JPS6128363A - 甘味料 - Google Patents
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- Seasonings (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の概要と背景コ
本発明は新しい修飾天然甘味料、さらに詳しくはステビ
オサイドから生化学的に誘導されたα−1,4−グルコ
ピラノシルスゲビオサイド類を含有し、α−1′、4−
グルコピラノシルレバウディオサイド類を含有しない甘
味料に関する。
オサイドから生化学的に誘導されたα−1,4−グルコ
ピラノシルスゲビオサイド類を含有し、α−1′、4−
グルコピラノシルレバウディオサイド類を含有しない甘
味料に関する。
天然甘味料を食品に利用しようとする動きは、近年、と
みに活発化している。例えば、既に実用段階にある甘草
甘味料、ステビア甘味料はもちろん、甘茶から得られる
フィロズルチン、アフリカ産べり一類に含まれるミラク
リン、同じくアフリカ産果実に含まれるモネリンやンー
マチン、中国産羅漢果から得られる甘味物質等、 種々の天然甘味料が世界中で盛んに研究されている。中
でも、ステビア甘味料は、甘味質が比較的砂糖に近く、
甘味倍数も砂糖の約300倍と高いし・熱に安定で食品
加工に適している等の理由から、それに対する一層の需
要の増大が嘱望されているものである。
みに活発化している。例えば、既に実用段階にある甘草
甘味料、ステビア甘味料はもちろん、甘茶から得られる
フィロズルチン、アフリカ産べり一類に含まれるミラク
リン、同じくアフリカ産果実に含まれるモネリンやンー
マチン、中国産羅漢果から得られる甘味物質等、 種々の天然甘味料が世界中で盛んに研究されている。中
でも、ステビア甘味料は、甘味質が比較的砂糖に近く、
甘味倍数も砂糖の約300倍と高いし・熱に安定で食品
加工に適している等の理由から、それに対する一層の需
要の増大が嘱望されているものである。
ところで、ステビア(Stevia Rebaudia
na Be −rtoni)は南米パラグアイ原産のキ
ク科に属する多年生草本であって、その葉中にはステビ
オサイド(Stevioside)を主とするジテルペ
ン系甘味配糖体類0が含まれているから、これを抽出、
精製し、ステビア抽出物又はステビア抽出精製物として
甘味料に供する。
na Be −rtoni)は南米パラグアイ原産のキ
ク科に属する多年生草本であって、その葉中にはステビ
オサイド(Stevioside)を主とするジテルペ
ン系甘味配糖体類0が含まれているから、これを抽出、
精製し、ステビア抽出物又はステビア抽出精製物として
甘味料に供する。
Kステビア集中の配糖体甘味物質としては、ステビオサ
イドの他、レバウディオサイド−A、C,D、Eおよび
ズルコサイドーAの各成分が知られている。
イドの他、レバウディオサイド−A、C,D、Eおよび
ズルコサイドーAの各成分が知られている。
一般 に、ステビオサイドはステビア集中の配糖体甘味
成分のうち含量的に最も多く、ステビア抽出物、ステビ
ア抽出精製物中の甘味成分の主体をなしている成分であ
る。氷晶は前述の如く強い甘味を持ち、かつその甘味の
寅も比較的砂糖のそれに近いという利点があるが、反面
強い苦味や渋味をも有するため、これらの不快味が日中
に残るという欠点がある。
成分のうち含量的に最も多く、ステビア抽出物、ステビ
ア抽出精製物中の甘味成分の主体をなしている成分であ
る。氷晶は前述の如く強い甘味を持ち、かつその甘味の
寅も比較的砂糖のそれに近いという利点があるが、反面
強い苦味や渋味をも有するため、これらの不快味が日中
に残るという欠点がある。
す、残味を感じさせない良質の甘味成分であるうレバウ
ディオサイド−CとズルコサイドーAとは、ともにラム
ノースを有する成分であるが、甘味度は、それぞれレバ
ウディオサイド−A及びステビオサイドの約V10程度
に過ぎない。かつ、含量的にも少rz<、甘味料の対象
とはなり難い。
ディオサイド−CとズルコサイドーAとは、ともにラム
ノースを有する成分であるが、甘味度は、それぞれレバ
ウディオサイド−A及びステビオサイドの約V10程度
に過ぎない。かつ、含量的にも少rz<、甘味料の対象
とはなり難い。
レバウディオサイド−D、Eは、ともに甘味度、甘味質
ともステビオサイドより優れているという評価がなされ
ているが、微量成分であるためこれまた甘味料の対象と
なり難い。以下、参考までにこれまでに確認された6g
のステビア甘味配糖体の化学構造を示す。
ともステビオサイドより優れているという評価がなされ
ているが、微量成分であるためこれまた甘味料の対象と
なり難い。以下、参考までにこれまでに確認された6g
のステビア甘味配糖体の化学構造を示す。
ステビア集中に含有されることが認められている上記6
種の配糖体のうち、とくにレバウディオサイド−Aは、
甘味の強さ、質ともにステビオサイドより優れており、
含量的にもステビア抽出物・ステビア抽出精製物の甘味
に重要な役割をもつ成分である。したがって、ステビア
系配糖体甘味成分のうち、甘味料として最も注目されて
いる成分である。
種の配糖体のうち、とくにレバウディオサイド−Aは、
甘味の強さ、質ともにステビオサイドより優れており、
含量的にもステビア抽出物・ステビア抽出精製物の甘味
に重要な役割をもつ成分である。したがって、ステビア
系配糖体甘味成分のうち、甘味料として最も注目されて
いる成分である。
このレバウディオサイド−Aをステビア集から抽出し、
精製・単離して甘味料に供することも可能であるが、 ■ 精製コストが高くなる。
精製・単離して甘味料に供することも可能であるが、 ■ 精製コストが高くなる。
■ 含量的に最も高いステビオサイド画分が副産物とし
て多量に得られ、しかも苦味・渋味が分離前のものより
;基4強くなるた。
て多量に得られ、しかも苦味・渋味が分離前のものより
;基4強くなるた。
め轟せ味料として利用しにくくなる。
等のデメリットが生じるので、これを工業的に実施する
のは困難である。
のは困難である。
そこで、本発明者は、甘味料として優れているレバウデ
ィオサイド−Aをそのままにして勿き、ステビオサイド
の苦味・渋味や不快な残株をなくす手段について鋭意研
究の結果、ステビア甘味料に、澱粉及び/又は澱粉部分
加水分解物を基質としてステビオサイドに対し選択的に
糖転移反応を触媒する酵素、例えばバチルス・マセラン
スIFO3490の産生ずるサイクロデキストリン・グ
リコジルトランスフェラーゼを作用せしめることにより
ステビオサイドのみをα−1,4−グルコピラノシル誘
導体1こ変化させうることを見出した。
ィオサイド−Aをそのままにして勿き、ステビオサイド
の苦味・渋味や不快な残株をなくす手段について鋭意研
究の結果、ステビア甘味料に、澱粉及び/又は澱粉部分
加水分解物を基質としてステビオサイドに対し選択的に
糖転移反応を触媒する酵素、例えばバチルス・マセラン
スIFO3490の産生ずるサイクロデキストリン・グ
リコジルトランスフェラーゼを作用せしめることにより
ステビオサイドのみをα−1,4−グルコピラノシル誘
導体1こ変化させうることを見出した。
即ち、本発明は、ステビア甘味料の最も重要な甘味成分
であるステビオサイド及びレバウディオサイド−Aのう
ち、甘味質の劣るステビオサイドのみを酵素化学反応の
利用によって選択的lコα−1.4−クルコビラノシル
