JPS60188077A - 仔牛プロキモシンcDΝAの全配列を有する新規な発現プラスミド - Google Patents
仔牛プロキモシンcDΝAの全配列を有する新規な発現プラスミドInfo
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- JPS60188077A JPS60188077A JP59044901A JP4490184A JPS60188077A JP S60188077 A JPS60188077 A JP S60188077A JP 59044901 A JP59044901 A JP 59044901A JP 4490184 A JP4490184 A JP 4490184A JP S60188077 A JPS60188077 A JP S60188077A
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- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/64—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
- C12N9/6421—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
- C12N9/6478—Aspartic endopeptidases (3.4.23)
- C12N9/6481—Pepsins (3.4.23.1; 3.4.23.2; 3.4.23.3)
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- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
- C12N15/71—Expression systems using regulatory sequences derived from the trp-operon
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はプロキモシン遺伝子を発現させる発現型組換え
プラスミドに関する。より詳しくは、仔牛プロキモシン
(:DNAの全配列を有し、E、 colitrpプロ
モーターの制御下、大腸菌宿主細胞内でプロキモシンC
DNA全長を効率よく発現可能な新規の発現型プラスミ
ドに関する。
プラスミドに関する。より詳しくは、仔牛プロキモシン
(:DNAの全配列を有し、E、 colitrpプロ
モーターの制御下、大腸菌宿主細胞内でプロキモシンC
DNA全長を効率よく発現可能な新規の発現型プラスミ
ドに関する。
プロキモシンは修生第4胃から得られチーズ製造の際に
牛乳を凝固させるのに用いられる一種のプロテアーゼで
あるキモシンの前駆体蛋白質である。プロキモシンは分
子量4万、アミノ酸残基数ンを生成する。最近では微生
物起源の凝乳酵素が見い出されて、キモシンに代替しつ
つあるが、チーズ工業における仔牛キモシンに対する潜
在的需豐は依然として大きい。従って、仔牛キモシンを
組換えDNA技術を用いて微生物に生産させることは遺
伝子工学の実用面での目標のひとつと考えられている。
牛乳を凝固させるのに用いられる一種のプロテアーゼで
あるキモシンの前駆体蛋白質である。プロキモシンは分
子量4万、アミノ酸残基数ンを生成する。最近では微生
物起源の凝乳酵素が見い出されて、キモシンに代替しつ
つあるが、チーズ工業における仔牛キモシンに対する潜
在的需豐は依然として大きい。従って、仔牛キモシンを
組換えDNA技術を用いて微生物に生産させることは遺
伝子工学の実用面での目標のひとつと考えられている。
本発明の目的は宿主細胞中、E、 coli trpプ
プロモーターの制御下、高い発現率でプロキモシンCD
NA全長の発現を可能にさせる新規の発現シラスミドを
得ることである。
プロモーターの制御下、高い発現率でプロキモシンCD
NA全長の発現を可能にさせる新規の発現シラスミドを
得ることである。
本発明の他の目的は前記の発現プラスミドで宿主を形質
転換し、形質転換株を培養することによりプロキモシン
を生産する方法を提供することである。
転換し、形質転換株を培養することによりプロキモシン
を生産する方法を提供することである。
本発明の別の目的は前記の発現プラスミドを構成する方
法を提供することである。
法を提供することである。
組換えDNA操作を用いて、プロキモシンCI)NAを
大腸菌宿主細胞中で形質発耕させ、プロキモシンを生産
させる方法は既に公知である。例えば、西森ら、Gen
e、 ] 9.337 (1982)、特開昭58−3
’2896号(別府輝彦)、特開昭57−141287
号(コラボラティプ・リサーチ)はE、 coli l
acオペロンプロモーター制御下、プロキモシンが産゛
生されることを開示している。一方、 h’、 col
i trpプロモーター制御下でも同様に、プロキモシ
ンが産生されることが、特開昭58−9.687号(セ
ルチック・リミテッド)、清水ら、農芸化学会講演要旨
集2.(−19(1982)、 力初障特願昭58−38439号(別府輝彦)に記載さ
れている。特に、上記清水らの文献にはプロキモシンの
全構造遺伝子がクローン化されて、1゜coli工びプ
ロモーターの制御下、大腸菌宿主細胞内で発現するプラ
スミドp C’ R701が開示されている。このプラ
スミドは全長約5.3 K bでプロキモシンのCDN
Aの全長がtrpプロモーターの下流trpL遺伝子の
りポゾーム結合位に挿入されている。第1図にpcR7
01の制限酵素地図を示−f、SD配列とA 7’ G
開始コドンの間には次の14塩基が存在する。
大腸菌宿主細胞中で形質発耕させ、プロキモシンを生産
させる方法は既に公知である。例えば、西森ら、Gen
e、 ] 9.337 (1982)、特開昭58−3
