DE3152113C2 - Verfahren zum Bestimmen der Stoffwechselumwandlung bestimmter Chemikalien und Wirkstoffe - Google Patents
Verfahren zum Bestimmen der Stoffwechselumwandlung bestimmter Chemikalien und WirkstoffeInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Bestimmen der Stoff
wechselumwandlung bestimmter Chemikalien und Wirkstoffe, insbe
sondere Karzinogene und Mutagene.
Es sind viele Versuche unternommen worden, Zellkultursysteme für
Stoffwechselstudien von Chemikalien zu entwickeln, insbesondere
für kurzfristige Proben auf mögliche Karzinogene und Mutagene.
Die allgemein für solche Zwecke verwendeten Zellkulturen stam
men von Nagern. Obgleich sie Chemikalien, die allgemein als
Karzinogene angesehen werden, aktiv im Stoffwechsel umsetzen,
unterscheiden sich die Stoffwechselprodukte von solchen, die in
normalen Primärkulturen menschlicher Herkunft entstehen.
In Chemical Abstract, 91 : 155286a, 1979, S. 433 wird ein Ver
fahren beschrieben, bei welchem es um die kurzzeitige Kultivie
rung von Ratten-Hepatocyten geht. Letztere metabolisieren das
Leber-Karzinogen 2-(N-acetyl-Amino) Fluoren zu wasserlöslichen
Produkten. In dieser Veröffentlichung wird herausgestellt, daß
diese Ratten-Hepatocyten auf bestimmten Zellen viele Charakte
ristika von Hepatocyten in vivo behielten. Abgesehen von der
bereits erwähnten Tatsache, daß sich die unter Verwendung von
Ratten-Leberzellen gewonnenen Erkenntnisse nicht ohne weiteres
auf den Menschen übertragen lassen, geht es bei diesem Verfah
ren nicht darum, die Stoffwechselprodukte von an sich nicht
krebserzeugenden Substanzen zu untersuchen. Vielmehr wird be
schrieben, daß die Ratten-Hepatocyten eine Leberkrebs erzeu
gende Substanz metabolisieren.
Chemical Abstract 86, 1977 : 66587d beschreibt die Wechselwir
kung von chemischen Karzinogenen und Enzymen von Wirkstoff-Me
taboliten in Leberzell-Kulturen von Ratten. Dabei wird angenom
men, daß die Zell-Kultur als Testsystem für das Überprüfen von
Karzinogenen in Säugetieren verwendbar ist. Bei den in diesem
Verfahren verwendeten Leberzellen handelt es sich nicht um Hu
man-Leberzellen. Zudem können die Leberzellen dieses bekannten
Verfahrens nur für kurze Zeit, beispielsweise bis zu zehn Ta
gen, kultiviert werden. Im übrigen soll diese von Ratten gewon
nene Zell-Linie selbst als Testmittel verwendet werden.
DD 109.659 B offenbart ein Verfahren zum Prüfen von Chemikalien
auf Mutagenität in Zell-Kulturen, die chinesischen Hamstern
entstammen. Da die von Zellen bei Kontakt mit unterschiedlichen
Chemikalien und Wirkstoffen erzeugten Stoffwechselprodukte
artspezifisch sind, wären die Ergebnisse dieses Verfahrens
nicht ohne weiteres auf den Menschen übertragbar.
Die Zielsetzung der Erfindung besteht darin, stabile Leberzell-
Linien, die für Wirkstoff-Stoffwechselstudium brauchbar sind,
und ein Verfahren zur Auslese von potentiellen Karzinogenen und
Mutagenen verfügbar zu machen.
Zur Lösung dieser Aufgabe schlägt die Erfindung vor, daß
- a) eine Kultur einer Zell-Linie Hep G2 (entspricht ATCC-Hinter legungs-No. HB 8065) oder Hep 3B (entspricht ATCC-Hinterle gungs-No. HB 8064) in einem Nährmedium gehalten,
- b) die Zell-Linie der zu testenden Chemikalie oder dem Wirk stoff ausgesetzt,
- c) die Kultur auf die Gegenwart von Metaboliten der Chemikalie oder des Wirkstoffes analysiert wird,
- d) die Metaboliten in Kulturen anderer Säugetierzellen zur Be stimmung ihrer Mutagenität eingeführt werden.
