JPS6041481A - プトレシンオキシダ−ゼの製造方法 - Google Patents
プトレシンオキシダ−ゼの製造方法Info
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はプトレシンオキシダーゼの製造方法に関する〇
プトレシンはスペルミジン、スペルミンと共にポリアミ
ンと総称される1し合物であり、m胞増殖に関−”i−
fるとされている。
ンと総称される1し合物であり、m胞増殖に関−”i−
fるとされている。
また近年、血液、尿等におけるポリアミン濃度の増加と
幇ノ失患との間係が注目され、ポリアミンは癌失患の診
断のためのマーカーとして有用と考えL−)れている。
幇ノ失患との間係が注目され、ポリアミンは癌失患の診
断のためのマーカーとして有用と考えL−)れている。
このポリアミンの定hi方法としてはいくつかの方法が
開発されているが、臨床検査に使用される方法としては
その簡便さからして酵素法が優れている。この場合、こ
のポリアミンの中で主としてプトレシン、ガダベリン、
スペルミジンにイ′1用才る酸化酵素としてプトレシン
オキシダーゼが知られている。
開発されているが、臨床検査に使用される方法としては
その簡便さからして酵素法が優れている。この場合、こ
のポリアミンの中で主としてプトレシン、ガダベリン、
スペルミジンにイ′1用才る酸化酵素としてプトレシン
オキシダーゼが知られている。
これまで微生物由来のプトレシンオキシダーゼのIJ(
給ψ式としては、マイクロコツカス属の微生物〔アグリ
カルチユラル・バイオロジカル・ケミス!・リー 、第
Jθ巻、lλOu ’(/ 966)、および1)開昭
3−7− / g 9 g1号公報〕、およびノカルデ
・fアト、4の微生物(特開昭J−6−/ A <+’
7 g6号公報)が知られている。
給ψ式としては、マイクロコツカス属の微生物〔アグリ
カルチユラル・バイオロジカル・ケミス!・リー 、第
Jθ巻、lλOu ’(/ 966)、および1)開昭
3−7− / g 9 g1号公報〕、およびノカルデ
・fアト、4の微生物(特開昭J−6−/ A <+’
7 g6号公報)が知られている。
ポリアミン定量用酵素としてのプトレシン」キシダーゼ
に要求される性質としては、まずプトレシンに対するK
m値が少な(とも10.Mのオーダーであることが挙げ
られる。
に要求される性質としては、まずプトレシンに対するK
m値が少な(とも10.Mのオーダーであることが挙げ
られる。
本発明者らは、この条件を満足さぜるプトレシンオキシ
ダーゼおよびその生産菌を土壌より分離した微生物を対
象に広く検索した結果、アル・スロバククー属に属する
微生物が目的と1−るプトレシンオキシダーゼを生産し
つることを見い出し1本発明を児成した。
ダーゼおよびその生産菌を土壌より分離した微生物を対
象に広く検索した結果、アル・スロバククー属に属する
微生物が目的と1−るプトレシンオキシダーゼを生産し
つることを見い出し1本発明を児成した。
即ち1本発明はアルスロバクタ−属に属しプトレシンオ
キシダーゼへ生産申時能鬼を有する微生物を培地に培養
し、培養物からプトレシンオキシダーゼを採取すること
を特徴とするプトレシンオキシダーゼの製造方法である
。
キシダーゼへ生産申時能鬼を有する微生物を培地に培養
し、培養物からプトレシンオキシダーゼを採取すること
を特徴とするプトレシンオキシダーゼの製造方法である
。
以下、本発明について詳細に説明する。
まず1本発明で用いられるアルスロバクタ−属に属しプ
トレシンオキシダーゼ生産能を有する微生物の具体例と
しては、例えばアルスロバクタ−・スピーシーズNo、
13−t、−1が挙げられる。
トレシンオキシダーゼ生産能を有する微生物の具体例と
