PL192072B1 - Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII i pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII - Google Patents

Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII i pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII

Info

Publication number
PL192072B1
PL192072B1 PL325862A PL32586298A PL192072B1 PL 192072 B1 PL192072 B1 PL 192072B1 PL 325862 A PL325862 A PL 325862A PL 32586298 A PL32586298 A PL 32586298A PL 192072 B1 PL192072 B1 PL 192072B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
medium
factor viii
amount
ions
protein
Prior art date
Application number
PL325862A
Other languages
English (en)
Other versions
PL325862A1 (en
Inventor
Sham-Yuen Chan
Kathleen Harris
Original Assignee
Bayer Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=25293446&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL192072(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bayer Corp filed Critical Bayer Corp
Publication of PL325862A1 publication Critical patent/PL325862A1/xx
Publication of PL192072B1 publication Critical patent/PL192072B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/755Factors VIII, e.g. factor VIII C (AHF), factor VIII Ag (VWF)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20Transition metals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/35Polyols, e.g. glycerin, inositol
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/90Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
    • C12N2500/95Protein-free medium and culture conditions

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII z komórek ssaczych niosacych jego gen, znamienny tym, ze obejmuje hodowanie tych komórek ssaczego gospodarza w pozywce wolnej od bialek pochodzenia osoczowego z dodatkiem polioli i jonów miedzi. PL PL PL