’2896号(別府輝彦)、特開昭57−141287
号(コラボラティプ・リサーチ)はE、 coli l
acオペロンプロモーター制御下、プロキモシンが産゛
生されることを開示している。一方、 h’、 col
i trpプロモーター制御下でも同様に、プロキモシ
ンが産生されることが、特開昭58−9.687号(セ
ルチック・リミテッド)、清水ら、農芸化学会講演要旨
集2.(−19(1982)、 力初障特願昭58−38439号(別府輝彦)に記載さ
れている。特に、上記清水らの文献にはプロキモシンの
全構造遺伝子がクローン化されて、1゜coli工びプ
ロモーターの制御下、大腸菌宿主細胞内で発現するプラ
スミドp C’ R701が開示されている。このプラ
スミドは全長約5.3 K bでプロキモシンのCDN
Aの全長がtrpプロモーターの下流trpL遺伝子の
りポゾーム結合位に挿入されている。第1図にpcR7
01の制限酵素地図を示−f、SD配列とA 7’ G
開始コドンの間には次の14塩基が存在する。
プロキモシン
このプラスミドで形質転換した大腸菌株E、colic
6oork−mk−CPCR’l O1)は機工研匠寄
託されている(受託番号FERM13F 264 )。
6oork−mk−CPCR’l O1)は機工研匠寄
託されている(受託番号FERM13F 264 )。
しかしながら前述の西森らの文献中に記載されているよ
うに、pCR701の発現率は他の公知のプラスミドp
CR501、pCR601と比較して非常に低い。プロ
キモシン蛋白の生産量は競合結合ラジオイムノアッセイ
法(Competitivebinding radi
oimmunoassay )の測定によると宿主細胞
あたり約700分子であり、免疫プロッテング法の測定
によると細胞あたシ約1.2,000分子であった。
うに、pCR701の発現率は他の公知のプラスミドp
CR501、pCR601と比較して非常に低い。プロ
キモシン蛋白の生産量は競合結合ラジオイムノアッセイ
法(Competitivebinding radi
oimmunoassay )の測定によると宿主細胞
あたり約700分子であり、免疫プロッテング法の測定
によると細胞あたシ約1.2,000分子であった。
本発明はE、 coli trpプロモーター、オペレ
ーター系とプロキモシンcDNA全配列から成り、大腸
菌宿主細胞内でtrpプロモーター制御下、プロキモシ
ンcDNA全長を発現可能な発現型組換えプラスミドで
あって、該CDNAのN末端にATG開始コドンが接続
されそして該プロモーター領域内のSD配列とATG開
始コドンとの間の塩基対が高発現率を与えるように構成
されていることを特徴とするプラスミドを提供する。
ーター系とプロキモシンcDNA全配列から成り、大腸
菌宿主細胞内でtrpプロモーター制御下、プロキモシ
ンcDNA全長を発現可能な発現型組換えプラスミドで
あって、該CDNAのN末端にATG開始コドンが接続
されそして該プロモーター領域内のSD配列とATG開
始コドンとの間の塩基対が高発現率を与えるように構成
されていることを特徴とするプラスミドを提供する。
又、本発明はプラスミドpcR’l O1のSD配列と
ATG開始コドン−との間を制限酵素によってより発現
率の高い新規のシラスミドを得る方法を提供する。前述
の方法に於いて、制限酵素による切断後、一本鎖構造部
分を修復して切断末端を貴連結し、SD配列とATG開
始コドンとの間の距離をのばすことも、逆に一本鎖構造
部分を除去して切断末端を再連結し、SD配列とATG
開始コドンとの間の距離を縮めることも可能であるが、
好ましくは後者の手法(距離を縮める)が用いられる。
ATG開始コドン−との間を制限酵素によってより発現
率の高い新規のシラスミドを得る方法を提供する。前述
の方法に於いて、制限酵素による切断後、一本鎖構造部
分を修復して切断末端を貴連結し、SD配列とATG開
始コドンとの間の距離をのばすことも、逆に一本鎖構造
部分を除去して切断末端を再連結し、SD配列とATG
開始コドンとの間の距離を縮めることも可能であるが、
好ましくは後者の手法(距離を縮める)が用いられる。
本発明は、かくして得られた発現効率の高い発現プラス
ミドを宿主細胞に形質転換法により導入し、形質転換細
胞を培養することからなるプロキモシンの生産方法をも
提供する。更に、本発明は形質転換された微生物そして
それから産生されたプロキモシンを包含する。
ミドを宿主細胞に形質転換法により導入し、形質転換細
胞を培養することからなるプロキモシンの生産方法をも
提供する。更に、本発明は形質転換された微生物そして
それから産生されたプロキモシンを包含する。
本発明に於いて、用いられる宿主微生物は、本発明の発
現グラスミドを受容し、宿主細胞が増殖し゛て、プロキ
モシンを産生するものなら、特定の菌株に限定されない
が、実用的な理由から大腸菌C600由来株の利用が好
ましい。特罠好ましくは、大腸菌E、 coli C6
00rk−mk−株が用いられる。本発明の方法で生産
されるプロキモシンは全てN末端にメチオニルが付着し
たメチオニルプロキモシンであるが明細書中単にプロキ
モシンと称する。
現グラスミドを受容し、宿主細胞が増殖し゛て、プロキ
モシンを産生するものなら、特定の菌株に限定されない
が、実用的な理由から大腸菌C600由来株の利用が好
ましい。特罠好ましくは、大腸菌E、 coli C6
00rk−mk−株が用いられる。本発明の方法で生産
されるプロキモシンは全てN末端にメチオニルが付着し
たメチオニルプロキモシンであるが明細書中単にプロキ
モシンと称する。
以下に好適な実施態様を例にして本発明をよシ詳しく説
明する。
明する。
プラスミドpcR’l O1をまず、制限酵素Hind
■で切断する。一本鎖構造部分を有する両末端をDNA
71?リメラーゼを用いて修復する。修復された平滑末
端を74DNAリガーゼで連結する。これらの操作で、
SD配列−A TG開始コドン間の距離は4塩基対増加