しては、例えばアルスロバクタ−・スピーシーズNo、
13−t、−1が挙げられる。
本菌株は本発明者らが東京都八王子市の土壌より分離し
たものであって、下記の菌学的性質を有している。
たものであって、下記の菌学的性質を有している。
(I)形態学的性状
肉汁寒天培地上でJOC,l、〜コ& 11を間培養し
、観察した所見は下記の辿りである。
、観察した所見は下記の辿りである。
約、乙時間培養後の若い細胞は、真直ぐまたはやや曲っ
た桿菌または短桿菌で端は丸(、単独、二連j己たは短
連鎖をなしており、その大きさはQ 、 J X /〜
3μmである0 27時間以上」M養した古い細胞は1球ないし11、’
J dλ1稈菌で端は九(、単独、二連またはIA1連
鎖をなしており、その大きさは0.3×0.オ〜0.7
μm11である0 木菌は運動性がな(、芽胞を形成せず、ダラム染色は陽
性であるが、培養11gF間により陰性を示すことがあ
るoまた抗酸性染色は陰性を示した。
た桿菌または短桿菌で端は丸(、単独、二連j己たは短
連鎖をなしており、その大きさはQ 、 J X /〜
3μmである0 27時間以上」M養した古い細胞は1球ないし11、’
J dλ1稈菌で端は九(、単独、二連またはIA1連
鎖をなしており、その大きさは0.3×0.オ〜0.7
μm11である0 木菌は運動性がな(、芽胞を形成せず、ダラム染色は陽
性であるが、培養11gF間により陰性を示すことがあ
るoまた抗酸性染色は陰性を示した。
(II)培養性状
各種培地上で、:jOC,/〜7日間培養した所見は下
記の辿りである。
記の辿りである。
肉Z1寒天平板培地:円形で縁が波状で乎i1Jな湿潤
性のあ仝集落を形成し1色相は灰白色である。
性のあ仝集落を形成し1色相は灰白色である。
肉汁寒天斜面培地:糸状に生育し、生育度は中程度。色
は灰白色0水溶性色素の生成なし0肉汁液体培地:生育
良好、菌膜を形成し、沈渣も認められろ0 肉汁ゼラチン穿刺培地:糸状1表面に生育1−るが、生
育度は悪い。
は灰白色0水溶性色素の生成なし0肉汁液体培地:生育
良好、菌膜を形成し、沈渣も認められろ0 肉汁ゼラチン穿刺培地:糸状1表面に生育1−るが、生
育度は悪い。
リドマスミルク培地:培地はわずかに酸性となり、ペプ
トン化が認められる。
トン化が認められる。
(III )生理的注状
硝酸塩の還元 陽性
脱窒反応 陰性
MRテスト 陰性
vpテスト 陽性
インドールの生成 陰性
硫化水素の生成 陰性
澱粉の加水分解 陽性
クエン酸の利用
コーザー培地 陽性
クリステン七ン培地 陽性
無機窒素源の利用
硝酸塩 陽性
アンモニウム塩 陽性
色素の生成 生成しない
ウレアーゼ 陰性
オニVシダーゼ 陰性
カタラーゼ 陽性
生育のpn範囲 5〜9j
生貴温度範囲 j−グOC
酸素に対する態度 好気性
01i′デスト(Ilugb−Leifson 培地)
不変J7.liのlからの酸およびガスの生成酸およ
びガスの生成が認められないものは下記のとおりである
。
不変J7.liのlからの酸およびガスの生成酸およ
びガスの生成が認められないものは下記のとおりである
。
1〕−グルコース、D−マンノース、D−ガラクト−ス
、D−フラクトース、D−ギシロース、L−アラビノー
ス、D−リボース、ラクトース、マルト−ス、セロビオ
ース、メリビオース、シュクロース、D−マンニトール
、D−ンルビトール、イノシトール、ンルボース、ラム
ノース、ラフイノース、α−メチルグルコシド、イヌリ
ン、ザリシン、アルブチン、澱粉、グリセロール0DN
Aのグアニン、シトシン含量は66.6係(Tm法によ
る)であった。
、D−フラクトース、D−ギシロース、L−アラビノー
ス、D−リボース、ラクトース、マルト−ス、セロビオ
ース、メリビオース、シュクロース、D−マンニトール
、D−ンルビトール、イノシトール、ンルボース、ラム
