ES2249761T3 - Vectores de adenovirus para terapia genica. - Google Patents

Vectores de adenovirus para terapia genica.

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ES2249761T3
ES2249761T3 ES94920351T ES94920351T ES2249761T3 ES 2249761 T3 ES2249761 T3 ES 2249761T3 ES 94920351 T ES94920351 T ES 94920351T ES 94920351 T ES94920351 T ES 94920351T ES 2249761 T3 ES2249761 T3 ES 2249761T3
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Abstract

LA INVENCION COMPRENDE UNA SERIE DE VECTORES BASADOS DE ADENOVIRUS QUE TIENEN OMISIONES EN LAS REGIONES E1 Y/O E3, Y OPCIONALMENTE INSERCIONES DE LAS SECUENCIAS PBR322 QUE PUEDEN UTILIZARSE PARA ENVIAR INSERTOS DE ACIDO NUCLEICO EN LAS CELULAS ANFITRIONAS, TEJIDOS Y ORGANISMOS ANFITRIONES QUE PUEDEN ENTONCES EXPRESAR EL INSERTO. LA INVENCION TAMBIEN COMPRENDE EL USO DE ESTOS VECTORES EN LA INTRODUCCION DE GENES EN LAS CELULAS, PARA HACER VACUNAS Y EN LA TERAPIA GENETICA.

Description

Vectores de adenovirus para terapia génica.
Campo de la invención
Esta invención se refiere a vectores de adenovirus (Ad) que son útiles para la expresión potenciada de ácidos nucleicos seleccionados en células infectadas, transfectadas o transformadas, especialmente células eucariotas mamíferas. Esta invención generalmente también se refiere a vectores genéticamente manipulados que codifican sustancias terapéuticas útiles como vacunas y para terapia génica.
Antecedentes
Los adenovirus (Ads) son un grupo de virus homogéneo relativamente bien caracterizado. Hasta ahora se han identificado aproximadamente 100 adenovirus diferentes, incluyendo casi 50 serotipos aislados de humanos.
Los serotipos de Ads más comunes no son patogénicos, físicamente y genéticamente estables, pueden crecer en grandes cantidades (son fáciles de obtener reservas concentradas con 10^{11}-10^{12} PFU/ml de virus infeccioso) y pueden ser fácilmente purificados por centrifugación en gradiente isopícnico de CsCl. El genoma de Ad se manipula fácilmente por técnicas de recombinación de DNA, y las proteínas codificadas por los insertos de DNA foráneo que se expresan en células mamíferas normalmente se glicosilarán o se fosforilarán apropiadamente a diferencia de las proteínas recombinantes expresadas en bacterias, levaduras y algunas células de insecto. Aunque los Ads humanos se replican más eficientemente en células humanas de origen epitelial, estos virus infectan al menos algunos genes virales. A diferencia de los retrovirus, los Ads infectarán, y se expresarán en, células no replicadas. Así, los vectores basados en Ad pueden ser útiles para la liberación, expresión de genes y terapia génica.
Los vectores de Ad han sido construidos por la ligación o la recombinación del DNA viral con secuencias subgenómicas que contenidas en plásmidos de bacterias. Berkner, K.L. y Sharp, P.A., 1983, Nucleic Acids Res. 11: 6003-6020; Haj-Ahmad, Y. y Graham, F.L., 1986, J. Virol. 57: 267274; Stow, N.D., 1981, J. Virol. 37: 171-180. Este acercamiento tiene varias desventajas, que incluyen el tiempo y la dificultad técnica requerida para producir DNA viral, los antecedentes del virus infeccioso parental que hacen del cribado una labor pesada y, en el caso de la ligación directa, la disponibilidad limitada de los sitios de restricción útiles debida al tamaño relativamente grande del genoma de adenovirus.
Otra estrategia ha sido recombinar dos plásmidos que juntos contengan secuencias que comprenden el genoma de Ad entero. Se han desarrollado varios sistemas de plásmidos condicionalmente defectivos haciendo la construcción de vectores más simple y la reducción del número de análisis subsiguientes requeridos para identificar virus recombinantes. McGrory, W.J., Bautista, D.S. and Graham f.L., 1988, Virol. 163: 614-617; Ghosh-Choudhury, G., HajAhmad, Y., Brinkley, P., Rudy, J. y Graham, F. L., 1986, Gene 50: 161-171; Mittal, S.K., McDermott, M.R. Johnson, D.C., Prevec, L. y Graham, F.L., 1993, Virus Res. 28: 67-90.
El genoma representativo de adenovirus 5 ("Ad5") utilizado en realizaciones de la presente invención es un dúplex lineal de 36Kb. Su secuencia ha sido publicada.(Chroboczek, J., Bieber, F., y Jacrot, B., 1992, The Sequence of the Genome of Adenovirus Type 5 and Its Comparison with the Genome of Adenovirus Type 2, Virol. 186: 280-285; incorporados por referencia por la presente). El genoma Ad5 contiene una repetición terminal invertida ("ITR") de 100-150 pares de bases (pb) en cada extremo del genoma linearizado. Una proteína terminal ("PT") de 55.000 daltons se une covalentemente al extremo 5' de cada cadena. Se piensa que ambas la TP y las ITRs juegan un papel en la replicación de DNA viral. McGrory, W. J. et al., 1988, Virol. 163: 614-617 y Ghosh-Choudhury, G. et al., 1986, Gene 50: 161-171.) Ad5 ha infectado cada línea celular humana probada, aunque algunas células, tales como linfocitos, son relativamente no permisivos.
Cuatro regiones no contiguas del genoma de Ad5 se transcriben pronto en la infección, antes de la replicación de DNA. Estas regiones son la región temprana 1 (E1) (alrededor de 1,3-11,2 mu o alrededor de la posición 198-4025 pb de un genoma estanadardizado, incluida la región potenciadora de E1A; Sussenbach, J. S., 1984, in Ginsburg (Ed.), THE ADENOVIRUSES, Plenum Press, pp. 35-124) que está más dividida en las subregiones E1A y E1B; la región temprana 2 (E2), que codifica las funciones replicativas del DNA del virus; la región temprana 3 (E3) (alrededor de 75,9-86,0 mU, o 27,275-30,904 pb; Cladaras, C. y Wold, W.S.M., 1985, Virol. 140: 28-43; y región temprana 4 (E4). ElA está implicado en las otras regiones tempranas y en regular varias funciones de la célula huésped. E1B y E4 están implicadas primariamente en concluir la síntesis proteica de la célula huésped. E3 regula la respuesta inmune de la célula huésped a la infección del virus. Algunas de estas funciones de los genes tempranos para "activar" los genes expresados más tarde que se necesitan para replicar el genoma y formar partículas virales.
Se han descrito varios vectores Ad. Por ejemplo, un vector Ad5 se ha construido a partir de un fragmento de DNA de adenovirus y un plásmido linearizado. Quantin et al., 1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:2581-2584. Se ha descrito un vector de adenovirus recombinante construido a partir de un casete de expresión de CTFR y un fragmento de DNA de adenovirus. Rosenfeld et al., 1992, Cell. 68:143-155.
El virión del Ad tiene la capacidad de empaquetar hasta el 105-106% de la longitud del genoma tipo salvaje. Bett, A.J., Prevec, L., and Graham, F.L., 1993, Packaging Capacity y Stability Human Adenovirus Type 5 Vectors, J. Virol. 67:5911-5921. Genomas más grandes (pej., 108% del tipo salvaje en tamaño), resultan en la inestabilidad del virus y tasas pobres de crecimiento. Id. Esta capacidad de empaquetamiento permite la inserción de sólo aproximadamente 1,8-2,0 Kb de DNA en exceso en el genoma del Ad.
