CZ300452B6 - Zpusob cištení inhibitoru alfa-1-proteinasy - Google Patents

Zpusob cištení inhibitoru alfa-1-proteinasy Download PDF

Info

Publication number
CZ300452B6
CZ300452B6 CZ0435698A CZ435698A CZ300452B6 CZ 300452 B6 CZ300452 B6 CZ 300452B6 CZ 0435698 A CZ0435698 A CZ 0435698A CZ 435698 A CZ435698 A CZ 435698A CZ 300452 B6 CZ300452 B6 CZ 300452B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
crude
aqueous solution
peg
supernatant
fraction
Prior art date
Application number
CZ0435698A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ435698A3 (cs
Inventor
Sung Hwang@Duk
Nario@Evelyn
Lepe@Mark
Luz@Lyndon
Ito@Hirokazu
Takechi@Kazuo
Original Assignee
Alpha Therapeutic Corporation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=24701177&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=CZ300452(B6) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Alpha Therapeutic Corporation filed Critical Alpha Therapeutic Corporation
Publication of CZ435698A3 publication Critical patent/CZ435698A3/cs
Publication of CZ300452B6 publication Critical patent/CZ300452B6/cs

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/775—Apolipopeptides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/81—Protease inhibitors
    • C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
    • C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
    • C07K14/8121—Serpins
    • C07K14/8125—Alpha-1-antitrypsin
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/81—Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
    • Y10S530/811—Peptides or proteins is immobilized on, or in, an inorganic carrier
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/81—Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
    • Y10S530/812—Peptides or proteins is immobilized on, or in, an organic carrier

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Meat, Egg Or Seafood Products (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Zpusob cištení inhibitoru .alfa.-1 proteinasy, neboli .alfa.-1-PI, zahrnuje následující stupne: opatrení znecištené proteinové frakce obsahující .alfa.-1-PI; suspendaci uvedené znecištené proteinové frakce, která obsahuje .alfa.-1-PI, ve vodném roztoku pri pH 6 .+-. 0,2 po dobu, která postacuje k tomu, aby došlo k rozpuštení rozpustných proteinu; filtraci supenze a izolaci nerozpustných proteinu; resuspendaci nerozpustného proteinu ve vodném roztoku pri pH 8,5 .+-. 0,5; pridání PEG k resuspendovanému nerozpustnému proteinu za úcelem vysrážení .alfa.-2-globulinu; izolaci supernatantu po srážení pomocí PEG, pricemž tento supernatant obsahuje .alfa.-1-PI; pridání ZnCl.sub.2.n. k supernatantu za úcelem vysrážení surového .alfa.-1-PI; izolaci surového .alfa.-1-PI; rozpuštení izolovaného surového .alfa.-1-PI; nanesení rozpušteného surového .alfa.-1-PI na médium pro výmenu aniontu; a izolaci frakce obsahující precištený .alfa.-1-PI z média pro výmenu aniontu.