ノース、ラフイノース、α−メチルグルコシド、イヌリ
ン、ザリシン、アルブチン、澱粉、グリセロール0DN
Aのグアニン、シトシン含量は66.6係(Tm法によ
る)であった。
以」二の性質をもとに、「バージニーズ・マニュ “ア
ル・オブ・デターミネイティブ・バクテリ゛オロ ′ジ
ー(Bergey’s Mannual of Det
erminative ’Bacteriology)
1版(192グ)」を参照して ′分類すると、木菌
はアルスロバクタ−(Arthrobacter )属
のアルスロバクタ−・グロビフオルミス(Arthro
bacter globiformis )とい(つか
の点で 3類似性が認められる。しかしながら、木菌は
多形性がほとんど認められないこと、yoCでも生育
1できること、D−キシロース、イノシトール、べ 3
タイン、チラミン、クレアチンの資1し性が認められな
いこと等においてアルスロバクタ−・グロビフォルミス
と明らかに相違点が認められることに −より、本菌株
を新菌と認めアルスロバクタ−・ス 1ビーシーズNo
、 / j −62(Arthrobacter sp
、 ’NQ、/J−Aλ)と命名した。なお、本菌株は
工 ′上:i己しブこアルスロバクタ−・スピーシーズ
No。
ル・オブ・デターミネイティブ・バクテリ゛オロ ′ジ
ー(Bergey’s Mannual of Det
erminative ’Bacteriology)
1版(192グ)」を参照して ′分類すると、木菌
はアルスロバクタ−(Arthrobacter )属
のアルスロバクタ−・グロビフオルミス(Arthro
bacter globiformis )とい(つか
の点で 3類似性が認められる。しかしながら、木菌は
多形性がほとんど認められないこと、yoCでも生育
1できること、D−キシロース、イノシトール、べ 3
タイン、チラミン、クレアチンの資1し性が認められな
いこと等においてアルスロバクタ−・グロビフォルミス
と明らかに相違点が認められることに −より、本菌株
を新菌と認めアルスロバクタ−・ス 1ビーシーズNo
、 / j −62(Arthrobacter sp
、 ’NQ、/J−Aλ)と命名した。なお、本菌株は
工 ′上:i己しブこアルスロバクタ−・スピーシーズ
No。
13−6λは本発明で使用する微生物の具体例であって
、本発明においては、この菌およびその変陣、変異株ば
か9でな(、アルスロバクタ−属に1鳴しプトレシンオ
キシダーゼを生産する能力を有−「る微生物であれば、
すべて使用することができる0 本発明において使用菌の培養は、通常の微生物2) ”
rs ’に方法に従って液体培養、固体培養1.cどで
行うことができる。そして液体培養の場合には、静1り
培Iすでも良いが、振盪培養または通気撹拌培養ノ)方
が好ましい。
、本発明においては、この菌およびその変陣、変異株ば
か9でな(、アルスロバクタ−属に1鳴しプトレシンオ
キシダーゼを生産する能力を有−「る微生物であれば、
すべて使用することができる0 本発明において使用菌の培養は、通常の微生物2) ”
rs ’に方法に従って液体培養、固体培養1.cどで
行うことができる。そして液体培養の場合には、静1り
培Iすでも良いが、振盪培養または通気撹拌培養ノ)方
が好ましい。
」ハ養に用いられる培地としては、アルスロバクタ−属
に属する微生物が必要とてる栄養源を含量1するもので
あれば、合成層地、半合成培地、天然者地のいずれも用
いることができるが、これらのIS地にプトレシンオキ
シダーゼの生産に有効な誘導基質、例えばプトレシンあ
るいはアセチルプトレシン等を添加するのが好ましい0 本発明において使用される培地の好ましい具体 ・例と
しては1例えば可溶性澱粉l係、ポリヘット ・70.
