで処理することによって続けられる。種々に(例えば25%か ら100%まで)N−硫酸化された生成物は、かかる操作によって得ることがで きる。 N−脱アセチル化及びN−硫酸化は、既知の技術に従って、例えば、特許出願 番号WO 92/17507明細書に従って行う。 ヘパリンを出発物質として使用するとき、先ずO−脱硫酸化を、次いで、O− 脱硫酸化の間に硫酸基を失ったアミノ位置を再度硫酸化すべくN−硫酸化を行う 。 ヘパラン硫酸を出発物質として使用するとき、N−脱アセチル化もO−脱硫酸 化も結果としてのN−再硫酸化も行う。 上記の通り、多糖K5から又はヘパラン硫酸から得たN−硫酸化済み生成物は 、グルクロン酸をイズロン酸に転化すべくエピマー化プロセスにかける。一方、 ヘパリンから得た生成物は、イズロン酸からグルクロン酸を得るべく酵素で処理 する。 エピマー化は、ウシの肝臓から抽出し、「J.B.C.255,3878〜3 883(1980)」でA.マルムストレン(Malmstron)によって記載された方 法を用いて精製したD−グルクロニル−L−イズロニル−C5−エピメラーゼ酵 素(以下、単に、C5エピメラーゼという)の存在下で行う。 驚愕すべきことに、出願人は、伝統的反応媒体を適切な添加剤で変性すること によって、非常に高度のエピマー化を得た。 本発明による反応媒体は、HEPES、塩化カリウム、EDTA及びTRIT ON X−100によって構成されるpH7.4の緩衝液であり、エチレングリ コール、グリセロール、ポリビニルピロリドン、特に15,000〜90,00 0の分子量を有するポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール及びホスフ ァチジルコリンから成る群から選ばれた1種以上の添加剤を、緩衝液の粘度を1 .1〜3センチストークの範囲の値に増加させるのに適した量で添加する。 特に、反応媒体は、pH7.4を有する次の緩衝液:HEPES 0.04M 、KCl 0.4M、EDTA 0.06Mから出発し、次いで、この緩衝液の 25mlへ100〜1000μlのTRITON X−100と、0.5ml〜 60mlの添加剤と、蒸留水を100mlになるまで添加して調製する。 エピマー化するための多糖は、5〜1000mgの量の前記反応媒体へ添加し 、溶液Aを得る。 C5エピメラーゼは、別個に、100ml当り21〜2000μgの量の、前 記と同じ反応媒体に溶解し、溶液Bを得る。 溶液Bは、混合物100ml当りC5エピメラーゼ1.5〜15.000μg の含有量を得るような割合で溶液Aへ添加し、エピマー化を行う。混合物は、攪 拌を行って均一にし、次いで、恒温室中で30〜40°Cの範囲の温度で90分 〜15時間の範囲の時間の間加温する。 反応は、混合物を100°Cで5分間加温して停止させる。生成物は、緩衝液 として(NH4)HCO3 0.05Mを使用したDEAE−セファセル(Sephace l)カラムを通して精製し、生成物は(NH4)HCO3 2Mの緩衝液を用いて溶 出する。 集めた画分はセファデックス(Sephadex)G−15カラムによって脱塩し、生成 物を含有する画分は減圧下で凍結乾燥し、次いで、生成物は1H−NMRで分析 する。 D−グルクロン酸とL−イズロン酸の含有量は、1H−NMRスペクトルによ って計算する。得られた生成物は、溶液Aに再溶解し、溶液Bで再度処理し、更 にエピマー化処理を行って、L−イズロン酸の含有量を増加させる。 抗凝固性と抗血栓症活性度を評価すべく、エピマー化済み生成物は、硫酸化剤 としてピリジン−三酸化イオウを使用し、例えば、「第XIV回国際炭水化物シン ポジウム(the XIV International Carbohydrate Symposium)(1988年8月 14〜19日),ストックホルム」のアブストラクトでオガモ(Ogamo)等が説明 した方法を用いてO−硫酸化を行う。本発明の方法によって得られた、例1、3 、4、5、6、7及び9の生成物は、後で説明する通り、O−硫酸化を行い、優 れた抗凝固性と抗血栓症活性度を示した。一方、既知の技術によって得られた、 例2及び8の生成物は、非常に小さい活性度を示した。 得られた結果は、本発明による生成物は、抗凝固性と抗血栓症機能とによる臨 床用途に適した特性を有する。従って、この生成物は、補助薬(adjuvant)物質及 び添加剤(excipient)物質と混合した適切な薬剤組成物を調製するために使用し 得る。 本発明による方法を説明すべく、次の例を公表する。 例1 HEPES 0.04M、EDTA 0.06M、KCl 0.4Mを含有す るpH7.4の緩衝液を調製し、TRITON X−100 27μlと、10 %ポリビニルピロリドンK15水溶液9mlと、エチレングリコール1.62m lと、全体積が18mlになるまでの水とを前記緩衝液4.5mlへ添加した。 この溶液は、1.41センチストークの粘度を示した。この溶液に、100% N−脱アセチル化N−硫酸化済みK5の1mgを溶解し、溶液Aを得た。