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII i pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII.
Hemofilia A jest genetycznym, recesywnym zaburzeniem związanym z chromosomem X, spowodowanym nieprawidłową budową cząsteczki czynnika VIII albo jego brakiem, co powoduje skłonność do krwawienia. W celu zwalczenia krwawień hemofilitycy są leczeni czynnikiem VIII. Po raz pierwszy czynnik VIII wyizolowano z osocza ludzkiego. Jednakże, leczenie czynnikiem VIII pochodzącym z osocza związane jest z przenoszeniem niektórych wirusów ludzkich, takich jak wirusy zapalenia wątroby i ludzki wirus niedoboru odporności.
Wraz z rozwinięciem technologii rekombinacji DNA, wyjaśniono budowę czynnika VIII i jego genu. Produkt transkrypcji genu, pochodzący z 26 egzonów, jest cząsteczką mRNA o długości około 9000 zasad, kodującą duże białko o 2351 aminokwasach. Badania strukturalne czynnika VIII wskazują, że jest to glikoproteina zawierająca znaczną liczbę reszt węglowodanów.
cDNA kodujący czynnik VIII sklonowano i poddano stabilnej ekspresji w komórkach nerki noworodkowej chomika (BHK-21) i komórkach jajnika chomika chińskiego (CHO). Opracowano komercyjne procesy produkcji rekombinowanego czynnika VIII do leczenia hemofilii A. Rekombinowany czynnik VIII obecnie wytwarza się w komórkach ssaczych zmodyfikowanych genetycznie, unikając w ten sposób wykorzystywania osocza i minimalizując jakiekolwiek potencjalne ryzyko przeniesienia wirusa.
Amplifikacja genu stała się metodą z wyboru w celu uzyskania wysoce produktywnych linii komórkowych wytwarzających białka o zastosowaniu terapeutycznym. Strategia amplifikacji obejmuje połączenie jednostki transkrypcyjnej kodującej pożądane białko ze znacznikiem ulegającym amplifikacji, takim jak reduktaza dihydrofolianowa. W celu przeniesienia DNA wektora do komórek biorcy stosuje się techniki transfekcji. Populacje komórek selekcjonuje się pod kątem wzrostu oporności na wybrany lek, taki jak metotreksat. Ustalenie stabilnego klonu komórek uzyskuje się metodą granicznych rozcieńczeń. Takie klony komórek adaptuje się do bezsurowiczych pożywek produkcyjnych i bada się wytwarzanie pożądanego białka.
W przypadku białek labilnych, takich jak czynnik VIII, podczas procesów produkcji i oczyszczania dodaje się albuminę ludzką jako stabilizator. Jakkolwiek albuminę poddaje się etapowi inaktywacji wirusów przez pasteryzację, byłoby ideałem wytwarzanie rekombinowanego czynnika VIII całkowicie bez obecności ludzkich albo zwierzęcych białek krwi. Obecnie, stwierdzono, że jest to możliwe przez zastosowanie nowej pożywki hodowlanej dla komórek. Szczegóły opisano poniżej.
Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII (rFYIII) w komórkach ssaczych niosących jego gen według wynalazku obejmuje hodowanie tych komórek gospodarza ssaczego w pożywce wolnej od białek pochodzenia osoczowego z dodatkiem polioli i jonów miedzi. Korzystnie poliolem jest polimer Pluronic F-68, występujący w pożywce w stężeniu od około 0,025 do około 0,2% wagowych. Korzystnie pożywka zawiera siarczan miedzi w ilości od około 50 nm do około 800 nM.
Korzystnie pożywka zawiera też sole metali śladowych takich jak mangan, molibden, krzem, lit i chrom. Korzystnie pożywka dodatkowo zawiera jony manganu w ilości od około 1,5 nM do około 4,5 nM, jony molibdenu w ilości od około 1,5 nM do około 4,5 nM, jony krzemu w ilości od około 75nM do około 300nM, jony chromu w ilości od około 1,0 nM do około 4,0 nM, a jony litu w ilości od około 120 nm do około 480 nM.
Ostatnie osiągnięcia techniki ekspresji białka rekombinowanego umożliwiły wytwarzanie znacznych ilości białka w komórkach ssaczych. Korzystnie komórki gospodarza przydatne w sposobie według wynalazku do wytwarzania czynnika VIII obejmują linie komórkowe takie jak komórki nerki noworodkowej chomika (BHK), komórki jajnika chomika chińskiego (CHO) i ludzkie komórki nerki płodowej (HEK). Szczególnie korzystne są to komórki nerki noworodkowej chomika, a zwłaszcza transfekowane genem zdolnym do kierowania ekspresją czynnika VIII, takie jak opisane w Wood i in. (1984) (w tym takie pochodne jak odmiany klonalne i ich potomstwo). Takie linie komórkowe zdeponowano w American Type Culture Collection pod numerem ATCC CRL-8544.
Pożądana linia komórkowa gospodarza niosąca gen czynnika VIII jest zwykle zaadaptowana do wzrostu jako hodowle w zawiesinie w pożywkach pozbawionych białka, które uzupełniono lipoproteiną.
W zakres wynalazku wchodzi pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII obejmująca (a) pożywkę podstawową (b) poliol; i (c) jony miedzi, przy czym pożywka hodowlana jest wolna od białka pochodzenia osoczowego.
PL 192 072 B1
Korzystnie pożywka hodowlana ponadto zawiera co najmniej jeden metal śladowy wybrany z grupy składającej się z manganu, molibdenu, krzemu, chromu i litu. Korzystnie jony miedzi są obecne w ilości od około 50 do około 800 nM. Korzystnie pożywka ponadto zawiera jony molibdenu w ilości od około 1,5 do około 4,5 nM, lub jony litu w ilości 120 do 480 nM. Pożywka hodowlana według wynalazku korzystnie ponadto zawiera insulinę wytwarzaną metodą rekombinacji.
Pożywka podstawowa wybrana do hodowli komórek gospodarza nie jest kluczowa dla wynalazku i może być dowolną pożywką albo kombinacją znanych pożywek, które są przydatne do hodowania komórek ssaczych. W handlu dostępne są pożywki takie jak pożywka Eagle'a w modyfikacji Dulbecco, pożywka F-12 Ham'a, minimalna niezbędna pożywka Eagle'a i RPMI-1640 itp. W stanie techniki konwencjonalne jest dodawanie czynników wzrostowych, takich jak rekombinowana insulina.
Z powodu labilności czynnika VIII, produktywność komórek rekombinowanych komórek gospodarza w warunkach wolnych od białka jest znacznie zmniejszona. Albuminę surowicy ludzkiej stosuje się często jako dodatek do hodowli bezsurowiczych przy wytwarzaniu białek rekombinowanych. Albumina surowicy ludzkiej służy wielu celom, w tym:
(1) jako nośnik kwasów tłuszczowych, cholesterolu i witamin lipofilowych, hormonów steroidowych i czynników wzrostowych;
(2) jako środek ochronny przed uszkodzeniami spowodowanymi siłami tnącymi;
(3) jako bufor zmian pH; i (4) jako regulator ciśnienia osmotycznego.
Inną krytyczną rolą albuminy jest prawdopodobnie ochrona białek labilnych, takich jak czynnik VIII przed proteolizą, gdy służy jako substrat proteaz.
Zanieczyszczenia obecne w preparatach albuminy mogą również przyczyniać się do stabilizującego efektu albumin. Stwierdzono, że czynniki takie jak lipoproteina (Chan, 1996) mogą zastąpić albuminę surowicy ludzkiej podczas wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII w warunkach bezsurowiczych.
Próby opracowania pożywki produkcyjnej wolnej od albuminy pochodzącej z ludzkiego osocza doprowadziły do niniejszego wynalazku, pożywki podstawowej wolnej od białek, do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII. Korzystna pożywka obejmuje minimalną niezbędną pożywkę w modyfikacji Dulbecco i pożywkę F-12 Ham'a (w stosunku wagowym 50:50) z dodatkiem rekombinowanej insuliny (Nucellin, Eli Lilly) w stężeniu 10 mg/ml i FeSO,^EDTA (50 mM). Z wyłączeniem wytwarzania czynnika VIII, rekombinowane komórki BHK rosną dobrze w tej podstawowej pożywce wolnej od białka.
Nieoczekiwanie, okazało się, że dodatek poliolu, takiego jak PluronicF-68, nie wywiera wpływu na wzrost, ale zwiększa swoiście wytwarzanie czynnika VIII przez komórki BHK. Nieoczekiwanie, dodatek siarczanu miedzi dalej zwiększa wytwarzanie czynnikaVIII. Również dodatek szeregu metali śladowych takich jak mangan, molibden, krzem, lit i chrom prowadzi do dalszego wzrostu wytwarzania czynnika VIII. Opracowano ciągły proces wytwarzania czynnika VIII w warunkach wolnych od białka pochodzącego z ludzkiego osocza. Dalsze informacje dotyczące zastosowania polioli typu Pluronic można znaleźć w pracy Papoutsakis (1991) i Schmolka (1977).