3%、醇刊エキスQ−/幅、リン酸二カリ イウムQ、
I%、硫酸マグネシウム・2水塩o 、o、s%、アセ
チルプトレシン0.3係よりなるpI(7,2cn l
!培地を挙げることができる。
に属する微生物が必要とてる栄養源を含量1するもので
あれば、合成層地、半合成培地、天然者地のいずれも用
いることができるが、これらのIS地にプトレシンオキ
シダーゼの生産に有効な誘導基質、例えばプトレシンあ
るいはアセチルプトレシン等を添加するのが好ましい0 本発明において使用される培地の好ましい具体 ・例と
しては1例えば可溶性澱粉l係、ポリヘット ・70.
3%、醇刊エキスQ−/幅、リン酸二カリ イウムQ、
I%、硫酸マグネシウム・2水塩o 、o、s%、アセ
チルプトレシン0.3係よりなるpI(7,2cn l
!培地を挙げることができる。
培養は、一般的にはpH4〜りに調整した培地、 −好
’f L < uプトレシンオキシダーゼの生産に有効
:1、c誘導基質を含む培地に、アルスロバクタ−属
に ′属しプトレシンオキシダーゼ生産能力をイ1゛1
−る微 ′生物を植菌し、2!〜J7tZ’でis−グ
g 11を間の培養が行われる0この場合、プトレシン
オキシダ −一ゼは王として菌体内に蓄積されるo ブ
このようにして得られた培養物から通常の酵素即ち、培
養物を211過または遠心分離等により培養111液と
国体とに分離する0この菌体はそのまま −あるいは乾
燥して用いても良いが、プトレシンオ、■シダーゼをよ
り精製した形で使用する必要があう場合には、まず菌体
を機械的方法、屏素処理す5方法、自己浴解法等公知の
方法により破壊して1[抽出7改をイひる。
’f L < uプトレシンオキシダーゼの生産に有効
:1、c誘導基質を含む培地に、アルスロバクタ−属
に ′属しプトレシンオキシダーゼ生産能力をイ1゛1
−る微 ′生物を植菌し、2!〜J7tZ’でis−グ
g 11を間の培養が行われる0この場合、プトレシン
オキシダ −一ゼは王として菌体内に蓄積されるo ブ
このようにして得られた培養物から通常の酵素即ち、培
養物を211過または遠心分離等により培養111液と
国体とに分離する0この菌体はそのまま −あるいは乾
燥して用いても良いが、プトレシンオ、■シダーゼをよ
り精製した形で使用する必要があう場合には、まず菌体
を機械的方法、屏素処理す5方法、自己浴解法等公知の
方法により破壊して1[抽出7改をイひる。
次に、一般的に酵素の精製に用いられる透析、艮外Di
過、ゲル沢過クロマトグラフィー、吸着り」マドグラフ
ィー、イオン交換クロマトグラフィー、等電点分画、ア
フィニイティークロマトグラフイー等の手段で、または
これらの手段を組み合iりぜて適用することにより上記
粗抽出液より更に2v jLEのイ′n製標品をイυる
ことができる。
過、ゲル沢過クロマトグラフィー、吸着り」マドグラフ
ィー、イオン交換クロマトグラフィー、等電点分画、ア
フィニイティークロマトグラフイー等の手段で、または
これらの手段を組み合iりぜて適用することにより上記
粗抽出液より更に2v jLEのイ′n製標品をイυる
ことができる。
また、上記のようにしてに’4た粗酵素7佼や精製酵(
4液は例えば凍結乾燥法などによす粗酵素わ)末まこは
鞘製酵素扮末にすることもできる。更にこの[うにして
得られたプトレシンオキシダーゼは適!+ 7.[、l
j体に固定1しすることにより固定化酵素とすにともで
きる。
4液は例えば凍結乾燥法などによす粗酵素わ)末まこは
鞘製酵素扮末にすることもできる。更にこの[うにして
得られたプトレシンオキシダーゼは適!+ 7.[、l
j体に固定1しすることにより固定化酵素とすにともで
きる。
次に本発明により得られたプトレシンオキシダーゼの諸
性質について述べる。
性質について述べる。
■作用
lモルのプトレシンより、1モルの酸素を消費して、1