Para empaquetar insertos más grandes, primero es necesario suprimir porciones del genoma viral. Partes de la región E1 se pueden suprimir, y los virus que resultan pueden ser propagados en células 293 humanas. (células 293 contienen y expresan el E1, complementando mutantes virales que son defectuosos en E1.) Se pueden insertar ácidos nucleicos foráneos en lugar del E1, en genomas de Ad5 que contienen deleciones de E1 de hasta 2,9 KB, para producir vectores independientes de ayudantes condicionales con una capacidad para insertar de 4,7-4,9 Kb.
Los virus con una deleción en la región E3 también pueden replicarse en células humanas cultivadas tales como HeLa o KB e infectar y ser expresados en animales incluyendo humanos. Se ha descrito una deleción de una secuencia E3 de 3,0 Kb, sin una inserción concomitante. Ranheim, T.S., Shesler, J., Horton, T.M., Wold, L.J. Gooding, L.R., y Wold, W.S.M., 1993, J. Virol. 67:21592167.
Entre los métodos desarrollados hasta ahora no hay un procedimiento simple para generar vectores que utilicen ambas deleciones de E1 y E3. Además, los vectores que utilicen deleciones de E1 o E3 solamente pueden colocar insertos relativamente pequeños. Para simplificar la producción y el uso de los vectores de Ad que pueden tolerar fragmentos más grandes, hemos desarrollado una nueva metodología basada en una serie de plásmidos bacterianos que contienen la mayor parte de un genoma viral de Ad.
Resumen de la invención
Un objetivo de esta invención es proporcionar vectores de Ad5 de clonación y expresión simples, flexibles, eficientes, con alta capacidad. Por consiguiente, se ha desarrollado un sistema de vectores nuevo que comprende deleciones expandidas en ambas E1 y E3 y además las combina en un sistema de vectores simple que pueden tolerar insertos de más de 8000pb de insertos, suficientes para colocar la mayoría de los genes que codifican proteínas a lo largo de los elementos de control para regular la expresión. La invención proporciona la opción de clonar ácidos nucleicos foráneos en alguna o en ambas regiones E1 ó E3 y promete ser la más versátil y fácil para usar tecnología ya desarrollada. Además, una modificación del sistema permite la construcción de virus que llevan una región E3 de tipo salvaje, e inserciones, sustituciones, o mutaciones en la región e1.
Una realización de la presente invención proporciona un plásmido bacteriano que comprende un genoma de Adenovirus tipo 5 (Ad5) humano modificado circularizado. La secuencia nucleotídica del plásmido tiene una deleción en la región temprana 3' de dicho genoma Ad5, y un segmento de plásmido pBR322 replicable bacterianamente que codifica la resistencia a la ampicilina sustituida por una secuencia de la región temprana 1A (E1A) que corresponde, en parte o completamente, a la señal de empaquetamiento.
Otra realización proporciona un plásmido bacteriano que comprende aproximadamente 340 pares de base desde el extremo izquierdo del genoma de Adenovirus tipo 5 las secuencias de la repetición terminal invertida del extremo izquierdo de dichas secuencias y las secuencias señal de empaquetamiento de las mismas, dicho plásmido comprenden también una secuencia de genes eucariótica de más de alrededor de 8 kilobases foráneas a dicho plásmido y a dicho genoma viral. La secuencia de adenovirus a partir de aproximadamente la posición nucleotídica 3540 de la misma hasta aproximadamente la posición 5790 de la misma está presente en el lado derecho de dicha secuencia foránea.
Otras realizaciones de la presente invención incluyen construcciones del genoma de adenovirus que contienen deleciones en E1 e insertos foráneos de origen eucariótico, usando alguna combinación de tamaño de la deleción E1 y/o del tamaño del inserto foráneo que puede ser colocado en el plásmido quedando todavía operativo. Debido a la gran capacidad de los vectores proporcionados aquí, múltiples insertos de genes foráneos pueden ser reemplazados en el sitio de clonación E1. Por ejemplo, dos o más genes que codifican diferentes antígenos, o genes que codifican proteínas útiles, se pueden combinar con genes que codifican marcadores seleccionables químicamente.
Una realización específica de la invención, el plásmido pBHG10, se puede utilizar para insertar genes foráneos en cualquiera de las regiones E1 ó E3 del genoma de Ad5. Los genes insertados en E3 se pueden combinar con una variedad de mutaciones, deleciones ,o inserciones en E1 por elección apropiada del plásmido cotransfectado que contiene secuencias del extremo izquierdo (E1).
Breve descripción de las figuras
Fig. 1 es una representación diagramática de la estructura y de la construcción del vector pBHG10.
Fig. 2 es una representación diagramática de la estructura y de la construcción del vector pBHG3.
Fig. 3 es una representación diagramática de recuperación usando los vectores pBHG.
Fig. 4 es una representación diagramática de la estructura y de la construcción de la deleción en E1 de 3,2 Kb, y dos ejemplos (p\DeltaE1sp1A y p\DeltaE1sp1B) de plásmidos que contienen la dicha deleción.
Fig. 5 ilustra diversos niveles de la proteína IX sintetizada usando los plásmidos que tienen diferentes deleciones en E1 con o sin un sitio Ssp1 reintroducido.
Fig. 6 ilustra la estabilidad del calor de los virus con la deleción en E1 de 3,2 Kb con o sin un sitio Sspl reintroducido.
Fig. 7 ilustra la construcción y la recuperación de un inserto de 7,8 Kb usando pBGH10.
Fig. 8 representa la estrategia para la construcción de un doble recombinante que contiene lacZ en la deleción de E3 y luciferasa de luciérnaga en la deleción de E1.
Fig. 9 es una representación diagramática de los plásmidos pABS.6, pABS.7, y pABS.9.
Fig. 10 es una representación diagramática de los plásmidos lanzaderas pHCMVsplA, pHCMVsplB, pHCMVsp1C, y pHCMVsplD.
Descripción detallada de la invención
Los vectores Ad recombinantes proporcionados aquí son significativamente diferentes de las construcciones previamente descritas en parte porque contienen la deleción más grande posible de las secuencias de E1 (en 30-40 pb) que se puede hacer mientras todavía se permite la generación de recombinantes virales viables. Sorprendentemente, los diferentes elementos genéticos descritos aquí, cuando se combinan, produjeron una construcción estable útil para introducir y expresar ácidos nucleicos foráneos en las células huésped.
Al inicio de estos experimentos, se desconocía cuán grande podía ser una deleción, o donde podía tener lugar, sin afectar el crecimiento, la producción y la inefectividad de los viriones empaquetados. Para la viabilidad viral y la capacidad de empaquetamiento máxima, las deleciones en la región E1 preferiblemente no deberían afectar la repetición terminal invertida a la izquierda (ITR; 1-103 pb) o señales de empaquetamiento (194-358 pb). Hearing, P. y Shenk, T., 1983, Cell, 33: 695-703; Grable, M. y Hearing, P., 1992, J. Virol. 64: 2047-2056. Además, porque la única E1 actualmente disponible que complementa la línea celular (células 293) no expresa la proteína IX, las deleciones pueden no extenderse en las secuencias codificantes para este polipéptido. (Aunque los mutantes de la deleción viral que carecían el gen de la proteína IX han sido aislados, parece ser que la proteína es esencial para el empaquetamiento de los genomas completos en virus funcionales).
En las realizaciones del plásmido pBHG de la invención, las secuencias de pBR322 se sustituyen por secuencias Ad5 a partir de la posición 188 a 1339, que incluyen la señal de empaquetamiento, potenciador de E1A, promotor y la mayoría de secuencias codificantes de las proteínas de ElA. El inserto pBR322 no solamente tiene una resistencia a la ampicilina, sino que también permite que la familia pBHG de vectores se replique en células en donde pBR322 puede ser replicado.