して、18塩基対となる。得られた新シラスミドpcR
T 11は5D−Ar1間の塩基配列以外pcR701
と全く同一である。
■で切断する。一本鎖構造部分を有する両末端をDNA
71?リメラーゼを用いて修復する。修復された平滑末
端を74DNAリガーゼで連結する。これらの操作で、
SD配列−A TG開始コドン間の距離は4塩基対増加
して、18塩基対となる。得られた新シラスミドpcR
T 11は5D−Ar1間の塩基配列以外pcR701
と全く同一である。
SD配列とAT’G開始コドンとの間のDNA配列はM
axam −G il bert法で解析すると以下の
;Inりである。
axam −G il bert法で解析すると以下の
;Inりである。
pcR701からpcR’l 11を構成する模様を第
2図に示す。pに’R711で形☆転換した宿主細胞F
=、 coli C600rk−m k−の内、アンピ
シリン耐性株を選択すると、これらの株はプラスミドp
cR711を保有し、trpプロモーターの制御下でプ
ロキモシンを産生ずる。
2図に示す。pに’R711で形☆転換した宿主細胞F
=、 coli C600rk−m k−の内、アンピ
シリン耐性株を選択すると、これらの株はプラスミドp
cR711を保有し、trpプロモーターの制御下でプ
ロキモシンを産生ずる。
プラスミドp CR701を前記と同様に1lind■
1で切断する。得られた一本鎖構造部位を有する末端を
ヌクレアーゼ(Nucteαag)Slで除去する。続
いて平滑末端をT4DNAI)ガーゼで畏連結する。こ
の際切断東件の差違(主に、緩衝液の組成の違い)によ
#)SD配列−ATGコドン間の長さの異っているシラ
スミドpcR”712又はpcR’l 13が別個に生
成する。両ゾ2スミド共SD配列−ATGコドン間の塩
基配列以外はpCR701と全く同一である。新プラス
ミド7)CR712の該塩基配列をMaxam −G1
1bert法で解析すると次の通如である。
1で切断する。得られた一本鎖構造部位を有する末端を
ヌクレアーゼ(Nucteαag)Slで除去する。続
いて平滑末端をT4DNAI)ガーゼで畏連結する。こ
の際切断東件の差違(主に、緩衝液の組成の違い)によ
#)SD配列−ATGコドン間の長さの異っているシラ
スミドpcR”712又はpcR’l 13が別個に生
成する。両ゾ2スミド共SD配列−ATGコドン間の塩
基配列以外はpCR701と全く同一である。新プラス
ミド7)CR712の該塩基配列をMaxam −G1
1bert法で解析すると次の通如である。
又、新プラスミドpcR’l 13の該塩基配列をMa
zatn −G11bert法で解析すると次の通りで
ある。
zatn −G11bert法で解析すると次の通りで
ある。
SD Met
pcR’l Q lからpCRT 12又は′pCR7
13を構成する模様を第2図に示す。pCR712で形
質転換した宿主細胞E、 coli C600rk−m
k−の内アンピシリン耐性株を選択する。これらの株は
プラスミドpCRT 12を保有し、trpプロモータ
ーの制御下でプロキモシンを産生ずる。同様に、pCR
713を保有する形質転換株E、coliC600rk
−mk−(pCRT 13 )もプO* モシンを産出
する。
13を構成する模様を第2図に示す。pCR712で形
質転換した宿主細胞E、 coli C600rk−m
k−の内アンピシリン耐性株を選択する。これらの株は
プラスミドpCRT 12を保有し、trpプロモータ
ーの制御下でプロキモシンを産生ずる。同様に、pCR
713を保有する形質転換株E、coliC600rk
−mk−(pCRT 13 )もプO* モシンを産出
する。
プラスミドpcRT 12を制限酵素cla Iで切断
し、dGTP 、dCTPの存在下、I) N Aポリ
メラーゼを用いて斯くて切断された一本鎖構造部分を部
分的に修復、例えば、CG部位のみをイし復し、突出し
た末端を有するままT4 DNAリガーゼで再連結する
とプラスミドpcR714が得られる。これら一連の操
作で、pcI?T12の5D−ATGコドン間の塩基数
が2減少して6塩基対となる。この部位以外はpCRT
12と全く同一である。pCRT 14のSD配列と
ATGコドンとの間の塩基配列はMαxam−Gilb
ert法で解析すると次の通りである。
し、dGTP 、dCTPの存在下、I) N Aポリ
メラーゼを用いて斯くて切断された一本鎖構造部分を部
分的に修復、例えば、CG部位のみをイし復し、突出し
た末端を有するままT4 DNAリガーゼで再連結する
とプラスミドpcR714が得られる。これら一連の操
作で、pcI?T12の5D−ATGコドン間の塩基数
が2減少して6塩基対となる。この部位以外はpCRT
12と全く同一である。pCRT 14のSD配列と
ATGコドンとの間の塩基配列はMαxam−Gilb
ert法で解析すると次の通りである。
SD Met
pcl?’lL2からpcR’l 14を構成する模様
を第2図に示す。pcR714で形質転換した宿主細胞
E、 coli C600rk−mk−の内アンピシリ
ン耐性株を選択すると、これらの株はpcR714を保
有し、trpプロモーターの制御下でプロキモシンを産
生ずる。
を第2図に示す。pcR714で形質転換した宿主細胞
E、 coli C600rk−mk−の内アンピシリ
ン耐性株を選択すると、これらの株はpcR714を保
有し、trpプロモーターの制御下でプロキモシンを産
生ずる。
発現実験
プラスミドpCR711、712、713。
714を保有する大腸菌E、 colj C600rk
−mk−杖通常の培養技術によって生育ζせることがで
きる。使用する培地の例は、周知のL−B培地、M9培
地などであり、これらの培地中、細胞密度が10′2細
胞/lに到達するまで培養し、培養後、菌体抽出液を調
製する。抽出液を競合的ラジオイムノアッセイ法(bi
nding cornpetitiveradioim