Weitere Einzelheiten und Vorteile der Erfindung ergeben sich
aus der folgenden Beschreibung. Es zeigen:
Fig. 1 ein Diagramm der Zeit in Kultur (Tage) gegen die Anzahl
lebensfähiger Zellen × 10-6 und die Konzentration von Komponen
ten von Hepatitis B-Virus-Oberflächenantigen (HBsAg), Humanal
bumin und Human-Alpha-Fetoprotein (AFP) im Überstand der Kultur
und
Fig. 2 ein Autoradiogramm, das HBsAg in einer Kontrollprobe und
in der Zell-Linie Hep 3B gemäß der Erfindung und das Fehlen in
Hep G2 gemäß der Erfindung zeigt.
Die Zell-Linien Hep 3B und Hep G2 werden durch Züchten mensch
lichen Hepatokarzinoms oder Hepatoblastroms auf letal be
strahlten Zellernährungsschichten in Gegenwart eines geeigneten
Kulturmediums erhalten. Diese Zell-Linien sind beim American
Type Culture Collection (ATCC), Rockville, Maryland/U.S.A.
hinterlegt worden.
Mit Hep G2 und Hep 3B bezeichnete Zell-Linien entstammten
Biopsien während ausgedehnter Lobektomien eines 15 Jahre al
ten kaukasischen Mannes aus Argentinien (1975) bzw. eines
8 Jahre alten schwarzen Jungen aus den Vereinigten Staaten
(1976). Die Zellen, aus denen die mit Hep 3B bezeichnete
Zell-Linie abgeleitet wurde, enthielten Hepatitis B-Virus,
wie durch die Bezugnahme auf die nachfolgend erörterten Fig.
1 und 2 zu sehen ist. Doch zieht diese Erfindung auch
das Infizieren von Zellen mit HBV in Betracht, um HBsAg-Kom
ponenten zur Vakzine-Verwendung zu produzieren.
Scheibchen der so erhaltenen bösartigen Tumore werden auf
letal bestrahlten Mäusezellschichten, mit STO bezeichnet, in
einem Zellkulturmedium gezüchtet, das aus Williams E-Medium
(Gibco), ergänzt durch 10% fetales Rinderserum (Reheis, Ar
mour Pharmaceuticals), bestand. Mit dem Ausdruck "letal be
strahlt" ist gemeint, daß die Zellen bis zu einem solchen
Grad bestrahlt worden sind, daß sie zur Reduplikation nicht
mehr befähigt sind. Diese Arbeitsweise fördert das Wachstum
differenzierter Zellen mit anspruchsvollen Wachstumsbedürf
nissen, während ein übermäßiges Wachstum kontaminierender
Fibroblastenzellen verhindert wird.
Die Anfangsperiode des Zellwachstums kann über einen Zeit
raum von wenigstens etwa 3 Wochen stattfinden und kann, wenn
gewünscht, viele Wochen fortgeführt werden. Gewöhnlich ist
eine anfängliche Wachstumsperiode von etwa 4 Wochen ganz zu
friedenstellend, worauf Zellkolonien getrennt und auf neue
bestrahlte Mäusezellen (STO)-Ernährungsschichten überführt
werden. Vor der Überführung können Zellen aus Kolben, die
einzelne große Kolonien enthalten, durch Trypsinisieren aus
einander gelöst werden (0,25% Trypsin, 0,1% Äthylendiamin
tetraessigsäure in Dulbecco′s modifizierter Phosphat-gepuf
ferter Salzlösung ohne Calcium- und Magnesiumsalze). Die
Zellkolonien werden anschließend mindestens etwa 60 Reihen
passagen auf STO-Ernährungsschichten unterworfen, was zeigt,
daß sie etablierte, routinemäßig wachsende Zell-Linien sind,
wobei jede Passage eine Dauer von etwa 1 Woche hat.