Algunas realizaciones de la invención aquí contienen una deleción de la región E1 entre un sitio Ssp I en 339pb y un sitio Afl en 3533pb. Puesto que el sitio Sspl puede ser esencial para la expresión de la proteína IX, fue reintroducido como oligonucleótido sintético que colocó el sitio Sspl más cerca de la proteína IX TATA box que en el caso del gen de tipo salvaje (wt) de la proteína IX.
Definiciones
Todos los términos técnicos y científicos usados aquí, a menos que se defina lo contrario, generalmente pretenden tener el mismo significado como lo entiende comúnmente un entendido de la materia. Varios de los términos usados aquí no pretenden ser limitantes, aunque el uso común pueda sugerir lo contrario. Por ejemplo, el término "expresión de" ó "expresar" un ácido nucleico foráneo, gen cDNA se usan aquí para abarcar la replicación de un ácido nucleico, la transcripción de DNA y/o la traducción de RNA en la proteína, en células o en sistemas libres de proteínas tales como gérmenes de trigo o reticulocitos de conejo; y "ácido nucleico" intercambiablemente con gen, cDNAs, RNA, u otros oligonucleótidos que codifican productos génicos. El término "foráneo" indica que el ácido nucleico no se encuentra en la naturaleza idénticamente asociados con el mismo vector o célula huésped, pero más que la asociación precisa entre dicho ácido nucleico y el vector o célula huésped que se crea por ingeniería genética. Los términos "recombinante" y "recombinación" generalmente se refieren a las reorganizaciones del material genético que se contemplan por los inventores, y que son el resultado de la manipulación experimental.
"Vector" denota una construcción de ácido nucleico manipulado genéticamente capaz de ser modificado por técnicas de recombinación genética para incorporar alguna secuencia de ácidos nucleicos foráneos deseada, que puede ser usada de una manera para introducir dicha secuencia en una célula huésped, replicarla, clonarla, y/o expresar dicha secuencia de ácidos nucleicos, en donde dicho vector comprende toda la información necesaria de la secuencia para capacitar al vector a ser replicado en células huésped, y/o para capacitar la secuencia de ácidos nucleicos a ser expresadas, y/o para capacitar la recombinación que se produce, y/o para capacitar que el vector se empaquete en partículas virales. Esta recitación de las propiedades de un vector no significa que sea exhaustivo.
Los vectores, que opcionalmente contienen un ácido nucleico foráneo, pueden ser "introducidos" en una célula huésped, tejido u organismo de acuerdo con técnicas conocidas, tales como transformación, transfección usando DNA precipitado con fosfato cálcico, electroporación, pistolas génicas, transfección con un virus recombinante o fagómido, infección con una partícula viral inefectiva, inyección en tejidos o microinyección del DNA en células o similares. Los dos huéspedes procarióticos y eucarióticos pueden ser empleados, los cuales pueden incluir bacterias, levaduras, plantas y animales, incluyendo células humanas.
Un vector "soporta la expresión de las secuencias codificantes contenidas por el vector" cuando sirve como vehículo para la introducción de un gen en una célula huésped, cuando las secuencias presentes en el vector permiten al vector y las regiones codificantes que contiene replicarse y ser mantenidas en una célula sin ser degradados, y cuando las secuencias presentes en el vector permiten a las secuencias codificantes a ser transcritas, recombinadas, o integradas en el genoma de la célula huésped.
Una vez un gen estructural cDNA o marco de lectura abierto dado, se ha introducido en el huésped apropiado, el huésped puede crecer para expresar dicho gen estructural, cDNA o marco de lectura abierto. Donde el ácido nucleico exógeno se expresa en un huésped que no reconoce las regiones regulatorias donde tienen lugar naturalmente la transcripción y la traducción de los ácidos nucleicos, una variedad de regiones regulatorias transcripcionales pueden ser insertadas corriente arriba y corriente debajo de la región codificante, algunas de las cuales son externadamente inducibles. Las regiones regulatorias trasncripcionales ilustrativas o promotores para el uso en bacterias incluyen el promotor \beta-gal, promotores lambda derecha e izquierda, promotores trp y lac, promotor de la función trp-lac, y también el promotor del bacteriófago lambda P_{L} junto con el operador del bacteriófago lambda O_{L} y el represor sensible a temperatura CI857, por ejemplo, para proporcionar la expresión sensible a temperatura de un gen estructural. La regulación del promotor se consigue a través de la interacción entre el represor y el operador. Para el uso en la levadura, las regiones o promotores regulatorios transcripcionales ilustrativos incluyen promotores de enzimas glicolíticos, tales como promotores ADH-I y -II, el promotor GPK, y el promotor PGI, el promotor TRP, etc.; para el uso en células de mamíferos, elementos de control transcripcional incluyen promotores SV40 tempranos y tardíos , promotores tardíos mayores de adenovirus, etc.; Otras secuencias regulatorias útiles en células eucariotas pueden incluir, por ejemplo, la secuencia potenciadora de citomegalovirus, que se puede fusionar a una secuencia promotora tal como el promotor SV40 para formar un promotor quimérico, o puede ser insertada en otro lugar en el vehículo de expresión, preferiblemente cerca de las proximidades de secuencia promotora. Donde el promotor es inducible, se pueden emplear condiciones permisivas (por ejemplo, cambio de temperatura, consumición, o exceso de un producto metabólico o nutriente, o similares).
Cuando se desee, la expresión de los genes estructurales puede ser amplificada por ejemplo, ligando en tándem un ácido nucleico para un marcador genético amplificable dominante 5' ó 3' al gen estructural y el crecimiento de las células huésped bajo condiciones selectivas. Un ejemplo de un ácido nucleico amplificable es el gen para la dihidrofolato reductasa, la expresión del cual puede ser incrementada en células que presentan resistencia al metotrexato, un antagonista del folato.
Los vehículos de expresión usados o proporcionados aquí puede ser incluidos en un sistema de replicación para el mantenimiento episomal en un huésped celular apropiado, pueden ser proporcionados sin un sistema de replicación, o pueden pasar a integrarse en el genoma huésped.
Mientras se contempla una amplia variedad de células huésped, ciertas realizaciones requieren que la célula huésped exprese las secuencias E1 que no están o están inactivados en el vector. Mientras la línea celular humana 293 es la célula huésped preferida, la invención también contempla otras líneas celulares capaces de complementar el vector que tiene una deleción en E1. "Complementar" o "complementado por" denota que la línea de células huésped codifica y /o expresa funciones que son necesarias para generar partículas viables que desaparecen del vector o han sido inactivadas en el vector.
Es importante reconocer que la presente invención no se limita al uso de tales células como se usan aquí. Pueden usarse células de diferentes especies (humanos, ratones, etc.) o diferentes tejidos (epitelio de mama, colon, tejido neuronal, linfocitos, etc.).
"Modificación" de un ácido nucleico incluye todas las alteraciones moleculares de una secuencia de ácidos nucleicos que cambian su capacidad de realizar una función indicada, incluyendo específicamente deleciones, inserciones, modificaciones químicas, y similares. Las inserciones y deleciones se pueden hacer de varias maneras conocidas por aquellos entendidos en la materia, incluyendo el corte enzimático de la secuencia completa seguido de la modificación y ligación de fragmentos concretos, o mutagénesis de sitio dirigida, especialmente por mutagénesis "loop-out" del tipo descrito por Kramer et al., 1984, Nucl. Acids Res. 12: 9441-9456.