munoagsay )又は蛋白プロツテンク法により
分析した結果、いずれの場合にも、菌体中にプロキモシ
ンと同一分子量で免疫的にも同一の蛋白質が生成してい
ることが認められる。定量的ケ な分析から、各ゲラスト保有株のプロキモシン産生能を
算出したところ、pcR112株が最高の発現率を示し
く細胞当り約30万分子のプロキモシン・:蛋白プロテ
ィング法により測定)、親プラスミドpcR’101株
に比べて産生能が約25倍になっているという驚くべき
事実が見い出される。
−mk−杖通常の培養技術によって生育ζせることがで
きる。使用する培地の例は、周知のL−B培地、M9培
地などであり、これらの培地中、細胞密度が10′2細
胞/lに到達するまで培養し、培養後、菌体抽出液を調
製する。抽出液を競合的ラジオイムノアッセイ法(bi
nding cornpetitiveradioim
munoagsay )又は蛋白プロツテンク法により
分析した結果、いずれの場合にも、菌体中にプロキモシ
ンと同一分子量で免疫的にも同一の蛋白質が生成してい
ることが認められる。定量的ケ な分析から、各ゲラスト保有株のプロキモシン産生能を
算出したところ、pcR112株が最高の発現率を示し
く細胞当り約30万分子のプロキモシン・:蛋白プロテ
ィング法により測定)、親プラスミドpcR’101株
に比べて産生能が約25倍になっているという驚くべき
事実が見い出される。
他のプラスミド含有株の発現率はpCR712>>pc
R’101≧pcRT 11>pcR’l 14>pC
RT 13の順である。以上の結果よυ、pCR701
系列のプラスミドのプロキモシン発現効率は必fし6s
n配列とATG開始コドンとの間の距離だけによらず塩
基配列そのものに依存することは明白である。
R’101≧pcRT 11>pcR’l 14>pC
RT 13の順である。以上の結果よυ、pCR701
系列のプラスミドのプロキモシン発現効率は必fし6s
n配列とATG開始コドンとの間の距離だけによらず塩
基配列そのものに依存することは明白である。
生成された微生物由来のプロキモシンは酸性plfにさ
らすことによって活性キモシンへと活性化することがで
きる。
らすことによって活性キモシンへと活性化することがで
きる。
本発明を以下の実施例によシさらに詳しく説明するが、
様々な変更又は修正が本発明の技術範囲内で許されるこ
とを理解すべきである。
様々な変更又は修正が本発明の技術範囲内で許されるこ
とを理解すべきである。
実 施 例
実施例中宮に用いられるTEN緩衝液はトリス塩酸20
mMXNaCL50mM、EDTALmMを含みpHは
7,5である。形質転換及び発現実験に用いる栄養培地
は次の組成を有する。
mMXNaCL50mM、EDTALmMを含みpHは
7,5である。形質転換及び発現実験に用いる栄養培地
は次の組成を有する。
L−!3roth−/l (7)fl 7.2〜7.4
)Bacto−Trypton 10 tYeast
Extract 5 f グルコース 12 NaC1sr J/ 9− Broth/、l Na1iP046 f Kfl、po、 3f/ NaC15f/ NB、C’l 11 CaC1215111& Mg5O,・ 120 0.11 131 (チアミンJlcl ) 0.2 ycasa
mi、no acid 2.59グルコース 59 アンeシリン 5Qmg 実施例 1 プラスミドpCR711の組み立てプラス
ミドpCRTO11Opli<32μl)を1iind
m (30単位、5μJ)、H4ndm緩衝液5ti
l、H,Os 3plがら成る総量100 plの反応
溶液中、37℃で2時間保7M (インキュベート)す
ることによりfiindTjiで切断した。生成1)N
Aをエタノールで沈殿させ、20AllのTE溶液に溶
解した。次にIlindmで消化されたpcR7014
μy<sμAt)、DNAポリメラーゼI (Kren
owの断片) 11.5単位、lμ1rEIV)、ポリ
メラーゼ緩衝g4fil、5mMdNTP (4μA!
TEIJ、HiO:28μEから成る総量40μlの反
応浴g、全30’Cで1O分間保温することによりHi
ndIIIで切断された一本鎖部分を修復した。反応は
フェノール処理により停止Eシ、)と、ノールをエーテ
ル抽出により除去し、生成りMAはエタノールで沈殿さ
せた。沈殿物を20μノの水に溶解しfcoこのm解版
(4μIのDNAを含む)にT、DNAリガーゼ(3,
6単位、4μ))、3mMATp、リグニー7ヨン緩衝
液8μlを加え最終容駄を40μlとした。これを22
℃で一夜保7品した。生成物をエタノールで沈殿させ、
40μATEに酵解した。形質転換は宿主E、coli
C60011−mk−をN o r g a r d
の方法(Norgard、et al、Gene、3.
279(197B)に従って転換した。
)Bacto−Trypton 10 tYeast
Extract 5 f グルコース 12 NaC1sr J/ 9− Broth/、l Na1iP046 f Kfl、po、 3f/ NaC15f/ NB、C’l 11 CaC1215111& Mg5O,・ 120 0.11 131 (チアミンJlcl ) 0.2 ycasa
mi、no acid 2.59グルコース 59 アンeシリン 5Qmg 実施例 1 プラスミドpCR711の組み立てプラス
ミドpCRTO11Opli<32μl)を1iind
m (30単位、5μJ)、H4ndm緩衝液5ti
l、H,Os 3plがら成る総量100 plの反応
溶液中、37℃で2時間保7M (インキュベート)す
ることによりfiindTjiで切断した。生成1)N
Aをエタノールで沈殿させ、20AllのTE溶液に溶
解した。次にIlindmで消化されたpcR7014
μy<sμAt)、DNAポリメラーゼI (Kren
owの断片) 11.5単位、lμ1rEIV)、ポリ
メラーゼ緩衝g4fil、5mMdNTP (4μA!