ステビオサイドに変換し、ステビオサイドの欠点である
苦味・渋味をなくし、しかも不快な残株を感じさせない
良質甘味に改善することを本質とする。
であるステビオサイド及びレバウディオサイド−Aのう
ち、甘味質の劣るステビオサイドのみを酵素化学反応の
利用によって選択的lコα−1.4−クルコビラノシル
ステビオサイドに変換し、ステビオサイドの欠点である
苦味・渋味をなくし、しかも不快な残株を感じさせない
良質甘味に改善することを本質とする。
本発明者は、本発明に係る酵素反応によってステビオサ
イドの実質的部分ないし殆んど大部才力α−1,4−モ
ノグルコピラノシルステビオサイド、α−1,4−ジグ
ルコピラノシルステビオサイド、α−1,4−)リグル
コピラノシルステビオサイド等に変化していることを確
認し、レバウディオサイド−Aには本発明による反応が
進行しないことを確認した。
イドの実質的部分ないし殆んど大部才力α−1,4−モ
ノグルコピラノシルステビオサイド、α−1,4−ジグ
ルコピラノシルステビオサイド、α−1,4−)リグル
コピラノシルステビオサイド等に変化していることを確
認し、レバウディオサイド−Aには本発明による反応が
進行しないことを確認した。
因みに、ステビオサイドに、α−グリコジル糖化合物を
基質としてα−グリコジル糖転手蚤酵素を作用させるこ
とにより、これをα−グリコシ′ルステビオサイドに変
換させる甘味料の製法は本願出願前公知である(特開昭
54−5076号公報参照)。しかるに、本公知方法は
その明細書の記載によると、精製ステビオシトとマルト
デキストリンとをバチルス・ステアロサーモフィラスF
ERM−p !2222の墳業物から得られた粗シクロ
デキストリングルカノトランスフェラーゼを用いて糖転
移反応を行わせた生成物中にはα−モノ、ジ及びトリグ
ルコシルステビオサイド以外に原料中のレバウディオサ
イド−Aに由来するα−モノ及びジグルコシルレバウデ
ィオサイドーAを夾雑している旨記載されており(同明
細書433〜434頁「実験4」参照)、この結論に反
する事実は記載されていない。即ち、本Aとを含むステ
ビア配糖体混合物に酵素転4多反応を施すことによりス
テビオサイドとレバウディオサイド−Aの両者をα−グ
リコジル誘導体に変換させる方法であると解される。′
しかるに、本発明の手段は原料中のステビオサイドのみ
をα−1,4−グルコピラノシル誘導体に変換する方法
であって、原料中のレバウディオサイド−人は全く変化
を受けない。従って、先lIテ発明の目的物がα−1,
4−グルコピラノシル化合物であると否とを問わず、本
発明は前者とは趣を異にするのはもちろん、前者から容
易に推考し得ないものである。
基質としてα−グリコジル糖転手蚤酵素を作用させるこ
とにより、これをα−グリコシ′ルステビオサイドに変
換させる甘味料の製法は本願出願前公知である(特開昭
54−5076号公報参照)。しかるに、本公知方法は
その明細書の記載によると、精製ステビオシトとマルト
デキストリンとをバチルス・ステアロサーモフィラスF
ERM−p !2222の墳業物から得られた粗シクロ
デキストリングルカノトランスフェラーゼを用いて糖転
移反応を行わせた生成物中にはα−モノ、ジ及びトリグ
ルコシルステビオサイド以外に原料中のレバウディオサ
イド−Aに由来するα−モノ及びジグルコシルレバウデ
ィオサイドーAを夾雑している旨記載されており(同明
細書433〜434頁「実験4」参照)、この結論に反
する事実は記載されていない。即ち、本Aとを含むステ
ビア配糖体混合物に酵素転4多反応を施すことによりス
テビオサイドとレバウディオサイド−Aの両者をα−グ
リコジル誘導体に変換させる方法であると解される。′
しかるに、本発明の手段は原料中のステビオサイドのみ
をα−1,4−グルコピラノシル誘導体に変換する方法
であって、原料中のレバウディオサイド−人は全く変化
を受けない。従って、先lIテ発明の目的物がα−1,
4−グルコピラノシル化合物であると否とを問わず、本
発明は前者とは趣を異にするのはもちろん、前者から容
易に推考し得ないものである。
本発明における酵素反応は、レバウディオサイド−Aを
殆んど含有しない高度に精製されたステビオサイドだけ
に限るものではなく、レバウディオサイド−Aを含有す
る混合物でありぞも、さらにその他のステビア系配糖体
甘味成分をも含有するステビア抽出物又はステビア抽出
精製物であってもよい。要は原料物質が実質的にステビ
オサイドを含有する限り、原料中のステビオサイドは酵
素の作用によって選択的にα−1,4−グルコピラノシ
ルステビオサイドに変換され、本発明による甘味料が製
造できる。
殆んど含有しない高度に精製されたステビオサイドだけ
に限るものではなく、レバウディオサイド−Aを含有す
る混合物でありぞも、さらにその他のステビア系配糖体
甘味成分をも含有するステビア抽出物又はステビア抽出
精製物であってもよい。要は原料物質が実質的にステビ
オサイドを含有する限り、原料中のステビオサイドは酵
素の作用によって選択的にα−1,4−グルコピラノシ
ルステビオサイドに変換され、本発明による甘味料が製
造できる。
本発明に用いる澱粉もしくは澱粉部分加水分解物は、例
えばバチルス・マセランスI FO−3490の産出す
るサイクロデキストリン・グリコジルトランスフェラー
ゼによってステビオサイドからα−1,4−グルコピラ
ノシルステビオサイドを生成するものであればよく、好
ましくは、D。
えばバチルス・マセランスI FO−3490の産出す
るサイクロデキストリン・グリコジルトランスフェラー
ゼによってステビオサイドからα−1,4−グルコピラ
ノシルステビオサイドを生成するものであればよく、好
ましくは、D。
E、1以下の澱粉からり、E、約30までの澱粉部分加
水分解物が適している。
水分解物が適している。
また、本発明の実施に好適に用いられるバチルス・マセ
ランスIFO3490の産生ずるサイクロデキストリン
・グリコジルトランスフェラーゼは、必ずしも精製され
ている必要はなく、精製途中段階の酵素であっても、さ
らには培簀枦液であっても充分に目的を達することがで
きる。
ランスIFO3490の産生ずるサイクロデキストリン
・グリコジルトランスフェラーゼは、必ずしも精製され
ている必要はなく、精製途中段階の酵素であっても、さ
らには培簀枦液であっても充分に目的を達することがで
きる。
本発明の反応は、少なくともステビオサイドと澱粉もし
くは澱粉部分加水分解物とを含有する水溶液に、例えば
バチルス・マセランスIFO3490の産生するサイク
ロデキストリン・グルコシルトランスフェラーゼを作用
させることにより行われるが、より好ましくは酵素の最
適反応条件又はそれに近い条件が選ばれる。即ち、温度
30〜65℃、pH4,5〜7.0にて反応時間2〜1
00時間とするのがよい。
くは澱粉部分加水分解物とを含有する水溶液に、例えば
バチルス・マセランスIFO3490の産生するサイク
ロデキストリン・グルコシルトランスフェラーゼを作用
させることにより行われるが、より好ましくは酵素の最
適反応条件又はそれに近い条件が選ばれる。即ち、温度
30〜65℃、pH4,5〜7.0にて反応時間2〜1
00時間とするのがよい。
また、反応に用いられるステビオサイドと澱粉もしくは
澱粉部分加水分解物との割合は、特に制限されるもので
はないが、好ましくはステビオサイドの重量に対する澱
粉もしくは澱粉部分加水分解物の重量比率を0.25〜
100の範囲とするのがよい。さらに、反応液中のステ