モルのl−ピロリン、1モルのアンモニア、7モルの過
酸化水素を生成する。即ち、プトレシンを酸比して/−
ヒロリン、アンモニア。
モルのl−ピロリン、1モルのアンモニア、7モルの過
酸化水素を生成する。即ち、プトレシンを酸比して/−
ヒロリン、アンモニア。
過酸化水素を生ffl’fる反応を触fiする作用を有
する0 ■基質特異性 後記するプトレシンオキシダーゼの活性測定法において
、/ mM条件下で各種の基質に対する反応速度をめ、
プトレシンを用いた場合を700として表示し、本酵素
の基質特異性を第1表に示した。
する0 ■基質特異性 後記するプトレシンオキシダーゼの活性測定法において
、/ mM条件下で各種の基質に対する反応速度をめ、
プトレシンを用いた場合を700として表示し、本酵素
の基質特異性を第1表に示した。
第 1 表
糸 質 相対活性(q!I)
プトレシン 100
カダベリン IO
スペルミジン o0g
スペルミン O
■至適pH
後記のプトレシンオキシダーゼの活性測定法におい゛C
,緩衝液のpHを6〜9まで変えてCpit6〜gはリ
ン酸緩衝液、pI−I 7 、 s −9はトリス塩酸
緩iIl+j 7Lり)作用至適p■■をめた。その結
果を第7図に示す。この結果1本酵素の至適pH8’;
Jニア 、 t〜g、oにあった。
,緩衝液のpHを6〜9まで変えてCpit6〜gはリ
ン酸緩衝液、pI−I 7 、 s −9はトリス塩酸
緩iIl+j 7Lり)作用至適p■■をめた。その結
果を第7図に示す。この結果1本酵素の至適pH8’;
Jニア 、 t〜g、oにあった。
(4)安定pH範囲
本酵素を予め各pH(pI−1& 1.t〜6は酢酸緩
イーpi故、9116〜gはりン醒緩衝液、p)l g
〜9はトリス塩酸緩衝液、 pi−19〜10は硼e緩
Iij液)について32′Cで30分間処理した後、残
存活性を測定した。その結果は第2図に示すとおりで、
木醇累ばpil 3.J〜9.0の範囲で安定であつブ
こ〇■至至適温 水酵素の作用の至適温度は第3図に示すとお960Cイ
り近であった。
イーpi故、9116〜gはりン醒緩衝液、p)l g
〜9はトリス塩酸緩衝液、 pi−19〜10は硼e緩
Iij液)について32′Cで30分間処理した後、残
存活性を測定した。その結果は第2図に示すとおりで、
木醇累ばpil 3.J〜9.0の範囲で安定であつブ
こ〇■至至適温 水酵素の作用の至適温度は第3図に示すとお960Cイ
り近であった。
9つ熱安定性
本酵素の熱安定性を調べるため、pH7,0のリン酸緩
衝液中で各温度に10分間保った後の残存活性を測定し
た0その結果は第を図に示すとおりで、、7J−’Cま
で安定であった0■活性6111定法 本酵素の活性測定は/ D D mM !Jン酸緩衝2
「り(pH7,3)0 、jmA、 / OmMプトレ
シンニ塩m 4 Ri /li O、J +++6.0
..2%(V/V)N、N−ジメチルアニリンffl液
0 、6mb、 o 、2 % (W/V )クーアミ
ノアンチピリン溶1(l o −amb、 ヘルオ±シ
ダーゼfJ7J (s o U/me ) o 、 a
mb、水θ 9J−n+1の反応系をキュベツトの中に
組み、30Cで3分間予熱した後、酵素溶液0.0オm
bを添加し1、?OCで反応させ1分間当りの36j
l1mの吸光度増加量を分光々度泪にて測定する。プト
レシンオキシダーゼ活性の単位は1分間にlマイクロモ
ルの過酸化水素を生じる酵素蚕をl単位とする。
衝液中で各温度に10分間保った後の残存活性を測定し
た0その結果は第を図に示すとおりで、、7J−’Cま
で安定であった0■活性6111定法 本酵素の活性測定は/ D D mM !Jン酸緩衝2
「り(pH7,3)0 、jmA、 / OmMプトレ
シンニ塩m 4 Ri /li O、J +++6.0
..2%(V/V)N、N−ジメチルアニリンffl液