"Fragmento" se refiere a un ácido nucleico aislado derivado de una secuencia de referencia por escisión o deleción de uno o más nucléotidos a cualquier posición de la secuencia de referencia usando técnicas recombinantes conocidas, o insertando un nucleótido predeterminado o secuencia de nucleótidos en cualquier posición predeterminada en la secuencia de referencia usando técnicas recombinantes conocidas, o sustituyendo un nucleótido predeterminado o secuencia de nucleótidos para un nucleótido determinado o secuencia de nucleótidos en la secuencia de referencia usando técnicas recombinantes conocidas. No se pretende que la invención se limite al uso de las secuencias de ácidos nucleicos de cualquier especie o género particular, sino que esta invención se puede llevar a cabo usando ácidos nucleicos de una variedad de fuentes. Se contempla que cualquier ácido nucleico de alguna fuente pueda ser insertado en el vector, con o sin elementos de control.
"Terapia génica" comprende la corrección de defectos genéticos así como la distribución y expresión de ácidos nucleicos en un tratamiento de término corto de una enfermedad o condición patológica.
Referente a tampones particulares, el medio, reactivos, células, condiciones de cultivo y similares, o a algunas subclases de los mismos, no pretenden ser limitantes, sino que deberían mostrarse para incluir todos los materiales relacionados que un entendido en la materia reconocería como de interés o valor en el contexto particular en que se presenta la discusión. Por ejemplo, con frecuencia es posible sustituir un sistema tampón o medio de cultivo por otro, etc., tal que una manera diferente pero conocida se usa para conseguir los mismos objetivos que aquéllos a los que se dirige el uso de un método sugerido, material o composición.
La presente invención no se limita al uso de todos los descubrimientos descritos o realizaciones explícitamente descritas aquí. Aunque de hecho se puede preferir la combinación de ellos, no es necesario para la invención que todos los aspectos se usen simultáneamente.
Los ácidos nucleicos aislados de esta invención se pueden usar para generar polipéptidos modificados, cada uno teniendo al menos una característica del polipéptido nativo. Estos incluyen subfragmentos, mutantes por eliminación, mutantes procesados, o mutantes por sustitución, polipéptidos que tienen la misma estructura secundaria como la región de unión del polipéptido nativo, y combinaciones de los mismos. Tales péptidos modificados pueden llevar la funcionalidad del péptido de "tipo salvaje", o pueden tener una funcionalidad modificada o externamente regulable. Tales polipéptidos modificados pueden tener utilidad considerable en la presente invención, como serían apreciados por aquellos entendidos en la materia.
"Tipo salvaje", mutantes, y polipéptidos análogos y composiciones de los mismos se pueden usar para hacer anticuerpos, que puede encontrar uso en resultados de análisis de los ensayos descritos como parte de esta invención. Los anticuerpos pueden ser preparados de maneras convencionales, usando el polipéptido sujeto como un inmunógeno e inyectando el polipéptido en un huésped mamífero, p.ej., ratón, vaca, cabra, oveja, conejo, etc., particularmente con un adyuvante, p.ej., adyuvante de Freund completo, gel de hidróxido de aluminio, o similares. El huésped entonces puede sangrarse y la sangre puede emplearse para el aislamiento de anticuerpos policlonales, o los linfocitos de sangre periférica (células B) se pueden fusionar con una célula apropiada de mieloma para producir anticuerpos específicos para los compuestos sujetos.
Todas las publicaciones mencionadas aquí se incorporan por referencia.
Enzimas, células y virus
Los enzimas usados para las manipulaciones de DNA recombinante fueron comprados a Boehringer-Mannheim, Inc. (Laval, Quebec, Canada), New England Biolabs (Beverly, MA) o Bethesda Research Laboratories (Burlington, Ontario, Canada) y se usaron de acuerdo con las recomendaciones del proveedor. Los plásmidos se construyeron usando protocolos estándares. Sambrook, J., E. F. Fritsch, y T. Maniatis, 1989, MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL, 2^{nd} Ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y. Se usó electroporación para transformar la cepa DH5 de E. coli (supE44 hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi-1 relAl) con plásmidos nuevamente construidos. Dower, W. J., J. F. Miller, y C. W. Ragsdale, 1988, High efficiency transformation of E. coli by high voltage electroporation, Nucleic Acids Res. 16: 6127-6145. El DNA plasmídico se preparó por el método de la lisis alcalina y se purificó por centrifugación de gradiente de densidad de bromuro de etidio-CsCl. Birnboim, H.C., y J. Doly, 1978, A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA, Nucleic Acids Res. 7: 1513-1523.
Los medios de cultivo celulares y los reactivos se obtuvieron de los laboratorios GIBCO (Gran Island, NY). Se titularon los vectores de adenovirus (Ad) y se introdujeron en células 293 que constitutivamente expresan el 11% izquierdo del genoma de Ad5, comprendiendo la región E1. Graham, F.L., J. Smiley, W.C. Russell, y R. Nairn, 1977, Characteristics of a human cell line transformed by DNA from human adenovirus type 5, J. Gen. Virol. 36:59-72. Las células 293 fueron cultivadas en monocapa en medio esencial mínimo F-11 complementado con 100 unidades de penicilina/ml, 100 \mug de estreptomicina/ml, 2,5 \mug de amfotericina/ml y con suero bovino de recién nacido 10% para el mantenimiento celular o suero de caballo al 5% para la infección viral. Las células KB que crecieron en cultivo Spinner se mantuvieron en medio modificado de Joklik complementado con antibióticos como anteriormente y con suero de caballo al 10%.
Las curvas de crecimiento de un paso de células KB crecieron hasta una densidad de 2x10^{5} células/ml, se centrifugaron y se resuspendieron en 1/10 parte del volumen del medio original y se añadió virus (20 PFU/célula) y se dejó adsorber durante 1h a 37ºC con agitación. Las células volvieron al volumen original usando medio 50% fresco y 50% original. A varios tiempos de post-infección se tomaron alícuotas de 4 ml, se añadieron 0,5 ml de glicerol y las muestras se guardaron a -70ºC para ensayos de virus infecciosos por titulación de placa.
Fabricación y crecimiento de virus recombinantes
Los virus recombinantes se aislaron por cotransfección con células 293 con los plásmidos adecuados. Graham, F.L., y A.J. Van der Eb, 1973, A new technique for the assay of infectivity of human adenovirus 5 DNA, Virol., 52: 456-467. Tras 8-10 días las placas fueron aisladas, se expandieron y el DNA viral se analizó por digestión de enzimas de restricción como se ha descrito anteriormente. Graham, F.L. y L. Prevec, 1991, Manipulation of Adenovirus Vectors, en E.J. Murry (ed.) METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY, Vol. 7: GENE TRANSFER AND EXPRESSION PROTOCOLS, The Humana Press Inc., Clifton, N.J., p. 109-128. Los virus candidatos fueron purificados una vez por placa, y para los estudios de estabilidad, los vectores fueron pasados empezando con medios de células infectadas para análisis de DNA viral tras la primera purificación de placas. Las monocapas semiconfluentes de células 293 en discos de 60mm se infectaron con 0,5 ml de medio de cada pasaje previo (aproximadamente 40 PFU/célula), se dejó que el virus adsorbiera durante media hora y luego se reemplazó el medio. Las células y el medio se cultivaron cuando el efecto citopático se completó, normalmente a los 2-3 días posteriores a la infección.
Marcaje con ^{32}P y extracción de DNA vírico
Las monocapas semiconfluentes de células 293 en discos de 60 mm se infectaron con virus de pasajes para analizarlas y a las 24 h de la infección se eliminó el medio y se reemplazó con 1 ml de medio 199 libre de fosfato que contenía suero de caballo al 5% y 25 nCi/ml de ácido ^{32}P-ortofosfórico (adquirido de DuPont de Nemours & Co. Inc., Wilmington, DE). Tras incubar las células infectadas durante 6 h más, se cultivaron las células y se extrajo el DNA. El DNA viral se digirió entonces con enzimas de restricción adecuados. Luego se hizo una electroforesis a través de geles de agarosa al 1% y se secó los geles. Las bandas de DNA se visualizaron por autoradiografía.