ビオサイドと澱粉もしくは澱粉部分加水分解物との固形
分濃度についても特に制限はないが、溶解性の点から好
ましくは1〜80%とするのがよい。
澱粉部分加水分解物との割合は、特に制限されるもので
はないが、好ましくはステビオサイドの重量に対する澱
粉もしくは澱粉部分加水分解物の重量比率を0.25〜
100の範囲とするのがよい。さらに、反応液中のステ
ビオサイドと澱粉もしくは澱粉部分加水分解物との固形
分濃度についても特に制限はないが、溶解性の点から好
ましくは1〜80%とするのがよい。
本発明原料であるステビア甘味料の甘味の強さは本1発
明反応の実施前後とも殆んど同じである。しかし甘味の
質は反応の前後により著しく異なり、反応後では反応前
の原料に見られる苦味や渋味が消失し、しかも不快な残
株を呈しない爽やかでまろやかな良質甘味となる。
明反応の実施前後とも殆んど同じである。しかし甘味の
質は反応の前後により著しく異なり、反応後では反応前
の原料に見られる苦味や渋味が消失し、しかも不快な残
株を呈しない爽やかでまろやかな良質甘味となる。
このように、本発明の反応によって生成されたα−1,
4−4ルコピラノシルステビオサイドを含有する反応溶
液は、そのままでも甘味料として使用できるが、必要に
応じてイオン交換樹脂を用いて脱塩し、濃縮して液状製
品とすることもできるし、さらに乾燥・粉末化して粉末
製品とし、または造粒し、顆粒製品とすることもできる
。
4−4ルコピラノシルステビオサイドを含有する反応溶
液は、そのままでも甘味料として使用できるが、必要に
応じてイオン交換樹脂を用いて脱塩し、濃縮して液状製
品とすることもできるし、さらに乾燥・粉末化して粉末
製品とし、または造粒し、顆粒製品とすることもできる
。
また、場合によっては、反応溶液から合成吸着樹脂を用
いて配糖体成分を吸着せしめ、未反応の澱粉もしくは澱
粉部分加水分解物や塩類を除去した後、メタノール、エ
タノール、アセトンもしくはこれら溶剤と水との混合溶
液にて吸着した配糖体成分を溶出せしめ、濃縮・乾燥・
粉末化し、より甘味度の高い甘味料とすることもできる
。
いて配糖体成分を吸着せしめ、未反応の澱粉もしくは澱
粉部分加水分解物や塩類を除去した後、メタノール、エ
タノール、アセトンもしくはこれら溶剤と水との混合溶
液にて吸着した配糖体成分を溶出せしめ、濃縮・乾燥・
粉末化し、より甘味度の高い甘味料とすることもできる
。
このようにして得られる本発明の甘味料は、ステビオサ
イドに特有な呈味の欠点が改善され、爽やかでまろやか
な良質甘味となるため、食品及び医薬品の甘味料として
特に好ましいものである。
イドに特有な呈味の欠点が改善され、爽やかでまろやか
な良質甘味となるため、食品及び医薬品の甘味料として
特に好ましいものである。
本発明に係る甘味料は、原料として用いたステビア甘味
料中のステビオサイドのみがα−1゜4−グルコピラノ
シル誘導体に変換されたものであって、レバウディオサ
イド−Aがそのまま残存している。故に原料の甘味の質
が飛躍的tこ向上した、食品及び医薬品工業上極めて有
用なものである。しかもその製造面において、原料中の
レバウディオサイド−Aが酵素の作用を受けないため、
先行発明に比べて少7い酵素量で充分な改質効果が得ら
れるという利点がある。
料中のステビオサイドのみがα−1゜4−グルコピラノ
シル誘導体に変換されたものであって、レバウディオサ
イド−Aがそのまま残存している。故に原料の甘味の質
が飛躍的tこ向上した、食品及び医薬品工業上極めて有
用なものである。しかもその製造面において、原料中の
レバウディオサイド−Aが酵素の作用を受けないため、
先行発明に比べて少7い酵素量で充分な改質効果が得ら
れるという利点がある。
以下、実験によって本発明を説明するが、本発明の技術
的範囲は、これらによって何ら限定されるものではない
。
的範囲は、これらによって何ら限定されるものではない
。
実験°1 甘味料の製造
1−1 酵素の調製
コーンステイープリカー1%、溶性澱粉1%、硫酸アン
モニウム0,5%、炭酸カルシウム0.5%からなる種
培養用液体培地100rnlを500rnl容の振とう
フラスコに入れ、121℃、30分間殺菌した後、バチ
ルス・マセランスIFO3490ヲ1 白金耳植菌し、
40℃にて15時時間表う培養した。
モニウム0,5%、炭酸カルシウム0.5%からなる種
培養用液体培地100rnlを500rnl容の振とう
フラスコに入れ、121℃、30分間殺菌した後、バチ
ルス・マセランスIFO3490ヲ1 白金耳植菌し、
40℃にて15時時間表う培養した。
次いでこの種培養液30−をとり、上記と同一組成から
なる本培養用液体培地3,000rn1.を5,000
m/容ジャーファーメンタ−に入れ、上記と同一条件
にて殺菌した培地に加えて、40℃、48時間通気撹拌
培養した。培養後、培養液を13,000 X G、5
分間遠心分離し、40単位/rnlのサイクロデキスト
リン・グルコシルトランスフェラーゼの活性を含む透明
な培養p液2,600−を得た。
なる本培養用液体培地3,000rn1.を5,000
m/容ジャーファーメンタ−に入れ、上記と同一条件
にて殺菌した培地に加えて、40℃、48時間通気撹拌
培養した。培養後、培養液を13,000 X G、5
分間遠心分離し、40単位/rnlのサイクロデキスト
リン・グルコシルトランスフェラーゼの活性を含む透明
な培養p液2,600−を得た。
ここに、サイクロデキストリン・グルコシルトランスフ
ェラーゼの活性1単位とは、0.002Mの塩化カルシ
ウムを含む0.1Mの酢酸ナトリウム緩衝液、pH5,
5の196溶性澱粉溶液0.5艷に適当に稀釈した酵素
液0.5−を加え、40℃、10分間正確に反応させ、
反応後、IMのグリシン塩酸緩衝液、pH3,0,1−
を加えて反応を停止せしめ、さらにこの液に0.OIM
のヨウ素−0,25Mのヨウ化カリウム溶液l−を加え
て発色させ、水5mlを加えて稀釈した後、660nm
の吸光度を測定し、660nmの吸光度を1分間に10
%減少させる酵素社をいう。
ェラーゼの活性1単位とは、0.002Mの塩化カルシ
ウムを含む0.1Mの酢酸ナトリウム緩衝液、pH5,
5の196溶性澱粉溶液0.5艷に適当に稀釈した酵素
液0.5−を加え、40℃、10分間正確に反応させ、
反応後、IMのグリシン塩酸緩衝液、pH3,0,1−
を加えて反応を停止せしめ、さらにこの液に0.OIM
のヨウ素−0,25Mのヨウ化カリウム溶液l−を加え
て発色させ、水5mlを加えて稀釈した後、660nm
の吸光度を測定し、660nmの吸光度を1分間に10
%減少させる酵素社をいう。
この培養p液を5℃以下に冷却し、湿熱処理澱粉50y
を加えて、1夜撹拌し、酵素を吸着せしめた。酵素の吸
着した澱粉を3,000 X G 2分間遠心分離して
集め、5℃以下に冷却した蒸留水200−を用いて3回
洗浄し、同様に遠心分離して澱粉を集めた。酵素の吸着
前後の活性測定結果から、ここに得られた酵素吸着澱粉
は、91,000単位の酵素景を吸着していた。(酵素
1)次に、この酵素吸着澱粉を0.05Mのグリシン−
水酸化す) IJウム緩衝液、pH9,0,120−を
用いて50℃にて10分間処理して酵素を溶出せしめ、
490単位/rnlの酵素液130−を得た。(酵素2
)この酵素液に硫酸アンモニウムを加え、65%飽和と
し、冷蔵庫に1夜放置、酵素を塩析させた。塩析物を1
3,0OOXG 、 10分間遠心分離して集め、蒸留