0 、6mb、 o 、2 % (W/V )クーアミ
ノアンチピリン溶1(l o −amb、 ヘルオ±シ
ダーゼfJ7J (s o U/me ) o 、 a
mb、水θ 9J−n+1の反応系をキュベツトの中に
組み、30Cで3分間予熱した後、酵素溶液0.0オm
bを添加し1、?OCで反応させ1分間当りの36j
l1mの吸光度増加量を分光々度泪にて測定する。プト
レシンオキシダーゼ活性の単位は1分間にlマイクロモ
ルの過酸化水素を生じる酵素蚕をl単位とする。
■分子量
セファクリル5−−1OO(ファルマシア社製)を用い
たゲル8二1過法による分子量は約//QQりOである
。また、SDSディスク電気泳動法によりめたザブユニ
ットの分子量は約、3−000θである0 ■等電点 キャリアーアンホライトを用いる焦点電気泳動法により
めた本酵素の等電点はり、−であった。
たゲル8二1過法による分子量は約//QQりOである
。また、SDSディスク電気泳動法によりめたザブユニ
ットの分子量は約、3−000θである0 ■等電点 キャリアーアンホライトを用いる焦点電気泳動法により
めた本酵素の等電点はり、−であった。
($ 1青製方 l去
本酵素の精製は通常一般的に酵素の117製に用いられ
台ところの各種の方法、即ち、硫安塩析、イ」′機浴媒
沈澱、透析、限外l−i過、ゲルδ゛草過クロマトグラ
フィー、イオン交換クロマトグラフィー、等電点分画、
アフイニイテイークロマトグラフイー姶な組み合わぜる
ことによジ行うことができる。
台ところの各種の方法、即ち、硫安塩析、イ」′機浴媒
沈澱、透析、限外l−i過、ゲルδ゛草過クロマトグラ
フィー、イオン交換クロマトグラフィー、等電点分画、
アフイニイテイークロマトグラフイー姶な組み合わぜる
ことによジ行うことができる。
その具体例は後記実施例1に示すとおりである。
リリ [ぐ1n イ直
pH7、jの条件下、本酵素のプトレシンに対するJ(
n+値をラインライ−バー嗜バーク・プロット(Ljn
eweaver −Burk plot )によりめた
ところ、3.gxio Mであった0 次にこのプトレシンオキシダーゼの使用方法について述
べる。本酵素は、プトレシン、カダベリン、スペルミジ
ンに作用することにより、これらのポリアミンを含む検
体に本酵素を加えて反応させ、その際に消費される自!
2索あるいは生成する過酸化水素を公知の方法により定
量することQこより、もとのポリアミン量を定量するこ
とができるO具体的1.【定h1、方法Vこついては、
下記する実施例2−ご詳細に述べる0 実施1り1」1 可溶性戯わ)/憾、ポリペプトン0.3係、酵IU。
n+値をラインライ−バー嗜バーク・プロット(Ljn
eweaver −Burk plot )によりめた
ところ、3.gxio Mであった0 次にこのプトレシンオキシダーゼの使用方法について述
べる。本酵素は、プトレシン、カダベリン、スペルミジ
ンに作用することにより、これらのポリアミンを含む検
体に本酵素を加えて反応させ、その際に消費される自!
2索あるいは生成する過酸化水素を公知の方法により定
量することQこより、もとのポリアミン量を定量するこ
とができるO具体的1.【定h1、方法Vこついては、
下記する実施例2−ご詳細に述べる0 実施1り1」1 可溶性戯わ)/憾、ポリペプトン0.3係、酵IU。
エギスQ、/%、リン酸二カリウム0./係、仙H−=
ryネシウムa、ot4.プトレシン0.3幅を含む培
地(pH7,7)ユ0〃を、30p容ジャーファーメン
タ−に入れ−1xoC−−1o分間加熱殺菌する。しか
る後に、これに、同じ3%地で21時間培養したアルス
ロバクターースビーシーズNo−73−6ユのシードj
“θo mbを加え、30Cにて通気量ion/分、回
転数aOO回転/分σ〕条件で、二〇時間辿気攪4;l
゛培養するoしかる後、遠心分離にて菌体な集め、0.
