JPS6091998A - 体液及び尿中のd―3―ヒドロキシ酪酸の測定法並びにそのための測定試薬 - Google Patents
体液及び尿中のd―3―ヒドロキシ酪酸の測定法並びにそのための測定試薬Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、体液中ことに血清又は血漿、あるいは尿中の
D−3−ヒドロキシ酪酸およびアセト酢酸の測定を行う
ための改良された酵素による簡易測定方法並びに測定試
薬に関する。
D−3−ヒドロキシ酪酸およびアセト酢酸の測定を行う
ための改良された酵素による簡易測定方法並びに測定試
薬に関する。
糖質の供給不足あるいは利用障害、ストレス、運動、糖
尿病などで脂質分解および脂肪酸の酸化が六進して命中
および尿中にD−3−ヒドロキシ醋酸あるいはアセト酢
酸が増加することが知られている。とくに糖尿病の病態
把握にこれらの化合物を測定することは有用な指標とな
り極めて意義あることとされている。
尿病などで脂質分解および脂肪酸の酸化が六進して命中
および尿中にD−3−ヒドロキシ醋酸あるいはアセト酢
酸が増加することが知られている。とくに糖尿病の病態
把握にこれらの化合物を測定することは有用な指標とな
り極めて意義あることとされている。
本発明者等は、すでにD−3−ヒドロキシ酪酸あるいは
アセト酢酸の測定法をいくつか提案している。たとえば
(a )血清中のアセト酢酸を、感度および精度の優れ
たP−ニトロフェニルジアゾニウムフルオロボレートの
ジアゾニウム塩とのカップリング反応により得られる化
合物の比色分析ニヨり定量in方法(特11153−8
6803号)、(b)D−3−ヒドロキシ酪酸を酵素反
応によってアセト酢酸に変換し、既存のアセト酢酸とと
もに(a )と同様の方法でケ:−ン体化合物総量とし
て測定し、既存のア七ト酢amをそこから減じてD−3
−ヒドロキシ醋酸を定量する方法(特願昭53−108
153号)、(C)、これらの改良法として界面活性剤
の存在下でアセト酢酸とP−ニトロフェニルジアゾニウ
ムフルオロボレートとを反応させた後、アルカリ化して
宥定なアゾ化合物を生成させこれを比色分析して定量す
る方法(特願11157−112520号)、および(
d )D−3−ヒドロキシ酪酸を酵素反応により脱水素
するにあたり、電子伝達体およびテトラゾリウム塩を存
在せしめ生成するホルマザンの呈色度の測定によりD−
3−ヒドロキシ醋酸を定置する方法(特願昭58−39
813号)が本発明者等によって示されている。
アセト酢酸の測定法をいくつか提案している。たとえば
(a )血清中のアセト酢酸を、感度および精度の優れ
たP−ニトロフェニルジアゾニウムフルオロボレートの
ジアゾニウム塩とのカップリング反応により得られる化
合物の比色分析ニヨり定量in方法(特11153−8
6803号)、(b)D−3−ヒドロキシ酪酸を酵素反
応によってアセト酢酸に変換し、既存のアセト酢酸とと
もに(a )と同様の方法でケ:−ン体化合物総量とし
て測定し、既存のア七ト酢amをそこから減じてD−3
−ヒドロキシ醋酸を定量する方法(特願昭53−108
153号)、(C)、これらの改良法として界面活性剤
の存在下でアセト酢酸とP−ニトロフェニルジアゾニウ
ムフルオロボレートとを反応させた後、アルカリ化して
宥定なアゾ化合物を生成させこれを比色分析して定量す
る方法(特願11157−112520号)、および(
d )D−3−ヒドロキシ酪酸を酵素反応により脱水素
するにあたり、電子伝達体およびテトラゾリウム塩を存
在せしめ生成するホルマザンの呈色度の測定によりD−
3−ヒドロキシ醋酸を定置する方法(特願昭58−39
813号)が本発明者等によって示されている。
しかしながら、これらの方法は感度、m度ともすぐれて
いるが(a)〜(C)の方法によれば検体の除蛋白操作
が必要であるという問題点があり、また(d )の方法
によれば生成するホルマザンによる測定用セルの汚染、
すなわちセル上へのホルマザン色素の沈着がみとめられ
、多数の検体を測定する自動分析では一般に適用がむづ
かしいという問題点がある。
いるが(a)〜(C)の方法によれば検体の除蛋白操作
が必要であるという問題点があり、また(d )の方法
によれば生成するホルマザンによる測定用セルの汚染、
すなわちセル上へのホルマザン色素の沈着がみとめられ
、多数の検体を測定する自動分析では一般に適用がむづ
かしいという問題点がある。
ところで、酵素反応を利用したD−3−ヒドロキシ醋酸
あるいはアセ1〜酢酸の測定方法は以下の反応式(I)
を利用している。
あるいはアセ1〜酢酸の測定方法は以下の反応式(I)
を利用している。
(式中、[)−3−OHBAはD−3−ヒドロキシ酪酸
であり、NADはニコチンアミドアデニンジヌクレオタ
イドであり、3−0HBADHは3−ヒドロキシ酪酸脱
水素酵素であり、ACAOはアセト酢酸であり、NAD
Hはニコチンアミドアデニンジヌクレオタイド還元体で
ある。)すなわち、体液および尿中に存在するD−3−
ヒドロキシ酪酸は、3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素の存
在下にNADと反応して、アセト酢酸に変換され、その
際生ずるNADHIをたとえば波長340n−にて吸光
度測定しNADHの生成量を測定することによって、D
−3−ヒドロキシ酪酸の定量が行われている。この際反
応をより完全に進行せしめるため、反応系中に硫酸ヒド
ラジンを添加し、アt?I・酢酸と硫酸ヒドラジンとを
反応させアセ1−酢酸を反応系から除去している。
であり、NADはニコチンアミドアデニンジヌクレオタ
イドであり、3−0HBADHは3−ヒドロキシ酪酸脱
水素酵素であり、ACAOはアセト酢酸であり、NAD