水5−に懸濁し、予め5℃以下に冷却した0、01Mの
グリシン−水酸化ナトリウム緩衝液、pH9,0,3,
000−中で1昼夜透析し、酵素を溶解させ、不溶物を
13,0OOXG 、 10分間遠心分離して除去し、
8,450単位/−の酵素液7rnlを得た。
を加えて、1夜撹拌し、酵素を吸着せしめた。酵素の吸
着した澱粉を3,000 X G 2分間遠心分離して
集め、5℃以下に冷却した蒸留水200−を用いて3回
洗浄し、同様に遠心分離して澱粉を集めた。酵素の吸着
前後の活性測定結果から、ここに得られた酵素吸着澱粉
は、91,000単位の酵素景を吸着していた。(酵素
1)次に、この酵素吸着澱粉を0.05Mのグリシン−
水酸化す) IJウム緩衝液、pH9,0,120−を
用いて50℃にて10分間処理して酵素を溶出せしめ、
490単位/rnlの酵素液130−を得た。(酵素2
)この酵素液に硫酸アンモニウムを加え、65%飽和と
し、冷蔵庫に1夜放置、酵素を塩析させた。塩析物を1
3,0OOXG 、 10分間遠心分離して集め、蒸留
水5−に懸濁し、予め5℃以下に冷却した0、01Mの
グリシン−水酸化ナトリウム緩衝液、pH9,0,3,
000−中で1昼夜透析し、酵素を溶解させ、不溶物を
13,0OOXG 、 10分間遠心分離して除去し、
8,450単位/−の酵素液7rnlを得た。
(酵素3)
さらに、この酵素液を予め冷温室中で、0.01 Mの
グリシン−水酸化ナトリウム緩衝液、pH9,0、にて
平衡にしたセファデックスG−150カラム(φ2.2
X 94c+++ )にチャージし、ゲル濾過した。
グリシン−水酸化ナトリウム緩衝液、pH9,0、にて
平衡にしたセファデックスG−150カラム(φ2.2
X 94c+++ )にチャージし、ゲル濾過した。
溶出液はフラクションコレクタにて1フラクション当り
7.7−ずつ分取したところ、酵素は26〜33フラク
シヨンの間に溶出した。活性の強イフラクションを集め
て、1,200単位/−の酵素液38−を得た。(酵素
4) 1−2 酵素の純度検定と最適反応条件実験1−1で得
られた酵素4の吸収スペクトルを測定したところ、28
0nmに極大吸収ピークを有し、250nmに極小吸収
を有する典型的なタンパク質の吸収スペクトルを示した
。また、0D280 / 0D260 = 1.89で
あり、核酸のコンタミネーションは考えられなかった。
7.7−ずつ分取したところ、酵素は26〜33フラク
シヨンの間に溶出した。活性の強イフラクションを集め
て、1,200単位/−の酵素液38−を得た。(酵素
4) 1−2 酵素の純度検定と最適反応条件実験1−1で得
られた酵素4の吸収スペクトルを測定したところ、28
0nmに極大吸収ピークを有し、250nmに極小吸収
を有する典型的なタンパク質の吸収スペクトルを示した
。また、0D280 / 0D260 = 1.89で
あり、核酸のコンタミネーションは考えられなかった。
また、電気泳動にて酵素4の純度を検定したところ、わ
ずかなコンタミネーションが見られたが、はぼ単一なタ
ンパク質にまで精製されていた。
ずかなコンタミネーションが見られたが、はぼ単一なタ
ンパク質にまで精製されていた。
一方、本酵素の最適反応条件を下記に示すが、最適反応
条件は酵素の精製前後で差が認められなかった。
条件は酵素の精製前後で差が認められなかった。
最適温度 55〜60℃
最適pHpH5,0〜6.0
温度安定性 55〜60℃
pH安定性 pH8,0〜1O10
1−3甘味料の製造
薄層クロマトグラムと高速液体クロマトグラムによって
ステビオサイド以外のステビア系配糖体甘味成分のスポ
ットやピークが検出されなくなるま1度に精製された純
ステビオサイド10yとり、E;8〜10の市販澱粉部
分加水分解物802とを水220−に加熱溶解し、冷却
後0.02Mの塩化カルシウムを含、むIMの酢酸ナト
リウム緩衝液、pH5,5,10−を加えてpH5,5
に調整し、温度55℃に調節してから、実@1l−1で
得た酵素4を800単位(a、Glmt )加えて24
時間撹拌反応させた◎反応後、反応溶液をnm水中に1
0分間保って酵素を加熱失活させ、液状甘味料を得た。
ステビオサイド以外のステビア系配糖体甘味成分のスポ
ットやピークが検出されなくなるま1度に精製された純
ステビオサイド10yとり、E;8〜10の市販澱粉部
分加水分解物802とを水220−に加熱溶解し、冷却
後0.02Mの塩化カルシウムを含、むIMの酢酸ナト
リウム緩衝液、pH5,5,10−を加えてpH5,5
に調整し、温度55℃に調節してから、実@1l−1で
得た酵素4を800単位(a、Glmt )加えて24
時間撹拌反応させた◎反応後、反応溶液をnm水中に1
0分間保って酵素を加熱失活させ、液状甘味料を得た。
(試料1)
対照量は、酵素液の代り番こ水を加えた溶液及び酵素液
を沸騰水中に10分間保って酵素を加熱 ゛失活させ
て加えた溶液を上記同様に処理して得た。(対照量1及
び2) 実験2 高速液体クロマトグラフによる分析実験1−3
で得た試料1と対照量1及び2とを高速液体クロマトグ
ラフを用いて分析した。
を沸騰水中に10分間保って酵素を加熱 ゛失活させ
て加えた溶液を上記同様に処理して得た。(対照量1及
び2) 実験2 高速液体クロマトグラフによる分析実験1−3
で得た試料1と対照量1及び2とを高速液体クロマトグ
ラフを用いて分析した。
高速液体クロマトグラフは、東洋ソーダ族のHLC−8
02URを用い、カラムはLS−450N1(2で溶媒
組成はアセトニトリル:水=8:2、流速はlml 7
m i n !こて分析し、検出方法は糖質の検出を防
ぎ、しかもステビオサイドを感度よく検出するため、2
00nmにおける吸光度を測定する方法によった。
02URを用い、カラムはLS−450N1(2で溶媒
組成はアセトニトリル:水=8:2、流速はlml 7
m i n !こて分析し、検出方法は糖質の検出を防
ぎ、しかもステビオサイドを感度よく検出するため、2
00nmにおける吸光度を測定する方法によった。
試料1、対照品l及び2の溶液をそれぞれ1−別々に分
取し、水4−を加えて稀釈し、この稀釈溶液の10μl
を高速液体クロマトグラフに注入して分析した。その結
果を第1図に示す。
取し、水4−を加えて稀釈し、この稀釈溶液の10μl
を高速液体クロマトグラフに注入して分析した。その結
果を第1図に示す。
第1図に示した高速液体クロマトグラムがら、対照品1
及び2ではステビオサイドのみしか検出されておらず、
しかも含有量の変化も認められなかったことがわかる。
及び2ではステビオサイドのみしか検出されておらず、
しかも含有量の変化も認められなかったことがわかる。
一万、試料1の高速液体クロマトグラムでは、ステビオ
サイドのピーク(ピーク1)の他ニ複数の新規なピーク
(ステビオサイドのピークから順番にピーク2.3.4
.5とする)が検出されており、しかもステビオサイド
の含有量が非常に減少していることが認められる。
サイドのピーク(ピーク1)の他ニ複数の新規なピーク
(ステビオサイドのピークから順番にピーク2.3.4
.5とする)が検出されており、しかもステビオサイド
の含有量が非常に減少していることが認められる。
これらの分析結果から、本発明による反応によって、ス
テビオサイドから新規反応生成物が得られていることは
明白である。
テビオサイドから新規反応生成物が得られていることは
明白である。
実験3 反応生成物の精製
実験1−3で得た試料1の液状甘味料の半量を分取し、