Description

Způsob čištění inhibitoru α-1-proteinasy
Oblast techniky
Tento vynález se týká způsobu čištění inhibitoru α-1-proteinasy, který zahrnuje jedinečnou kombinaci stupňů čištění umožňující dosažení vysokého výtěžku a vysoké specifické aktivity a1-PI.
Dosavadní stav techniky
Inhibitor α-1-proteinasy (zde též α-1-ΡΙ), známý rovněž, jako α-antitrypsin, je sérový glykoprotein o molekulové hmotností 52 000. Tato látka je syntetizována v játrech a je obsažena v séru v množstvích mezi 150 až 350 mg/dl (což je 30 až 80μΜ ekvivalentem) stanoveno pomocí testování plazmovými standardy.
α-1-ΡΙ působí v plicích za účelem inhibiee neutrofilní elastasy, serinproteasy, jejíž přítomnost ve velkých množstvích může vést k destrukci alveolamích stěn. V normálních plicích zajišťuje a-120 Pl více než 90 % anti-neutrofilní ochrany elastasy v nižším dýchacím traktu.
Nedostatek α—l-PI je autosomální, recesivní dědičná porucha, která se projevuje celou řadou allelických variant a která je charakteristická allelickým uspořádáním označovaným jako proteasový inhibiční systém (Pi). Tyto allely jsou seskupeny na bázi hladin α-1-ΡΙ, které jsou dosaho25 vány v séru různých jedinců. Normální jedinci mají normální sérovou hladinu α-1-ΡΙ (normální jedinci se označují jako jedinci s PiMM fenotypem). Deficientní jednotlivci mají sérovou hladinu α-1-ΡΙ nižší než odpovídá 35 % průměrné normální hladiny (tito jedinci se označují jako jedinci s PiZZ fenotypem). Nuloví jedinci mají nedetekovatelný obsah α-1-ΡΙ proteinu v séru (tito jedinci se označují jako jedinci s Pi(nula)(nula) fenotypem].
Nedostatek α-1-ΡΙ je charakterizován nízkými hladinami α-1-ΡΙ v séru (méně než 35 % průměrné normální hladiny) a v plicích. Tito deficientní jedinci jsou vystaveni vysokému riziku vývoje panacinámího emťyzému. Tento emfyzém převládá u jedinců s fenotypy PiZZ, PiZ(nula) a PiZ(nula)(nula). Symptomy tohoto stavu se obvykle projeví u postižených jedinců v třetí nebo čtvrté dekádě jejich života.
Emfyzém spojený s nedostatkem α-1-ΡΪ se rozvíjí v důsledku koncentrací α-1-ΡΙ v nižších částech dýchacího traktu, které jsou nedostatečné pro inhibici neutrofilní elastasy, což vede k destrukci pletiva pojivové tkáně plicního parenchymu. Jedinci s nedostatkem α-1-ΡΙ jsou málo chráněni proti neutrofilní elastase, uvolňované neutrofíly v nižší části dýchacího traktu. Tato nerovnováha proteasa:inhibitor proteasy u jedinců s nedostatkem α-1-ΡΙ se projeví chronickým poškozováním a posléze i destrukcí plicního parenchymu a alveolámích stěn.
Jedinci s vážným nedostatkem α-1-ΡΙ se vyznačují typicky endogenními sérovými hladinami a45 1 —PI pod 50 mg/dl, dle stanovení standardizovanými postupy. U jedinců s tak nízkými sérovými hladinami α-1-ΡΙ existuje více než 80% riziko, že se u nich během života vyvine emfyzém. Odhaduje se, že alespoň u 40 000 pacientů v USA, neboli u 2 % ze všech pacientů trpících emťyzémem, je toto onemocnění výsledkem poškození genu kódujícího α-1-ΡΙ. Nedostatek α-1-ΡΙ představuje jednu z nejběžnějších dědičných smrtelných poruch u bělochů žijících ve Spojených státech a v Evropě.
Léčení pacientů s nedostatkem ct-l-PI je zaměřeno na náhradu nebo zvýšení hladiny α-1-ΡΙ v séru. Očekává se, že zvýší-li se hladina α-1-ΡΙ v séru, zvýší se v důsledku jeho koncentrace
- 1 CZ 300452 B6 v plicích, čímž se upraví nerovnováha neutrofilní elastasa:a-l-PI v plicích a zabrání se destrukcí plicní tkáně, nebo se tento pochod zpomalí. Studie normální a α-1-ΡΙ defícientní populace vedly k vyslovení názoru, že minimální ochranná hladina α-1-ΡΙ v séru odpovídá 80 mg/dl nebo 11 μΜ (přibližně 57 mg/dl; při použití čistých standardů). V důsledku toho je většina terapií a5 1-P1—deficientních pacientů zaměřena na zajištění minimální ochranné hladiny α-1-ΡΙ v séru, protože sérový a-l-Pije zdrojem alveolámího α-1-PL
Přípravky s obsahem α-1-ΡΙ pro terapeutické použití jsou dostupné od 80. let 20. století. Hlavní využití nacházejí při terapii spočívající ve zvýšení (náhradě) vrozeného nedostatku α-1-ΡΙ. io Poločas lidského α-1-ΡΙ in vivo odpovídá 4,38 dne se standardní odchylkou 1,27 dne. V současnosti doporučovaná dávka 60 mg α-1-PI/kg tělesné hmotnosti týdně upraví nízkou hladinu a-1PI v séru na hladinu překračující minimální ochrannou hladinu 11 μΜ nebo 80 mg/dl.
Dříve byl α-1-ΡΙ čištěn různými způsoby. Jeden z těchto způsobů kombinuje chromatografií na aniontově-výměnném chromatografickém médiu s následným srážením pomocí PEG. Jiné způsoby čistění využívají srážení pomocí PEG s následnou aniontově-výměnnou chromatografií, nebo několikanásobné srážení pomocí PEG a následnou aniontově-výměnnou chromatografií. Dále byly použity kombinace srážení pomocí PEG, jednoho ěi více stupňů aniontově-výměnné chromatografie a stupně chromatografie na bázi chelátů kovů.
Další způsoby využívají pro čištění α-1-ΡΙ techniku dělení fází. Pro přečištění α-1-ΡΙ se uvádí specifické aktivity 1,26 jedn./mg.
Podstata vynálezu