TEIJ、HiO:28μEから成る総量40μlの反
応浴g、全30’Cで1O分間保温することによりHi
ndIIIで切断された一本鎖部分を修復した。反応は
フェノール処理により停止Eシ、)と、ノールをエーテ
ル抽出により除去し、生成りMAはエタノールで沈殿さ
せた。沈殿物を20μノの水に溶解しfcoこのm解版
(4μIのDNAを含む)にT、DNAリガーゼ(3,
6単位、4μ))、3mMATp、リグニー7ヨン緩衝
液8μlを加え最終容駄を40μlとした。これを22
℃で一夜保7品した。生成物をエタノールで沈殿させ、
40μATEに酵解した。形質転換は宿主E、coli
C60011−mk−をN o r g a r d
の方法(Norgard、et al、Gene、3.
279(197B)に従って転換した。
コンピテントな(DNA取り込み能を有する)細胞を調
製し、これに前述のDNA溶解液を加え、処理し、形・
實転換反応を児了させた後、アンピシリン50μg/−
を含有するL培地で生育略せ、アンピシリン耐性形質転
換株を採取した。これらの株E、coli C600r
k−mk−(pCR711)uデラズミドpcR’l
11i保有する。
製し、これに前述のDNA溶解液を加え、処理し、形・
實転換反応を児了させた後、アンピシリン50μg/−
を含有するL培地で生育略せ、アンピシリン耐性形質転
換株を採取した。これらの株E、coli C600r
k−mk−(pCR711)uデラズミドpcR’l
11i保有する。
実施例 2 プラスミド CR712の絹み立て実施例
1で得られたpcR’101のHindvt消化物1t
tII<2ttl)、Nwal:’art S 1 (
50単位、1μl)、N1Lo 1ease S 1緩
衝液5μ11M、042μノから成る総量50μlの反
応溶液を16°Gで2時間保温した。この反応で用いた
(XI O) NucLgastr S 1緩衝液の組
成は2、.5Af NaC1,0,5M Ac0Na、
10mM ZnSO4,5%グリセロールでpH45
である。反応をフェノール処理により停止し、フェノー
ルをエーテル抽出により除去し、生成り、NAをエタノ
ールで沈殿させた。沈殿を19μノM、(。
1で得られたpcR’101のHindvt消化物1t
tII<2ttl)、Nwal:’art S 1 (
50単位、1μl)、N1Lo 1ease S 1緩
衝液5μ11M、042μノから成る総量50μlの反
応溶液を16°Gで2時間保温した。この反応で用いた
(XI O) NucLgastr S 1緩衝液の組
成は2、.5Af NaC1,0,5M Ac0Na、
10mM ZnSO4,5%グリセロールでpH45
である。反応をフェノール処理により停止し、フェノー
ルをエーテル抽出により除去し、生成り、NAをエタノ
ールで沈殿させた。沈殿を19μノM、(。
に溶解した。このDNA1gg(19μり、T、DNA
9g −セ(’ 0.9単位、1/jAI)、3′rl
LM ATP3μ!、50%PEG6000<4μ4)
、すr−ジョン緩衝板3μlから成る総量30μノの反
応液を22℃で9O分間保温した。こうして再連結され
たDNAは実施例1と同様に、宿主及。
9g −セ(’ 0.9単位、1/jAI)、3′rl
LM ATP3μ!、50%PEG6000<4μ4)
、すr−ジョン緩衝板3μlから成る総量30μノの反
応液を22℃で9O分間保温した。こうして再連結され
たDNAは実施例1と同様に、宿主及。
coLi C600r)、−mk−に形質転換により導
入きれた。、得られたアンピシリン耐性形質重。
入きれた。、得られたアンピシリン耐性形質重。
換株、E、coli C600rk−nLk−(pCR
’112)はプラスミドpに’R712を保有する。こ
の株rよ機工研に受託番号FERM Bp−502号と
して寄託された。
’112)はプラスミドpに’R712を保有する。こ
の株rよ機工研に受託番号FERM Bp−502号と
して寄託された。
実施し1]3 プラスミドpcH’113の組み立て実
施例1で得られたpcR’l O1のll1nd■消化
物1μg(2,czll、NucLease S 1(
50単位、1μ!)、Nuclease S 1緩衝液
5μ73.H,042μlから成る総計50μlの反応
溶液を22℃で30分、4J保温した。この反応で用い
た緩衝液の組成は実施例2の場合と若干異なっている。
施例1で得られたpcR’l O1のll1nd■消化
物1μg(2,czll、NucLease S 1(
50単位、1μ!)、Nuclease S 1緩衝液
5μ73.H,042μlから成る総計50μlの反応
溶液を22℃で30分、4J保温した。この反応で用い
た緩衝液の組成は実施例2の場合と若干異なっている。
即ら、0.3M Ac 0NaS O,5M NaCL
、 10tnM Zn5O,から成りpH4,6である
。反応をフェノール処理により停とシ、フェノールをエ
ーテル抽出により除去し、生Bz DN Aをエタノー
ルで沈殿させた。このI)NA3al (20μ1TE
N)、3mM ATP(8μl)、T、I)NAりが−
ゼ(16単位、4μl)、すr−ジョン緩衝液8μlか
ら成る総量40μlの反応液を22℃で一夜保温した。
、 10tnM Zn5O,から成りpH4,6である
。反応をフェノール処理により停とシ、フェノールをエ
ーテル抽出により除去し、生Bz DN Aをエタノー
ルで沈殿させた。このI)NA3al (20μ1TE
N)、3mM ATP(8μl)、T、I)NAりが−
ゼ(16単位、4μl)、すr−ジョン緩衝液8μlか
ら成る総量40μlの反応液を22℃で一夜保温した。
生成りNAfエタノールで沈殿させ11.沈殿を40μ
lに溶解した。再連結されたDNAf′i実施例1と同
様に、宿主E、coli C600r)、−rnk−に
形質転換により導入された。得られたアンピシリン耐性
形質転換法、E、coli C600r/、−mk−(
pcR’l 13 )はプラスミドpCR713を保有
する。
lに溶解した。再連結されたDNAf′i実施例1と同
様に、宿主E、coli C600r)、−rnk−に
形質転換により導入された。得られたアンピシリン耐性
形質転換法、E、coli C600r/、−mk−(
pcR’l 13 )はプラスミドpCR713を保有
する。
実施例 4 プラスミドpcR114の組み立て実施例
4で侍られたpcR’1012ag(xsμJ)、 C
La 1(18単位、apl)、C1a I緩衝fj、
5pl、H2O27/jA!から成る総量50μノの反
応液を37℃で2時間保温して、pcRTOlをcla
Iで消化した。生成物をエタノールで沈殿させ、41
.5μIH,0に溶解した。この溶液に20yaM d
CTP(1,25μl)、20ya ノV dGTP<
1.2 s μ 4? ) 、 DNA ポ リメラ