0ユMリン酸緩衝液(pi(7、ユ)にて菌体な洗浄す
る。
ryネシウムa、ot4.プトレシン0.3幅を含む培
地(pH7,7)ユ0〃を、30p容ジャーファーメン
タ−に入れ−1xoC−−1o分間加熱殺菌する。しか
る後に、これに、同じ3%地で21時間培養したアルス
ロバクターースビーシーズNo−73−6ユのシードj
“θo mbを加え、30Cにて通気量ion/分、回
転数aOO回転/分σ〕条件で、二〇時間辿気攪4;l
゛培養するoしかる後、遠心分離にて菌体な集め、0.
0ユMリン酸緩衝液(pi(7、ユ)にて菌体な洗浄す
る。
このようにして得られた菌体jθノを0.02Mリン酸
緩衝液(pH7,コ)−00m8に懸濁し、水冷下超7
11波破壊を行う。この破壊7夜を1ooo。
緩衝液(pH7,コ)−00m8に懸濁し、水冷下超7
11波破壊を行う。この破壊7夜を1ooo。
回転、−0分の遠心・分離にかけ、上澄(抽1]胃夜)
を・潜る。これには<l’ D J−0単位のプトレシ
ンオキシダーゼが存在した。
を・潜る。これには<l’ D J−0単位のプトレシ
ンオキシダーゼが存在した。
次にこの抽出液を、予め002 M IJン酸緩衝液(
pLL 、7−2)で緩fi化したD E A Eセル
ロースカラム(2,J−X、?Oct++)に辿″r0
このカラムを同じ緩雨1jkで充分洗浄した後、食塩籏
度を0から1MまQ it’、l線画に」−昇させるグ
ラジェント溶出法によV醇5(へを浴出した0この際、
得られた酵素浴/佼の酵7(−活性はJ6λ0単位であ
った。しかる後。
pLL 、7−2)で緩fi化したD E A Eセル
ロースカラム(2,J−X、?Oct++)に辿″r0
このカラムを同じ緩雨1jkで充分洗浄した後、食塩籏
度を0から1MまQ it’、l線画に」−昇させるグ
ラジェント溶出法によV醇5(へを浴出した0この際、
得られた酵素浴/佼の酵7(−活性はJ6λ0単位であ
った。しかる後。
この酵素浴液を限外14過法にて鎖線し1次に予め0.
0−2Mリン酸緩衝孜(pH7、ユ)で緩衝化したウル
トロゲルAcAa<のカラム(2,3−3−X1O0C
にかげ、ゲルe過を行った。この際、得られた酵素浴1
夜の酵素活性は3なコ0単位であった。次にこの酵素浴
牧を予め同じ緩衝液で緩衝化したl、/D−ジアミノデ
カンセファロースxBのカラム(t、3X、20crn
)に通し酵素を吸着せしめた0次いで食塩濃度なOから
/Mまで直線的に上げるグ性は3a70単位であったO
なおこの酵素様6もののよう1工方法にJ−9定量した
O 反応l没組成 0.7Mリン酸緩衝1’1(1)I−L 7.j) o
、t mto、2%(W/V)’1−−7ミ/’T’
5−ビP4f(l o 、y mbo、8(v/V)N
、N−ジメブフL+プーニリ7M(l o 、 b m
bペルオキシダーゼ浴液(!θU/ml) 0 、J
jnff水 0.+2ワ〃L乙 上記のような組成の反応l翫をキュベツト中に組み、プ
トレシンオキシダーゼ溶液o、oimb(o、i単位)
を加え1.IDC”’Q10分反応させ、Δ”/、J’
nmの吸光度の増加量(A365 )を測定したOこの
結果、得られたA、6.より / n mol 7m6
の過酸1し水素は吸光度Q、0/Jを与えるという関係
から、もとの検体中のプトレシン(戯1及をめたところ
、t 、7 、−2 tt mol /mlという結果
が得しit、1こ。
0−2Mリン酸緩衝孜(pH7、ユ)で緩衝化したウル
トロゲルAcAa<のカラム(2,3−3−X1O0C
にかげ、ゲルe過を行った。この際、得られた酵素浴1
夜の酵素活性は3なコ0単位であった。次にこの酵素浴
牧を予め同じ緩衝液で緩衝化したl、/D−ジアミノデ
カンセファロースxBのカラム(t、3X、20crn
)に通し酵素を吸着せしめた0次いで食塩濃度なOから
/Mまで直線的に上げるグ性は3a70単位であったO
なおこの酵素様6もののよう1工方法にJ−9定量した
O 反応l没組成 0.7Mリン酸緩衝1’1(1)I−L 7.j) o
、t mto、2%(W/V)’1−−7ミ/’T’