Předmětný vynález se týká zlepšeného způsobu čištění α-1-ΡΙ. Uvedený způsob zahrnuje opatření znečištěné proteinové frakce, s výhodou pastové Cohnovy frakce IVj + IV4, jež obsahuje a1—PI. Tato znečištěná proteinová frakce se suspenduje ve studené vodě nebo v solném roztoku při pH přibližně 6, aby došlo k rozpuštění rozpustných proteinů, včetně albuminu, α-2-globulinu (α-2-makroglobulinu a hatoglobulin) a β-globulinu (transferrinu). Suspenze se poté filtruje, čímž se získají nerozpustné proteiny včetně α-1-ΡΙ, které se promyjí vodou (nebo solným roztokem). Frakce promytých nerozpustných proteinů se znovu suspenduje ve vodě (nebo v solném roztoku), hodnota pH se upraví na přibližně 8,5 a přidáním PEG se vysráží α-2-globulin. Super35 natant se odlije a přidáním chloridu zinečnatého se vysráží surový α-1-ΡΙ. Tato surová látka se znovu rozpustí v NaEDTA pufru a viiy se deaktivují přidáním činidla Tween 80 a tri-n-butylfosfátu (TNBP). S výhodou se přidá někteiý ze sacharidů, jako je sacharosa, maltosa, glukosa apod., aby se stabilizoval α-1-ΡΙ v průběhu uvedené deaktivace virů a zvýšil se tak jeho výtěžek.
Takto zpracovaný roztok se nanese na aniontově-výměnné médium za účelem oddělení α-1-ΡΙ od dalších zbývajících proteinů. Frakce obsahující α-1-ΡΙ se oddělí a výhodně se knim přidá bentonit, aby se tak odstranily jakékoli apolipoproteiny, které jsou v této frakci přítomné. Vzniklý přečištěný roztok α-1-ΡΙ se izoluje a zahustí.
Tímto způsobem přečištěný α-1-ΡΙ má specifickou aktivitu větší než 1,0 jedn./OD28o· Tímto postupem lze dosáhnout výtěžku více než přibližně 1,0 jedn./g pasty, s výhodou pak více než přibližně l,3jedn./g pasty.
Použitím způsobu podle tohoto vynálezu se zlepší kvalita i výtěžek α-1-ΡΙ. Dále se tímto způso50 bem zkrátí doba čistění ve srovnání s jinými způsoby.
Způsob podle tohoto vynálezu zahrnuje jedinečnou kombinaci stupňů čistění, kterou se dosáhne vysokého výtěžku a vysoké specifické aktivity α-1-ΡΙ.
-2CZ 300452 B6
Čistění α— 1—PI vychází ze znečištěné proteinové frakce. Touto znečištěnou proteinovou frakcí může být plazma, dále α-1-ΡΙ získaný rekombinantními metodami nebo jakýkoli jiný zdroj obsahující α-1-ΡΙ protein. Ve výhodném provedení je znečištěnou proteinovou frakcí pastová
Cohnova frakce IVt + IV4, jejíž příprava je v daném oboru velmi dobře známa.
Výchozí zpracování pastové frakce IVi + IV4
Pastová frakce IV1 + IV4 (nebo jiná znečištěná proteinová frakce) se suspenduje v 5 ± 2 dílech vody nebo solného roztoku, tj. od přibližně 0,05 do přibližně 0,15 M chloridu sodného na 1 díl frakce, tedy IVi + IV4) při teplotě nižší než přibližně 15 °C a pH přibližně 6,0 ± 0,2, a to alespoň přibližně jednu hodinu. Rozpustné proteiny, včetně albuminu, α-2-globulinu a β-globulinu, se poté oddělí od nerozpustných proteinů, včetně inhibitoru α-1-proteinasy, a to pomocí filtračního lisu, odstředění apod. Zbytek se promyje při teplotě nižší než 15 °C vodou nebo solným roztokem při pH 6 ± 0,2, čímž se odstraní jakýkoli další rozpustný protein zachycený fyzicky v nerozpustné pastě, přičemž objem vody nebo solného roztoku použitého k promývání činí přibližně pětinásobek původního objemu pasty.
Bylo zjištěno, že suspendováním pastové frakce IVi + IV4 ve vodě nebo solném roztoku při pH
6,0 ± 0,2 s následným promýváním se odstraní téměř veškeiý albumin a vy sráží se většina a—2— a β-proteinů z frakcí IV1 + IV4.
Srážení s použitím PEG
Nerozpustný proteinový zbytek se znovu suspenduje v přibližně 5 ± 2 objemech vody na objem zbytku, při pH 8,5 ± 0,5, a to při teplotě přibližně 15 ± 5 °C, výhodně po dobu přibližně 6 hodin, ačkoliv se mohou využít kratší Či delší Časy. Kratší doby nejsou výhodné, protože výtěžek se s prodlužující se dobou suspendace zvyšuje. Jako optimální kombinace doby suspendace a výtěžku se v současnosti jeví doba 6 hodin. Poté se přidá pevný Tris do konečné 10 ± 5μΜ koncentra30 ce, pevný chlorid sodný do konečné 150 ± 20mM koncentrace a hodnota pH se upraví na 8,0. Následně se přidá polyethylenglykol 3350 (PEG) do konečné koncentrace 15±5% hmotn. a reakční směs se míchá přibližně hodinu při teplotě 15 ± 5 °C. PEG se přidává za účelem a-2globulinu.
Sraženina, jež se vyloučí po přidání PEG, se odstraní pomocí filtračního lisu. Filtrační lis se promyje před filtrací i po filtraci roztokem obsahujícím 150 ±25mM chloridu sodného a 5 % hmotn. PEG, při pH 8,0 ± 0,5. Alternativně lze sraženinu odstranit odstředěním.
Srážení chloridem zinečnatým
K PEG supematantu se přidá chlorid zinečnatý (100 ± 1 OmM) až do konečné 6 ± 5mM koncentrace a pH roztoku se upraví na 7,5 ± 0,5. Roztok se ochladí na teplotu 5 ± 5 °C a míchá se nejméně hodinu. Chlorid zinečnatý vysráží surový α-1-ΡΙ. Surový α-1-ΡΙ se oddělí filtrací, s výhodou použitím filtrace Prostak®, jak je popsána například v publikaci „Prostak Open45 Channel Modu les“, Millipore Corporation, jejíž obsah je zde zahrnut formou odkazu, nebo odstředěním a filtrát se odstraní. Koncentrovanou suspenzi nebo sraženinu lze pro další upotřebení zmrazit.
Deaktivace virů zpracováním bez použití rozpouštědla
Surový α-1-ΡΙ se znovu rozpustí v přibližně 50 mM roztoku NaEDTA s použitím filtrace Prostak a recirkulace. Přidá se sacharid, s výhodou sacharosa, a to v množství přibližně 15 ± 5 % hmotn. (nebo přibližně 0,25 ± 0,05 citranu sodného), které slouží jako stabilizátor během deaktivace viru. Roztok se míchá při teplotě 15 ± 5 °C, dokud se sacharosa nerozpustí.