ーゼI (Klenow @片1(1,5単位、1μ7
り、ポリメラーゼ緩衝g、(5μ6)k加え、^ポ量5
0μlとして、30℃で10分間保温した。
4で侍られたpcR’1012ag(xsμJ)、 C
La 1(18単位、apl)、C1a I緩衝fj、
5pl、H2O27/jA!から成る総量50μノの反
応液を37℃で2時間保温して、pcRTOlをcla
Iで消化した。生成物をエタノールで沈殿させ、41
.5μIH,0に溶解した。この溶液に20yaM d
CTP(1,25μl)、20ya ノV dGTP<
1.2 s μ 4? ) 、 DNA ポ リメラ
ーゼI (Klenow @片1(1,5単位、1μ7
り、ポリメラーゼ緩衝g、(5μ6)k加え、^ポ量5
0μlとして、30℃で10分間保温した。
反応をフェノール処理により停止し、フェノールをエー
テル抽出により除去し、生成りNA2エタノールで沈殿
させ、更に沈殿生成物を28μlのH,0に溶解させた
。この爵故に、3mM ATP(6μ))、T、DNA
りが−ゼ(1,8単位、2℃gl l、すl” −ショ
ア緩衝1ffl (4μl ) f加え、最終容量40
μノとし22℃で一夜保温した。生成り # A /−
zエタノールで沈殿させ、沈殿を40μlに溶解させた
。再連結されたDNA′f:実施例lと同様に、宿主E
、coli C600rk−mk−に形質転換により導
入した。得られた了ニビシリン耐性形質転換株、E、c
oli C600r1.−tnk−(pcR’114)
はプラスミドpcR714を保有する、 実施例 5 @現実験 プラスミドpcR’l 11、pcRT12、pcR7
13、pcR’l 14を保有する形質転換株をLB培
地中、37°Cで一夜培養した陵、培養物1m1k:1
0℃君の新軒なM9培地に接種し、1時間培養した。そ
れに15μI / mlの3−ベーターインドールアク
リル酸を添加し、3時間培養した。培養により入腸菌は
4.0X10’細胞meの密度まで生育した。培養後、
遠心分離により集菌し、これflmM pM5F(フェ
ニルメチルスルホニルフルオライド)を含有するPBS
緩衝液(20惧−Hリン酸ナトリウム緩衝剤中150m
Mの塩化ナトリウムを含むpH7,o)3−に懸濁させ
た。この1111濁液に250mMのEDTA(60t
tl)と10q/lのリゾチーム(30μl)を加え0
℃で30分間保温した。生成したスフエロプラスト(5
peroptast lを音波で破壊し、これに尿素を
加えて、尿素の最終crN If ’c 8 Mとした
。細胞処理溶解物(cttll lygate ) f
37℃で1時間保温した。これを30000rmpで3
0分間遠心分離にかけた後、上澄液をp H5緩価液に
透析し、Tノ髪析故に競合結合ラジオイムノアッセイ(
binding compgtitive radio
immu−noassay)を適用した。標準的fr千
法ll1iタリえば、西森らGone、19.337(
19821に記載されている。
テル抽出により除去し、生成りNA2エタノールで沈殿
させ、更に沈殿生成物を28μlのH,0に溶解させた
。この爵故に、3mM ATP(6μ))、T、DNA
りが−ゼ(1,8単位、2℃gl l、すl” −ショ
ア緩衝1ffl (4μl ) f加え、最終容量40
μノとし22℃で一夜保温した。生成り # A /−
zエタノールで沈殿させ、沈殿を40μlに溶解させた
。再連結されたDNA′f:実施例lと同様に、宿主E
、coli C600rk−mk−に形質転換により導
入した。得られた了ニビシリン耐性形質転換株、E、c
oli C600r1.−tnk−(pcR’114)
はプラスミドpcR714を保有する、 実施例 5 @現実験 プラスミドpcR’l 11、pcRT12、pcR7
13、pcR’l 14を保有する形質転換株をLB培
地中、37°Cで一夜培養した陵、培養物1m1k:1
0℃君の新軒なM9培地に接種し、1時間培養した。そ
れに15μI / mlの3−ベーターインドールアク
リル酸を添加し、3時間培養した。培養により入腸菌は
4.0X10’細胞meの密度まで生育した。培養後、
遠心分離により集菌し、これflmM pM5F(フェ
ニルメチルスルホニルフルオライド)を含有するPBS
緩衝液(20惧−Hリン酸ナトリウム緩衝剤中150m
Mの塩化ナトリウムを含むpH7,o)3−に懸濁させ
た。この1111濁液に250mMのEDTA(60t
tl)と10q/lのリゾチーム(30μl)を加え0
℃で30分間保温した。生成したスフエロプラスト(5
peroptast lを音波で破壊し、これに尿素を
加えて、尿素の最終crN If ’c 8 Mとした
。細胞処理溶解物(cttll lygate ) f
37℃で1時間保温した。これを30000rmpで3
0分間遠心分離にかけた後、上澄液をp H5緩価液に
透析し、Tノ髪析故に競合結合ラジオイムノアッセイ(
binding compgtitive radio
immu−noassay)を適用した。標準的fr千
法ll1iタリえば、西森らGone、19.337(
19821に記載されている。
前記の音波処理した無細胞抽出fLを4M尿素で処理し
、遠心分離した後、SDS/I′″ル翫気泳拗にかけた
。移動した蛋白をニトロセルローゼ上に転写し、プロキ
モシン抗体と結合するバンドをオートラジオグラフで検
出した(蛋白プロティング法)。
、遠心分離した後、SDS/I′″ル翫気泳拗にかけた
。移動した蛋白をニトロセルローゼ上に転写し、プロキ
モシン抗体と結合するバンドをオートラジオグラフで検
出した(蛋白プロティング法)。
いづれのプラスミドを保有する大腸菌についても、標品
プロキモシンに対応するバンドが観察された。
プロキモシンに対応するバンドが観察された。
この帯の密度と標品のそれと比較することにより定量的
にプロキモシンの量が、算出された。会O寺ゾロキモシ
ン産生能はpcRl 12)T)CR701≧pCR7
11>pcR714>pCR713の順で4漁のpcR
’l 01と比べるとpcR712は実に約25倍の発
現効果を示した。
にプロキモシンの量が、算出された。会O寺ゾロキモシ
ン産生能はpcRl 12)T)CR701≧pCR7
11>pcR714>pCR713の順で4漁のpcR
’l 01と比べるとpcR712は実に約25倍の発
現効果を示した。
第1図はプラスミドpcRT 01の制限酵素地図であ
る。 第2図りよプラスミドpcRT 01、p CR711
、pcR’l 12、pcRl 13、pcR’l 1
4のSD配列とATG開始コドンとの間の塩基配列とp
cR’101から他のプラスミドを溝成するフローチャ
ートを示す。 特許出願人 別 府 輝 彦 外1名
る。 第2図りよプラスミドpcRT 01、p CR711
、pcR’l 12、pcRl 13、pcR’l 1
4のSD配列とATG開始コドンとの間の塩基配列とp