合成吸着樹脂(三菱化成製 商品名HP−so) 5o
o−をつめたカラムにS、Vlで通じ、未反応のステビ
オサイド及び反応生成物を吸着せしめた後、カラムを水
で充分に洗浄して未反応の糖質と塩類を除去した。次に
、メタノール:水=1:1の混合溶媒10100Oを用
いて吸着物を溶出させ、溶出液を濃縮・乾固して約5y
の粉末状甘味料を得た。(試料2) 試料2の32をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(
ワコーゲルC−200カラム、$12.8 X52 C
m s展開溶媒はクロロホルム:メタノール:水=30
:20:4)にて分画し、未反応のステビオサイドの他
、試料3400*、試料4300岬、試料5200qの
3分画を得た。この3分画以外の反応生成物も含まれて
いることは、第1図に示した高50マドグラムから明ら
かであるがこれ以上の分離はできなかった。
合成吸着樹脂(三菱化成製 商品名HP−so) 5o
o−をつめたカラムにS、Vlで通じ、未反応のステビ
オサイド及び反応生成物を吸着せしめた後、カラムを水
で充分に洗浄して未反応の糖質と塩類を除去した。次に
、メタノール:水=1:1の混合溶媒10100Oを用
いて吸着物を溶出させ、溶出液を濃縮・乾固して約5y
の粉末状甘味料を得た。(試料2) 試料2の32をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(
ワコーゲルC−200カラム、$12.8 X52 C
m s展開溶媒はクロロホルム:メタノール:水=30
:20:4)にて分画し、未反応のステビオサイドの他
、試料3400*、試料4300岬、試料5200qの
3分画を得た。この3分画以外の反応生成物も含まれて
いることは、第1図に示した高50マドグラムから明ら
かであるがこれ以上の分離はできなかった。
、試料3.4.5をそれぞれ1.5yty/ml の
根皮になるように水に溶解して各溶液10plを高速液
体クロマトグラフに注入し、分析した。
根皮になるように水に溶解して各溶液10plを高速液
体クロマトグラフに注入し、分析した。
分析条件は、実験2で述べた高速液体クロマトグラフに
よる分析条件にて行った〇 その結果、試料3のピークは、第1図の試料1の高速液
体クロマトグラムのピーク2に一致し、このピーク以外
のピークは検出されなかった。試料4.5についても同
様に分析したところ、それぞれについておのおの1本の
ピークのみが検出され、試料4のピークはM1図に示し
た試料1の高速液体クロマトグラムのピーク3に一致し
、試料5のピークは同様にピーク4に一致した。
よる分析条件にて行った〇 その結果、試料3のピークは、第1図の試料1の高速液
体クロマトグラムのピーク2に一致し、このピーク以外
のピークは検出されなかった。試料4.5についても同
様に分析したところ、それぞれについておのおの1本の
ピークのみが検出され、試料4のピークはM1図に示し
た試料1の高速液体クロマトグラムのピーク3に一致し
、試料5のピークは同様にピーク4に一致した。
実験4 α−1,4−グルコピラノシルステビオサイ
ドの確認。
ドの確認。
4〜1 グルコアミラーゼによる加水分解物の高速液体
クロマトグラフによる分析 ステビオサイドおよび実験3で得た試料3.4゜5をそ
れぞれ下記に示す重量とし、水3,6dを加えて溶解し
た溶液をサンプル溶液として実検に供した。
クロマトグラフによる分析 ステビオサイドおよび実験3で得た試料3.4゜5をそ
れぞれ下記に示す重量とし、水3,6dを加えて溶解し
た溶液をサンプル溶液として実検に供した。
ステビオサイド : 4 ■
試 料 3 : 4.8試 料 4
: 5.6試 料 5 :
6.4このサンプル溶液をおのおの0.91nlず
つとり、それぞれ別々の試験管に入れ、それぞれの試験
管にIMの酢酸す) IJウム緩衝液、pH4,8,5
0μlを加え、さらに市販結晶グルコアミラーゼを10
り鷹の濃度に調整した水溶液を50μl加えて、50’
Ciこて1夜反応させた。反応後、この溶液のそれぞれ
20μlを実験2に示した高速液体クロマトグラフの分
析条件下にて注入し、分析した。
: 5.6試 料 5 :
6.4このサンプル溶液をおのおの0.91nlず
つとり、それぞれ別々の試験管に入れ、それぞれの試験
管にIMの酢酸す) IJウム緩衝液、pH4,8,5
0μlを加え、さらに市販結晶グルコアミラーゼを10
り鷹の濃度に調整した水溶液を50μl加えて、50’
Ciこて1夜反応させた。反応後、この溶液のそれぞれ
20μlを実験2に示した高速液体クロマトグラフの分
析条件下にて注入し、分析した。
その結果、ステビオサイド、試料3.4.5のすべての
反応溶液ともステビオサイドのみしか検出されず、しか
も検出されたステビオサイドの含有量は、はとんど同一
の量であった。
反応溶液ともステビオサイドのみしか検出されず、しか
も検出されたステビオサイドの含有量は、はとんど同一
の量であった。
4−2 グルコアミラーゼ番こよる加水分解物中のD−
グルコースの定量 実験4−1で調整したサンプル溶液を、おのおのの試料
について0.9−ずつ2本の試験管に取り、それぞれの
試験管にIMの酢酸ナトリウム緩衝液、pH4,8,5
0μlを加え、さらに各々の2本の試験管のうち1本口
の試験管には、市販グルコアミラーゼを10 my/m
lの濃度に調整した水溶液を50μl加え(試験液)、
各々の残る1本の試験管には、上記と同濃度の市販グル
コアミラーゼ水溶液を沸騰水中に10分間保って酵素を
失活させた溶♂To /I/加え(対照液)、50℃に
て1夜反応させた。
グルコースの定量 実験4−1で調整したサンプル溶液を、おのおのの試料
について0.9−ずつ2本の試験管に取り、それぞれの
試験管にIMの酢酸ナトリウム緩衝液、pH4,8,5
0μlを加え、さらに各々の2本の試験管のうち1本口
の試験管には、市販グルコアミラーゼを10 my/m
lの濃度に調整した水溶液を50μl加え(試験液)、
各々の残る1本の試験管には、上記と同濃度の市販グル
コアミラーゼ水溶液を沸騰水中に10分間保って酵素を
失活させた溶♂To /I/加え(対照液)、50℃に
て1夜反応させた。
反応後、加水分解によって生成されたD−グルコースを
DNS法にて測定した。すなわち、反応後の反応溶液に
DNS試薬1dを加え、沸騰水中に5分間保った後、冷
水にて冷却し、水5rnlを加えて稀釈した溶液の51
0mmにおける吸光度を測定した。この結果を表1に示
す。
DNS法にて測定した。すなわち、反応後の反応溶液に
DNS試薬1dを加え、沸騰水中に5分間保った後、冷
水にて冷却し、水5rnlを加えて稀釈した溶液の51
0mmにおける吸光度を測定した。この結果を表1に示
す。
表I DNS法による分析結果
ステビオサイド 0.003 0.
009 μM試料3 0.401 1.14ノ
/40.8132.31 1/ 5 1.257 3
.57をもって、あらかじめ市販特級D−グルコースを
用いて作製した検量線(D−グルコース量μM= 2.
84 X△0Dslo & = 0.9999ただし、
0.5 pM −8,0器Mの範囲)から、D−グルコ
ースの分析値をμMで表わした。
009 μM試料3 0.401 1.14ノ
/40.8132.31 1/ 5 1.257 3
.57をもって、あらかじめ市販特級D−グルコースを
用いて作製した検量線(D−グルコース量μM= 2.