-3 CZ 300452 B6
Roztok obsahující α-1-ΡΙ se z hlediska viru deaktivuje přidáním rozpouštědla-detergentu. K roztoku α-1-ΡΙ se přidá roztok 10 ± 1 % hmotn./obj. polysorbátu 80 a 3 ± 0,3 % hmotn. tri-nbutylfosfátu, a to až do konečné koncentrace 1,0 ±0,5 % hmotn./obj. polysorbátu—80 a 0,3 ± 0,15 % hmotn. tri-n-butyl fosfátu. Poté se roztok inkubuje při teplotě 27 ± 3 °C, pH 8 ± 0,5 po dobu nejméně 6 hodin, čímž se deaktivují jakékoli viry, které mohou být přítomné v α-1-ΡΙ.
Bylo zjištěno, že přítomnost sacharidu, například sacharosy, jakožto stabilizátoru během deaktivace viru pomocí přídavku rozpouštědla-detergentu zvyšuje výtěžek α-1-ΡΙ v jednotkách ve srovnání s kontrolním pokusem, tj. s deaktivací viru v roztoku α-1-ΡΙ přídavkem rozpouštědlaio detergentu bez použití sacharidu jakožto stabilizátoru. Zvýšení výtěžku činí s výhodou nejméně %, s výhodou nejméně 20 % a nejvýhodněji nejméně 30 %.
Po inkubaci se ošetřený roztok α-1-ΡΙ ochladí na 0 až -10 °C, pH se potom upraví na 8,0 ± 0,1.
Aniontově-výměnná chromatografíe
Upravený roztok se zředí přibližně jedním objemem vody na objem upraveného roztoku. Zředěný roztok se dále nanese na předem ekvilibrované chromatografické médium QAE nebo na jiné podobné médium pro výměnu aniontů, jež váže α-1-ΡΙ, což umožňuje oddělení této látky od jiných proteinů. Lze použít buď vsádkovou ehromatografií, nebo sloupcovou ehromatografií. Jakmile se ct-l-Pl absorbuje na médium, promyje se toto pufrem obsahujícím 20 ± 10 mM chloridu sodného a 20 ± lOmM dihydrogenfosforeěnanu sodného (NaH2PO4) při pH 8± 1, čímž se odstraní nenavázané podíly, včetně β-proteinů. Poté se z chromatografického média pro výměnu aniontů vymyje α-1-ΡΙ, a to elucí promývací kapalinou, která obsahuje 100 ± 50 mM chloridu sodného a 20 ± 10 mM fosforečnanu sodného, při pH 8 ± 1. Eluát obsahující α-1-ΡΙ se jímá pro další zpracovávání.
Po odstranění α-1-ΡΙ se médium pro výměnu aniontů vyčistí postupným promytím následujícími složkami: vodným roztokem obsahujícím 2 ± 0,2 mM chloridu sodného a 20 ± 10 mM fosforeč30 nanu sodného, pH 8 ± 1; vodou pro injekce (WFI); vodným roztokem obsahujícím 500 mM hydroxidu sodného; a potom znovu WFI. Chromatografické médium se potom uchovává v roztoku obsahujícím 2 ± 0,2 M roztoku chloridu sodného, 20 ± 10 mM roztoku fosforečnanu sodného, pH 8± 1.
Zpracovávání eluátu s obsahem α-1-ΡΙ
Eluát obsahující α-1-ΡΙ se spojí a přidá se k němu 0,1 až 1,0 % (hmotn./hmotn.) bentonitu, a to na přibližně 1 hodinu, čímž se sníží množství apolipoproteinů na méně než přibližně 0,01 mg/ml apolipoproteinu A a na méně než přibližně 0,01 mg/ml apolipoproteinů B. Bentonit se odfiltruje, s výhodou použitím filtrace Cuno, například tak, jak je popsáno v publikaci „Zeta Plus C Series Filter Medium“, Cuno lne., jejíž obsah je formou odkazu zahrnut v tomto textu. Získaný roztok se zahušťuje pomocí ultrafiltrační membrány dokud aktivita a-l-Pí není alespoň lOjedn./ml. Koncentrovaný produkt se dále filtruje přes filtr s póry o velikosti 0,45 gm, čímž se odstraní jakýkoli částicovitý materiál. α-1-ΡΙ se filtruje technologie „Plánová“, čímž se odstraní virus, sterilně se filtruje přes filtr s póry o velikosti 0,22 gm, filtrát se rozdělí do lékovek a pro uskladnění se lyofilizuje, α-1-ΡΙ se skladuje při teplotě 2 ± 8 °C.
Lyofilizovaný α-1-ΡΙ se může znovu rozpustit ve sterilní vodě za účelem podání pacientovi.
Testy aktivity α-1-ΡΙ
Chromogenní test se může využít k detekci α-1-ΡΙ aktivity rekonstituovaného α-1-ΡΙ. Test využívá trypsin-sensitivní chromogenní substrát, ze kterého se v přítomnosti trypsinu uvolňuje p-4CZ 300452 B6 nitroanilin (Sigma Chemical Co., St. Louis, Missouri). Uvolněný p-nitroanilin se detekuje při vlnové délce 405 nm. α-1-ΡΙ inhibuje uvolňování p-nitroanilinu ze substrátu. Aktivita α-1-ΡΙ v produktu se stanoví porovnáním s kalibrační křivkou aktivity α-1-ΡΙ. Při chromogenním testu rekonstituovaného lyofilizovaného α-1-ΡΙ, připraveného výše popsaným způsobem, je vykazo5 vána specifická aktivita alespoň přibližně 1,0 jedn./OD280.
Podávání
Pacientovi lze podávat α-1-ΡΙ infuzemi rychlostí přibližně 0,08 ml/kg tělesné hmotnosti za io minutu po dobu prvních 10 minut Pokud si pacient na nic nestěžuje, lze rychlost podávání zvýšit na tolerovanou míru. Pokud je toto podávání tolerováno, lze následné infuze témuž pacientovi podávat zvýšenou tychlostí. Dojde-li k opaku, sníží se rychlost podávání nebo se infuze přeruší do vymizení symptomů. Poté lze infuzi obnovit, a to rychlostí, ježje pacientem tolerována. Majíli se podávat vysoké dávky, pak lze několik ampulí α—1—Pl spojit s použitím aseptické techniky is do prázdného, sterilního i.v. infuzního zásobníku.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