Sublinien sowohl von Hep G2 als auch Hep 3B, die die Gegen
wart der STO-Ernährungsschicht nicht mehr benötigen, wurden
ausgewählt (vier Jahre und zwei Jahre nach Durchführung der
Biopsien im Falle von Hep G2 bzw. Hep 3B). Solche Sublinien
vermehren sich, wenn etwa 1 × 10-6 Zellen in 12 ml Zellkul
turmedium gebracht werden, wie z. B. Eagle′s essentielles
Minimalmedium, ergänzt durch 10% fetales Rinderserum in
einem Kolben, der etwa 75 cm2 Wachstumsfläche für die Zellen
nach dem Aufbringen auf das Substrat enthält. Wenngleich das
oben beschriebene Kulturmedium bevorzugt wird, können andere
Kulturmedien-Zusammenstellungen für die Unterstützung des
Wachstums dieser Zell-Linien verwendet werden.
Diese zwei speziellen Zell-Linien wurden wie folgt charakte
risiert:
Hep G2 - die modale Zahl der Chromosomen ist 55 (Bereich 50-56).
Die Zell-Linie enthält ein Marker-Chromosom, das eine
Umlagerung des Chromosoms 1 ist.
Hep 3B - die modale Zahl ist 60 mit einer subtetraploiden
Erscheinungsform von 82. Diese Zell-Linie enthält ein Marker-
Chromosom, das eine Umlagerung des menschlichen Chromosoms 1
ist.
Die in der Zellkultur-Flüssigkeit einer jeden Zell-Linie
(Hep G2 und Hep 3B) abgesonderten Produkte sind sowohl durch
die Ouchterlony-Doppeldiffusions-Immunfällungsanalyse (unter
Verwendung von im Handel erhältlichen Antikörpern zu Human-
Plasmaproteinen) und durch zweidimensionale Polyacrylamidgel
elektrophorese charakterisiert worden und sind die folgenden
normalen Human-Plasmaproteine:
Die Produktion von HBsAg wurde in der Hep 3B-Zell-Linie un
ter Verwendung des AUSRIA II (Abbott Labs)-Festphasen-Radio
assay (RIA)-Satzes, der positive Werte mit einer Standard
kurve unter Verwendung von gereinigtem HBsAg vergleicht,
quantifiziert. vgl. Fig. 1, in der die Kurve mit Punkten in
Form ausgefüllter Quadrate ng HBsAg in dem Zellkultur-Über
stand gegen die Zeit darstellt, die Kurve mit nicht-ausge
füllten Quadratpunkten ng HBsAg im Zell-Lysat darstellt und
die Kurve mit ausgefüllten Dreieckspunkten µg Human-Albumin
darstellt. Die übrigen Kurven mit Punkten in Form von ausge
füllten bzw. nicht-ausgefüllten Ovalen bedeuten µg alpha-
Fetoprotein und die Zahl lebender Zellen, beginnend mit 106
Hep 3B-Zellen in 15 ml Eagle′s essentiellem Minimalmedium,
ergänzt durch 10% fetales Rinderserum.
Die Komponenten des HBsAG, synthetisiert durch Hep 3B, wur
den durch Pulsmarkieren der Zellen bestimmt, indem diese 5
Stunden 5 ml Eagle′s essentiellem Minimalmedium frei von fe
talem Rinderserum, aber 1 mCi 35S-Methionin (New England
Nuclear Company) enthaltend ausgesetzt wurden und 1,5 ml 35S-
Methionin-markierter Zell-Überstand mit 10 µl Meerschwein
chen-Anti-HBsAg (erhalten vom National Institute of Allergy
and Infectious Diseases, National Institute of Health,
Bethesda, Maryland, 20014) und dann mit 20 λ Kaninchen-Anti
serum zu Meerschweinchen-Immunoglobulin G inkubiert wurden.
Nach einer Inkubation über Nacht wurden Immunkomplexe durch
Zentrifugieren erhalten, gewaschen und erneut in einer Lö
sung suspendiert, die 1 m an Dithiothreitol, 2%ig an Na
triumdodecylsulfat war, und der SDS-Polyacrylamidgel-Elektro
phorese auf einem 7,5-15%igen Linear-Gradientengel unter
worfen, getrocknet und einem Kodak NST2-Film ausgesetzt. Die
erhaltenen Ergebnisse sind in dem Autoradiogramm der Fig. 2
veranschaulicht, aus der zu ersehen ist, daß die Komponenten
p 23 und p 27 des HBsAg aus der Probe von Hep 3B erhalten
werden (s. Gelbahn 2). Diese Komponenten sind auch in der
Kontrollprobe vorhanden, die gereinigtes HBsAg enthält (Gel
bahn 1), fehlen aber bei Hep G2, das nicht mit HBV infiziert
war (Gelbahn 3).