Pluronic F-68, poliglikol (BASF, Wyandot) jest powszechnie stosowany w celu zapobiegania pienieniu występującemu w hodowlach podczas mieszania oraz w celu ochrony komórek przed siłami ścinającymi oraz uszkodzeniami przez pęcherzyki gazu w hodowlach barbotowanych. Pluronic F-68 jest niejonowym kopolimerem blokowym o średnim ciężarze cząsteczkowym 8400, składającym się zcentralnego bloku poli(oksypropylenu) (20% wagowo) i bloków poli(oksyetylenu) na obu końcach. Intensywne badania roli Pluronic F-68 wskazują, że działa on jako surfaktant i zapobiega uszkodzeniom komórek przez odciąganie komórek od pęcherzyków tworzonych w bioreaktorach podczas mieszania albo barbotowania. Jednakże, niektórzy badacze zauważyli dobroczynny wpływ Pluronic F-68 na wzrost w hodowlach, w których siły ścinające są minimalne (Mizrahi, 1975; Murhammer i Goochee, 1990). Równoczesne oczyszczanie lipidów z Pluronic F-68 podczas oczyszczania produktu dostarcza niepotwierdzonych danych, że polimery Pluronic mogą zastąpić albuminę, nie tylko jako surfaktant, ale mogą również działać jako nośnik lipidów. Pluronic F-68 może również zapobiec zabijaniu komórki wwyniku uszkodzenia błony, dopóki nie nastąpi naprawa, prawdopodobnie przez wbudowywanie się do błony. Rola Pluronic F-68 jako bufora jonów metali jest całkowicie nieznana.
Jakkolwiek istnieją doniesienia, że Pluronic F-68 w pożywkach może zwiększyć objętościową produktywność, mechanizm działania wydaje się polegać na utrzymywaniu żywotności komórek (Schneider, 1989; Qi, 1996). Zgodnie z naszą wiedzą właśnie po raz pierwszy zaobserwowano swoisty wpływ Pluronic F-68 na zwiększenie wytwarzania konkretnego produktu białkowego. Ponieważ żywot4
PL 192 072 B1 ność i tempo wzrostu są porównywalne w niniejszym układzie z i bez Pluronicu F-68, utrzymywanie żywotności komórek nie może być mechanizmem działania Pluronicu F-68 w tym układzie. Jednakże, wpływ dodatku Pluronicu F-68 jest natychmiastowy i gwałtowny, niezależnie od mechanizmu działania.
Oczekuje się, że szereg innych polioli powinno mieć podobny wpływ. Poliole takie obejmują niejonowe kopolimery blokowe poli(oksyetylenu) i poi(oksypropylenu) o ciężarze cząsteczkowym w zakresie od około 1000 do około 16000.
Oprócz konwencjonalnych technik hodowli w zawiesinie, takich jak wytrząsane butelki, butelki z mieszalnikami i butelki typu „roller”, sposób według wynalazku można również zastosować w bioreaktorach z perfuzją i bioreaktorach okresowych. Po hodowli komórek, czynnik VIII można odzyskać z zużytej pożywki standardową metodyką, taką jak ultrafiltracja albo wirowanie. Jeżeli jest to konieczne, odzyskany czynnik VIII można oczyszczać, przykładowo, przez chromatografię jonowymienną albo żelową, chromatografię powinowactwa immunologicznego albo chelatacji metalu itp.
W znaczeniu tu zastosowanym, „pożywka wolna od białka ludzkiego albo zwierzęcego jest pożywką hodowlaną, która nie zawiera żadnego białka pochodzącego ze źródeł ludzkich albo zwierzęcych. Białka, które izoluje się ze źródeł ludzkich albo zwierzęcych, wiążą się z ryzykiem zanieczyszczeń wirusowych. Tak więc, celem pożywki wolnej od białka ludzkiego albo zwierzęcego jest eliminacja albo znaczne ograniczenie ryzyka przeniesienia wirusa.
P r z y k ł a d 1: Komórki nerki noworodkowej chomika (BHK-21) transfekowane genem zdolnym do kierowania ekspresją czynnika VIII otrzymano z Genentech, Inc., South San Francisco, Kalifornia, USA. Linię komórkową wytworzono, jak to opisano w Wood i in., (1984) i zdeponowano w American Type Culture Collection pod numerem ATCC CRL-8544. Odmiany klonalne tej linii komórkowej również otrzymano od Genentech, Inc., i zastosowano we wszystkich przykładach.
Komórki BHK-21 zawierające gen kodujący czynnik VIII hodowano jako zawiesinę w wytrząsanych butelkach stosując bezsurowiczą pożywkę podstawową zawierającą: pożywkę F-12 Ham'a i minimalną niezbędną pożywkę Dulbecco (w stosunku wagowym 50:50), Nucellin (rekombinowana insulina, 5-10 (mg/ml), FeSO4^EDTA (50 mM) i MgCl2 (15 mM). Komórki utrzymywano i pasażowano w odstępach 48 godzinnych. Komórki wirowano przy 800 x g przez 5 minut, liczono i ponownie wysiewano z gęstością 1 x 106 komórek/ml. Każda z butelek zawierała 50-100 ml świeżej pożywki. Butelki umieszczano na wytrząsarce, inkubowano w 37°C i utrzymywano jako hodowlę w zawiesinie przez delikatne mieszanie z prędkością 90-110 obr./min. Wpływ poliolu takiego jak Pluronic F-68 (0,1%), określony poniżej jako F-68, oraz siarczanu miedzi (50 nM) na wytwarzanie czynnika VIII badano w butelkach do wytrząsania. Czynnik VIII oceniano ilościowo testem chromogennym. Test jest dostępny w handlu jako Coatest VIII:C/4 z firmy Baxter HealthCare Products. Komórki utrzymywano w ten sposób przez 24 dni. Aktywność czynnika VIII w każdej z pożywek, oznaczoną za pomocą zestawu Coatest VIII:C/4 przedstawiono w tabeli 1.
T a b e l a 1
Warunki Miano (U/ml) Produktywność właściwa (mU/komórkę/-dzień) % wzrostu w stosunku do pożywki podstawowej
Pożywka podstawowa 0,15 ± 0,07* 0,026 ± 0,013 0
Podstawowa + F-68 (0,1%)** 0,24 ± 0,04 0,052 ± 0,013 200
Podstawowa + F-68 (0,1%)** + Cu (50 nM)** 0,42 ± 0,09 0,091 ± 0,013 350
* Średnia z 36 próbek ± odchylenie standardowe. Komórki badano pod względem wytwarzania czynnika VIII w ciągu 24 dni, jak to opisano wyżej.
** Miareczkowanie wykazało, że 0,1% stanowi optymalną dawkę Pluronic F-68. Zwiększenie stężenia do 0,3% nie wpływało na wytwarzanie czynnika VIII. Badania zależności od dawki wykazały, że 50-800 nM siarczanu miedzi jest optymalne do wytwarzania czynnika VIII.
Jak pokazano w tabeli 1, dodatek Pluronic F-68 samego albo, korzystnie, w kombinacji z siarczanem miedzi, istotnie zwiększa miano i produktywność właściwą komórek BHK zawierających gen kodujący czynnik VIII w warunkach bezbiałkowych.
P rz y k ł a d 2: W celu dalszej optymalizacji wytwarzania czynnika VIII w warunkach bezbiałkowych, do bezbiałkowej pożywki produkcyjnej dodano metali śladowych. Następnie, badano wytwarzanie czynnika VIII w układzie do hodowli ciągłej w wytrząsanych butelkach,, jaki opisano w przykłaPL 192 072 B1 dzie 1, przez 16 dni. Dane przedstawiono w tabeli 2. Pod nieobecność siarczanu miedzi, metale śladowe nie mają wpływu na produktywność czynnika VIII. Patrz tabela2.
Tabe la 2
Warunki Miano (U/ml) Produktywność właściwa (mU/komórkę/-dzień) % wzrostu w stosunku do pożywki podstawowej + F-68
Pożywka podstawowa + F-68 0,46 ± 0,011 0,065 ± 0,013 0
Podstawowa + F-68 + Cu 0,53 ± 0,15 0,078 ± 0,026 120
Podstawowa + F-68 + Cu + metale* 0,73 ± 0,16 0, 104 ± 0, 026 160
* Metale obejmowały CuSO4»5H2O (50 nM), MnSCU (3 nM), Na2SiO3»9H2O (1,5 mM), [NH4] 6Mo7O24»4H2O (3 nM), CrK(SO4)2»4H2O (1,5 nM) i LiCl (236 nM).
Przykład 3: Wpływ metali śladowych i miedzi na wytwarzanie czynnika VIII dalej badano wfermentorze perfuzyjnym. Dwa 1,5-litrowe fermentory zasiedlono odmianą klonalną BHK z gęstością 2 x 106 komórek/ml stosując pożywkę podstawową opisaną w tabeli 1. Fermentor perfundowano wtempie 0,5 l/dzień. Jeden z fermentorów zachowano jako kontrolę, zaś drugi uzupełniono miedzią imetalami śladowymi, jak to opisano w tabeli2. Fermentory utrzymywano przez 15 dni ze średnią gęstością komórek równą ~2-3x106 komórek/ml. Jak pokazano w tabeli3, dodanie Pluronicu F-68, miedzi i metali śladowych istotnie zwiększyło produktywność właściwą komórek BHK niosących gen kodujący czynnik VIII w warunkach bezbiałkowych i przy ciągłej perfuzji. Ten sposób wytwarzania można łatwo zaadaptować do większych fermentorów (200-500 litrów) wyposażonych w urządzenia zatrzymujące komórki, takie jak odstojniki.
Tabe la 3
Dni Produktywność właściwa (mU/komórkę/dzień)
Pożywka podstawowa Cu + metale
1 0,02 0,04
2 0,02 0,05
3 0,02 0,045
4 0,018 0,05
5 0,02 0,05
6 0,035 0,06
7 0,025 0,055
8 0,02 0,04
9 0, 025 0,06
10 0,02 0,065
11 0,025 0,07
12 0,025 0,065
13 0,02 0,06
14 0,03 0,06
15 0,02 0,05
Powyższe przykłady dostarczono w celu zilustrowania, nie zaś w celu ograniczania niniejszego wynalazku, który określają jedynie zastrzeżenia.