10 %ポリビニルピロリドンK15の水溶液1.6mlと、エチレングリコール28 8μlと、全体積が3.2mlになるまでの水とを、8.9μgのC5エピメラ ーゼを含有したpH7.4の同一出発緩衝液0.8mlへ添加し、溶液Bを得た 。 溶液Aを1.6mlの溶液Bと混合し、その混合物を温室中37°Cで4時間 保持した。4時間後、溶液B 1.6mlを添加し、次いで、その反応は一夜3 7°Cに保持した。その反応は、100°Cで5分間加熱することによって停止 した。 生成物は、緩衝液として0.05M(NH4)HCO3を使用しながら、DEA E−セファセル・カラム(Sephacel column)(2×1.5cm)によって精製し 、得られた生成物は、2M(NH4)HCO3を用いて溶出した。 生成物を含有する分画は、セファデックス(Sephadex)G−15カラム(0.3 ×5cm)で脱塩し、凍結乾燥した。 生成物は、1H−NMRで分析し、そのスペクトルを図1に示す。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、55であった。 例2(比較) ポリビニルピロリドン及びエチレングリコールを添加しないという相違を持っ て、例1を繰り返した。使用した緩衝液は、水にほぼ等しい粘度、即ち約ゼロの 粘度を有した。 得られた生成物に関する1H−NMRスペクトルは図2に示す。イズロン酸と グルクロン酸との総量に基づくL−イズロン酸の含有量は、18%に等しいこと が分かった。 例3 N−脱アセチル化し50%N−硫酸化した多糖K5を出発物質として使用した という相違を持って、例1を繰り返した。 得られた生成物は1H−NMRで分析し、関連スペクトルを図3に示す。 L−イズロン酸の含有量は、N−硫酸化済みグリコサミンへの局部的な全ウロ ン酸に基づき51%に等しいことが分かった。 例4 EDTA 0.06Mと、KCl 0.4M(pH7.4)と、TRITON X−100 30μlと、10%ポリビニルピロリドンK15の水溶液10. 6mlと、エチレングリコール0.85mlと、水4.42mlとを、HEPE S 0.04Mを含有する緩衝液5.3mlへ添加した。 この溶液は、1.2センチストークの粘度を示した。 この溶液の9mlに、100% N−脱アセチル化されN−硫酸化されたK5 の2mgを溶解し、溶液Aを得た。 C5エピメラーゼ1.7μgを同溶液の8mlに溶解し、溶液Bを得た。 生成物は、例1に記載の通りに精製した。 凍結乾燥した後、精製済み生成物は、溶液Aの1mlに溶解し、次いでC5エ ピメラーゼ8.9μgを含有する溶液Bの3.2mlと混合した。 この混合物は、一夜37°Cに保持し、酵素は100°Cで5分間加熱するこ とによって不活性化した。生成物は、例1に記載の通りに精製し、図4に示す通 り、1H−NMRで分析した。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、53であった。 例5 HEPES 0.04M、EDTA 0.06M、KCl 0.4Mを含有す るpH7.4の緩衝液を調製し、次いで、TRITON X−100 22.8 μlと、100% N−脱アセチル化されN−硫酸化されたK5の1mgと、エ チレングリコール40%を含有する、20%ポリビニルピロリドンK15の溶液 4mlと、全体積が8mlになるまでの水とを、この溶液2mlへ添加した。H EPES 0.01M、EDTA 0.015M、KCl 0.01M、TRI TON X−100 0.015%及びC5エピメラーゼ134.4μgをこの 溶液の6mlに添加した。 得られた溶液は、1.36センチストークの粘度を示した。 この混合物は、37°Cに1時間保持した。反応は100°Cで5分間煮沸す ることによって停止した。 生成物は、例1に記載の通りに精製した。 凍結乾燥した後、生成物は、HEPES 0.04M、EDTA 0.06M 及びKCl 0.4Mの6.25mlを含有するpH7.4の緩衝液と、ポリビ ニルピロリドンK15 2.5gと、エチレングリコール2.5mlと、TRI TON X−100 71.2μlと、全体積が25mlになるまでの水との中 に溶解した。 HEPES 0.01M、EDTA 0.015M及びKCl 0.1Mのp H7.4の12ml(TRITON X−100 0.015%を含有する)に 溶解したC5エピメラーゼ1.9μgを、得られた混合物12mlへ添加した。 混合物は、1.4センチストークの粘度を示した。 この反応は、一夜37°Cに保持した。反応の終りに、溶液を100°Cで5 分間加熱することによって酵素を不活性化した。生成物は、例1に記載の通りに 精製し、1H−NMRスペクトルをとった(図5)。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、52であった。 例6 例5を繰り返した。但し、第一段階の反応は37°Cで4時間保持した。 