5−ビP4f(l o 、y mbo、8(v/V)N
、N−ジメブフL+プーニリ7M(l o 、 b m
bペルオキシダーゼ浴液(!θU/ml) 0 、J
jnff水 0.+2ワ〃L乙 上記のような組成の反応l翫をキュベツト中に組み、プ
トレシンオキシダーゼ溶液o、oimb(o、i単位)
を加え1.IDC”’Q10分反応させ、Δ”/、J’
nmの吸光度の増加量(A365 )を測定したOこの
結果、得られたA、6.より / n mol 7m6
の過酸1し水素は吸光度Q、0/Jを与えるという関係
から、もとの検体中のプトレシン(戯1及をめたところ
、t 、7 、−2 tt mol /mlという結果
が得しit、1こ。
図面は本発明で製造されるプトレシンオキシダーゼに関
−「るもので、第1図は至適pHを示す図であり1.第
一図は安定pH範囲を示す図“Cあり。 第3図は至適温度を示す図であり、第9図は熱安定性を
示す図であるO 第1図 1 回 4 5 6 g ? IQ l−1 第 3 口 9R〜(C) 隼4図 藩鮎(’c、)
−「るもので、第1図は至適pHを示す図であり1.第
一図は安定pH範囲を示す図“Cあり。 第3図は至適温度を示す図であり、第9図は熱安定性を
示す図であるO 第1図 1 回 4 5 6 g ? IQ l−1 第 3 口 9R〜(C) 隼4図 藩鮎(’c、)
Claims (1)
- (1)アルスロバクタ−属に属しプトレシンオキシダー
ゼ生産能な有する微生物を培地に培養し。 培養物からプトレシンオキシダーゼを採取することをl
Nj徴とするプトレシンオキシダーゼの製造方法0 (z)J’a地として、プトレシンあるいはアセチルプ
トレシンのようなプトレシンオキシダーゼの生産に有効
な誘導基質を添加した培地を用いる特t′ト請求の範囲
第1項記載の方法0 に3)微生物がアルスロバクタ−・スピーシーズNo、
IJ−1,2であることを特徴とする特Jr請求の1I
Il)囲第1項または第二項記載の方法0
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14921883A JPS6041481A (ja) | 1983-08-17 | 1983-08-17 | プトレシンオキシダ−ゼの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14921883A JPS6041481A (ja) | 1983-08-17 | 1983-08-17 | プトレシンオキシダ−ゼの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6041481A true JPS6041481A (ja) | 1985-03-05 |
Family
ID=15470431
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14921883A Pending JPS6041481A (ja) | 1983-08-17 | 1983-08-17 | プトレシンオキシダ−ゼの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6041481A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH02231079A (ja) * | 1989-03-03 | 1990-09-13 | Tokuyama Soda Co Ltd | プトレッシンオキシダーゼの製造方法 |
-
1983
- 1983-08-17 JP JP14921883A patent/JPS6041481A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH02231079A (ja) * | 1989-03-03 | 1990-09-13 | Tokuyama Soda Co Ltd | プトレッシンオキシダーゼの製造方法 |
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