Claims (15)

1. Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII z komórek ssaczych niosących jego gen, znamienny tym, że obejmuje hodowanie tych komórek ssaczego gospodarza w pożywce wolnej od białek pochodzenia osoczowego z dodatkiem polioli i jonów miedzi.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że poliolem jest Pluronic F-68 i występuje w pożywce w stężeniu od około 0,025 do około 0,2% wagowych.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera siarczan miedzi w ilości od około 50 nM do około 800 nM.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera dodatkowo jony manganu w ilości od około 1,5 nM do około 4,5 nM.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera dodatkowo jony molibdenu w ilości od około 1,5 nM do około 4,5 nM.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera dodatkowo jony krzemu w ilości od około 75 nM do około 300 nM.
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera dodatkowo jony chromu w ilości od około 1,0 nM do około 4,0 nM.
8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pożywka zawiera dodatkowo jony litu w ilości od około 120 nM do około 480 nM.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że komórka ssaczego gospodarza wybrana jest z grupy składającej się z komórki nerki noworodkowej chomika, ludzkiej komórki nerki płodowej i komórki jajnika chomika chińskiego.
10. Pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII, znamienna tym, że obejmuje:
(a) pożywkę podstawową;
(b) poliol; i (c) jony miedzi, przy czym pożywka hodowlana jest wolna od białka pochodzenia osoczowego.
11. Pożywka według zastrz. 10, znamienna tym, że ponadto zawiera co najmniej jeden metal śladowy wybrany z grupy składającej się z manganu, molibdenu, krzemu, chromu i litu.
12. Pożywka według zastrz. 10, znamienna tym, że zawiera jony miedzi w ilości od około 50 do około 800 nM.
13. Pożywka według zastrz. 11, znamienna tym, że ponadto zawiera jony molibdenu obecne w ilości od około 1,5 do około 4,5 nM.
14. Pożywka według zastrz. 11, znamienna tym, że ponadto zawiera jony litu obecne w ilości 120 do 480 nM.
15. Pożywka według zastrz. 10 albo 11, znamienna tym, że ponadto zawiera insulinę wytwarzaną metodą rekombinacji.
PL325862A 1997-04-18 1998-04-17 Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII i pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII PL192072B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/844,714 US5804420A (en) 1997-04-18 1997-04-18 Preparation of recombinant Factor VIII in a protein free medium