84 X△0Dslo & = 0.9999ただし、
0.5 pM −8,0器Mの範囲)から、D−グルコ
ースの分析値をμMで表わした。
ここで、ステビオサイドの分子量を805とし、試料3
はステビオサイド1モルにD−グルコースが1モルα−
1,4−結合したものであると仮定し分子ffi 96
7、同様に試料4はD−グルコース2モルが結合したも
のであるとして分子量1.129、同じく試料5はD−
グルコース3モルが結合したものとして分子fi1.2
91 の各分子量を仮定してDNS法による分析結果
を解析してみた。
はステビオサイド1モルにD−グルコースが1モルα−
1,4−結合したものであると仮定し分子ffi 96
7、同様に試料4はD−グルコース2モルが結合したも
のであるとして分子量1.129、同じく試料5はD−
グルコース3モルが結合したものとして分子fi1.2
91 の各分子量を仮定してDNS法による分析結果
を解析してみた。
その結果を表2に示す。
表2 DNS法による分析結果の解析ステビオサイ
ド 1.Oay 805 1.24/lλ(0
,009m 0.0073試料3 1.2 967
1.24 1.14 0.92η 4 1,4
1,129 1.24 2.31 1.86
u 5 1.6 1,291 1.24
3.57 2.88表2に示した結果から、試料3
の生成物は、ステビオサイド1モルにD−グルコースカ
0.92モル÷1モルα−1,4−結合したものである
こ同様に試料4は2モル、試料5は3モルのD−グルコ
ースがα−1,4−結合したものであることが判る。
ド 1.Oay 805 1.24/lλ(0
,009m 0.0073試料3 1.2 967
1.24 1.14 0.92η 4 1,4
1,129 1.24 2.31 1.86
u 5 1.6 1,291 1.24
3.57 2.88表2に示した結果から、試料3
の生成物は、ステビオサイド1モルにD−グルコースカ
0.92モル÷1モルα−1,4−結合したものである
こ同様に試料4は2モル、試料5は3モルのD−グルコ
ースがα−1,4−結合したものであることが判る。
4−3 9器による分析結果
第2図、第3図、第4図に試料3.4..5のそれぞれ
のKBr錠剤法による赤外吸収スペクトルを示す。赤外
吸収スペクトロメーターは、高滓製IR−24G を
用い、スキャンスピード5分で測定した。
のKBr錠剤法による赤外吸収スペクトルを示す。赤外
吸収スペクトロメーターは、高滓製IR−24G を
用い、スキャンスピード5分で測定した。
また、第5図1どは、試料3.4.5のそれぞれの炭素
13−核磁気共鳴スペクトルを示す。炭素13−核磁気
共鳴スペクトロメーターとしては、日本分光製JNM−
FX−60Qを用い、パルスFT−NMRスペクトルを
測定した。試料は、ピリジンd5中、150嘴旬の濃度
で室温にて測定した。化学シフトは、ピリジンd5の3
組のトリプレットシグナルの中央のシグナルを各々12
3.6 135.7 149.8ppmとしてδppm
で示した。その結果、ステビオサイドのC−20の化学
シフトは、15.4ppm(文献値15.4 ppm)
、C−19では177、lppm (文献値177.
0 )が得られたので化学シフトの求め方は正しいもの
であると考えられた。
13−核磁気共鳴スペクトルを示す。炭素13−核磁気
共鳴スペクトロメーターとしては、日本分光製JNM−
FX−60Qを用い、パルスFT−NMRスペクトルを
測定した。試料は、ピリジンd5中、150嘴旬の濃度
で室温にて測定した。化学シフトは、ピリジンd5の3
組のトリプレットシグナルの中央のシグナルを各々12
3.6 135.7 149.8ppmとしてδppm
で示した。その結果、ステビオサイドのC−20の化学
シフトは、15.4ppm(文献値15.4 ppm)
、C−19では177、lppm (文献値177.
0 )が得られたので化学シフトの求め方は正しいもの
であると考えられた。
この炭素−13核磁気共鳴スペクトルから、試料3.4
.5ともに、97.9ppmにC−13−OHに結合し
たβ−D−グルコースのアノマー炭g、10aippm
にβ−ソホロース部のアノマー炭素、102.9ppm
に本発明による反応にて転移したα−D−グルコースの
アノマー炭素(試料3は1個分、試料4は2個分、試料
5は3個分)の各シグナルが検出されていることが判る
。
.5ともに、97.9ppmにC−13−OHに結合し
たβ−D−グルコースのアノマー炭g、10aippm
にβ−ソホロース部のアノマー炭素、102.9ppm
に本発明による反応にて転移したα−D−グルコースの
アノマー炭素(試料3は1個分、試料4は2個分、試料
5は3個分)の各シグナルが検出されていることが判る
。
この実験4のすべての結果を総合して考えると、試料3
はステビオサイド1モルにD−グルコース1モルがα−
1,4−結合したものであり、同様に試料4は2モル、
試料5は3モルのD−グルコースがα−1,4−結合し
たものであると結論される。
はステビオサイド1モルにD−グルコース1モルがα−
1,4−結合したものであり、同様に試料4は2モル、
試料5は3モルのD−グルコースがα−1,4−結合し
たものであると結論される。
即ち、試料3はα−1,4−モノグルコピラノシルステ
ビオサイド、試料4はα−1,4−ジグルコピラノシル
ステビオサイド、試料5はα−1,4−1−リグルコピ
ラノシルステビオサイドであることが判る。この他にも
、本発明の反応による反応生成物が、第1図に示した高
速液体クロマトグラムから確認されているが、上記結果
カラα−1,4−グルコピラノシルステビオサイドの一
連の化合物であると推定される。
ビオサイド、試料4はα−1,4−ジグルコピラノシル
ステビオサイド、試料5はα−1,4−1−リグルコピ
ラノシルステビオサイドであることが判る。この他にも
、本発明の反応による反応生成物が、第1図に示した高
速液体クロマトグラムから確認されているが、上記結果
カラα−1,4−グルコピラノシルステビオサイドの一
連の化合物であると推定される。
よって、本発明による反応生成物は、ステビオサイドに
等モル以上のD−グルコースがα−1,4−結合した一
連の化合物、即ち、α−1,4−グルコピラノシルステ
ビオサイドであるということができる。
等モル以上のD−グルコースがα−1,4−結合した一
連の化合物、即ち、α−1,4−グルコピラノシルステ
ビオサイドであるということができる。
実験5 官能検査
5−1 甘味度の比較
実験1−3で得た本発明品の液状甘味料(試料1)と対
照量1及び2について甘味度の比較をしてみた。
照量1及び2について甘味度の比較をしてみた。
試験液としてそれぞれの溶液52を分取し、それぞれに
水を加えてi、o o ornlとして検査に供した。
水を加えてi、o o ornlとして検査に供した。
官能検査パネルは、甘味にすぐれた検査員ろ、
対照量1の甘味が強い 1名
// 2 η 0名
両者の甘味度に差が認められない14名となり、対照量
1と2とは甘味度が同等であると見なされた。
1と2とは甘味度が同等であると見なされた。
次に対照量1と試料lとについて比較検査した。その結
果は、 対照量1の甘味が強い 4名 試料13名 両者の甘味度に差が認められない 8名となり、甘味度
は対照量1と試料1とで差が認められず、同等であると
見なされた。
果は、 対照量1の甘味が強い 4名 試料13名 両者の甘味度に差が認められない 8名となり、甘味度
は対照量1と試料1とで差が認められず、同等であると
見なされた。
また、対照量をステビオサイドとし、実験3で得た粉末
状甘味料(試料2)と甘味度の比較検査を行った。試験
液は、対照量、試料2ともに0.015%の水溶液とし
て検査番こ供した。その結果は、 対照量の甘味が強い 12名 試料2 0名 両者の甘味度に差が認められない 3名となり、試料2
はステビオサイドに比し、弱い甘味度であると見なされ