Hはニコチンアミドアデニンジヌクレオタイド還元体で
ある。)すなわち、体液および尿中に存在するD−3−
ヒドロキシ酪酸は、3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素の存
在下にNADと反応して、アセト酢酸に変換され、その
際生ずるNADHIをたとえば波長340n−にて吸光
度測定しNADHの生成量を測定することによって、D
−3−ヒドロキシ酪酸の定量が行われている。この際反
応をより完全に進行せしめるため、反応系中に硫酸ヒド
ラジンを添加し、アt?I・酢酸と硫酸ヒドラジンとを
反応させアセ1−酢酸を反応系から除去している。
一方、体液および尿中に存在するアセト酢酸は、3−ヒ
ドロキシ酪酸脱水素酵素の存在下にNADHと反応して
、D−3−ヒドロキシ醋酸に変換され、その際反応前後
のNADH量をたとえば波長340nmにて吸光度測定
し、NADI−1の減少量を測定することによって、ア
セ1〜酢酸の定量が行われている。
ドロキシ酪酸脱水素酵素の存在下にNADHと反応して
、D−3−ヒドロキシ醋酸に変換され、その際反応前後
のNADH量をたとえば波長340nmにて吸光度測定
し、NADI−1の減少量を測定することによって、ア
セ1〜酢酸の定量が行われている。
しかしながら上記の測定法は、検体の前処理として除蛋
白や透析等の操作を加えなければ、D−3−ヒドロキシ
酪酸あるいはアセ1−酢酸を特異的に定置することがで
きない。この原因は、主とし・ て体液および尿中に存
在する乳酸脱水素酵素、乳酸、ピルビン酸等が前記反応
式<1)に干渉を与えているためであろうと考えられる
。本発明者らは、上記の点に着目して鋭意研究した結果
、測定系中に乳酸脱水素酵素阻害剤を存在させることに
よって、検体の前処理としての除蛋白透析等の操作を加
えることなく、体液および尿中のD−3−ヒドロキシ酪
酸あるいはアセ本酢酸を正確に定量することができるこ
とを見出して、本発明を完成するに至った。また、本発
明によりこれまでの除蛋白透析等での検体希釈による感
度の低下も改善され、より感度の良い簡易測定法が確立
し得た。
白や透析等の操作を加えなければ、D−3−ヒドロキシ
酪酸あるいはアセ1−酢酸を特異的に定置することがで
きない。この原因は、主とし・ て体液および尿中に存
在する乳酸脱水素酵素、乳酸、ピルビン酸等が前記反応
式<1)に干渉を与えているためであろうと考えられる
。本発明者らは、上記の点に着目して鋭意研究した結果
、測定系中に乳酸脱水素酵素阻害剤を存在させることに
よって、検体の前処理としての除蛋白透析等の操作を加
えることなく、体液および尿中のD−3−ヒドロキシ酪
酸あるいはアセ本酢酸を正確に定量することができるこ
とを見出して、本発明を完成するに至った。また、本発
明によりこれまでの除蛋白透析等での検体希釈による感
度の低下も改善され、より感度の良い簡易測定法が確立
し得た。
本発明に係る体液および尿中のD−3−ヒドロキシ酪酸
の測定方法は、D−3−ヒドロキシ醋酸をNAD、3−
ヒドロキシ酪酸脱水素酵素の存在下で、アセト酢酸に変
換させ、ぞの際生成するNADHの量変化を測定するこ
とにより、D−3−ヒドロキシ酪酸を定量するに際して
、測定系中に乳酸脱水素酵素阻害剤を存在させることを
特徴としている。
の測定方法は、D−3−ヒドロキシ醋酸をNAD、3−
ヒドロキシ酪酸脱水素酵素の存在下で、アセト酢酸に変
換させ、ぞの際生成するNADHの量変化を測定するこ
とにより、D−3−ヒドロキシ酪酸を定量するに際して
、測定系中に乳酸脱水素酵素阻害剤を存在させることを
特徴としている。
また、本発明に係る体液及び尿中のアセト酢酸の測定方
法は、アセト酢酸をNADH,3−ヒドロキシ酪酸脱水
素酵素の存在下でD−3−ヒドロキシ酪酸に変換させ、
その際減少するNADHの量変化を測定することにより
、アセト酢酸を測定するに際して、測定系中に乳酸脱水
素酵素阻害剤を存在させることを特徴としている。
法は、アセト酢酸をNADH,3−ヒドロキシ酪酸脱水
素酵素の存在下でD−3−ヒドロキシ酪酸に変換させ、
その際減少するNADHの量変化を測定することにより
、アセト酢酸を測定するに際して、測定系中に乳酸脱水
素酵素阻害剤を存在させることを特徴としている。
一方、本発明に係る体液および尿中のD−3−ヒドロキ
シ酪酸の測定用試薬は、NAD、3−ヒドロキシ酪酸脱
水素酵素および乳酸脱水素酵素阻害剤を含んで構成され
る。
シ酪酸の測定用試薬は、NAD、3−ヒドロキシ酪酸脱
水素酵素および乳酸脱水素酵素阻害剤を含んで構成され
る。
また本発明に係る体液および尿中のアセ1〜酢酸の測定
用試薬は、NADH,3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素お
よび乳酸脱水素酵素阻害剤を含んで構成される。
用試薬は、NADH,3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素お
よび乳酸脱水素酵素阻害剤を含んで構成される。
本発明に使用しうる乳酸脱水素酵素阻害剤としては、オ
キサミン酸のほかにSH阻害剤たとえばヨードアセトア
ミド、ヒドロキシ水銀安息香酸、3価のヒ素化合物など
が用いられるが、動物由来の乳酸脱水素酵素への阻害効
果の点からオキサミン酸が特に好ましい。
キサミン酸のほかにSH阻害剤たとえばヨードアセトア
ミド、ヒドロキシ水銀安息香酸、3価のヒ素化合物など
が用いられるが、動物由来の乳酸脱水素酵素への阻害効
果の点からオキサミン酸が特に好ましい。
この乳酸脱水素酵素は測定系中に5611tJ/dU位
の濃度で存在することが望ましい。
の濃度で存在することが望ましい。
また、オキサミン酸を測定系中に共存させ、波長340