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL325862A1 PL325862A1 (en) 1998-10-26
PL192072B1 true PL192072B1 (pl) 2006-08-31

Family

ID=25293446

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL325862A PL192072B1 (pl) 1997-04-18 1998-04-17 Sposób wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII i pożywka hodowlana do wytwarzania rekombinowanego czynnika VIII

Country Status (28)

Country Link
US (2) US5804420A (pl)
EP (1) EP0872487B1 (pl)
JP (1) JP4257685B2 (pl)
KR (1) KR100496111B1 (pl)
CN (1) CN1127518C (pl)
AR (1) AR012451A1 (pl)
AT (1) ATE342921T1 (pl)
AU (1) AU748731B2 (pl)
BR (1) BRPI9801092B8 (pl)
CA (1) CA2234215C (pl)
CO (1) CO4790112A1 (pl)
CZ (1) CZ295049B6 (pl)
DE (1) DE69836164T2 (pl)
DK (1) DK0872487T3 (pl)
ES (1) ES2273380T3 (pl)
HU (1) HU224306B1 (pl)
ID (1) ID20193A (pl)
IL (1) IL124123A (pl)
MY (1) MY115583A (pl)
NZ (1) NZ330183A (pl)
PL (1) PL192072B1 (pl)
PT (1) PT872487E (pl)
RU (1) RU2222547C2 (pl)
SK (1) SK285684B6 (pl)
TR (1) TR199800493A1 (pl)
TW (1) TW490469B (pl)
UA (1) UA66340C2 (pl)
ZA (1) ZA983234B (pl)