た。これは、本発明の反応によってステビオサイドに等
モル以上のD−グルコースがα−1,4−結合し、反応
生成物の分子量がステビオサイドより大きくなったため
であると考えられた。
状甘味料(試料2)と甘味度の比較検査を行った。試験
液は、対照量、試料2ともに0.015%の水溶液とし
て検査番こ供した。その結果は、 対照量の甘味が強い 12名 試料2 0名 両者の甘味度に差が認められない 3名となり、試料2
はステビオサイドに比し、弱い甘味度であると見なされ
た。これは、本発明の反応によってステビオサイドに等
モル以上のD−グルコースがα−1,4−結合し、反応
生成物の分子量がステビオサイドより大きくなったため
であると考えられた。
そこで、甘味度を捉えるため、試料2の濃度をすべてo
、o i s%とし、対照量ステビオサイドの0.01
%、0.0125%、0.015%の各溶液を調製し、
甘味度の比較をしてみた。その結果を表3に示す。
、o i s%とし、対照量ステビオサイドの0.01
%、0.0125%、0.015%の各溶液を調製し、
甘味度の比較をしてみた。その結果を表3に示す。
表3 甘味度の比較
0.01% 0123
0.0125% 4 3 80.015%
1302 表3に示した結果から、試料2の0.01596溶液の
甘味度は、ステビオサイドの0.0125%溶液の甘味
度に等しいことがわかる。
1302 表3に示した結果から、試料2の0.01596溶液の
甘味度は、ステビオサイドの0.0125%溶液の甘味
度に等しいことがわかる。
5−2 甘味質の比較
まず、試料1および対照量1.2について実験5−1で
調製した甘味度の比較試験溶液をそのまま用いて甘味質
の比較をしてみた。結果は、対照量1の甘味が最も良い
0名 〃 2 0名 試料1の甘味が最も良い 15名 となり、全員一致して試料1が最も良好な甘味質である
との結果を得た。
調製した甘味度の比較試験溶液をそのまま用いて甘味質
の比較をしてみた。結果は、対照量1の甘味が最も良い
0名 〃 2 0名 試料1の甘味が最も良い 15名 となり、全員一致して試料1が最も良好な甘味質である
との結果を得た。
甘味質が良好である理由は、対照品lと2とはともにス
テビオサイドに特有の強い苦味を有し、かつ、渋味と相
いまって不快な残株を呈するのに対し、試料1には、こ
のような苦味・渋味が感じられず、さらに不快な残株を
も呈さない爽やかでまろやかな甘味であるとされた。
テビオサイドに特有の強い苦味を有し、かつ、渋味と相
いまって不快な残株を呈するのに対し、試料1には、こ
のような苦味・渋味が感じられず、さらに不快な残株を
も呈さない爽やかでまろやかな甘味であるとされた。
次に、対照品をステビオサイドとし、試料2との甘味の
質について比較検査してみた。試験溶液の濃度は、甘味
度をそろえるため、ステビオサイドを0.0125%、
試料2を0.015%として検査に供した。その結果は
、 対照品の甘味が最も良い 0名 試料2 η 15名 となった。甘味質が良好である理由は、試料lと同様に
試料2の甘味には苦味・渋味が伴わず、不快な残株を呈
さない磯やかでまろやかな甘味であるとされた。
質について比較検査してみた。試験溶液の濃度は、甘味
度をそろえるため、ステビオサイドを0.0125%、
試料2を0.015%として検査に供した。その結果は
、 対照品の甘味が最も良い 0名 試料2 η 15名 となった。甘味質が良好である理由は、試料lと同様に
試料2の甘味には苦味・渋味が伴わず、不快な残株を呈
さない磯やかでまろやかな甘味であるとされた。
これらの実験結果から、本発明による甘味料は、苦味・
渋味を伴わず、しかも不快な残株を呈しないまろやかな
良質の甘味料であることが判る。これらは原料中のステ
ビオサイドがα−1,4−グルコピラノシルステビオサ
イドに修飾された結果に因るものと結論される。
渋味を伴わず、しかも不快な残株を呈しないまろやかな
良質の甘味料であることが判る。これらは原料中のステ
ビオサイドがα−1,4−グルコピラノシルステビオサ
イドに修飾された結果に因るものと結論される。
次に本発明に関する1〜2の実施例について述べる。
実施例1
高速液体クロマトグラフ分析lとよって第6図の■に示
したクロマトグラムのパターンが得うれる市販ステビア
抽出精製物(商品名:ステビア5T−AB 、池田糖化
工業株式会社製)30ノと、D、E、8〜lOの市販澱
粉部分加水分解物50Fとを水110−に加熱溶解し、
冷却後、0.02Mの塩化カルシウムを含むIMの酢酸
ナトリウム緩衝液、pH5,5,5−を加え、さらに酢
酸的0,1−を加えてpH5,5に調整し、温度を55
℃に調節してから実験1−1で述べた方法にて調製した
酵素lを加え(酵素の活性500単位に相当する澱粉量
を加えた)、40時間撹拌反応させた。
したクロマトグラムのパターンが得うれる市販ステビア
抽出精製物(商品名:ステビア5T−AB 、池田糖化
工業株式会社製)30ノと、D、E、8〜lOの市販澱
粉部分加水分解物50Fとを水110−に加熱溶解し、
冷却後、0.02Mの塩化カルシウムを含むIMの酢酸
ナトリウム緩衝液、pH5,5,5−を加え、さらに酢
酸的0,1−を加えてpH5,5に調整し、温度を55
℃に調節してから実験1−1で述べた方法にて調製した
酵素lを加え(酵素の活性500単位に相当する澱粉量
を加えた)、40時間撹拌反応させた。
反応後の溶液1mlを取り、沸騰水中に10分間保って
酵素を加熱失活させた後、水9−を加えて稀釈した。こ
の稀釈溶液を0.45μmのフィルターで濾過し、その
10μlを高速液体クロマトグラフに注入し、実験2−
1で述べた条件下に分析した。この結果を第6図の■の
クロマトグラムで示す。
酵素を加熱失活させた後、水9−を加えて稀釈した。こ
の稀釈溶液を0.45μmのフィルターで濾過し、その
10μlを高速液体クロマトグラフに注入し、実験2−
1で述べた条件下に分析した。この結果を第6図の■の
クロマトグラムで示す。
第6図の■と■とを比較すると、本発明による反応後の
溶液では、ステビオサイドの含有量が非常に減少し、し
かも反応前のステビア抽出精製物には見られないα−1
,4−グルコピラノシルステビオサイドの一連のピーク
が検出されていることがわかる。
溶液では、ステビオサイドの含有量が非常に減少し、し
かも反応前のステビア抽出精製物には見られないα−1
,4−グルコピラノシルステビオサイドの一連のピーク
が検出されていることがわかる。
また、レバウディオサイド−A、Cについては、本発明
による反応前後で含有量の変化が認められないことも同
時にわかる。
による反応前後で含有量の変化が認められないことも同
時にわかる。
一方、反応の前後の溶液について官能検査してみたとこ
ろ、甘味度は反応前後で差が認められなかったが、甘味
質は、反応前に強い苦味及び渋味があり、不快な残株を
呈したのに対し、反応後ではこのような苦味・渋味及び
不快な残株が感じられず、爽やかでまろやかな甘味とな
っていた。
ろ、甘味度は反応前後で差が認められなかったが、甘味
質は、反応前に強い苦味及び渋味があり、不快な残株を
呈したのに対し、反応後ではこのような苦味・渋味及び
不快な残株が感じられず、爽やかでまろやかな甘味とな
っていた。
このことから、本発明による方法では、ステビオサイド
を含有するステビア抽出物もしくはステビア抽出物を用
いて、含有量の高いステビオサイドに選択的に本発明に
よる反応を起こさせることによって、苦味・渋味及び不
快な残株をなくシ、爽やかでまろやかな甘味に変換しう
ることがわかる。
を含有するステビア抽出物もしくはステビア抽出物を用
いて、含有量の高いステビオサイドに選択的に本発明に
よる反応を起こさせることによって、苦味・渋味及び不
快な残株をなくシ、爽やかでまろやかな甘味に変換しう
ることがわかる。
このようなステビア抽出物もしくはステビア抽出精製物