n−におけるNADHの吸光度への影響を、標準検量線
を用いた実験から調べたが、第10.11図に示す通り
影響はない。更に、血清検体について先に提案したジア
ゾニウム塩Cアゾ化合物を生成させ比色定量する方法(
特願昭57−112520@)と本発明方法との相関関
係は第7図、第8図のグラフに示す如くであり、また、
オキサミン酸による血清中の乳酸脱水素酵素阻害率は第
9図のグラフに示す如くであった。なお、測定に使用し
た濃度は乳酸脱水素酵素を95%以上阻害する56+1
10/d Q、とじた。
n−におけるNADHの吸光度への影響を、標準検量線
を用いた実験から調べたが、第10.11図に示す通り
影響はない。更に、血清検体について先に提案したジア
ゾニウム塩Cアゾ化合物を生成させ比色定量する方法(
特願昭57−112520@)と本発明方法との相関関
係は第7図、第8図のグラフに示す如くであり、また、
オキサミン酸による血清中の乳酸脱水素酵素阻害率は第
9図のグラフに示す如くであった。なお、測定に使用し
た濃度は乳酸脱水素酵素を95%以上阻害する56+1
10/d Q、とじた。
3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素としては、ロドスピリラ
ム・ルブラム(RbodoSpir;、11u+n r
ubzum )、シュウトモナス番レモイグネエイ(P
Sedo+nonas le−moignei)などの
細菌以外に、動物起源のものも用いることができる。
ム・ルブラム(RbodoSpir;、11u+n r
ubzum )、シュウトモナス番レモイグネエイ(P
Sedo+nonas le−moignei)などの
細菌以外に、動物起源のものも用いることができる。
なお、以下に示す本発明の実施例においてNADHの量
変化を測定する方法として最も基本となる波長340n
mにおける吸光度測定を例に示したが、このほか既に本
発明者等により提案している電子伝達体およびデトラゾ
リウム塩をさらに存在せしめ生成するホルマザンの呈色
度を水溶液あるいは試験紙などで測定する方法(特願昭
58−39813号)や同様にNADHを直接またはそ
の還元力を利用した螢光法等があげられる。
変化を測定する方法として最も基本となる波長340n
mにおける吸光度測定を例に示したが、このほか既に本
発明者等により提案している電子伝達体およびデトラゾ
リウム塩をさらに存在せしめ生成するホルマザンの呈色
度を水溶液あるいは試験紙などで測定する方法(特願昭
58−39813号)や同様にNADHを直接またはそ
の還元力を利用した螢光法等があげられる。
以下、本発明に係る体液中のD−3−ヒドロキシ醋酸お
よびアセト酢酸の測定方法を用手法と遠心方式自動分析
装置(セントリフィヶム・システム500)に適用した
具体例について説明する。
よびアセト酢酸の測定方法を用手法と遠心方式自動分析
装置(セントリフィヶム・システム500)に適用した
具体例について説明する。
■、試薬
(1)D−3−ヒドロキシ酪酸測定用補酵素試薬0.2
M/Ll−リス塩酸緩衝液(PH8,5)23.711
IQに20m M/L NAD 3.OaU、上記トリ
ス塩酸緩衝液で溶かした0、 5 (w/V )%硫酸
ヒドラジン溶液3.0IlIQ、を加えて混和し、さら
にオキサミン酸25mΩを加えて溶解した後、蒸留水で
全1133.5m Q、とじた溶液を調製して使用する
。
M/Ll−リス塩酸緩衝液(PH8,5)23.711
IQに20m M/L NAD 3.OaU、上記トリ
ス塩酸緩衝液で溶かした0、 5 (w/V )%硫酸
ヒドラジン溶液3.0IlIQ、を加えて混和し、さら
にオキサミン酸25mΩを加えて溶解した後、蒸留水で
全1133.5m Q、とじた溶液を調製して使用する
。
■ アセト酢酸測定用補酵素試薬
0.25M/Lトリエタノールアミン溶液(PH7,0
>の24.7taQに3+n M/L NADH5,0
11Ilを加えて混和し、さらにオキザミン酸25aQ
を加え溶解した後、蒸留水で全量33゜5m1ljとし
た溶液をIQ製して使用する。
>の24.7taQに3+n M/L NADH5,0
11Ilを加えて混和し、さらにオキザミン酸25aQ
を加え溶解した後、蒸留水で全量33゜5m1ljとし
た溶液をIQ製して使用する。
(3) Wf素試薬
西ドイツ国ベーリンガー・マンハイム社製のものくグレ
ード■)約15単位/IIQ、を使用する。
ード■)約15単位/IIQ、を使用する。
■、用千手法よる測定方法
(1)D−3−ヒドロキシ醋酸の算出方法0−3−ヒト
OキシW!ll1I測定用補酵素試液と酵素試液を67
=3の割合で混合した試液1050、μQに検体300
μ悲を加えて測定液とし、直ちに波長340 nmにて
吸光度AXを測定する。次いでこの測定液を37℃で5
分間振とうした後、再度波長340 n1llにて吸光
度Ayを測定する。同様にして検体の代りに蒸留水、6
%アルブミン溶液を用いて調製した500μM/LD−
3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液での37℃、5分
間反応前後の各測定液の吸光度BX Byおよび5xS
yを測定し、式 により、検体中のD−3−ヒドロキシ醋酸の含有量Ea
@算出する。なお、酵素試液を別途添加する場合はD−
3−ヒドロキシ酪酸測定用補酵素試液1005μgに検
体300μQを加えた後に吸光度A X/を測定し、そ
の後酵素試液45μQを加え37℃で5分間振どうする
。、蒸留水、6%アルブミン溶液を用いて調製した50
0μM/LのD−3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液
についても同様に行う。の場合、算出式においてはAX