例1と同じ条件で精製し、凍結乾燥した後、生成物を水1mlに溶解し、次い で、HEPES 0.04M、EDTA 0.06M及びKCl 0.4Mのp H7.4の50mlを含有する緩衝液と、TRITON X−100の283. 5μlと、10%ポリビニルピロリドンK15の100mlと、エチレングリコ ール20mlと、90%グリセロール2mlと、C5エピメラーゼ1.9μgと 、全体積が200mlになるまでの水とへ添加した。混合物は、1.41センチ ストークの粘度を示した。 反応は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活性化した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、1H−NMRスペクトルをとった(図 6)。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、55であった。 例7 100% N−脱アセチル化されN−硫酸化されたK5の1.5mgを、HE PES 0.04M、EDTA 0.06M、KCl 0.4MのpH7.4の 7mlを含有する緩衝液と、TRITON X−100の210μlと、ポリビ ニルピロリドンK15の1.4gと、エチレングリコール2.8mlと、C5エ ピメラーゼ1.5mgと、全体積が28mlになるまでの水との中へ添加した。 溶液は、1.36センチストークの粘度を示した。 反応は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活性化した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、次いで凍結乾燥した。次いで、生成物 は、C5エピメラーゼ1.3mgを含有する同じ溶液の24mlに溶解し、反応 は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活性化した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、次いで凍結乾燥した。次いで、生成物 は、C5エピメラーゼ1mgを含有する同じ溶液の8.4mlに溶解し、反応は 37°Cで4時間保持した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、次いで1H−NMRスペクトルをとっ た(図7)。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、80であった。 例8(比較) 100% N−脱アセチル化されN−硫酸化されたK5の1mgを、HEPE S 0.04M、EDTA 0.06M、KCl 0.4MのpH7.4の3m lを含有する緩衝液と、TRITON X−100の18μlと、アセトン1. 2mlと、C5エピメラーゼ1.9μgと、全体積が12mlになるまでの水と の中で溶解した。 溶液は、0.09センチストークの粘度を示した。 反応は37°Cで4時間保持した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、次いで1H−NMRスペクトルをとっ た(図8)。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、0であった。 例9 100% N−脱アセチル化されN−硫酸化されたK5の1mgを、HEPE S 0.04M、EDTA 0.06M、KCl 0.4MのpH7.4の2m lを含有する緩衝液と、TRITON X−100の12μlと、2.4%ポリ ビニルピロリドンK90の1.336mlと、C5エピメラーゼ304μgと、 全体積が8mlになるまでの水との中で溶解した。 溶液は、1.29センチストークの粘度を示した。 反応は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活性化し、次 いで、溶液は、0.22μmデバイスで濾過した。 C5エピメラーゼ304μgを含有する同じ混合物8mlを、前記濾過済み溶 液へ添加し、反応は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活 性化し、次いで、その溶液は0.22μmデバイスで濾過した。 C5エピメラーゼ304μgを含有する同じ混合物8mlを、この溶液へ添加 し、反応は37°Cで4時間保持し、酵素は100°C、5分間で不活性化し、 次いで、その溶液は0.22μmデバイスで濾過した。 生成物は、例1に記載の通りに精製し、次いで1H−NMRスペクトルをとっ た(図9)。 全ウロン酸で割ったL−イズロン酸の百分率は、59であった。