Die Produktion von HBsAg-Komponenten durch die Zell-Linie
Hep 3B, die das Hepatitis B-Virus-Genom enthält, zeigt, daß
diese Komponenten zur Verwendung bei der Vakzine-Erzeugung
gereinigt werden können, oder daß durch Infizieren von nach
dem erfindungsgemäßen Verfahren erzeugten hepatischen Zell-
Linien ähnliche Komponenten zur Verwendung bei der Bereit
stellung einer HBV-Vakzine erhalten werden könnten.
Die folgenden nicht-beschränkenden Beispiele veranschauli
chen verschiedene Ausführungsformen der Erfindung.
Dieses Beispiel veranschaulicht die Verwendung der mit
Hep G2 bezeichneten erfindungsgemäßen Zell-Linie für Stoff
wechselstudien, insbesondere zur Auswahl möglicher Karzino
gene und Mutagene.
Ineinanderlaufende Kulturen von Hep G2-Zellen wurden 24 h
4,0 nMol/ml 3H-Benzo(a)pyren (BP) in Medium ausgesetzt; das
meiste der Radioaktivität wurde im Medium rückgewonnen. Ein
beträchtlicher Teil des BP wurde zu wasserlöslichen Meta
boliten im Stoffwechsel umgesetzt, die nach Behandlung mit
β-Glucuronidase chloroformextrahierbare BP-Chinone und 3-OH-
BP lieferten. Aus dem chloroformextrahierbaren Material in
der Hep G2-Zellkultur entstanden die folgenden Metaboliten:
| Metabolit | |
| Prozent Metaboliten bezogen auf Gesamt-BP | |
| BP-9,10-diol | |
| 14 | |
| BP-7,8-diol | 7 |
| Chinone | 6 |
So setzt die Hep G2-Zell-Linie BP im Stoffwechsel zu einer
Reihe oxidierter Derivate um, darunter den unmittelbaren
karzinogenen Metaboliten BP-7,8-diol.
Studien der in den Hep G2-Zellen gebildeten BP-DNA-Addukte
lieferten die folgenden Ergebnisse. Von 4,0 nMol 3H-BP/ml
Medium waren nach 48 h über 97% vom Stoffwechsel verarbei
tet. Die aus diesen Kulturen isolierte DNA enthielt 28,2 pMol
an gebundenem BP/mg DNA. Die BP-DNA-Addukte gleichen denen,
die in Primärorgankulturen aus menschlichem Gewebe gebildet
werden. Da allgemein angenommen ist, daß polycyclische aro
matische Kohlenwasserstoffe und viele andere Klassen von
Karzinogenen eine Stoffwechsel-Aktivierung zur Hervorrufung
ihrer biologischen Wirkungen erfordern, und die Hep G2-Zellen
diese Verbindungen in die aktivierte Form im Stoffwechsel um
wandeln, können die Hep G2-Zellen als Aktivatoren von Karzino
genen in einem an Zellen gebundenen Mutationstest mit anderen
Säugetierzellen verwendet werden.
Hep 3B wurde 0,5 nMol 3H-BP/ml 24 h in Medium ausgesetzt, und
76% des H-BP wurden in wasserlösliche Zwischenstufen im
Stoffwechsel umgewandelt. Von dem mit Chloroform extrahier
ten Material waren 76% unverändertes 3H-BP, aber kleine Men
gen an BP-9,10-diol und dem BP-7,8-diol wurden nachgewiesen.
Wie zuvor angegeben, sollten die erfindungsgemäßen Zell-Linien
beim Kultivieren von Viren, insbesondere anspruchsvollen Viren,
wie HBV, brauchbar sein. Bei einer solchen Verwendung können
Einschichtenkulturen der besonderen. Zell-Linie, z. B. Hep G2,
entweder Dane-Teilchen aus Seren infizierter Patienten oder
HBV-DNA, aus einer solchen Quelle gereinigt, ausgesetzt werden.
Nach etwa einstündiger Absorption an die einlagige Schicht in
kleinen Mengen des Kulturmediums kann zusätzliches Zell-Linien-
Kulturmedium zugesetzt und die die Zell-Linie enthaltenden
Kolben mehrere Tage inkubiert werden. Die Überwachung der Kul
turen nach Standard-Techniken zum Nachweis viraler Antigene,
wie oben in Verbindung mit der Zell-Linie Hep 3B beschrieben,
bestimmt die optimale Zeit für das Ernten der Zellkulturen und
die Virusantigen-Reinigung. Die so erzeugten Antigene, z. B.
HBsAg, können zur Produktion von Vakzinen verwendet werden.
Enthält das im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte Aus
gangs-Hepatokarzinom schon das HBV-Genom, wie es bei dem Quel
lenmaterial der Fall ist, aus dem-die Hep 3B-Zell-Linie erhal
ten wurde, kann das von der Zell-Linie synthetisierte HBsAg
zur Erzeugung einer Vakzine verwendet werden.
Vorteilhafterweise liefert eine erfindungsgemäße, HBV enthal
tende Zell-Linie, z. B. Hep 3B, eine alternierende Quelle für
HBsAg, wodurch die Produktion und-die Qualität des Antigens
gesteuert werden kann. Experimente mit Hep 3B zeigen, daß nur
ein Teil des viralen Genoms zugegen ist und daß infektiöse
virale Teilchen von dieser Zell-Linie nicht produziert werden,
wodurch die Gefahr der HBV-Infektion beseitigt ist. Die Reini
gung des HBsAg aus dem Zellkulturmedium für die Vakzine-Produk
tion kann nach einer Reihe von auf dem Fachgebiet gut bekann
ten Methoden erfolgen.
Eine Alternativmethode zur Herstellung von HBsAg aus den er
findungsgemäßen Zell-Linien umfaßt die Verwendung von rekom
binanter HBV-Plasmid-DNA in einem in vitro HBsAg synthetisie
renden Bakterium. Zur Herstellung einer diese Technik anwen
denden Vakzine wird die gesamte Zell-RNA, von der cDNA-Kopien
gebildet werden, oder DNA aus der HBsAg-produzierenden Zell-
Linie isoliert und mit Restriktionsenzymen verdaut, die nicht
die HBV-DNA verdauen oder das HBsAg kodierende Segment intakt
lassen (z. B. Hind III), gefolgt von einer Anreicherung der
HBV-DNA, entweder durch Hybridisieren an Filter, die fixierte
Dane-Teilchen-DNA enthalten, und Elution von den Filtern,
oder durch Elution von Elektrophorogrammen nach Lokalisation
an einem Teil des Gels mit radioaktiv markierter, von Dane-
Teilchen stammender DNA. Nach Reaktion mit dCMP-Resten unter
Verwendung von Nucleotidyl-terminal-Transferase kann die DNA
zum Plasmid pBR322 hybridisiert, mit PST-1 gespalten und mit
d GMP-Resten als Schwanz versehen werden, und E. coli kann
mit Hybridplasmiden transformiert und auf HBsAg-produzierende
Kolonien nach auf dem Fachgebiet gut bekannten Methoden ge
prüft werden. HBsAg-positive Klone können dann ausgewählt,
vermehrt werden und die Vakzine-Produktion aus diesen Klonen
würde weiter gehen (Wu, R., Herausgeber; Methods in Enzymology,
Band 68, Academic Press, N.Y., zur rekombinanten DNA-Arbeits
weise insgesamt).
Claims (1)
- Verfahren zum Bestimmen der Stoffwechselumwandlung bestimmter Chemikalien und Wirkstoffe, insbesondere potentieller Karzino gene und Mutagene, dadurch gekennzeichnet, daß
- a) eine Kultur einer Zell-Linie Hep G2 (entspricht ATCC-Hin terlegungs-No. HB 8065) oder Hep 3B (entspricht ATCC-Hinterle gungs-No. HB 8064) in einem Nährmedium gehalten,
- b) die Zell-Linie der zu testenden Chemikalie oder dem Wirk stoff ausgesetzt,
- c) die Kultur auf die Gegenwart von Metaboliten der Chemikalie oder des Wirkstoffes analysiert wird,
- d) die Metaboliten in Kulturen anderer Säugetierzellen zur Be stimmung ihrer Mutagenität eingeführt werden.
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