、B×、SXの代りにそれぞれ を用いる。
OキシW!ll1I測定用補酵素試液と酵素試液を67
=3の割合で混合した試液1050、μQに検体300
μ悲を加えて測定液とし、直ちに波長340 nmにて
吸光度AXを測定する。次いでこの測定液を37℃で5
分間振とうした後、再度波長340 n1llにて吸光
度Ayを測定する。同様にして検体の代りに蒸留水、6
%アルブミン溶液を用いて調製した500μM/LD−
3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液での37℃、5分
間反応前後の各測定液の吸光度BX Byおよび5xS
yを測定し、式 により、検体中のD−3−ヒドロキシ醋酸の含有量Ea
@算出する。なお、酵素試液を別途添加する場合はD−
3−ヒドロキシ酪酸測定用補酵素試液1005μgに検
体300μQを加えた後に吸光度A X/を測定し、そ
の後酵素試液45μQを加え37℃で5分間振どうする
。、蒸留水、6%アルブミン溶液を用いて調製した50
0μM/LのD−3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液
についても同様に行う。の場合、算出式においてはAX
、B×、SXの代りにそれぞれ を用いる。
■ アセト酢酸の算出方法
アセ1−酢酸測定用補酵素試液とWl素試液を67:3
の割合で混合した試液1050μQに検体300μQを
加えて測定液とし、直ちに波長34 Q nmにて吸光
vC×を測定する。次いでこの測定液を37℃で5分間
振とうした後、再度波長340 nmにて吸光度Cvを
測定する。同様にして検体の代わりに蒸留水、6%アル
ブミン溶液を用いて調製した500μM/Lリヂウムア
セト酢酸標準液での37℃、5分間反応前後の各測定液
の吸光度B′X % B’yおよび3’x 、S’Vを
測定し、式により、検体中のアセト酢酸含有IEI、を
斡出す、る。なお、酵素試液を別途添加する場合はアセ
ト酢酸用補酵素試液1005μ艶に検体300μQを加
えた後に吸光度C×′を測定し、その後酵素試液45μ
Uを加え37℃で5分間振とつする。蒸留水、6%アル
ブミン溶液を用いて調製した500μM/Lリチウムア
セト酢m標準液についても同様に行なう。この場合、搾
出式においてはCx。
の割合で混合した試液1050μQに検体300μQを
加えて測定液とし、直ちに波長34 Q nmにて吸光
vC×を測定する。次いでこの測定液を37℃で5分間
振とうした後、再度波長340 nmにて吸光度Cvを
測定する。同様にして検体の代わりに蒸留水、6%アル
ブミン溶液を用いて調製した500μM/Lリヂウムア
セト酢酸標準液での37℃、5分間反応前後の各測定液
の吸光度B′X % B’yおよび3’x 、S’Vを
測定し、式により、検体中のアセト酢酸含有IEI、を
斡出す、る。なお、酵素試液を別途添加する場合はアセ
ト酢酸用補酵素試液1005μ艶に検体300μQを加
えた後に吸光度C×′を測定し、その後酵素試液45μ
Uを加え37℃で5分間振とつする。蒸留水、6%アル
ブミン溶液を用いて調製した500μM/Lリチウムア
セト酢m標準液についても同様に行なう。この場合、搾
出式においてはCx。
B′x、S′xの代わりにそれぞれ
を用いる。
ここで血清中D−3−ヒドロキシ酪酸の測定系中に乳酸
が存在している場合にNADHの波長34Qnmでの吸
光度がどのように変化するかを調べ第1図に示し、同様
に乳酸を添加した場合の変化を第2図に示す。
が存在している場合にNADHの波長34Qnmでの吸
光度がどのように変化するかを調べ第1図に示し、同様
に乳酸を添加した場合の変化を第2図に示す。
図中向I!1は3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素を添加し
、オキサミン酸を添加しない場合に得られる曲線を示し
、曲線2は3−ヒドロキシ醋酸脱水素酵素およびオキサ
ミン酸を添加しない場合に得られる曲線を示し、曲線3
は3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素およびオキサミン酸を
添加した場合に得られる曲線を示している。
、オキサミン酸を添加しない場合に得られる曲線を示し
、曲線2は3−ヒドロキシ醋酸脱水素酵素およびオキサ
ミン酸を添加しない場合に得られる曲線を示し、曲線3
は3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素およびオキサミン酸を
添加した場合に得られる曲線を示している。
この第1図および第2図から、測定系中に乳酸が存在す
ると波長340nw+でのN A D 1」の吸光度に
変化が認められるが、この変化は乳酸脱水素酵素阻害剤
であるオキサミン酸を測定系中に存在させることによっ
てほぼ完全に阻止されていることがわかる。
ると波長340nw+でのN A D 1」の吸光度に
変化が認められるが、この変化は乳酸脱水素酵素阻害剤
であるオキサミン酸を測定系中に存在させることによっ
てほぼ完全に阻止されていることがわかる。
同様に血清中のアセト酢酸の測定系中に、ピルビン酸が
少量存在している場合にNADHの波長340nI%で
の吸光度がどのように変化するかを調べ8f!3図に示
し、そしてピルビン酸を添加した場合の変化を第4図に
示す。
少量存在している場合にNADHの波長340nI%で
の吸光度がどのように変化するかを調べ8f!3図に示
し、そしてピルビン酸を添加した場合の変化を第4図に
示す。
図中面11.2.3は第1図と同じ意味を有している。
この第3図および第4図から、測定系中にピルビン酸が
存在すると、NADHの吸光度に変化が認められるが、