Families Citing this family (97)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9501040D0 (en) * 1995-01-19 1995-03-08 Quadrant Holdings Cambridge Dried composition
US8183344B2 (en) * 1996-04-24 2012-05-22 University Of Michigan Inactivation resistant factor VIII
US6475725B1 (en) * 1997-06-20 2002-11-05 Baxter Aktiengesellschaft Recombinant cell clones having increased stability and methods of making and using the same
US6528286B1 (en) * 1998-05-29 2003-03-04 Genentech, Inc. Mammalian cell culture process for producing glycoproteins
AUPP521298A0 (en) * 1998-08-12 1998-09-03 Life Therapeutics Limited Purification of fibrinogen
US6358703B1 (en) * 1998-12-10 2002-03-19 Bayer Corporation Expression system for factor VIII
AUPP790698A0 (en) * 1998-12-23 1999-01-28 Life Therapeutics Limited Separation of microorganisms
US20050224355A1 (en) * 1999-12-23 2005-10-13 Brendon Conlan Removal of biological contaminants
AUPP790898A0 (en) 1998-12-23 1999-01-28 Life Therapeutics Limited Renal dialysis
AUPP971399A0 (en) 1999-04-12 1999-05-06 Life Therapeutics Limited Separation of plasma components
AT409379B (de) 1999-06-02 2002-07-25 Baxter Ag Medium zur protein- und serumfreien kultivierung von zellen
ATE310533T1 (de) * 1999-07-13 2005-12-15 Zusammensetzungen mit stabilem faktor viii
US6767741B1 (en) 1999-08-27 2004-07-27 Invitrogen Corporation Metal binding compounds and their use in cell culture medium compositions
DE60041573D1 (de) 1999-08-31 2009-04-02 Sony Computer Entertainment Inc Unterhaltungssystem, aufzeichnungsmdeium und programm
US7077942B1 (en) * 1999-12-23 2006-07-18 Gradipore Limited Removal of biological contaminants
AUPQ691400A0 (en) * 2000-04-14 2000-05-11 Life Therapeutics Limited Separation of micromolecules
WO2001078877A1 (en) 2000-04-18 2001-10-25 Gradipore Limited Electrophoresis separation and treatment of samples
AUPQ697300A0 (en) 2000-04-18 2000-05-11 Life Therapeutics Limited Separation apparatus
US6923896B2 (en) * 2000-09-22 2005-08-02 The Texas A&M University System Electrophoresis apparatus and method
US20030019753A1 (en) * 2000-10-05 2003-01-30 David Ogle Multi-port separation apparatus and method
AUPR222300A0 (en) * 2000-12-21 2001-01-25 Life Therapeutics Limited Electrophoresis device and method
EP1418810A4 (en) 2001-08-03 2006-08-02 Us Gov Health & Human Serv TREATMENT OF HEMOPHILIA ORAL
EP2042196B1 (en) 2001-10-10 2016-07-13 ratiopharm GmbH Remodelling and glycoconjugation of Granulocyte Colony Stimulating Factor (G-CSF)
KR20040065278A (ko) * 2001-12-21 2004-07-21 노보 노르디스크 에이/에스 변경된 인자 ⅶ 폴리펩티드의 액체 조성물
RU2357751C2 (ru) 2001-12-21 2009-06-10 Ново Нордиск Хелт Кэр Аг Жидкая композиция полипептидов фактора vii
US20040009918A1 (en) * 2002-05-03 2004-01-15 Hanne Nedergaard Stabilised solid compositions of modified factor VII
BRPI0311959B8 (pt) 2002-06-21 2021-05-25 Novo Nordisk Healthcare Ag composição, métodos para preparar um polipeptídeo estável do fator vii, e para tratar uma síndrome responsiva do fator vii, e, uso do polipeptídeo do fator vii
CA2491992A1 (en) 2002-07-09 2004-01-15 Baxter International, Inc. Animal protein free media for cultivation of cells
WO2004075923A2 (en) * 2003-02-26 2004-09-10 Nektar Therapeutics Al, Corporation Polymer-factor viii moiety conjugates
AU2004222625A1 (en) * 2003-03-18 2004-09-30 Novo Nordisk Health Care Ag Liquid, aqueous, pharmaceutical compositions of factor VII polypeptides
US7897734B2 (en) * 2003-03-26 2011-03-01 Novo Nordisk Healthcare Ag Method for the production of proteins
RU2364609C2 (ru) * 2003-05-23 2009-08-20 Ново Нордиск Хелт Кэр Аг Стабилизация белка в растворе
WO2004112828A1 (en) * 2003-06-25 2004-12-29 Novo Nordisk Health Care Ag Liquid composition of factor vii polypeptides
ATE446768T1 (de) * 2003-07-01 2009-11-15 Novo Nordisk Healthcare Ag Flüssige wässrige pharmazeutische zusammnesetzung von factor vii polypeptiden
AU2004264282B2 (en) 2003-08-14 2010-10-14 Novo Nordisk Health Care Ag Liquid, aqueous pharmaceutical composition of Factor VII polypeptides
KR20150138427A (ko) * 2003-12-19 2015-12-09 노보 노르디스크 헬스 케어 악티엔게젤샤프트 인자 vii 폴리펩티드의 안정화된 조성물
GB0414825D0 (en) 2004-07-02 2004-08-04 Biostatus Ltd Gel formulations and uses thereof
US7422875B2 (en) 2004-07-20 2008-09-09 Board Of Regents Of The University Of Nebraska Compositions and methods for increasing protein production
US20060094104A1 (en) 2004-10-29 2006-05-04 Leopold Grillberger Animal protein-free media for cultivation of cells
WO2006050050A2 (en) * 2004-10-29 2006-05-11 Centocor, Inc. Chemically defined media compositions
MX2007008777A (es) * 2005-01-25 2007-10-23 Wyeth Res Ireland Ltd Metodo para diafiltracion.
EP1707634A1 (en) * 2005-03-29 2006-10-04 Octapharma AG Method for isolation of recombinantly produced proteins
SI2522717T1 (sl) 2006-01-04 2014-05-30 Baxter International Inc. Mediji celične kulture brez oligopeptidov
US20090203077A1 (en) * 2006-06-30 2009-08-13 The Regents Of The University Of Michigan Method of producing factor viii proteins by recombinant methods
CA2656558A1 (en) * 2006-06-30 2008-01-10 The Regents Of The University Of Michigan Method of producing factor viii proteins by recombinant methods
KR101389376B1 (ko) 2007-02-23 2014-04-29 에스케이케미칼주식회사 제 8 인자 및 그의 유도체의 제조 및 정제 방법
JP5401446B2 (ja) * 2007-04-26 2014-01-29 バイエル ヘルスケア エルエルシー 凍結貯蔵を目的とした、組み換えタンパク質溶液の安定化
JP2011502478A (ja) * 2007-11-01 2011-01-27 ユニバーシティー オブ ロチェスター 安定性が増大した組換え型第viii因子
CA2709890A1 (en) * 2007-12-27 2009-07-09 Andre Giovagnoli Cell culture processes
DE102008051574A1 (de) 2008-10-14 2010-04-15 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Verfahren zur Herstellung von Interferon-beta und deren Varianten
HUE026210T2 (en) * 2008-11-12 2016-05-30 Baxalta Inc Procedure for serum-free, insulin-free VII. factor
KR101574056B1 (ko) 2009-07-31 2015-12-02 백스터 인터내셔널 인코포레이티드 Adamts 단백질 발현을 위한 세포 배양 배지
KR20210054598A (ko) 2009-09-21 2021-05-13 다케다 야쿠힌 고교 가부시키가이샤 안정화된 액체 및 동결건조된 adamts13 제제
KR101808751B1 (ko) 2009-11-13 2017-12-13 그리폴스 테라퓨틱스 인코포레이티드 폰 빌레브란트 인자(vWF)-함유 제제, 및 그와 관련된 방법, 키트 및 용도
PT2563904E (pt) 2010-04-26 2015-05-12 Novartis Ag Meio de cultura de células aperfeiçoado
PT3626736T (pt) 2010-07-08 2025-08-11 Takeda Pharmaceuticals Co Método de produção de fvw recombinante de elevado peso molecular na cultura celular
GB201014121D0 (en) * 2010-08-24 2010-10-06 Univ Gent Particulate biologic drug delivery system
US9062106B2 (en) 2011-04-27 2015-06-23 Abbvie Inc. Methods for controlling the galactosylation profile of recombinantly-expressed proteins
US9670519B2 (en) * 2011-04-29 2017-06-06 Biocon Limited Methods for reducing accumulation of lactate during culturing and method for producing polypeptide
CA2835053C (en) 2011-05-13 2020-07-07 Octapharma Ag A method of increasing the productivity of eucaryotic cells in the production of recombinant fviii
AU2012324020A1 (en) 2011-12-30 2013-07-18 Grifols, S.A. Method for purifying Factor VIII
WO2013158279A1 (en) 2012-04-20 2013-10-24 Abbvie Inc. Protein purification methods to reduce acidic species
US9067990B2 (en) 2013-03-14 2015-06-30 Abbvie, Inc. Protein purification using displacement chromatography
WO2013158273A1 (en) 2012-04-20 2013-10-24 Abbvie Inc. Methods to modulate c-terminal lysine variant distribution
US9512214B2 (en) 2012-09-02 2016-12-06 Abbvie, Inc. Methods to control protein heterogeneity
SG11201507230PA (en) 2013-03-12 2015-10-29 Abbvie Inc Human antibodies that bind human tnf-alpha and methods of preparing the same
US20140271622A1 (en) * 2013-03-14 2014-09-18 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Methods of cell culture
US9677105B2 (en) 2013-03-14 2017-06-13 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Methods of cell culture
US9017687B1 (en) 2013-10-18 2015-04-28 Abbvie, Inc. Low acidic species compositions and methods for producing and using the same using displacement chromatography
US9217168B2 (en) 2013-03-14 2015-12-22 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Methods of cell culture
US8956830B2 (en) 2013-03-14 2015-02-17 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Methods of cell culture
WO2014151878A2 (en) 2013-03-14 2014-09-25 Abbvie Inc. Methods for modulating protein glycosylation profiles of recombinant protein therapeutics using monosaccharides and oligosacharides
EP3052640A2 (en) 2013-10-04 2016-08-10 AbbVie Inc. Use of metal ions for modulation of protein glycosylation profiles of recombinant proteins
US9085618B2 (en) 2013-10-18 2015-07-21 Abbvie, Inc. Low acidic species compositions and methods for producing and using the same
US9181337B2 (en) 2013-10-18 2015-11-10 Abbvie, Inc. Modulated lysine variant species compositions and methods for producing and using the same
WO2015073884A2 (en) 2013-11-15 2015-05-21 Abbvie, Inc. Glycoengineered binding protein compositions
CN106459180A (zh) * 2014-03-23 2017-02-22 爱德技术生物科学有限公司 在铜使用下重组蛋白表达的增强
EP3122799B8 (en) 2014-03-25 2020-03-11 F.Hoffmann-La Roche Ag Methods of preparing a poloxamer for use in cell culture medium
JP2017509659A (ja) 2014-04-01 2017-04-06 アドヴァンテック・バイオサイエンス・ファルマスーティカ・リミターダ 低糖−低グリシンの安定な第viii因子製剤
KR20160146763A (ko) 2014-04-01 2016-12-21 어드밴텍 바이오사이언스 파마큐티카 엘티디에이 부형제로서 칼슘이 첨가되지 않은 factor viii의 안정화
WO2017195745A1 (ja) * 2016-05-09 2017-11-16 国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所 培地、アルブミン非含有培地用添加剤および多能性幹細胞の培養方法
EP3625329A1 (en) * 2017-05-17 2020-03-25 Octapharma AG Method for the production of a recombinant target protein
HUE058711T2 (hu) 2018-04-20 2022-09-28 Janssen Biotech Inc Kromatográfiás oszlopos minõség-ellenõrzés anti-IL12/IL23 ellenanyag-készítmények elõállítására szolgáló gyártási eljárásokban
AU2019379858B2 (en) 2018-11-13 2024-01-04 Janssen Biotech, Inc. Control of trace metals during production of anti-CD38 antibodies
WO2020183269A1 (en) 2019-03-14 2020-09-17 Janssen Biotech, Inc. Manufacturing methods for producing anti-tnf antibody compositions
JP7635137B2 (ja) 2019-03-14 2025-02-25 ヤンセン バイオテツク,インコーポレーテツド 抗tnf抗体組成物を産生するための方法
WO2020183418A1 (en) 2019-03-14 2020-09-17 Janssen Biotech, Inc. Manufacturing methods for producing anti-il12/il23 antibody compositions
CN113840837A (zh) 2019-03-14 2021-12-24 詹森生物科技公司 用于产生抗tnf抗体组合物的方法
KR20240007293A (ko) 2019-12-06 2024-01-16 리제너론 파아마슈티컬스, 인크. 항-vegf 단백질 조성물 및 이를 생산하는 방법
AU2021248679A1 (en) 2020-04-02 2022-10-27 Takeda Pharmaceutical Company Limited ADAMTS13 variant, compositions, and uses thereof
MX2022013812A (es) 2020-05-08 2022-12-15 Regeneron Pharma Trampas y mini-trampas de vegf y metodos para el tratamiento de trastornos oculares y cancer.
WO2023281466A1 (en) 2021-07-09 2023-01-12 Janssen Biotech, Inc. Manufacturing methods for producing anti-il12/il23 antibody compositions
CN117957251A (zh) 2021-07-09 2024-04-30 詹森生物科技公司 用于制备抗tnf抗体组合物的制造方法
JP2025507790A (ja) 2022-03-02 2025-03-21 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド 高力価抗体のための製造プロセス
CA3266599A1 (en) 2022-09-07 2024-11-07 Quantitative Biosciences, Inc. UNIQUE VARIABLE DOMAIN ANTIBODIES SPECIFIC TO FENTANYL AND USE IN A CONTINUOUS AGGLUTINATION TEST
WO2025128343A1 (en) 2023-12-11 2025-06-19 Just-Evotec Biologics, Inc. Protein expression using trans-splicing and split selectable markers
WO2026058210A1 (en) 2024-09-12 2026-03-19 Janssen Biotech, Inc. Model system and biomarkers to prevent lactate runaway