【手続補正書】特許法第184条の8第1項 【提出日】1996年10月3日 【補正内容】 請求の範囲 1. a)多糖K5若しくはヘパラン硫酸のN−脱アセチル化、又はヘパリン若 しくはヘパラン硫酸のO−脱硫酸化を行う段階と、 b)段階a)から得られた生成物をN−硫酸化する段階と、 c)C5エピメラーゼ酵素の存在下、1回以上のエピマー化処理を行う段階と 、 d)少なくとも幾つかの遊離水酸基を硫酸化する段階と から成る、大腸菌からの多糖K5から、又はヘパリン若しくはヘパラン硫酸から 出発して、ウロン酸全含有量に基づき50%よりも大きい含有量のL−イズロン 酸を有する多糖類を調製する方法であって、 前記エピマー化段階は、HEPES、塩化カリウム及びEDTAによって構成 されるpH7.4の伝統的緩衝液から成る反応媒体であって、その反応媒体へ、 前記緩衝液の粘度を1.1〜3mm2/秒(1.1〜3センチストーク)の範囲 の値へ増加させるのに適した量の1種以上の添加剤及びTRITON X−10 0が添加された反応媒体の中で行い、しかも、前記1種以上の添加剤は、エチレ ングリコール、グリセロール、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール 及びホスファチジルコリンから成る群から選ぶことを特徴とする、上記方法。 2.添加剤は、15,000〜90,000の分子量を有するポリビニルピロリ ドンである、請求項1記載の方法。 3.添加剤を、緩衝液25mlにつき0.5〜60mlの量で緩衝液へ添加する 、請求項1記載の方法。 4.出発化合物を、反応媒体中に100ml当り5〜1000mgの量で溶解さ せる、請求項1記載の方法。 5.C5エピメラーゼを、反応媒体中に100ml当り21〜2000μgの量 で溶解させる、請求項1記載の方法。 6.エピマー化のための混合物は、C5エピメラーゼを、その混合物100ml 当り1.5〜15,000μgの量で含有する、請求項1記載の方法。 7.エピマー化反応は、恒温室中、30〜40°Cの範囲の温度で行う、請求項 1記載の方法。 8.出発生成物は、25%〜100% N−硫酸化する、請求項1記載の方法。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AP(KE,LS,MW,SD,SZ,U G),AL,AM,AU,BB,BG,BR,BY,C A,CN,CZ,EE,FI,GE,HU,IS,JP ,KE,KG,KP,KR,KZ,LK,LR,LS, LT,LV,MD,MG,MK,MN,MW,MX,N O,NZ,PL,RO,RU,SD,SG,SI,SK ,TJ,TM,TT,UA,UG,US,UZ,VN

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.a)多糖K5若しくはヘパラン硫酸のN−脱アセチル化、又はヘパリン若し くはヘパラン硫酸のO−脱硫酸化を行う段階と、 b)段階a)から得られた生成物をN−硫酸化する段階と、 c)C5エピメラーゼ酵素の存在下、1回以上のエピマー化処理を行う段階と 、 d)少なくとも幾つかの遊離水酸基を硫酸化する段階と から成る、大腸菌からの多糖K5から、又はヘパリン若しくはヘパラン硫酸から 出発して、ウロン酸全含有量に基づき50%よりも大きい含有量のL−イズロン 酸を有する多糖類を調製する方法であって、 前記エピマー化段階は、HEPES、塩化カリウム及びEDTAによって構成 されるpH7.4の伝統的緩衝液から成る反応媒体であって、その反応媒体へ、 前記緩衝液の粘度を1.1〜3mm2/秒(1.1〜3センチストーク)の範囲 の値へ増加させるのに適した量の1種以上の添加剤及びTRITON X−10 0が添加された反応媒体の中で行うことを特徴とする、上記方法。 2.添加剤は、エチレングリコール、グリセロール、ポリビニルピロリドン、ポ リエチレングリコール及びホスファチジルコリンから成る群から選ぶ、請求項1 記載の方法。 3.添加剤は、15,000〜90,000の分子量を有するポリビニルピロリ ドンである、請求項1記載の方法。 4.添加剤を、緩衝液100mlにつき2〜240mlの量で緩衝液へ添加する 、請求項1記載の方法。 5.出発化合物を、反応媒体中に100ml当り5〜1000mgの量で溶解さ せる、請求項1記載の方法。 6.C5エピメラーゼを、反応媒体中に100ml当り21〜2000μgの量 で溶解させる、請求項1記載の方法。 7.エピマー化のための混合物は、C5エピメラーゼを、その混合物100ml 当り1.5〜15,000μgの量で含有する、請求項1記載の方法。 8.エピマー化反応は、恒温室中、30〜40°Cの範囲の温度で行う、請求項 1記載の方法。 9.出発生成物は、25%〜100% N−硫酸化する、請求項1記載の方法。 10.多糖類はウロン酸全含有量に基づき50%よりも大きい含有量のL−イズ ロン酸を有し、請求項1記載の方法によって得られることを特徴とする、上記多 糖類。 11.抗凝固性及び抗血栓症活性を有する製薬組成物を調製するために、請求項 10記載の多糖類を使用する方法。
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