この変化は乳酸脱水素酵素阻害剤であるオキサミン酸の
存在により、はぼ完全に阻止されていることがわかる。
存在すると、NADHの吸光度に変化が認められるが、
この変化は乳酸脱水素酵素阻害剤であるオキサミン酸の
存在により、はぼ完全に阻止されていることがわかる。
また同様に尿中のD−3−ヒドロキシ醋酸の測定系中に
、乳酸を添加した場合に、NADHの波長340rvで
の吸光度がどのように変化するかを調べ第5図に示し、
さらに尿中のアセト酢酸の測定系中に、ピルビン酸を添
加した場合に、NADHの波長340.n1llでの吸
光度がどのように変化(るかを調べ、第6図に示す。図
中、曲線1.2゜3は、第1図と同様の意味を有する。
、乳酸を添加した場合に、NADHの波長340rvで
の吸光度がどのように変化するかを調べ第5図に示し、
さらに尿中のアセト酢酸の測定系中に、ピルビン酸を添
加した場合に、NADHの波長340.n1llでの吸
光度がどのように変化(るかを調べ、第6図に示す。図
中、曲線1.2゜3は、第1図と同様の意味を有する。
第5図は尿中孔6!1112水素酵素活性が血中に比べ
て低く、乳酸の干渉が血中より低いため、オキサミン酸
の阻止効果がはっきりしないが第6図は乳IlI脱水素
酵素阻害剤であるオキサミン酸の存在により、ピルビン
酸によるNADHの吸光度、の変化がほぼ完全に阻止さ
れていることがわかる。
て低く、乳酸の干渉が血中より低いため、オキサミン酸
の阻止効果がはっきりしないが第6図は乳IlI脱水素
酵素阻害剤であるオキサミン酸の存在により、ピルビン
酸によるNADHの吸光度、の変化がほぼ完全に阻止さ
れていることがわかる。
■、遠心方式自動分析装置(米国リチャードソン・ヴイ
ツクス社製セントリフイクム・システム500)による
測定方法。
ツクス社製セントリフイクム・システム500)による
測定方法。
(1)D−3−ヒドロキシ酪酸の算出方法検体100μ
Q、6%アルブミン溶液を用いてgI製した500μM
/L D−3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液100
μUおよび試薬ブランクとしての蒸留水100μQをセ
ントリフイケム・システム500アナライザーのトラン
スファーディスク上の所定のサンプル・キャビティへ正
確に分注する。同様にしてD−3−ヒドロキシ酪酸測定
用補酵素試液と酵素試液を67=3の割合で混合した試
液350μQをシステム500ピペッタ−によりトラン
スファーディスク上の試薬キャビティへ分注する。分注
後トランスファーディスクを表1に示した条件に設定し
たセントリフイケム・システム500アナライザーのロ
ーター・チェンバー内のローターにセットし測定する。
Q、6%アルブミン溶液を用いてgI製した500μM
/L D−3−ヒドロキシ酪酸ナトリウム標準液100
μUおよび試薬ブランクとしての蒸留水100μQをセ
ントリフイケム・システム500アナライザーのトラン
スファーディスク上の所定のサンプル・キャビティへ正
確に分注する。同様にしてD−3−ヒドロキシ酪酸測定
用補酵素試液と酵素試液を67=3の割合で混合した試
液350μQをシステム500ピペッタ−によりトラン
スファーディスク上の試薬キャビティへ分注する。分注
後トランスファーディスクを表1に示した条件に設定し
たセントリフイケム・システム500アナライザーのロ
ーター・チェンバー内のローターにセットし測定する。
検体100μQ、6%アルブミン溶液を用いて調製した
500μM/Lリチウムアセト酢酸標準液100μQお
よび試薬ブランクとして蒸留水100μUをセントリフ
ィケム・システム500アナライザーのトランスファー
ディスク上の所定のサンプル・キャビティへ正確に分注
する。同様にしてアセト酢酸測定用補酵素試液と酵素試
液を67:3の割合で混合した試液350μQをシステ
ム500ピペッタ−によりトランスファーディスク上の
試薬キャビティへ分注する。分注後トランスファーディ
スクを表1にした条件に設定したセントリフィケム・シ
ステム500アナライザーのローター・チェンバー内の
ローターにセットし測定する。
500μM/Lリチウムアセト酢酸標準液100μQお
よび試薬ブランクとして蒸留水100μUをセントリフ
ィケム・システム500アナライザーのトランスファー
ディスク上の所定のサンプル・キャビティへ正確に分注
する。同様にしてアセト酢酸測定用補酵素試液と酵素試
液を67:3の割合で混合した試液350μQをシステ
ム500ピペッタ−によりトランスファーディスク上の
試薬キャビティへ分注する。分注後トランスファーディ
スクを表1にした条件に設定したセントリフィケム・シ
ステム500アナライザーのローター・チェンバー内の
ローターにセットし測定する。
以上により、体液および尿中D−3−ヒドロキシ酪酸、
アセト酢酸を除蛋白、透析等の操作をすることなく、波
長340 n1llにおけるN A D l−1の増加
、減少度をエンドポイント法で測定し直接定量すること
が可能である。直線性はD−3−ヒドロキシ酪酸系で8
00μM/L、アセト酢酸系で1000μM/Lまで認
められ、同時再現性は072〜4%、添加回収率は両反
応系で血清、尿で98〜108%であった。また血清検
体について先に提案したジアゾニウム塩でアゾ化合物を
生成させ比色分析し定量する方法(特願昭57−112
520号)との相関はD−3−ヒドロキシ酪酸系で相関
係数γ−0.99+アセト酢酸系では相関係数γ−0,
97と良好な相関が得られた。そのことから乳酸脱水素
酵素阻害剤の存在は検体の除蛋白、透析等の操作を不要
ならしめることがわかる。
アセト酢酸を除蛋白、透析等の操作をすることなく、波
長340 n1llにおけるN A D l−1の増加