cR’101から他のプラスミドを溝成するフローチャ
ートを示す。 特許出願人 別 府 輝 彦 外1名
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、E、coli、trpプaモーター、オS V −
p−系とプロキモシン・cl)’HA全配列から成り、
大腸菌宿主細胞内でtrp7″ロモーター制御下、プロ
キモシンclJ)HA全全長発現可能な発現型組換えプ
ラスミドであって、該QDNAのN末端にATG開始コ
ドンが接続され、そして該プロモーター領域内のSI)
配列とATG開始コドンとの間の塩基対が高発現率を与
えるように構成されていることを特徴とするプラスミド
。 のプラスミド。 α)GTATCG b )GTCGATCATAGCC
AGC1’A c )GTATCGAT CATAGCTA 記載のプラスミド。 4、 次の工程よ構成るpcR711プラスミドの構成
方法。 a)fラスミドpcR’lO1をノl1ndIIJで消
化すること、 b)斯くで切断された一本鎖構造部分をDNAポリメラ
ーゼにより修復すること、 c ) T4D’NA IJガーゼを用いて上記修復さ
れた平滑末端を連結すること。 5 次の工程より成るpcR712プラスミド又はpc
R’l13プラスミドの構成方法。 α)プラスミドpcR’101をHind illで消
化すること、 b)斯くて切断された一本鎖構造部分をヌクレアーゼS
1で分解薩去すること、 c)T4DNAリガーゼを用いて切断末端を連結する1
こと。 6、 次の工程よ構成るpcR’l 14グラスミドの
構成方法。 a)プラスミド13CR712ヲ’cla I テ消化
fること、 b )dGTP 、dCTPの存在下、DNAポリメラ
ーゼで斯くて切断された一本鎖構造部分を部分的に修復
すること、 c)T41J)HA’)ガーゼを用いて切断末端を連結
すること。 7、発現プラスミドp(1’R711,712゜713
.714からなる群から選択されたプラスミドを形質転
換により大腸菌宿主に導入し、得られた形質転換株を培
養することを%徴とするプロキモシ/の製法。 9 発現プラスミドpCR711、712。 713.714からなる群から選択されたプラスミドで
形質転換された大腸菌。 10、大腸菌E、coli C600rk−mk−(p
cR712>(機工研FERkf−BP−So2号)。 11、機工研に受託番号FERMBP −502号とし
て寄託された大腸菌中に見い出される組換えプラスミド
pcRT 12゜
Priority Applications (14)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59044901A JPS60188077A (ja) | 1984-03-09 | 1984-03-09 | 仔牛プロキモシンcDΝAの全配列を有する新規な発現プラスミド |
| US06/706,979 US4757020A (en) | 1984-03-09 | 1985-03-01 | Novel expression plasmids containing the full cDNA sequence of calf prochymosin |
| CA000475737A CA1288072C (en) | 1984-03-09 | 1985-03-05 | Expression plasmids containing the full cdna sequence of calf prochymosin |
| IL74537A IL74537A (en) | 1984-03-09 | 1985-03-07 | Expression plasmids containing the full cdna sequence of calf prochymosin |
| AU39640/85A AU594012B2 (en) | 1984-03-09 | 1985-03-07 | Novel expression plasmids containing the full cDNA sequence of calf prochymosin |
| DE8585102658T DE3585695D1 (de) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Expressionsplasmide die vollstaendige cdna-sequenz von kalbsprochymosin enthaltend. |
| ES541121A ES8705520A1 (es) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Un procedimiento para preparar el plasmido plr 711 |
| AT85102658T ATE74161T1 (de) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Expressionsplasmide die vollstaendige cdna-sequenz von kalbsprochymosin enthaltend. |
| IE60685A IE58820B1 (en) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Novel expression plasmids containing the full dna sequence of calf prochymosin |
| EP85102658A EP0154350B1 (en) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Novel expression plasmids containing the full cdna sequence of calf prochymosin |
| DK107885A DK107885A (da) | 1984-03-09 | 1985-03-08 | Ekspressionsplasmider, der indeholder hele cdna-sekvensen af kalve-prochymosin, og fremgangsmaader til fremstilling heraf |
| ES550867A ES8704205A1 (es) | 1984-03-09 | 1986-01-14 | Un procedimiento para preparar el plasmido pcr714 |
| ES550866A ES8802183A1 (es) | 1984-03-09 | 1986-01-14 | Un procedimiento para preparar el plasmido pcr712 o pcr713 |
| ES550868A ES8802181A1 (es) | 1984-03-09 | 1986-01-14 | Un procedimiento para la produccion de proquimosina |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59044901A JPS60188077A (ja) | 1984-03-09 | 1984-03-09 | 仔牛プロキモシンcDΝAの全配列を有する新規な発現プラスミド |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP30063292A Division JPH0673455B2 (ja) | 1992-10-14 | 1992-10-14 | プロキモシンの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60188077A true JPS60188077A (ja) | 1985-09-25 |
| JPH0515432B2 JPH0515432B2 (ja) | 1993-03-01 |
Family
ID=12704373
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59044901A Granted JPS60188077A (ja) | 1984-03-09 | 1984-03-09 | 仔牛プロキモシンcDΝAの全配列を有する新規な発現プラスミド |
Country Status (11)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4757020A (ja) |
| EP (1) | EP0154350B1 (ja) |
| JP (1) | JPS60188077A (ja) |
| AT (1) | ATE74161T1 (ja) |
| AU (1) | AU594012B2 (ja) |
| CA (1) | CA1288072C (ja) |
| DE (1) | DE3585695D1 (ja) |
| DK (1) | DK107885A (ja) |
| ES (4) | ES8705520A1 (ja) |
| IE (1) | IE58820B1 (ja) |
| IL (1) | IL74537A (ja) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE3514113A1 (de) * | 1985-04-19 | 1986-10-23 | Hoechst Ag, 6230 Frankfurt | Veraenderung der dna-sequenz zwischen shine-dalgarno-sequenz und startcodon des trp-operons zur steigerung der proteinexpression |
| IT1221765B (it) * | 1986-05-07 | 1990-07-12 | Eniricerche Spa | Sequenza nucleotidica capace di indurre alti livelli di traduzione di un gene eterologo in bacillus subtilis ed escherichia coli |
| US5045471A (en) * | 1986-12-02 | 1991-09-03 | The Regents Of The University Of California | Cloned DNA for P450scc and expression thereof |
| JPH05505308A (ja) * | 1990-03-13 | 1993-08-12 | ハワイ・バイオテクノロジー・グループ・インコーポレイテツド | アオパンカビ発現システム |
| EP1745068A4 (en) * | 2004-03-30 | 2009-11-04 | Sudershan Biotech Ltd | RECOMBINANT CALM CHYMOSIN AND PROCESS FOR PRODUCING THE SAME |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS589687A (ja) * | 1981-06-17 | 1983-01-20 | セルテク リミテッド | ポリペプチドの生産方法 |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4666847A (en) * | 1981-01-16 | 1987-05-19 | Collaborative Research, Inc. | Recombinant DNA means and method |
| IE53517B1 (en) * | 1981-06-17 | 1988-12-07 | Celltech Ltd | Process for the production of a polypeptide |
| JPS58110600A (ja) * | 1981-12-25 | 1983-07-01 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | ヒトβ型インタ−フエロン遺伝子を含む組みかえ体プラスミド |
| JPS59166086A (ja) * | 1983-03-09 | 1984-09-19 | Teruhiko Beppu | 新規な発現型プラスミドとそれらを用いて仔牛プロキモシン遺伝子を大腸菌内で発現させる方法 |
-
1984
- 1984-03-09 JP JP59044901A patent/JPS60188077A/ja active Granted
-
1985
- 1985-03-01 US US06/706,979 patent/US4757020A/en not_active Expired - Lifetime
- 1985-03-05 CA CA000475737A patent/CA1288072C/en not_active Expired - Lifetime
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- 1985-03-07 IL IL74537A patent/IL74537A/xx not_active IP Right Cessation
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