は、高度に精製されたレバウディオサイド−Aよりも安
価で製造できるため、本発明による反応を起こさせても
コスト的に安価で供給できる。
は、高度に精製されたレバウディオサイド−Aよりも安
価で製造できるため、本発明による反応を起こさせても
コスト的に安価で供給できる。
また、甘味質の向上も著しいので、食品や医薬品の甘味
料として特に好ましいものであり、有用に利用されるも
のであると信する。
料として特に好ましいものであり、有用に利用されるも
のであると信する。
実施例2
実施例1で用いたステビア抽出精製物300yとり、E
、8〜10の市販澱粉部分加水分解物500yとを水1
,100rnlに加熱溶解し、冷却後、酢酸を加えてp
H5,5に調整し、温度55℃に調節してから実験1−
1で述べた方法にて調製した酵素2を加え(酵素の活性
s、o o o単位に相当する液量を加えた)、40時
間撹拌反応させた。反応後、反応溶液を8#IIm水中
に10分間保って酵素を加熱失活させた後、スプレード
ライヤーを用いて噴霧乾燥させ、750yの粉末状甘味
料を得た。
、8〜10の市販澱粉部分加水分解物500yとを水1
,100rnlに加熱溶解し、冷却後、酢酸を加えてp
H5,5に調整し、温度55℃に調節してから実験1−
1で述べた方法にて調製した酵素2を加え(酵素の活性
s、o o o単位に相当する液量を加えた)、40時
間撹拌反応させた。反応後、反応溶液を8#IIm水中
に10分間保って酵素を加熱失活させた後、スプレード
ライヤーを用いて噴霧乾燥させ、750yの粉末状甘味
料を得た。
本甘味料は、反応前のステビア抽出精製物の甘味質に見
られた苦味・渋味や不快な残株を呈しない爽やかでまろ
やかな良質甘味であった。
られた苦味・渋味や不快な残株を呈しない爽やかでまろ
やかな良質甘味であった。
薄層クロマトグラムと高速液体クロマトグラムによって
、レバウディオサイド−A以外のステビア系配糖体甘味
成分のスポットやピークが見られなくなるまでに高度に
精製された純レバウディオサイド−Alpと、D、E、
8〜10の市販澱粉部分加水分解物8yとを水22−に
加熱溶解し、冷却後、0.02Mの塩化カルシウムを含
むIMの酢酸ナトリウム緩衝液、pH5,5,1−を加
えてpH5,5に調整し、温度55℃に調節してから実
験1−1で得た酵素5の80単位(0,15m/)を加
えて24時間撹拌反応させた。対照は、酵素の添加直後
の反応溶液から5−を分取し、沸騰水中に10分間保っ
て酵素を加熱失活させた溶液とした。
、レバウディオサイド−A以外のステビア系配糖体甘味
成分のスポットやピークが見られなくなるまでに高度に
精製された純レバウディオサイド−Alpと、D、E、
8〜10の市販澱粉部分加水分解物8yとを水22−に
加熱溶解し、冷却後、0.02Mの塩化カルシウムを含
むIMの酢酸ナトリウム緩衝液、pH5,5,1−を加
えてpH5,5に調整し、温度55℃に調節してから実
験1−1で得た酵素5の80単位(0,15m/)を加
えて24時間撹拌反応させた。対照は、酵素の添加直後
の反応溶液から5−を分取し、沸騰水中に10分間保っ
て酵素を加熱失活させた溶液とした。
反応後、反応溶液を沸騰水中に10分間保って酵素を加
熱失活させた溶液の1rnlを分取し、水4dを加えて
稀釈した。この稀釈溶液の10μlを高速液体クロマト
グラフに注入し、実験2−1に述べた条件下に分析して
みた。対照についても同様に稀釈して分析に供した。そ
の結果、反応溶液、対照溶液ともにレバウディオサイド
−A以外のピークは検出されず、しかも両者の溶液につ
いて含有量の差も認められなかった。
熱失活させた溶液の1rnlを分取し、水4dを加えて
稀釈した。この稀釈溶液の10μlを高速液体クロマト
グラフに注入し、実験2−1に述べた条件下に分析して
みた。対照についても同様に稀釈して分析に供した。そ
の結果、反応溶液、対照溶液ともにレバウディオサイド
−A以外のピークは検出されず、しかも両者の溶液につ
いて含有量の差も認められなかった。
また、反応溶液と対照溶液との甘味度及び甘味の質を比
較官能検査してみたが、両者に差は認められなかった。
較官能検査してみたが、両者に差は認められなかった。
第1図は純ステビオサイドに澱粉部分加水分解物の存在
でBacillus macerans IFO349
0の酵素を作用させたもの(試料1)と同酵素を作用さ
せない対照品(1,2)の高速液体クロマトグラム、第
2図〜第4図は、それぞれ第1図ピーク2〜4の試料(
試料3〜5)の赤外部吸収スペクトル、第5図は1.そ
れぞれ第1図、ピーク2〜4の試料(試料3〜5)の核
磁気共鳴スペクトル、第6図は、レバウディオサイド−
Aを含む市販ステビア抽出精製物に第1図と同様の酵素
反応を行った場合における反応前のものΦと反応後のも
の■の高速液体クロマトグラムである。 特許出願人 池田糖化工業株式会社 性、N;−、:、’戸 図面のaI書(内容に変更なし) 8 冨 F6E Rg S 雰 8 翼 箕0昭
和60年3月22日
でBacillus macerans IFO349
0の酵素を作用させたもの(試料1)と同酵素を作用さ
せない対照品(1,2)の高速液体クロマトグラム、第
2図〜第4図は、それぞれ第1図ピーク2〜4の試料(
試料3〜5)の赤外部吸収スペクトル、第5図は1.そ
れぞれ第1図、ピーク2〜4の試料(試料3〜5)の核
磁気共鳴スペクトル、第6図は、レバウディオサイド−
Aを含む市販ステビア抽出精製物に第1図と同様の酵素
反応を行った場合における反応前のものΦと反応後のも
の■の高速液体クロマトグラムである。 特許出願人 池田糖化工業株式会社 性、N;−、:、’戸 図面のaI書(内容に変更なし) 8 冨 F6E Rg S 雰 8 翼 箕0昭
和60年3月22日
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 〔1〕α−1,4−グルコピラノシルステビオサイド類
を含有し、α−1,4−グルコピラノシルレバウディオ
サイド類を含有しないことを特徴とする甘味料。 〔2〕ステビオサイド及びレバウディオサイド類を含有
する特許請求の範囲第1項記載の甘味料。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4726185A JPS6128363A (ja) | 1985-03-08 | 1985-03-08 | 甘味料 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4726185A JPS6128363A (ja) | 1985-03-08 | 1985-03-08 | 甘味料 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57100271A Division JPS5971662A (ja) | 1982-06-10 | 1982-06-10 | 甘味料の製法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6128363A true JPS6128363A (ja) | 1986-02-08 |
Family
ID=12770342
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4726185A Pending JPS6128363A (ja) | 1985-03-08 | 1985-03-08 | 甘味料 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6128363A (ja) |
-
1985
- 1985-03-08 JP JP4726185A patent/JPS6128363A/ja active Pending
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