、減少度をエンドポイント法で測定し直接定量すること
が可能である。直線性はD−3−ヒドロキシ酪酸系で8
00μM/L、アセト酢酸系で1000μM/Lまで認
められ、同時再現性は072〜4%、添加回収率は両反
応系で血清、尿で98〜108%であった。また血清検
体について先に提案したジアゾニウム塩でアゾ化合物を
生成させ比色分析し定量する方法(特願昭57−112
520号)との相関はD−3−ヒドロキシ酪酸系で相関
係数γ−0.99+アセト酢酸系では相関係数γ−0,
97と良好な相関が得られた。そのことから乳酸脱水素
酵素阻害剤の存在は検体の除蛋白、透析等の操作を不要
ならしめることがわかる。
なお、検体分注をシステム500ピペッタ−により実施
する際は、サンプル量45μQ、トータル量95μQに
設定して行なう。この場合、感度は約半分となるが直紗
性は約2倍に拡大する。
する際は、サンプル量45μQ、トータル量95μQに
設定して行なう。この場合、感度は約半分となるが直紗
性は約2倍に拡大する。
このようにして健常人20名の血清中に含まれるアセト
酢酸およびD−3−ヒドロキシ酪酸の分別定量を行ない
、その11度を平均値上5−D(ffl準偏差値以下同
じ)μM/Lで第2表に示す。さらに、ケトアシド−シ
ス検体1例を含む糖尿病患者の血清中のアセ1〜酢酸お
よびD−3−ヒドロキシ酪酸の分別定量を行ない、その
11度を平均値子S−DμM/Lで第3表に示す。また
ニトロプルジッド法により陽性を示した尿検体1例を含
む尿検体5例について本発明方法によって分別定量した
結果を第4表に示す。
酢酸およびD−3−ヒドロキシ酪酸の分別定量を行ない
、その11度を平均値上5−D(ffl準偏差値以下同
じ)μM/Lで第2表に示す。さらに、ケトアシド−シ
ス検体1例を含む糖尿病患者の血清中のアセ1〜酢酸お
よびD−3−ヒドロキシ酪酸の分別定量を行ない、その
11度を平均値子S−DμM/Lで第3表に示す。また
ニトロプルジッド法により陽性を示した尿検体1例を含
む尿検体5例について本発明方法によって分別定量した
結果を第4表に示す。
表 1
第 2 表 単位 μM/L
平均領土S−D
第 3 表 単位 μM/L
*:N0.5検体を除く9例についての平均値士S−D
第4表
第4表
第1図および第2図は、血清中のD−3−ヒドロキシf
i!F酸の測定系中に乳酸が存在あるいは添加されてい
る場合、NADHの吸光度がどのように変化するかを示
すグラフ、第3図および第4図は、血清中のアセト酢酸
の測定系中にピルビン酸が存在あるいは添加されている
場合に、NADHの吸光度がどのように変化するかを示
すグラフ、第5図は尿中のD−3−ヒドロキシ酪酸の測
定系中に乳酸を添加した場合にNADHの吸光度がどの
ように変化するかを示すグラフ、第6図は尿中のアセト
酢酸の測定系中にピルビン酸を添加した場合、NADH
の吸光型がどのように変化するかを示すグラフ、第7図
および第8図は血清検体について先に提案したジアゾニ
ウム塩でアゾ化合物を生成させ分析する定量方法(特願
昭57−112520号)と本発明方法との相関を示す
ものであり、!′%7図はD−3−ヒドロキシ醋酸、第
8図はアセI〜酢酸についての相関グラフ、第9図はオ
キ勺ミン酸による血清中の乳酸脱水素酵素l!11害率
を示したグラフ、第10図および第11図はD−3−ヒ
ドロキシ酪酸、アセト酢酸の各l1ll準液を用いての
標準検量線をオキサミン酸添加の有無の場合について示
したグラフである。 特 許 出 願 人 繁 1) 幸 方向 原 納 優 同 株式会社三和化学研究所 第1図 第2図 第6図 第4図 第7図 苓発88方5太 アセ1−西乍酉莞 (兄+l’l) 木登明方57゜ 第9図 f代■ミン爵処 (仇許公I) 第10図 C1C1−3−l[lff′7b1G受(ん1司/り第
11図 リナウム了マド酢自梵CeM/L)
i!F酸の測定系中に乳酸が存在あるいは添加されてい
る場合、NADHの吸光度がどのように変化するかを示
すグラフ、第3図および第4図は、血清中のアセト酢酸
の測定系中にピルビン酸が存在あるいは添加されている
場合に、NADHの吸光度がどのように変化するかを示
すグラフ、第5図は尿中のD−3−ヒドロキシ酪酸の測
定系中に乳酸を添加した場合にNADHの吸光度がどの
ように変化するかを示すグラフ、第6図は尿中のアセト
酢酸の測定系中にピルビン酸を添加した場合、NADH
の吸光型がどのように変化するかを示すグラフ、第7図
および第8図は血清検体について先に提案したジアゾニ
ウム塩でアゾ化合物を生成させ分析する定量方法(特願
昭57−112520号)と本発明方法との相関を示す
ものであり、!′%7図はD−3−ヒドロキシ醋酸、第
8図はアセI〜酢酸についての相関グラフ、第9図はオ
キ勺ミン酸による血清中の乳酸脱水素酵素l!11害率
を示したグラフ、第10図および第11図はD−3−ヒ
ドロキシ酪酸、アセト酢酸の各l1ll準液を用いての
標準検量線をオキサミン酸添加の有無の場合について示
したグラフである。 特 許 出 願 人 繁 1) 幸 方向 原 納 優 同 株式会社三和化学研究所 第1図 第2図 第6図 第4図 第7図 苓発88方5太 アセ1−西乍酉莞 (兄+l’l) 木登明方57゜ 第9図 f代■ミン爵処 (仇許公I) 第10図 C1C1−3−l[lff′7b1G受(ん1司/り第
11図 リナウム了マド酢自梵CeM/L)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1) 体液および尿中のD−3−ヒドロキシ酪酸をニ
コヂンアミドアデニンジヌクレオタイド、3−ヒドロキ
シ酪酸脱水素酵素の存在下でアセト酢酸に変換させ、そ
の際生成するニコヂンアミドアデニンジヌクレオタイド
還元体の量変化の測定により、D−3−ヒドロキシ酪酸