Ejemplo 1 Generación del plásmido pBHG10
Los adenovirus portan una secuencia que actúa en cis en la región E1 que es esencial para la encapsidación de las moléculas de DNA viral. Cuando esta señal que actúa en cis, localizada entre 194 y 358pb en Ad5, es borrada, los genomas virales no pueden empaquetarse, pero todavía se esperaría que replicaran su DNA en las células transfectadas. Esto, el hecho de que el DNA Ad pueda circularizarse en las células infectadas y que la cotransfección a células mamíferas de dos plásmidos con secuencias que se solapen pueda generar un virus infeccioso con una buena eficacia, nos llevó a pensar la estrategia que se define a continuación.
El primer paso relacionado con la construcción de Ad5PaCI, un virus que contiene el genoma Ad5 entero con la eliminación de las secuencias E3 desde 28133 a 30818pb. Ad5PaCI fue fabricado por cotransfección de células 293 con dos plásmidos: pFG173; y pAB14PaCI, un pAB14 modificado (Bett, A..J., L. Prevec, y Gram., F.L., 1993, J. Virol. 67: 5911-5921), donde el sitio de unión PaCI está sustituido en el lugar de 2,69 kb de E3. (Fig. 1A). Luego, el DNA viral purificado de Ad5PaCI se digirió con CLAI y XbaI y se cotransfectó en células 293 con otro plásmido, pWH3 (Bautista, D.S., y Gram., F.L., 1989, Gene 82: 201-208), para proporcionar el virus AdBHG (Fig. 1B). pWH3 es un plásmido que contiene secuencias Ad5 del extremo izquierdo, con una inserción del plásmido pBR322 modificado en pb 1339, diseñada de forma que las señales de empaquetamiento puedan eliminarse en una fase posterior.
El siguiente paso comprendía la generación de un plásmido bacteriano que contenga el genoma de AdBHG entero y la subsiguiente identificación de clones infecciosos. Se infectó células de riñón de cría de ratón (BRK) con AdBHG bajo condiciones antes indicadas para tener como resultado la generación de genomas Ad5 circulares. Graham. F.L., 1984, EMBO J. 3: 2917-2922; Ruben, M. Bacchetti, S. y Gram., F.L., 1983, Nature 301: 172-174. A las 48 horas después de la infección, se extrajo el DNA a partir de células de RCR infectadas y se usó para transformar la cepa de E. coli HMS 174 para dotarlas de resistencia a la ampicilina (Ap^{r}) y a la tetraciclina (Tet^{r}). A partir de dos experimentos se obtuvo un total de 104 colonias. Las preparaciones de plásmido a pequeña escala se cribaron por digestión con HindII y BamHI/SmaI y electroforesis de gel. Los resultados del análisis de restricción revelaron que los plásmidos diferían en la cantidad de genoma viral que contenían. Se cree que esto era debido, por lo menos en parte, a la formación de un palíndromo de 206 pb cuando las repeticiones terminales invertidas (ITR) del genoma Ad5 se unen cabeza con cola (la unión).
A partir de los análisis de restricción se seleccionó cuatro candidatos de plásmido que parecieron tener un genoma AdBHG completo con las regiones de unión intactas. Los cuatro plásmidos resultaron infecciosos en ensayos de infecciosidad en los que se transfectó células 293 con 5 ó 10 \mug de DNA plásmido (los datos no se muestran).
Las uniones ITR en cada clon infeccioso se secuenciaron y analizaron. El número de nucleótidos que faltan del punto medio del palíndromo en cada clon varió desde tan poco como 4pb (1 pb de la RTI derecha y 3 pb de la izquierda) hasta tanto como 19 pb (1 pb de la RTI derecha y 18 pb de la izquierda). Para el trabajo posterior escogimos los clones que carecían de 19pb de la unión y les llamamos pBHG9.
El pBHG10 se generó eliminando las señales de empaquetamiento en pBHG9. Esto se consiguió por digestión parcial y religación de BamHI (Fig. 1B). El cribado para pBHG10 se facilitó por el hecho de que la eliminación de las señales de empaquetamiento también daba como resultado la eliminación del gen Tet^{r}.
El pBHG10 contiene secuencias de DNA Ad5 de pb 19 (final genómico izquierdo) a pb 188; pb 1339 a 28133; y pb 3818 a 35934 (final genómico derecho). Las terminaciones izquierda y derecha de los genomas Ad5 están unidas covalentemente. Un segmeno del plásmido pBR322, que representa los nucleótidos 375-1/4361-2064 del genoma pBR322, que incluye el origen pBR322 de replicación y el gen de resistencia a la ampicilina pBR322, está presente entre pb 188 y 1339 de Ad5 para permitir la propagación de pBHG10 en células huésped como E. coli. Un sitio del enzima de restricción PacI, único en este plásmido, está presente entre pb 28133 y 30818 de Ad5 para permitir la inserción de genes externos. Puesto que la señal de empaquetamiento se borra, el pBHG10 por sí mismo no proporciona partículas virales infecciosas. Las co-transfecciones de pBHG10 con plásmidos "ayudantes" que contienen las secuencias de la terminación izquierda de Ad5, incluyendo la señal de empaquetamiento, proporciona mediante la recombinación en la célula huésped, vectores virales infecciosos con una eficacia comparable a la obtenida usando pJM17^{1}.
Ejemplo 2 Alteraciones adicionales a pBHG10 Inserción de secuencias E3 salvajes y sustitución de la región E3 con una deleción expandida
Puesto que para algunas aplicaciones puede resultar deseable generar vectores Ad con secuencias E3 de Ad5 salvajes, se reintrodujo secuencias E3 salvajes en pBHG10 (Fig. 2). El primer paso incluía la construcción de un plásmido que portara secuencias E3 flanqueando un gen para la resistencia a kanamicina (Kn^{r}) para simplificar la inserción en un pBHG10. El plásmido Ap^{r} pFG23 (McKinnon, R.D., Bacchetti, S. y Gram., F.L., 1982, Gene 19:33-42) fue digerido con XbaI, que corta en la posición 28592 en las secuencias Ad5 (no existe rotura en 30470 pb debida a una metilación Dam en la cepa de E. coli utilizada) y se ligó a pKN30 digerido por XbaI (Lee, F., 1982, PH.D. Thesis, McMaster University, Hamilton, Notario, Canada), generando pFG23AK (Ap^{r} y Kn^{r}) (Fig. 2ª). Para eliminar las secuencias y el gen Ap^{r}, se digirió con AflII y se ligó, generando pFG23K.
El siguiente paso comprendía la inserción de las secuencias E3 de nuevo en pBHG10 en la correcta orientación (Fig. 2B). El pBHG10 fue digerido con SpeI, que corta sólo en 75,4 mu en las secuencias Ad5, y se ligó con pFG23K que había sido linealizado con SpeI, generando pBHG10A, que ahora contiene la secuencia E3 salvaje deseada en tándem con la región E3 previa que contiene la eliminación de 2,69kb. Para eliminar secuencias repetidas, se digirió parcialmente el pBHG10A con NdeI y se religó, generando pBHG10B. En el paso final, el segmento Kn^{r} fue eliminado de pBHG10B por una digestión parcial con XbaI y se religó, generando pBHGE3. Excepto por la presencia de una región E3 salvaje, el pBHGE3 es idéntico a pBHG10, y es igualmente eficiente para la generación de vectores Ad con sustitución de E1 por cotransfección.
Nuestro análisis de las secuencias en la región E3 de Ad5 nos llevó a creer que podía ser posible expandir la eliminación de 2,69 kb presente en pBHG10 a 3,13kb. Utilizando la técnica de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y siguiendo una estrategia muy parecida a la descrita anteriormente para la construcción de pBHGE3 (Fig. 2), creamos una extracción de E3 3,13 kb y la introdujimos en pBHG10. El plásmido resultante pBHG11 es idéntico a pBHG10 excepto por el trozo eliminado E3 expandido que suprime las secuencias de 27865 a 30995 pb. Igual que el pBHG10, el pBHG11 contiene un sitio de la enzima de restricción PacI en lugar de las secuencias E3 eliminadas para permitir la inserción de genes externos.