600 g pastové frakce IVi + IV4 zCohnova frakcionaěního schématu se suspenduje při teplotě 5 °C a pH 6,0 v 1800 ml vody, bez jakékoli titrace po dobu jedné hodiny. Po skončení suspenda25 ce se suspenze filtruje při tlaku 10 CP přes filtr (Cuno). Filtrát se izoluje, testuje a změří se specifická aktivita (S. A.) α-1-ΡΙ (A1PI) a optická hustota při 280 nm (OD28o). Pasta zbylá ve filtračním lisu se promyje 600 ml vody o teplotě 5 °C, filtrát se jímá a tento postup se opakuje čtyřikrát. Všechny filtráty se spojí, testují a měří se specifická aktivita (S. A.) a optická hustota (OD28onm). Hmotnost výsledné pasty: 350 g. Specifická aktivita a optická hustota vzorků získaných tímto postupem j e popsána v následuj ící tabulce I,
Tabulka 1
Aktivita A1PI a O.D. 280 nm frakcí vymytých vodou
Vzorek Objem (ml) A1PI (jedn./ml) Celkový A1PI (jedu.) O.D. 280 nm S.A. (jedn./OD)
Promytí 0 1450 0,06 87 22,2 0,003
Promytí 1 600 0,1 60 29,9 0,003
Promytí 2 600 0,08 48 25,5 0,003
Promytí 3 600 0,04 24 13,0 0,003
Promytí 4 600 0 0 4,8 0
Promytí 5 600 0 0 3,0 0
-5 CZ 300452 B6
Příklad 2
350 g výsledné pasty z příkladu 1 se resuspenduje v 1050 ml vody při pH 8,5 a teplotě 18 °C po 5 dobu 6 hodin. Přidá se pevný Tris do koncové 1 OmM koncentrace a pevný chlorid sodný do koncové 150mM koncentrace, pH se upraví na hodnotu 8,0. Dále se přidá polyethylenglykol (PEG 3350) do koncové koncentrace 15 % (hmotn.) a výsledná směs se míchá jednu hodinu při °C. Vzniklá sraženina se odstraní pomocí filtračního lisu s 10 CP filtrem, čímž se získá supernatant. Pasta ve filtračním lisu se následně promývá roztokem s obsahem 15 % (hmotn.) polyio ethylenglykolu PEG-3350, 10 mM Tris a 150 mM chloridu sodného. Filtrát a filtrát z následného promývání se spojí. Výsledky jsou shrnuty v tabulce 2.
Tabulka 2
PEG-3350 srážení
Vzorek Objem (ml) AlPI (jedn./ml) Celkový AlPI (jedn.) O.D. 280 nm S.A. (jedn. /OD)
Resusp. 1400 1,063 1488 13,32 0,0798
PEG™ filtrát 2465 0,513 1265 2,16 0,2375
Příklad 3
K získanému filtrátu PEG-3350 z příkladu 2 se přidává chlorid zinečnatý do koncové 2mM koncentrace, hodnota pH se upraví na 7,5 a teplota se sníží na 5 °C, čímž dojde k vysrážení surového
A1PI. Po jedné hodině míchání se surový A1PI odfiltruje pomocí filtrace Prostak a získaná suspenze se znovu rozpustí v roztoku NaEDTA. Výsledky jsou uvedeny v tabulce 3.
Tabulka 3
Srážení chloridem zinečnatým
Vzorek Objem (ml) AlPI (jedn./ml) Celkový AlPI (jedn.) O.D. 280 nm S.A. (jedn./OD)
Prostak filtrát 2200 0,0159 35 0,15 0,106
NaEDTA resusp. 264 4,305 1065 13,72 0,3138
-6CZ 300452 B6
Příklad 4
Sacharosa v množství 16,7% (hmotn.) se přidá k rekonstituovanému NaEDTA roztoku 5 z příkladu 3 a výsledná směs se míchá při teplotě 18 °C až do úplného rozpuštění sacharosy.
K tomuto roztoku se přidá polysorbát-80 do konečné koncentrace 1,0 % a tri-n-butylfosfát do konečné koncentrace 0,3 %. Roztok se dále ínkubuje při teplotě 27,5 °C po dobu alespoň 6 hodin, aby došlo k deaktivaci možného kontaminujícího lipidem obaleného viru. Po skončení inkubace se roztok ochladí na 5 °C a hodnota pH se upraví na 8,0. Pro kontrolu se výše uvedený postup io opakuje bez přidání sacharosy. Stabilita A1PI během působení rozpouštědla-detergentu (SD) v přítomnosti 16,7 % sacharosy a bez sacharosy (kontrolní pokus) je vyjádřena v následující tabulce 4.
Tabulka 4
Stabilita A1PI během úpravy pomocí rozpouštědla-detergentu v přítomnosti sacharosy
Vzorek Objem (ml) AlPI (jedn. /ml) Celkový AlPI (jedn.) % AlPI z NaEDTA
SD-A1PI 311 3,35 1042 97,8
Kontrola 293 2,13 624 58,6
Příklad 5
K získanému SD A1PI roztoku z příkladu 4 se přidá 311 g destilované vody, aby se snížila ionto25 vá síla před nanesením na QAE kolonu. Roztok se nanese na 300 ml předem ekv i libro váné QAE kolony pro výměnu iontů s průtokem 12 ml/min. Kolona se promyje s použitím 6 ml solného fosfátového pufru (20mM NaCl, 20mM NaH2PO4, pH 8,0). Dále se AlPI eluuje pomocí 1,8 1 solného fosfátového pufru (lOOmM chlorid sodný, 20mM NaH2PO4, pH 8,0).
Iontoměničově médium se postupně promyje: 2M NaCl, 20mM NaH2PO4, pH 8,0, 500mM NaOH a destilovanou vodou. Chromatografícké médium se uchovává v 2M roztoku chloridu sodného, 20mM NaH2PO4, pH 8,0. Spojené frakce s obsahem AlPI se testují a výsledky jsou shrnuty v následující tabulce 5.
Tabulka 5
QAE-iontová chromatografie
Vzorek Objem <λ1> AlPI (jedn. /ml) Celkový AlPI (jeda.) O.D. 280 am S.A. (jeda. /OD)
Eluát 1500 0,62 930 0,58 1,058
-7CZ 300452 B6
Příklad 6
Ke spojenému eluátu z příkladu 5 se přidají 3,0 g depyrogenovaného bentonitu a vzniklá směs se míchá jednu hodinu při 20 °C. Bentonit se odstraní filtrací (Cuno). Filtrát se zahustí ultrafiltrací.
Koncentrát se filtruje (Plánová) a dále se sterilně filtruje v sériích. Filtrát se rozdělí do lékovek a lyofilizuje se za účelem skladování. Všechny procesní vzorky byly testovány a výsledky jsou shrnuty v tabulce 6:
io Tabulka 6
Vzorek Objem (ml) A1PI (jedn./ml) Celkový A1PI (jedn.) O. D. 280 nm S. A. (jedn./OD)
Filtrát (Cuno) 1710 0,52 885 0,385 1,351
Koncentrát 75 11,6 870 8,092 1,434
Konečný vzorek 92 0,4 865 6,225 1,510
Vynález není jakkoli omezen na popsané konkrétní příklady provedení. Odborníkovi je zřejmé, 15 že ve výše popsaných výhodných provedeních lze provést změny materiálů, stupňů a procesních parametrů, aniž by došlo k vybočení z rozsahu tohoto vynálezu, V souladu s tím není rozsah předmětného vynálezu omezen na výše popsané příklady. Naopak, rozsah vynálezu je definován následujícími patentovými nároky.

Claims (18)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob čištění inhibitoru α-1-proteinasy, nebolí α-1-ΡΙ, vyznačující se tím, že 25 zahrnuje následující stupně:
    - opatření znečištěné proteinové frakce obsahuj ící a-1 -PI;
    - suspendaci uvedené znečištěné proteinové frakce, která obsahuje α-1-ΡΙ, ve vodném roztoku při pH 6 ± 0,2 po dobu, která postačuje k tomu, aby došlo k rozpuštění rozpustných proteinů;
    - filtraci suspenze a izolaci nerozpustných proteinů;
    30 - resuspendaci nerozpustného proteinu ve vodném roztoku při pH 8,5 ± 0,5;
    - přidání PEG k re suspendovanému nerozpustnému proteinu za účelem vysrážení α-2-globulinu;
    - izolaci supematantu po srážení pomocí PEG, přičemž tento supematant obsahuje α-1-ΡΙ;
    - přidání ZnCl2 k supematantu za účelem vysrážení surového α-1-ΡΙ;
    35 - izolaci surového α-1-ΡΙ;
    - rozpuštění izolovaného surového α-1-ΡΙ;
    - nanesení rozpuštěného surového α-1- ΡΙ na médium pro výměnu aniontů; a
    - izolaci frakce obsahující přečištěný α-1-ΡΙ z média pro výměnu aniontů.
    -8CZ 300452 B6
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že uvedená znečištěná proteinová frakce obsahující α— I—PI se suspenduje ve 3 až 7 objemech vodného roztoku na každý díl znečištěné proteinové frakce obsahující α-1-ΡΙ.
  3. 3. Způsob podle nároku 1,vyznačuj ící se tím, že uvedený vodný roztok jak při suspendaci, tak při resuspendaci je vybraný ze souboru sestávajícího z vody a roztoků obsahujících NaCI v koncentraci od 0,05 do 0,15M.
  4. 4. Způsob podle nároku 1, vy zn ač uj íc í se centrace 10 až 20 % hmotn.
    t í m, že PEG se přidává do dosažení kon15
  5. 5. Způsob podle nároku 1,vyznačuj ící se PEG se upraví na hodnotu 7,5 ± 0,5.
    t í m, že pH supernatantu ze srážení pomocí
  6. 6. Způsob podle nároku 1,vyznačuj ící se 1 lmM koncentrace.
    t í m, že ZnCl2 se přidává do dosažení 1 až
  7. 7. Způsob podle nároku 1,vyznačující se tím,že dále zahrnuje úpravu surového a20 1—PI izolovaného po srážení pomocí ZnCl2 za účelem deaktivace jakýchkoli virových kontaminantů.
  8. 8. Způsob podle nároku 7, vyznačující se tím, že na uvedený surový α-1-ΡΙ se působí rozpouštědlem a detergentem.
  9. 9. Způsob podle nároku 8, vyznačující se tím, že na uvedený surový α— 1 —PI se působí tri-n-butylfosfátem a polysorbátem 80.
  10. 10. Způsob podle nároku 8, vyznačující se tím, že na uvedený surový α—1-PI se 30 působí tri-n-butylfosfátem o koncentraci 0,15 až 0,45 g/lOOml roztoku a polysorbátem 80 o koncentraci 0,5 až 1,5 g/100 ml roztoku.
  11. 11. Způsob podle nároku 1,vyznačuj ící se tím,že dále zahrnuje přidávání bentonitu k eluentu, jenž obsahuje inhibitor α-1-proteinasy.
  12. 12. Způsob podle nároku 1,vyznačující se tím,že přečištěný α-1-ΡΙ má specifickou aktivitu ve výši l,Ojednotka/OD280.
  13. 13. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že výtěžek α-1-ΡΙje alespoň 1 jed40 notka na gram pasty obsahující frakci IVt + IV4.
  14. 14. Způsob čištění α-1-ΡΙ podle nároku 1, vyznačující se tím, že zahrnuje následující stupně:
    - opatření znečištěné proteinové frakce obsahující α-1-ΡΙ;
    45 - suspendaci uvedené znečištěné proteinové frakce, která obsahuje α-1-ΡΙ, ve vodném roztoku při pH 6 ± 0,2 po dobu, která postačuje k tomu, aby došlo k rozpuštění rozpustných proteinů;
    - filtraci suspenze a izolaci nerozpustných proteinů, které obsahují α-1-ΡΙ;
    - resuspendaci proteinů ve vodném roztoku při pH 8,5 ± 0,5;
    - přidávání PEG k vodnému roztoku obsahujícímu resuspendovaný nerozpustný protein do
    50 dosažení koncentrace 10 až 20 % hmotn., a to za účelem vysrážení α-2-gIobuIinu;
    - izolaci supernatantu po srážení pomocí PEG, přičemž tento supernatant obsahuje α-1-ΡΙ;
    - úpravu pH uvedeného supernatantu na hodnotu 7,5 ±0,5;
    -9CZ 300452 B6
    - přidání ZnCl2 k supematantu za účelem vysrážení surového ot-l-PI;
    - izolaci surového α-1-ΡΙ pomocí filtrace Prostak a opětovné rozpuštění surového α-1-ΡΙ ve vodném roztoku;
    - působení rozpouštědla a detergentů na rozpuštěný α-1-ΡΙ za účelem deaktivace jakýchkoli
    5 virových kontaminantů;
    - nanesení surového α-1-ΡΙ upraveného rozpouštědlem a detergentem na médium pro výměnu aniontů;
    - izolaci frakce obsahující přečištěný α-1-ΡΙ z média pro výměnu aniontů;
    - přidání bentonitu k uvedené frakci obsahující přečištěný α-1-ΡΙ za účelem adsorpce apolipoio proteinu; a
    - izolaci roztoku obsahujícího α-1-ΡΙ.
  15. 15. Způsob podle nároku 14, vyznačující se tím, že dále zahrnuje úpravu izolované frakce, která zahrnuje ultrafiltraci roztoku obsahujícího přečištěný α-1-ΡΙ.
  16. 16. Způsob podle nároku 15, vyznačující se tím, že dále zahrnuje lyofilizací ultrafiltrovaného roztoku obsahujícího přečištěný α-1-PL
  17. 17. Způsob podle nároku 14, vyznačující se tím, že přečištěný α-1-ΡΙ má specific20 kou aktivitu ve výši 1,0 jednotka/OD28o·
  18. 18. Způsob podle nároku 14, vyznačující se tím, že výtěžek α-1-ΡΙ je alespoň 1 jednotka na gram pasty obsahující frakci IV] + IV4.
    25 19. Způsob čištění α-1-ΡΙ podle nároku 1, vyznačující se tím, že zahrnuje následující stupně:
    - opatření znečištěné proteinové frakce obsahující α-1-ΡΙ;
    - suspendaci uvedené znečištěné proteinové frakce ve vodném roztoku při pH 6 a teplotě, jež umožňuje rozpuštění albuminu, α-2-proteinu a β-proteinů aniž by došlo k rozpuštění a-130 Pl;
    - separaci nerozpustných proteinů, včetně α-1-ΡΙ, od rozpuštěných proteinů;
    - resuspendaci nerozpustných proteinů ve vodném roztoku a přidání PEG, přičemž koncentrace PEG se pohybuje v rozmezí od 10 do 20 % hmotnostních a teplota a pH roztoku jsou zvoleny tak, aby došlo k vysrážení α-2-proteinů bez vysrážení α-1-ΡΙ;
    35 - izolaci supematantu ze srážení pomocí PEG a přidání ZnCl2, přičemž pH roztoku je v rozmezí od 7 do 8, koncentrace ZnCl2 je v rozmezí od 1 do 1 lmM a teplota je zvolena tak, aby došlo k vysrážení surového α-1-ΡΙ;
    - izolaci vysráženého surového α-1-ΡΙ a rozpuštění uvedeného surového α-1-ΡΙ ve vodném roztoku;
    40 - nanesení vodného roztoku surového α-1-ΡΙ na médium pro výměnu aniontů; a
    - izolaci frakce obsahující přečištěný α-1-ΡΙ z média pro výměnu aniontů.
CZ0435698A 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob cištení inhibitoru alfa-1-proteinasy CZ300452B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/673,064 US5616693A (en) 1996-07-01 1996-07-01 Process for seperating alpha-1-proteinase inhibitor from COHN IV1 +1V4 paste

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ435698A3 CZ435698A3 (cs) 1999-05-12
CZ300452B6 true CZ300452B6 (cs) 2009-05-20

Family

ID=24701177

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20070842A CZ302102B6 (cs) 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob zvýšení výtežku jednotek proteinu v proteinovém roztoku podrobeném deaktivaci viru pomocí pridání rozpouštedla-detergentu
CZ20070841A CZ301332B6 (cs) 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob odstranení apolipoproteinu z proteinového roztoku
CZ0435698A CZ300452B6 (cs) 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob cištení inhibitoru alfa-1-proteinasy

Family Applications Before (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20070842A CZ302102B6 (cs) 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob zvýšení výtežku jednotek proteinu v proteinovém roztoku podrobeném deaktivaci viru pomocí pridání rozpouštedla-detergentu
CZ20070841A CZ301332B6 (cs) 1996-07-01 1997-06-27 Zpusob odstranení apolipoproteinu z proteinového roztoku

Country Status (16)

Country Link
US (2) US5616693A (cs)
EP (2) EP0944392B1 (cs)
JP (3) JP4390855B2 (cs)
KR (1) KR20000022480A (cs)
AT (2) ATE352569T1 (cs)
AU (1) AU726233B2 (cs)
BR (1) BR9710107B1 (cs)
CA (2) CA2259499C (cs)
CZ (3) CZ302102B6 (cs)
DE (2) DE69739212D1 (cs)
DK (2) DK1762576T3 (cs)
ES (2) ES2320919T3 (cs)
IL (1) IL127774A (cs)
PL (3) PL188830B1 (cs)
PT (2) PT1762576E (cs)
WO (1) WO1998000154A1 (cs)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5616693A (en) * 1996-07-01 1997-04-01 Alpha Therapeutic Corporation Process for seperating alpha-1-proteinase inhibitor from COHN IV1 +1V4 paste
US6849605B1 (en) * 1999-03-05 2005-02-01 The Trustees Of University Technology Corporation Inhibitors of serine protease activity, methods and compositions for treatment of viral infections
WO2000051623A2 (en) 1999-03-05 2000-09-08 The Trustees Of University Technology Corporation Inhibitors of serine protease activity, methods and compositions for treatment of nitric oxide-induced clinical conditions
AU3864000A (en) * 1999-03-05 2000-09-21 Trustees Of University Technology Corporation, The Inhibitors of serine protease activity, methods and compositions for treatment of herpes viruses
AU3731400A (en) * 1999-03-05 2000-09-21 Trustees Of University Technology Corporation, The Methods and compositions useful in inhibiting apoptosis
US6462180B1 (en) 1999-11-24 2002-10-08 Bayer Corporation Method of preparing α-1 proteinase inhibitor
FI1343809T4 (fi) 2000-12-14 2023-09-04 Menetelmä alfa-1 proteinaasinestäjän valmistamiseksi
KR100406870B1 (ko) * 2001-05-25 2003-11-21 주식회사 두산 침전법을 이용한 계란 난황에서의 유용 수용성 성분의분리방법 및 침전 부산물의 이용 방법
AU2002331306A1 (en) * 2001-08-07 2003-02-24 Novozymes North America, Inc. Carbohydrates and polyols for dissolving protein crystals
EP1520012B1 (en) * 2002-07-01 2009-01-07 Novozymes A/S Monopropylene glycol added to fermentation
US7777006B2 (en) * 2002-12-31 2010-08-17 Csl Behring L.L.C. Method for purification of alpha-1-antitrypsin
US20040220242A1 (en) * 2003-05-02 2004-11-04 Leland Shapiro Inhibitors of serine protease activity, methods and compositions for treatment of nitric oxide induced clinical conditions
DK2520654T3 (en) * 2003-08-26 2017-05-01 Univ Colorado Regents Inhibitors of serine protease activity and their use in methods and compositions for the treatment of bacterial infections
US7807435B2 (en) * 2005-08-11 2010-10-05 Baxter International Inc. Method for the purification of alpha-1 proteinase inhibitor (a1PI)
GB0524432D0 (en) * 2005-11-30 2006-01-11 Nhs Blood & Transplant Method
US20080124303A1 (en) * 2005-12-12 2008-05-29 Cavit Sciences, Inc Methods and compositions for treatment of viral infections
SI1999262T1 (sl) * 2006-03-30 2012-12-31 Baxter Healthcare S.A. Postopek za čiščenje rekombinantnega alfa 1-antitripsina, ki vključuje stopnjo anionske izmenjevalne kromatografije
US8772240B2 (en) 2006-05-19 2014-07-08 Baxter International Inc. Ethanol dependence of alpha1 antitrypsin C-terminal lys truncation by basic carboxypeptidases
EP3412314A1 (en) 2011-05-27 2018-12-12 Baxalta GmbH Therapeutic proteins conjugated to polysialic acid and methods of preparing same
EP3628327A1 (en) 2011-06-24 2020-04-01 The Regents of the University of Colorado, A Body Corporate Compositions, methods and uses for alpha-1 antitrypsin fusion molecules
KR20140137347A (ko) 2012-01-10 2014-12-02 더 리젠츠 오브 더 유니버시티 오브 콜로라도, 어 바디 코포레이트 알파-1 안티트립신 융합 분자용 조성물, 방법 및 용도
TWI629283B (zh) 2012-02-23 2018-07-11 巴克斯歐塔公司 來自血漿中的免疫球蛋白之i-iv-1部分沉澱
US9353165B2 (en) 2012-07-25 2016-05-31 Grifols, S.A. Purification of cell culture derived alpha1 protease inhibitor
CA2943938A1 (en) 2013-03-29 2014-10-02 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Compositions and methods for preparing a subject for organ or non-organ implantation
IL267923B2 (en) 2018-08-02 2023-06-01 Grifols Worldwide Operations Ltd The composition containing the most concentrated alpha-1 type protein inhibitor and a method for obtaining it

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4056614A (en) * 1972-09-22 1977-11-01 Marc Bonneau Immunity depressant medicine
EP0097274A2 (en) * 1982-06-17 1984-01-04 Miles Inc. Method for separating alpha-1-proteinase inhibitor from blood plasma fractions
US4629567A (en) * 1986-03-07 1986-12-16 Smithkline-Rit Alpha-1-antiprotease purification
US4656254A (en) * 1985-12-02 1987-04-07 Miles Laboratories, Inc. Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor and antithrombin III
JPS6317899A (ja) * 1986-07-09 1988-01-25 Green Cross Corp:The ハプトグロビンの精製方法
EP0288841A2 (en) * 1987-04-27 1988-11-02 Miles Inc. Method of preparing highly purified alpha-1-proteinase inhibitor
EP0698615A1 (en) * 1994-08-24 1996-02-28 Bayer Corporation Purification of alpha-1 proteinase inhibitor using novel chromatographic separation conditions

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2770616A (en) * 1951-01-29 1956-11-13 Protein Foundation Inc Fractionation of proteinaceous materials in blood plasma and liver tissue
US2761808A (en) * 1952-09-06 1956-09-04 Ortho Pharma Corp Plasma fractionation process
JPS52128205A (en) * 1976-04-16 1977-10-27 Green Cross Corp:The Prophylactic and therapeutic drugs for cerebro-vascular contraction
US4379087A (en) * 1982-06-17 1983-04-05 Cutter Laboratories, Inc. Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor
US4540573A (en) * 1983-07-14 1985-09-10 New York Blood Center, Inc. Undenatured virus-free biologically active protein derivatives
DE3426903A1 (de) * 1984-07-20 1986-01-23 Biotest Pharma GmbH, 6000 Frankfurt Eine immunglobulinpraeparation in kombination mit einer anderen pharmakologisch wirksamen praeparation zur verwendung bei der behandlung von krankheiten
US4684723A (en) * 1985-09-11 1987-08-04 Miles Laboratories, Inc. Method of separating proteins from aqueous solutions
US4697003A (en) * 1985-11-01 1987-09-29 Miles Laboratories, Inc. Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor
JPS63132898A (ja) * 1986-11-26 1988-06-04 Meito Sangyo Kk 蛋白質の分離精製方法
US5093316A (en) * 1986-12-24 1992-03-03 John Lezdey Treatment of inflammation
US4829054A (en) * 1987-04-13 1989-05-09 Miles Laboratories, Inc. Method of decreasing lung damage in a host following the onset of gram negative septicemia/endotoxemia
IL86417A (en) * 1987-05-22 1992-09-06 Armour Pharma Process for the inactivation of pathogens in biological or pharmaceutical material by mixing with aqueous solution containing a sugar(alcohol)and neutral salts as stabilizers
US5073487A (en) * 1989-01-30 1991-12-17 Athens Research And Technology, Inc. Rapid assay for functional human α1 -proteinase inhibitor
FR2672895B1 (fr) * 1991-02-15 1995-05-12 Transgene Sa Procede de purification d'une proteine fortement glycosylee.
US6284874B1 (en) * 1994-06-17 2001-09-04 Alpha Therapeutic Corporation Process for separating α1-proteinase inhibitor from cohn fraction IV1 and IV4 paste
US5616693A (en) * 1996-07-01 1997-04-01 Alpha Therapeutic Corporation Process for seperating alpha-1-proteinase inhibitor from COHN IV1 +1V4 paste

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4056614A (en) * 1972-09-22 1977-11-01 Marc Bonneau Immunity depressant medicine
EP0097274A2 (en) * 1982-06-17 1984-01-04 Miles Inc. Method for separating alpha-1-proteinase inhibitor from blood plasma fractions
US4656254A (en) * 1985-12-02 1987-04-07 Miles Laboratories, Inc. Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor and antithrombin III
US4629567A (en) * 1986-03-07 1986-12-16 Smithkline-Rit Alpha-1-antiprotease purification
JPS6317899A (ja) * 1986-07-09 1988-01-25 Green Cross Corp:The ハプトグロビンの精製方法
EP0288841A2 (en) * 1987-04-27 1988-11-02 Miles Inc. Method of preparing highly purified alpha-1-proteinase inhibitor
EP0698615A1 (en) * 1994-08-24 1996-02-28 Bayer Corporation Purification of alpha-1 proteinase inhibitor using novel chromatographic separation conditions

Also Published As

Publication number Publication date
PL188830B1 (pl) 2005-04-29
EP0944392B1 (en) 2007-01-24
JP4588770B2 (ja) 2010-12-01
DE69739212D1 (de) 2009-02-26
ATE420111T1 (de) 2009-01-15
PL188874B1 (pl) 2005-05-31
PL188873B1 (pl) 2005-05-31
ES2281104T3 (es) 2007-09-16
CZ435698A3 (cs) 1999-05-12
JP5245079B2 (ja) 2013-07-24
CZ301332B6 (cs) 2010-01-20
CZ302102B6 (cs) 2010-10-13
DE69737294T2 (de) 2007-07-12
BR9710107A (pt) 1999-08-10
DE69737294D1 (de) 2007-03-15
ES2320919T3 (es) 2009-05-29
IL127774A (en) 2005-08-31
CA2259499A1 (en) 1998-01-08
AU3583197A (en) 1998-01-21
US5981715A (en) 1999-11-09
JP4390855B2 (ja) 2009-12-24
EP0944392A4 (en) 2004-11-24
DK0944392T3 (da) 2007-04-23
ATE352569T1 (de) 2007-02-15
JP2008120822A (ja) 2008-05-29
CA2259499C (en) 2006-01-24
US5616693A (en) 1997-04-01
WO1998000154A1 (en) 1998-01-08
PT944392E (pt) 2007-04-30
KR20000022480A (ko) 2000-04-25
EP0944392A1 (en) 1999-09-29
AU726233B2 (en) 2000-11-02
BR9710107B1 (pt) 2009-05-05
EP1762576B1 (en) 2009-01-07
IL127774A0 (en) 1999-10-28
PL330934A1 (en) 1999-06-07
PT1762576E (pt) 2009-02-02
JP2009191076A (ja) 2009-08-27
JP2000514647A (ja) 2000-11-07
DK1762576T3 (da) 2009-04-20
CA2489773A1 (en) 1998-01-08
EP1762576A1 (en) 2007-03-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4588770B2 (ja) タンパク質溶液からアポリポタンパク質を除去する方法
JP2008120822A6 (ja) タンパク質溶液からアポリポタンパク質を除去する方法
JP4324102B2 (ja) フィブリノーゲンの調製方法
US6284874B1 (en) Process for separating α1-proteinase inhibitor from cohn fraction IV1 and IV4 paste
CA2538998C (en) Large scale preparation of alpha-1 proteinase inhibitor and use thereof
AU2004262578B2 (en) Process for preparing an alpha-1-antitrypsin solution
JP2012140452A (ja) α−1プロテイナーゼインヒビター(a1PI)を精製するための方法
AU743904B2 (en) Purification of proteins
AU2004273696B2 (en) Large scale preparation of alpha-1 proteinase inhibitor and use thereof
MXPA06001112A (en) Process for preparing an alpha-1-antitrypsin solution

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MK4A Patent expired

Effective date: 20170627