を定量するに際して、測定系中に乳酸脱水酵素阻害剤を
存在さけ、除蛋白あるいは透析操作等を省略することを
特徴とするD−3−ヒドロキシ酪酸の測定方法。 ■ 体液および尿中のアセ1〜酢酸をニコヂンアミドア
デニンジヌクレオタイド還元体、3−ヒドロキシ酪酸脱
水素酵素の存在下でD−3−ヒドロキシ醋酸に変換させ
、その際減少するニコチンアミドアデニンジヌクレオタ
イド渾元体の量変化の測定により、アセト酢酸を定量す
るに際して、測定系中に乳酸脱水素酵素阻害剤を存在さ
せ、除予白あるいは透析操作等を省略することを特徴と
するアセト酢酸の測定方法。 (3)乳酸脱水素酵素阻害剤がオキサミン酸である特許
請求の範囲第1項または第2項に記載の測定方法。 (4) ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイド、3
−ヒドロキシ醋酸脱水素酵素および乳酸脱水酵素阻害剤
を含むことを特徴とする体液および尿中のD−3−ヒド
ロキシ醋酸の測定試薬。 (5) ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイド還元
体、3−ヒドロキシ酪酸脱水素酵素および乳酸脱水素酵
素阻害剤を含むことを特徴とする体液および尿中のアセ
1〜酢酸の測定試薬。 (6)乳酸脱水素酵素阻害剤がオキ丈ミン酸である特許
請求の範囲第4項または第5項に記載の測定試薬。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19992883A JPS6091998A (ja) | 1983-10-27 | 1983-10-27 | 体液及び尿中のd―3―ヒドロキシ酪酸の測定法並びにそのための測定試薬 |
| EP19840306671 EP0140589B1 (en) | 1983-10-27 | 1984-09-28 | Enzymatic determination of d-3-hydroxybutyric acid or acetoacetic acid, and reagents therefor |
| DE8484306671T DE3471496D1 (en) | 1983-10-27 | 1984-09-28 | Enzymatic determination of d-3-hydroxybutyric acid or acetoacetic acid, and reagents therefor |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19992883A JPS6091998A (ja) | 1983-10-27 | 1983-10-27 | 体液及び尿中のd―3―ヒドロキシ酪酸の測定法並びにそのための測定試薬 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8456591A Division JPH0673480B2 (ja) | 1991-03-26 | 1991-03-26 | 体液及び尿中のアセト酢酸の測定法並びにそのための測定試薬 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6091998A true JPS6091998A (ja) | 1985-05-23 |
| JPH0353920B2 JPH0353920B2 (ja) | 1991-08-16 |
Family
ID=16415923
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP19992883A Granted JPS6091998A (ja) | 1983-10-27 | 1983-10-27 | 体液及び尿中のd―3―ヒドロキシ酪酸の測定法並びにそのための測定試薬 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0140589B1 (ja) |
| JP (1) | JPS6091998A (ja) |
| DE (1) | DE3471496D1 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6352897A (ja) * | 1986-04-01 | 1988-03-07 | Konica Corp | 分析素子 |
| JPH01117799A (ja) * | 1987-10-30 | 1989-05-10 | Sekisui Chem Co Ltd | 生体成分測定用試験紙 |
Families Citing this family (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0698029B2 (ja) * | 1985-12-10 | 1994-12-07 | 株式会社三和化学研究所 | 獣乳の品質検査と乳獣の健康診断とを同時に行う方法 |
| US4937047A (en) * | 1986-04-01 | 1990-06-26 | Konishiroku Photo Industry Co., Ltd. | Analytical element |
| FR2596865B1 (fr) * | 1986-04-04 | 1989-09-01 | Elf Aquitaine | Nouveau procede et dispositif pour le dosage de la carnitine |
| US5190863A (en) * | 1990-06-29 | 1993-03-02 | Miles Inc. | Composition for determining the presence or concentration of D-β-hydroxybutyrate |