Ejemplo 3 Construcción de plásmidos lanzadera E1 para su uso en cotransfecciones con vectores pBHG
Se diseñaron los plásmidos pBHG10, pBHG11 y pBHGE3 de forma que comprendieran todas las secuencias Ad5 esenciales necesarias para producir virus infecciosos tras la transfección de células 293 excepto por la señal de empaquetamiento (194-358 pb) necesaria para encapsidar el DNA viral en partículas virales. Para generar vectores virales infecciosos pBHG10, pBHG11, pBHGE3 o derivados que porten una inserción en E3 deben cotransfectarse en células 293 con un segundo plásmido que contenga secuencias virales de terminación izquierda (E1) incluyendo la señal de empaquetamiento, como se ilustra en la Figura 3. Para maximizar la capacidad del sistema de vector BHG necesitábamos un plásmido con la mayor eliminación de E1 posible para cotransfecciones con los plásmidos
BHG.
Nuestro análisis de las secuencias E1 reveló que la eliminación de aproximadamente 3,2kb podía crearse suprimiendo las secuencias entre un sitio Ssp I en 339pb y un sitio Afl II en 3533 pb (Fig. 4). Esta eliminación no interfiere con la ITR (1-103 pb), la señal de empaquetamiento del núcleo esencial (194-358 pb) o las secuencias codificadoras para proteína Ix, pero sí elimina el sitio de unión sp1 (3525-3530 pb) del promotor de la proteína IX. Mientras que esta eliminación E1 de 3,2kb no interfiere con la región potenciadota de E1, no elimina el elemento de empaquetamiento más cercano al 3' terminal. La eliminación de este elemento tiene poco efecto o nulo sobre el empaquetamiento.
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Puesto que el sitio de unión sp1 se cree que es esencial para la expresión de la proteína IX, (Babiss, L.E. y Vales, L.D., 1991, J. Virol. 65:598-605) se reintrodujo como un oligonucleótido sintético que posicionó el sitio sp1 1pb más cerca del TATA box de la proteína IX (Fig. 4).
Para evaluar el efecto de la eliminación de 3,2kb y la reintroducción del sitio de unión sp1, se examinó la expresión de la proteína IX por inmunoprecipitación. Se infectaron células 293 a 10PFU/célula con virus que contenían o bien ninguna eliminación en E1 (Ad5 salvaje), o una eliminación de 2,3kb extendiéndose dentro del gen de la proteína IX (d1313), o la eliminación de 3,2kb descrita anteriormente (d170-3), o la eliminación de 3,2kb que contiene el HCMV (AdHCMV2), o los promotores de \beta-actina (Ad\betaAct2) en la orientación antiparalela de E1, o la eliminación de 3,2kb que contiene el HCMV (AdHCMVsp1), o los promotores de \beta-Actina (Ad\betaActsp1) con el sitio de unión sp1 reintroducido. Tras ser etiquetados todos los extractos celulares con [^{35}S]-metionina, se cultivaron, se inmunoprecipitaron las muestras con anticuerpos de proteína IX Ad2 y se hizo pasar por un gel PAGE SDS 12%. Los resultados (Fig. 5) indican que los niveles variables de proteína IX se expresaron en función de las secuencias corriente arriba del gen de la proteína IX pero con el sitio sp1 presente se produjo una reducción de a lo sumo 25% en comparación con Ad5 salvaje.
Como se sabe que la proteína IX afecta la estabilidad al calor de las partículas virales, examinamos la estabilidad al calor de Ad5 salvaje en comparación con d1313, dl70-3, AdHCMV2, Ad\betaAct2, AdHCMVsp1 y Ad\betaActsp1. Se titularon ciertas cantidades de estos virus antes y después de una incubación a 45ºC durante 1 y 2 horas. De los seis mutantes virales estudiados, sólo d1313 difería significativamente en estabilidad al calor respecto al salvaje (Fig. 6). Incluso Ad\betaAct2, que produce sólo el 16% de los niveles salvajes de proteína IX (Fig. 5) fue tan resistente a la inactivación por calor como el virus salvaje. Esto indica que la proteína IX es posiblemente fabricada en exceso durante la infección vírica. También se observó que los virus que contenían la eliminación de E1 3,2kb se replicaron en células 293 hasta las mismas titulaciones finales que los Ad5 salvajes (datos no mostrados).
Con la verificación de que las características de crecimiento y estabilidad de los virus no se vieron afectadas con la eliminación de E1 3,2kb, se decidió incorporar esta eliminación en los plásmidos p\DeltaE1sp1A y p\DeltaE1sp1B para usarlos en cotransfecciones con los plásmidos BHG (Fig. 4). Estos plásmidos contienen varios sitios de restricción para facilitar la inserción de genes externos.
La invención también incluye un vector que comprende un fragmento o fragmentos de plásmido pBR322 que cuenta tanto con resistencia a la ampicilina y el origen de replicación pBR322 (que permite que dicho vector sea replicado en células donde el pBR322 es capaz de ser replicado), y una inserción entre la región 4 (E4) temprana y la repetición de la terminación invertida derecha, y una eliminación de secuencias E1 de la posición 188 a o cerca de la secuencia AflII en la posición 3533, y sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico externo.
Estudio de la eficiencia y capacidad de los vectores pBHG
Para evaluar la capacidad de los plásmidos BHG para generar vectores virales infecciosos, se realizó cotransfecciones con varios plásmidos de terminación izquierda y se encontró que la eficiencia del rescate era comparable a la obtenida con pJM17 (no se muestran los datos).
El uso de pBHGE3, pBHG10 ó pBHG11 combinados con la eliminación de 3,2 kb en E1 debería permitir rescatar los insertos de aproximadamente 5,2, 7,9 y 8,3 kb respectivamente en vectores virales. Para estudiar la capacidad del sistema BHG construimos un inserto de 7,8 kb que consiste en el gen lacZ dirigido por el promotor temprano-inmediato del citomegalovirus humano y el gen gB de virus herpes simplex de tipo 1 (HSV-1) dirigido por el promotor SV40 en la eliminación E1 de 3,2 kb (Fig. 7). Después de la cotransfección de discos de 20-60 mm de células 293, 10 con 5 \mug de pBHG10 y de pHlacZgBR y la otra mitad con 10 \mug de cada uno, se obtuvo una placa. Ésta se aisló, expandió y analizó por restricción con HindIII y se encontró que seguía el patrón de restricción esperado. Se vio que el AdHlacZgBR designado aislado expresaba tanto lacZ como HSV-1 gB a niveles comparables a los obtenidos con vectores que contenían insertos individuales de estos genes (no se muestran los datos).
Ejemplo 4 Plásmidos lanzadera adicionales
Un vector lanzadera, pABS.4, se usó en la construcción de un doble recombinante que contenía lacZ en la eliminación de E3 y luciferasa de luciérnaga en la eliminación E1. La construcción de este vector además ilustra el uso de los vectores lanzadera así como los dobles recombinantes.
La estrategia para la construcción de este vector se presenta en la Fig. 8. Primero se insertó el gen lacZ con la señal poli A SV40 entre los sitios SalI y XvaI en la región de clonación de pABS.4, generando pABSLacZ. Fig. 8A. En el siguiente paso se digirió pABSLacZ con PacI y BstBI generando un fragmento que contenía el gen LacZ y el gen de resistencia a la kanamicina (Kan^{r}). Este fragmento se insertó luego entre los sitios PacI y BstBI de pAdBHG.28, en la orientación paralela E3, generando pAdBHGLacZK. Puesto que se usó doble selección antibiótica, el cribado para el plásmido deseado que contiene el inserto LacZ era trivial. Finalmente se digirió el pAdBHGLacZK en SwaI para eliminar el gen Kan^{1} generando pAdBHGLacZ. Los pAdBHGLacZ se cultivan y se usan para cotransfecciones con pCA15, un plásmido que contiene secuencias de terminación izquierda Ad5 con luciferasa de luciérnaga bajo el control del promotor del gen inmediato-temprano de citomegalovirus humano (HCMV) en lugar de la mayoría de E1. Fig. 8B. Los pAdBHGLacZ pueden usarse en cotransfecciones con virtualmente cualquier construcción derivada de E1 para fabricar vectores con una variedad de combinaciones de lacZ en E3 e insertos de genes exteriores o mutaciones en E1.
Desarrollamos vectores lanzadera pABS.6, pABS.7 y pABS.9 para simplificar la introducción de insertos en la supresión de E3 en plásmidos pAdBHG. Fig. 9. Se usan para facilitar la transferencia de genes exteriores en el conjunto pAdBHG de plásmidos de la siguiente manera: las secuencias de genes se insertan en o bien pABS.7 ó pABS.9 usando los sitios de clonación SphI, PstI, SalI, BamHI, CPU, SacI, o EcoRI. El plásmido lanzadera es entonces cortado con una o dos combinaciones de XvaI, PacI o BstBI y el fragmento que contiene Kan se inserta en el plásmido pAdBHG Amp^{r} usando la doble resistencia Amp+Kan para seleccionar los transformantes bacterianos que llevan el plásmido deseado. Posteriormente, el gen Kan^{r} se elimina por digestión con ClaI o SwaI y ligación. Finamente el plásmido es "rescatado" en vectores virales Ad infecciosos por cotransfección de células 293 con un plásmido adecuado que contenga secuencias E1.
Se han fabricado varios plásmidos lanzadera que pueden usarse para cotransfecciones con vectores del conjunto pGBH. Un plásmido lanzadera E1 que tenga una señal de empaquetamiento insertada entre la región 4 temprana (E4) y la repetición terminal invertida (RTI) derecha es específicamente parte de la materia objeto de la presente
invención.
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TABLA 1 Plásmidos lanzadera E1 adicionales para cotransfección con vectores pBHG
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Plásmido Secuencia Eliminación Sitios de clonación
reguladora neta
PXCJL1 - - - - - 2,88 kb X-B-Xh-S-C
PXCJL2 - - - - - 2,88 kb C-S-Xh-B-X
P\DeltaE1sp1A - - - - - 3,19 kb C-B-Xh-X-EV-E-H-S-Bg
p\DeltaE1sp1B - - - - - 3,19 kb C-S-H-E-EV-X-Xh-B-Bg
pHCMVsp1A HCMV (L) 2,81 kb C-B-Xh-X-EV-E-H-S
pHCMVsp1B HCMV (L) 2,81 kb C-S-H-E-EV-X-Xh-B
pHCMVsp1C HCMV(L)/SV40pA 2,66 kb C-B-Xh-X-EV-E-H-S
pHCMVsp1D HCMV(L)/SV40pA 2,66 kb C-S-H-E-EV-X-Xh-B
pCA3 HCMV(L)/SV40pA 2,66 kb B-Xh-X-EV-E-H-S
pCA4 HCMV(L)/SV40pA 2,66 kb S-H-E-EV-X-Xh-B
pCA13 HCMV(L)/SV40pA 2,66 kb S-H-E-EV-X-Xh-B
pCA14 HCMV(L)/SV40pA 2.66 kb B-Xh-X-EV-E-H-S
pBActsp1A \betaActina(L) 1,74 kb C-B-X-EV-E-H-S
pBActsp1B \betaActina(L) 1,74 kb C-S-H-E-EV-X-B
pCA1 \betaActina(L)/SV40pA 1,58 kb S-H-E-EV-X-B
pCA2 \betaActina(L)/SV40pA 1,58 kb B-X-EV-E-H-S
pMLPsp1A MLP(R) 2,23 kb B-X-EV-E-H-S-Bg
X: XbaI, B: BamHI, Xh: XhOI, S: SalI, C: ClaI, EV: EcoRV, E: EcoRI, H: HindIII, Bg: Bg1II
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Los métodos experimentales descritos hasta ahora no tienen carácter limitante. Aquéllos expertos en la materia apreciarán que puede usarse una gran variedad de métodos para introducir vectores en las células de tejidos diana (por ejemplo, los tumores de hígado pueden tratarse inoculando el hígado afectado por la vena porta con vectores del tipo descrito y/o reivindicados aquí y con las solicitudes progenitoras). Además, la invención contempla el uso de vectores que contienen ácidos nucleicos externos que codifican para moléculas que pueden ser útiles para tratar enfermedades como RNA antisentido, factores de crecimiento tisular como GM-CSF, moléculas que inician la diferenciación, moléculas que inducen la apoptosis, etc. Finalmente, una persona experta en la materia apreciará que los métodos de esta invención pueden usarse para tratar otros animales diferentes a ratones y humanos.

Claims (32)

1. Un sistema de vectores que comprende:
(a)
un primer plásmido con genoma de adenovirus modificado que contiene
(i)
una modificación dentro de la región temprana 1 (E1) de dicho genoma que elimina la señal de empaquetamiento en dicho genoma;
y
(ii)
un fragmento o fragmentos de plásmido bacteriano que codifica para una resistencia antibiótica e incluye el origen de replicación del plásmido y otras secuencias necesarias para permitir que el vector sea replicado en células donde el plásmido bacteriano es capaz de ser replicado;
y
(b)
un segundo plásmido que sirve como plásmido lanzadera E1, que comprende:
(i)
un fragmento o fragmentos de plásmido bacteriano que codifica para la resistencia antibiótica e incluye el origen de replicación del plásmido y otras secuencias necesarias para permitir que el vector sea replicado en células donde el plásmido bacteriano es capaz de ser replicado
y
(ii)
una secuencia derivada de una región E1 Ad
(c)
donde dicho primer y segundo plásmido son capaces de recombinar para producir un genoma de adenovirus modificado recombinante capaz de ser empaquetado en partículas virales.
2. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde el segundo plásmido además comprende un ácido nucleico exterior empalmado dentro de dicha secuencia derivada de una región E1 Ad y donde dicho genoma de adenovirus modificado recombinante producido por recombinación de dichos primer y segundo plásmido contiene dicho ácido nucleico exterior.
3. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde el genoma de adenovirus modificado del primer plásmido derivado del genoma de adenovirus 5 (Ad5).
4. El sistema de vectores de la reivindicación 1, donde dicha modificación en E1 es una eliminación que comprende la región E1A.
5. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde la modificación en E1 es una eliminación que incluye los nucleótidos 188 a 1339.
6. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde la modificación en E1 es una eliminación que incluye los nucleótidos 188 y el sitio Af1II en la posición 3533.
7. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde un sitio sp1 en la posición 3525 que se eliminó dicho primer plásmido se reintroduce en el segundo plásmido insertando un oligonucleótido sintético que incluye un sitio sp1.
8. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde dicho primer plásmido además comprende la eliminación dentro de la región temprana 3 (E3), donde dicha eliminación E3 no inhibe la expresión de secuencias necesaria para la replicación viral, el empaquetamiento, la viabilidad o la infecciosidad.
9. El sistema de vectores de la reivindicación 8 donde la eliminación E3 incluye las posiciones 27865-30995 del genoma Ad5.
10. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde dicho primer plásmido adicionalmente comprende un fragmento o fragmentos de plásmido bacteriano pBR322 que codifica para una resistencia a ampicilina, y también un origen de replicación pBR322 que capacita al primer plásmido para ser replicado en células donde el pBR322 es capaz de ser replicado.
11. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde dicho fragmento o fragmentos de plásmido de acuerdo con la reivindicación 1(a)(ii) se inserta en la localización señalada del grupo de localizaciones compuesto por: una localización entre la región temprana 4 (E4) y la repetición terminal invertida (RTI) derecha; una localización dentro de la región temprana 4; y una localización donde las secuencias incluidas en E4 son eliminadas y sustituidas con dicho fragmento o fragmentos de plásmido.
12. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde dicho primer plásmido comprende además sitios de clonación para la inserción de una secuencia de ácido nucleico.
13. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde dicho primer plásmido comprende un fragmento o fragmentos de plásmido bacteriano pBR322 que codifica para una resistencia a la ampicilina y también un origen de replicación pBR322 que capacita al vector para ser replicado en células donde pBR322 es capaz de ser replicado, donde dicho vector es además modificado para contener un inserto entre la región temprana 4 (E4) y la repetición terminal invertida derecha, vector que además tiene la eliminación de secuencias E1 de la posición 188 hasta la secuencia AfII en la posición 3533 o cerca, donde dicho vector no tiene un sitio de clonación par ala inserción de un ácido nucleico exterior.
14. Un plásmido que contiene secuencias de DNA Ad5 de adenovirus de pb 19 (terminación genómica izquierda) a pb 188; pb 1339 a 28133 y pb 30818 a pb 35934 (terminación genómica derecha) donde las terminaciones genómicas izquierda y derecha de las secuencias Ad5 están unidas covalentemente. También contiene un fragmento de plásmido pBR322 que compuesto por los nucleótidos 375-1/4361-2064 insertados entre pb 188 y pb 1339 de Ad5 y un sitio de restricción PacI localizado entre pb 28133 y pb 30818 de Ad5.
15. Un plásmido que contiene secuencias de DNA Ad5 de adenovirus de pb 19 (terminación genómica izquierda) a pb 188; pb 1339 a 28133 y pb 30818 a pb 35934 (terminación genómica derecha) donde las terminaciones genómicas izquierda y derecha de las secuencias Ad5 están unidas covalentemente. También contiene un fragmento de plásmido pBR322 compuesto por los nucleótidos 375-1/4361-2064 insertados entre pb 188 y pb 1339 de Ad5.
16. Un plásmido que contiene secuencias de DNA Ad5 de adenovirus desde pb 19 (terminación genómica izquierda) a pb 188; pb 1339 a 27865; y de pb 30995 a pb 35934 (terminación genómica derecha) donde las terminaciones genómicas izquierda y derecha de las secuencias Ad5 están unidas covalentemente. También contiene un fragmento de plásmido pBR322 compuesto por los nucleótidos 375-1/4361-2064 insertados entre pb 188 y pb 1339 de Ad5 y un sitio de restricción PacI localizado entre pb 27865 y pb 30995 deAd5.
17. El sistema de vectores de la reivindicación 1 donde el segundo plásmido es un plásmido lanzadera E1 que contiene dicha secuencia derivada de la región E1 de Ad5, incluyendo una señal de empaquetamiento.
18. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde un ácido nucleico externo que comprende un marco de lectura abierto se inserta en dicho plásmido lanzadera E1.
19. El sistema de vectores de la reivindicación 18, donde las secuencias que regulan la expresión de dicho marco de lectura abierto son además insertadas en dicho plásmido lanzadera E1.
20. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde dicho plásmido lanzadera E1 comprende la eliminación de la secuencia derivada de la región E1 para el fragmento de aproximadamente 3,19kb entre el sitio SspI y 339 pb y un sitio AflII a 3533pb. Dicho plásmido comprende además un sitio de unión sp1 específico y sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico externo dentro de la supresión de E1.
21. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde dicho plásmido lanzadera E1 comprende la eliminación de la secuencia derivada de la región E1 y también comprende un promotor HCMV localizado dentro de la supresión de E1 y los sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico externo localizado de forma adyacente a dicho promotor HCMV dentro de la eliminación de E1.
22. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde dicho plásmido lanzadera E1 comprende la eliminación de la secuencia derivada de la región E1 y también comprende un promotor HCMV y una señal de poliadenilación SV40, ambos localizados dentro de la eliminación de E1 y sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico externo localizado entre el promotor HCMV y la señal de poliadenilación Sv40.
23. El sistema de vectores de la reivindicación 17, donde dicho plásmido lanzadera E1 comprende una eliminación de aproximadamente 2,88 kb en la secuencia derivada de la región E1 Ad5 y que además comprende sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico externo localizado dentro de la eliminación de E1.
24. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde dicho plásmido lanzadera de E1 comprende la eliminación en la secuencia derivada de la región E1 de Ad5 y que además comprende un promotor de \beta actina y una señal de poliadenilación SV40, ambos localizados dentro de la eliminación de E1 y sitios de clonación para la inserción de un ácido nucleico exterior localizado entre el promotor de \beta actina y la señal de poliadenilación SV40.
25. El sistema de vectores de la reivindicación 17 donde dicho plásmido lanzadera comprende una señal de empaquetamiento insertada entre la región temprana 4 (E4) y la repetición terminal invertida (ITR) derecha.
26. Un método in vitro para la introducción y la expresión de un ácido nucleico externo en una célula huésped, comprendiendo:
\newpage
(a)
introducción de:
(i)
un primer plásmido que incluye genoma de adenovirus modificado que comprende una modificación dentro de la región 1 temprana (E1) de dicho genoma que elimina la señal de empaquetamiento en dicho genoma;
y
(ii)
un plásmido lanzadera que contiene una secuencia derivada de una región E1 Ad, incluyendo una señal de encapsidación y una secuencia de ácido nucleico insertada, en una célula huésped que expresa funciones codificadas por la secuencia E1 que han sido suprimidas del primer plásmido;
(b)
aislamiento de un genoma viral recombinante donde el primer plásmido ha sido recombinado con el plásmido lanzadera E1 para proporcionar un genoma viral modificado recombinante que contiene la señal de encapsidación y la secuencia de ácidos nucleicos insertada del plásmido lanzadera E1 y elementos del primer plásmido excluyendo las modificaciones dentro de E1,
(c)
introducción de dicho genoma viral modificado recombinante dentro de una célula huésped, y
(d)
expresión de las secuencias codificantes contenidas en dicho genoma viral recombinante modificado.
27. Un método de acuerdo con la reivindicación 26 donde dicho primer plásmido comprende además un fragmento o fragmentos de un plásmido bacteriano que codifica para una resistencia antibiótica e incluye el origen de replicación del plásmido y otras secuencias necesarias para permitir que el vector sea replicado en las células donde le plásmido es capaz de ser replicado.
28. Un método de acuerdo con la reivindicación 26 ó la reivindicación 27 donde en dicho plásmido lanzadera E1 se inserta también una secuencia de ácidos nucleicos que contiene un marco de lectura abierto.
29. Un método de acuerdo con la reivindicación 28 donde dentro de dicho plásmido lanzadera se inserta además secuencias que regulan la expresión de dicho marco de lectura abierto.
30. Un método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones de la 26 a la 29, donde dicho genoma viral recombinante se empaqueta en una partícula viral recombinante que es capaz de infectar células que pueden ser infectadas por el adenovirus del que deriva originariamente el genoma de adenovirus modificado.
31. Un método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones de la 26 a la 30 donde dicho genoma de adenovirus modificado deriva originariamente del adenovirus 5.
32. Un método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones de la 26 a la 31 donde dicho vector que contiene la eliminación de E1 es introducida en las células huésped mencionadas junto con una partícula adenoviral que tienen la región E1 intacta, donde dicha partícula adenoviral que tiene la región E1 intacta es capaz de complementar la replicación de dicho vector que contiene la eliminación de E1.
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