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4440679A (en) * 1980-03-05 1984-04-03 Cutter Laboratories, Inc. Pasteurized therapeutically active protein compositions
US4767704A (en) * 1983-10-07 1988-08-30 Columbia University In The City Of New York Protein-free culture medium
US5576194A (en) * 1986-07-11 1996-11-19 Bayer Corporation Recombinant protein production
NO162160C (no) * 1987-01-09 1989-11-15 Medi Cult As Serumfritt vekstmedium, samt anvendelse derav.
US5024947A (en) * 1987-07-24 1991-06-18 Cetus Corporation Serum free media for the growth on insect cells and expression of products thereby
JPH0387173A (ja) * 1987-09-10 1991-04-11 Teijin Ltd ヒト活性化天然型ファクター8cの製造方法及びそれに用いる形質転換体
US5378612A (en) * 1990-05-11 1995-01-03 Juridical Foundation The Chemo-Sero-Therapeutic Research Institute Culture medium for production of recombinant protein
CA2078721A1 (en) * 1991-09-24 1993-03-25 Hiroshi Yonemura Process for preparing human coagulation factor viii protein complex
JP4543402B2 (ja) * 1996-10-10 2010-09-15 ライフ テクノロジーズ コーポレーション 植物由来栄養素を含む動物細胞培養培地

Also Published As

Publication number Publication date
AU748731B2 (en) 2002-06-13
TW490469B (en) 2002-06-11
HU224306B1 (hu) 2005-07-28
US5804420A (en) 1998-09-08
NZ330183A (en) 1999-08-30
ATE342921T1 (de) 2006-11-15
MY115583A (en) 2003-07-31
JPH10295397A (ja) 1998-11-10
HK1018797A1 (en) 2000-01-07
US6171825B1 (en) 2001-01-09
AU6198298A (en) 1998-10-22
ZA983234B (en) 1998-10-22
EP0872487A2 (en) 1998-10-21
EP0872487B1 (en) 2006-10-18
KR19980081531A (ko) 1998-11-25
CO4790112A1 (es) 1999-05-31
SK49798A3 (en) 1998-12-02
BRPI9801092A (pt) 2000-01-11
ID20193A (id) 1998-10-22
PL325862A1 (en) 1998-10-26
AR012451A1 (es) 2000-10-18
BRPI9801092B8 (pt) 2021-07-06
HUP9800901A2 (hu) 1999-05-28
HUP9800901A3 (en) 2001-08-28
DE69836164T2 (de) 2007-08-16
PT872487E (pt) 2007-01-31
SK285684B6 (sk) 2007-06-07
DE69836164D1 (de) 2006-11-30
CZ115698A3 (cs) 1998-11-11
CN1127518C (zh) 2003-11-12
CN1210866A (zh) 1999-03-17
IL124123A (en) 2006-07-05
RU2222547C2 (ru) 2004-01-27
UA66340C2 (uk) 2004-05-17
CZ295049B6 (cs) 2005-05-18
CA2234215C (en) 2008-06-17
DK0872487T3 (da) 2007-02-05
CA2234215A1 (en) 1998-10-18
EP0872487A3 (en) 1999-10-27
HU9800901D0 (en) 1998-07-28
ES2273380T3 (es) 2007-05-01
JP4257685B2 (ja) 2009-04-22
BRPI9801092B1 (pt) 2013-04-02
KR100496111B1 (ko) 2005-09-09
TR199800493A1 (xx) 1998-11-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4257685B2 (ja) タンパク質を含まない培地中での組み換え因子viiiの製造
TWI670073B (zh) 在細胞培養物中生產重組高分子量vWF的方法
JP4240818B2 (ja) 第viii因子のための発現系
CN102549145A (zh) 用于adamts蛋白表达的细胞培养基
EP0254076B1 (en) Improved recombinant protein production
US5576194A (en) Recombinant protein production
CN102471794B (zh) 提高维生素k依赖性蛋白质的表达产量的方法
CN103764815A (zh) 用于悬液细胞培养的方法和系统
MXPA98003051A (en) Preparation of recombinant factor viii in a protei free medium
HK1018797B (en) Preparation of recombinant factor viii in a protein free medium