| US5690944A (en) * | 1994-12-20 | 1997-11-25 | Chesebrough-Pond's Usa Co., Division Of Conopco, Inc. | Cosmetic compositions containing lactate dehydrogenase inhibitors |
| ES2189888T3 (es) * | 1995-11-02 | 2003-07-16 | Dade Behring Marburg Gmbh | Metodos para eliminar interferencias debidas a deshidrogenasas endogenas en ensayos enzimaticos. |
| US5861269A (en) * | 1996-11-01 | 1999-01-19 | Dade Behring Marburg Gmbh | Methods for removing interferences due to endogenous dehydrogenases in enzyme assays |
| EP2253711B1 (en) * | 2009-04-28 | 2014-01-01 | Bühlmann Laboratories AG | Methods, compositions and a kit suitable for determining the concentration of gamma-hydroxy butyric acid (GHB) in a sample |
| US20210003564A1 (en) * | 2017-03-06 | 2021-01-07 | Medtronic Minimed, Inc. | Ketone body sensing device and method |
| CN116018084A (zh) * | 2020-09-18 | 2023-04-25 | 美敦力迷你迈德公司 | 酮体感测装置和方法 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2518862A1 (de) * | 1974-04-29 | 1975-11-13 | Abbott Lab | Enzymatisches analyseverfahren und reagens zur durchfuehrung desselben |
| JPS5535232A (en) * | 1978-09-05 | 1980-03-12 | Yukio Shigeta | High-sensitivity simple fractional colorimetry method for ketone body in blood |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4242446A (en) * | 1978-07-26 | 1980-12-30 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a substance in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
-
1983
- 1983-10-27 JP JP19992883A patent/JPS6091998A/ja active Granted
-
1984
- 1984-09-28 EP EP19840306671 patent/EP0140589B1/en not_active Expired
- 1984-09-28 DE DE8484306671T patent/DE3471496D1/de not_active Expired
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2518862A1 (de) * | 1974-04-29 | 1975-11-13 | Abbott Lab | Enzymatisches analyseverfahren und reagens zur durchfuehrung desselben |
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|---|---|---|---|---|
| JPS6352897A (ja) * | 1986-04-01 | 1988-03-07 | Konica Corp | 分析素子 |
| JPH01117799A (ja) * | 1987-10-30 | 1989-05-10 | Sekisui Chem Co Ltd | 生体成分測定用試験紙 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE3471496D1 (en) | 1988-06-30 |
| EP0140589A1 (en) | 1985-05-08 |
| EP0140589B1 (en) | 1988-05-25 |
| JPH0353920B2 (ja) | 1991-08-16 |
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Legal Events
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|---|---|---|---|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |