JPH0191780A - カルニチンアミドヒドロラ−ゼおよびその製造法 - Google Patents
カルニチンアミドヒドロラ−ゼおよびその製造法Info
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、L−カルニチンアミドを加水分解してL−力
ルニチンを生成する反応を触媒する新規酵素、カルニチ
ンアミドヒドロラーゼ(以下本酵素と略す)およびその
製造法に関するものである。この新規酵素の触媒反応に
よシ、合成的に安価に見られるDL−カルニチンアミド
から有用物質であるL−カルニチンをえることができる
。L−カルニチンは、脂肪酸のミトコンドリアへの輸送
に必須の物質であり、ビタミンBT とも呼ばれる物質
で、輸液の成分として、あるいは心臓疾患や脂肪血症の
治療その他に応用される。また他の有用な物質(例えば
アセチ、Q/−L−カルニチン)製造の中間体として極
めて有用な物質である。本酵素はL−力ルニチンの生産
に応用される(特願昭61−198175号)産業上有
用なものであり、その効率的な製造法が産業上有用なこ
とも明白である。
ルニチンを生成する反応を触媒する新規酵素、カルニチ
ンアミドヒドロラーゼ(以下本酵素と略す)およびその
製造法に関するものである。この新規酵素の触媒反応に
よシ、合成的に安価に見られるDL−カルニチンアミド
から有用物質であるL−カルニチンをえることができる
。L−カルニチンは、脂肪酸のミトコンドリアへの輸送
に必須の物質であり、ビタミンBT とも呼ばれる物質
で、輸液の成分として、あるいは心臓疾患や脂肪血症の
治療その他に応用される。また他の有用な物質(例えば
アセチ、Q/−L−カルニチン)製造の中間体として極
めて有用な物質である。本酵素はL−力ルニチンの生産
に応用される(特願昭61−198175号)産業上有
用なものであり、その効率的な製造法が産業上有用なこ
とも明白である。
従来の技術
従来、L−カルニチンの製法としては合成法により見ら
れたDL−カルニチンをジアステレオマー法によ遵光学
分割したり、最近では若干の生化学的方法が提案されて
いる(公開特公昭59−183694号、同59−11
8093号など)。しかし、これらの方法は、操作が繁
雑であったシ、原料、酵素が高価であっ;t9、酵素が
不安定であったり、高価な補酵素を必要とするなど、工
業的には不満足なものといわされるをえない。DL−カ
ルニチン合成の中間体からも一カルニチンをえるために
使用する本発明の酵素カルニチンアミドヒドロラーゼに
ついては従来全く知見がなく、本発明者らによって発見
されたものである。当然のことながら本酵素の生産にカ
ルニチンアミド、カルニチン、γ−プチロペタインを培
地に添加することの効果も新知見である。
れたDL−カルニチンをジアステレオマー法によ遵光学
分割したり、最近では若干の生化学的方法が提案されて
いる(公開特公昭59−183694号、同59−11
8093号など)。しかし、これらの方法は、操作が繁
雑であったシ、原料、酵素が高価であっ;t9、酵素が
不安定であったり、高価な補酵素を必要とするなど、工
業的には不満足なものといわされるをえない。DL−カ
ルニチン合成の中間体からも一カルニチンをえるために
使用する本発明の酵素カルニチンアミドヒドロラーゼに
ついては従来全く知見がなく、本発明者らによって発見
されたものである。当然のことながら本酵素の生産にカ
ルニチンアミド、カルニチン、γ−プチロペタインを培
地に添加することの効果も新知見である。
発明が解決しようとする問題点と問題を解決するための
手段 本発明者らはL−カルニチンの有用性に着目して、エピ
クロルヒドリンから出発する、もっとも効率的なりL−
カルニチン合成法の中間体であるDL−カルニチンニト
リルあるいはDL−カルニチンアミドから生化学的に直
接り一カルニチンをえる方法について研究を重ね、広く
保存微生物は勿論、自然界から新しく分離した微生物の
研究結果、新規酵素カルニチンアミドヒドロラーゼを発
見し、さらにこの酵素の生産方法について研究した結果
本発明を完成するに至った。
手段 本発明者らはL−カルニチンの有用性に着目して、エピ
クロルヒドリンから出発する、もっとも効率的なりL−
カルニチン合成法の中間体であるDL−カルニチンニト
リルあるいはDL−カルニチンアミドから生化学的に直
接り一カルニチンをえる方法について研究を重ね、広く
保存微生物は勿論、自然界から新しく分離した微生物の
研究結果、新規酵素カルニチンアミドヒドロラーゼを発
見し、さらにこの酵素の生産方法について研究した結果
本発明を完成するに至った。
作用
本発明はn−カルニチンアミドを加水分解してL−カル
ニチンとアンモニアを生成する反応を触媒する新規酵素
カルニチンアミドヒドロラーゼおよびその効率的製造法
を提供するものである。
ニチンとアンモニアを生成する反応を触媒する新規酵素
カルニチンアミドヒドロラーゼおよびその効率的製造法
を提供するものである。
本酵素の基質はL−カルニチンアミドであり、D−カル
ニチンアミドには作用しないので、DL−カルニチンア
ミドに本酵素を作用せしめると、L−カルニチンアミド
がL−カルニチンとなり、作用されなかったD−カルニ
チンアミドは残留するので両者を適当な方法により分離
し、L−カルニチンおよびD−カルニチンアミド(さら
にはD−カルニチン)をえることができる。
ニチンアミドには作用しないので、DL−カルニチンア
ミドに本酵素を作用せしめると、L−カルニチンアミド
がL−カルニチンとなり、作用されなかったD−カルニ
チンアミドは残留するので両者を適当な方法により分離
し、L−カルニチンおよびD−カルニチンアミド(さら
にはD−カルニチン)をえることができる。
本酵素を生産する微生物は、本酵素の生産能に基いて自
然界から分離し、使用できるが、具体例としてはシュー
ドモナス属の細菌、例えばシュードモナス属細菌0A2
7E1(微工研菌寄第8912号)、シュードモナス属
細菌CA30−11B(微工研菌寄第8910号)、シ
ュードモナス属細菌caza−soA(微工研菌寄第8
909号)、シュードモナス属細菌OA10−1−5
(微工研菌寄第9808号)、シュードモナス属細菌0
A32−(!(微工研菌寄第8911号)、シュードモ
ナス属細菌CA30−55(微工研菌寄第8907号)
をあげることができる。これらの菌株の分類学的性質は
特願昭61−198173号に記載した通りであるが次
の如くである。
然界から分離し、使用できるが、具体例としてはシュー
ドモナス属の細菌、例えばシュードモナス属細菌0A2
7E1(微工研菌寄第8912号)、シュードモナス属
細菌CA30−11B(微工研菌寄第8910号)、シ
ュードモナス属細菌caza−soA(微工研菌寄第8
909号)、シュードモナス属細菌OA10−1−5
(微工研菌寄第9808号)、シュードモナス属細菌0
A32−(!(微工研菌寄第8911号)、シュードモ
ナス属細菌CA30−55(微工研菌寄第8907号)
をあげることができる。これらの菌株の分類学的性質は
特願昭61−198173号に記載した通りであるが次
の如くである。
これらの分離菌は、何れもダラム陰性、好気性の桿−菌
であり、バーゼーズ、マニュアル・オプ・システマチッ
ク・バクテリオロジー(Eer−gey’ s Man
ual of Systematic Eacte
riology )第1巻(1984年)に従うと以
下に記載する性質から、同書の分類セクション4のシュ
ードモナダシ工科(Pseudomonadaceae
) の中のシュードモナス(’Pseudomon
as )属に属する。
であり、バーゼーズ、マニュアル・オプ・システマチッ
ク・バクテリオロジー(Eer−gey’ s Man
ual of Systematic Eacte
riology )第1巻(1984年)に従うと以
下に記載する性質から、同書の分類セクション4のシュ
ードモナダシ工科(Pseudomonadaceae
) の中のシュードモナス(’Pseudomon
as )属に属する。
以下、分離株の性質の共通性に基いて、若干のグループ
に分けて分類学的性質を記載する。
に分けて分類学的性質を記載する。
先ず全分離株に共通する性質を述べると、上記したとお
り、何れもダラム陰性、好気性の桿菌であり、大きさは
O,S〜0.8 X 0.7〜5.0ミクロンと比較的
小さいものから、1.2〜1.5×2.4〜4,2ミク
ロンと比較的大きいものまである(第1表参照)。通常
の条件で多形性は認められず、抗酸性もない。胞子をつ
くらず、運動性で極べん毛を有する。肉汁寒天培養でコ
ロニーは小さく、周縁は金縁、隆起は半レンズ−凸状、
表面は平滑で、光沢は半透明、乳白色〜灰白色(OA3
0−55のみは別記するように菌体が黄色)、肉汁液体
培養で、表面の生育はなく中等度に濁った生育をする。
り、何れもダラム陰性、好気性の桿菌であり、大きさは
O,S〜0.8 X 0.7〜5.0ミクロンと比較的
小さいものから、1.2〜1.5×2.4〜4,2ミク
ロンと比較的大きいものまである(第1表参照)。通常
の条件で多形性は認められず、抗酸性もない。胞子をつ
くらず、運動性で極べん毛を有する。肉汁寒天培養でコ
ロニーは小さく、周縁は金縁、隆起は半レンズ−凸状、
表面は平滑で、光沢は半透明、乳白色〜灰白色(OA3
0−55のみは別記するように菌体が黄色)、肉汁液体
培養で、表面の生育はなく中等度に濁った生育をする。
一部の菌(CA−520f;r:代表株とする第7群)
では葉片状の沈でんを生ずるが、他の株では沈でんはな
い。
では葉片状の沈でんを生ずるが、他の株では沈でんはな
い。
ゼラチンを液化せず、MRテスl−1VPテスト、イン
ドールの生成、でん粉の加水分解は何れも陰性である。
ドールの生成、でん粉の加水分解は何れも陰性である。
無機窒素源(硝酸塩およびアンモニウム塩)の利用はコ
ハク酸培地で何れも陽性である。オキシダーゼ、カタラ
ーゼはともに陽性であり、O−Fテストは酸化的である
。
ハク酸培地で何れも陽性である。オキシダーゼ、カタラ
ーゼはともに陽性であり、O−Fテストは酸化的である
。
クエン酸の利用は81monの培地で何れも陽性である
。リドマスミルクでは、0A27E1を代表株する1群
が反応をアルカリとし、リドマスを還元するが、他の株
では変化がない(凝固、液化ももちろんない)。
。リドマスミルクでは、0A27E1を代表株する1群
が反応をアルカリとし、リドマスを還元するが、他の株
では変化がない(凝固、液化ももちろんない)。
糖からの酸生成は第1表に示した以外に、0A50−3
5を除いて何れも、L−アラビノース、D−マンノース
、D−7ラクトース、シュクロース、マルトース、D
−) VJSCI −ス、D−ソルビット、D−マンノ
ース、D−フラクトース、グリセリン、でん粉に対して
陰性である。
5を除いて何れも、L−アラビノース、D−マンノース
、D−7ラクトース、シュクロース、マルトース、D
−) VJSCI −ス、D−ソルビット、D−マンノ
ース、D−フラクトース、グリセリン、でん粉に対して
陰性である。
以下、分離株の性質から更に共通の性質をもつものを群
別して、I、■、m、y、v、 ■の群に分けて分類的
性質を第1表に記載する。
別して、I、■、m、y、v、 ■の群に分けて分類的
性質を第1表に記載する。
以上のような性質を有する菌は夫々の群について数珠づ
つ分離されている。これらの菌をパーゼエーズ・マニュ
アル・オプ・システマチック・バクテリオロジー1、第
1巻(1984年)に従って同定すると、伺えもシュー
ドモナス(Pseudomonas )属に属すると認
められた。
つ分離されている。これらの菌をパーゼエーズ・マニュ
アル・オプ・システマチック・バクテリオロジー1、第
1巻(1984年)に従って同定すると、伺えもシュー
ドモナス(Pseudomonas )属に属すると認
められた。
1群はシュードモナス・プチダ(P、 putida
’)、およびシュードモナス・ブラフイルジー(P。
’)、およびシュードモナス・ブラフイルジー(P。
dθ1afieldii )と多くの性質を共有するが
、前者とはポリβ−・・イドロキシ酪酸の蓄積で、後者
とは水溶性色素の生成、4℃の生育で異なり、他にも該
当する菌種がないので、シュードモナス属菌種(Pse
udomonas 8p、 ’) と同定して、代表
法0A27B1を微生物工業技術研究所c以下微工研と
省略す)に寄託した。■群はシュードモナス・ブラフイ
ルジーと多くの性質を共有するが、アルギニンの利用、
4℃の生育で異る。
、前者とはポリβ−・・イドロキシ酪酸の蓄積で、後者
とは水溶性色素の生成、4℃の生育で異なり、他にも該
当する菌種がないので、シュードモナス属菌種(Pse
udomonas 8p、 ’) と同定して、代表
法0A27B1を微生物工業技術研究所c以下微工研と
省略す)に寄託した。■群はシュードモナス・ブラフイ
ルジーと多くの性質を共有するが、アルギニンの利用、
4℃の生育で異る。
硫化水素の生成が陽性でpH5での生育が良好である。
該当する菌種がないのでシュードモナス属菌種(Pse
udomonas sp、 ) と同定して翫代表株
(!A30−11 Bを微工研に寄託した。■ソ 群もシュードモナス・ブラフイルキーと多くの性質を共
有するが、水溶性色素の生成、4℃の生育で異る。該当
する菌種がなく、シュードモナス属菌種(Pseudo
monas sp、 )と同定して一代表株0A28−
5OAを微工研に寄託した。
udomonas sp、 ) と同定して翫代表株
(!A30−11 Bを微工研に寄託した。■ソ 群もシュードモナス・ブラフイルキーと多くの性質を共
有するが、水溶性色素の生成、4℃の生育で異る。該当
する菌種がなく、シュードモナス属菌種(Pseudo
monas sp、 )と同定して一代表株0A28−
5OAを微工研に寄託した。
■群はシュードモナス・ブラフイルジーとアルギニンの
利用、イノシトールの利用、4℃の生育で異り、該当す
る菌種がないのでシュードモナス属菌種(Pseudo
monas ep、 ”) と同定して1代表株C!
A10−1−5’lj微工研に寄託した。
利用、イノシトールの利用、4℃の生育で異り、該当す
る菌種がないのでシュードモナス属菌種(Pseudo
monas ep、 ”) と同定して1代表株C!
A10−1−5’lj微工研に寄託した。
■群はシュードモナス・アルカリゲネス(Pseu−d
omonas alcaligenes )に似た性質
を有するが、グルコース、アルギニンの利用で異り、該
当する菌種がないので、シュードモナス属菌種(Pse
udomonas sp、 ) と同定して代表法C
A32−Cを微工研に寄託した。■詳は生育に生育因子
を必要とし、菌体が黄色である点で、キサントモナス(
Xanthomonas )属に属するともみられるが
色素の吸収がキサントモナスンと同定されないので、一
応シュードモナス属に属すると考えた。この群の菌株は
、第1表記載の糖以外にも多くの糖(L−アラビノース
、D−マンノース、D−フラクトース、D−ガラクトー
ス、マルトース、シュクロース、トレノ10−ス、’[
)−?ニトール、イノシトール)から酸を生成する。シ
ュードモナス属に該当する菌種全見出せず、シュードモ
ナス属菌種(Pseudomonas8p、)と同定し
て代表法C!A30−35を微工研に寄託した。
omonas alcaligenes )に似た性質
を有するが、グルコース、アルギニンの利用で異り、該
当する菌種がないので、シュードモナス属菌種(Pse
udomonas sp、 ) と同定して代表法C
A32−Cを微工研に寄託した。■詳は生育に生育因子
を必要とし、菌体が黄色である点で、キサントモナス(
Xanthomonas )属に属するともみられるが
色素の吸収がキサントモナスンと同定されないので、一
応シュードモナス属に属すると考えた。この群の菌株は
、第1表記載の糖以外にも多くの糖(L−アラビノース
、D−マンノース、D−フラクトース、D−ガラクトー
ス、マルトース、シュクロース、トレノ10−ス、’[
)−?ニトール、イノシトール)から酸を生成する。シ
ュードモナス属に該当する菌種全見出せず、シュードモ
ナス属菌種(Pseudomonas8p、)と同定し
て代表法C!A30−35を微工研に寄託した。
微工研に寄託した菌株名と微工研の寄託番号を対応して
表すると次のとおりである。
表すると次のとおりである。
CA27E1 ・・・微工研菌寄第8912号(:!
A30−11B・・・微工研菌寄第8910号0A2B
−5OA・・・微工研菌寄第8909号C!A10−1
−5・・・微工研菌寄第8908号CA32−0
・・・微工研菌寄第8911号(:!A30−35
・・・微工研菌寄第8907号これらの微生物の変異株
は勿論、本酵素の生産をコードす遺伝子を組み込んだ生
物も本酵素の生産に用いることができる。
A30−11B・・・微工研菌寄第8910号0A2B
−5OA・・・微工研菌寄第8909号C!A10−1
−5・・・微工研菌寄第8908号CA32−0
・・・微工研菌寄第8911号(:!A30−35
・・・微工研菌寄第8907号これらの微生物の変異株
は勿論、本酵素の生産をコードす遺伝子を組み込んだ生
物も本酵素の生産に用いることができる。
カルニチンヒドロラーゼ生産微生物を培養して本酵素活
性をふくむ培養物をえるには、通常の培養法によればよ
く、特に説明を要しないが、活性の高い培養物をえるに
は、培地中にカルニチンアミド、カルニチン、γ−ブチ
ロベタインの群からなる化合物の1種または1種以上を
含ませることが必要である。これらの化合物の本酵素生
産に対する効果は実施例1に示す如くで、これらの化合
物の1種または1種以上を含む培地では、これらの化合
物を含まない培地に比して本酵素生産量が格段に増大す
ることが本発明により見いだされたのである。
性をふくむ培養物をえるには、通常の培養法によればよ
く、特に説明を要しないが、活性の高い培養物をえるに
は、培地中にカルニチンアミド、カルニチン、γ−ブチ
ロベタインの群からなる化合物の1種または1種以上を
含ませることが必要である。これらの化合物の本酵素生
産に対する効果は実施例1に示す如くで、これらの化合
物の1種または1種以上を含む培地では、これらの化合
物を含まない培地に比して本酵素生産量が格段に増大す
ることが本発明により見いだされたのである。
本酵素生産の為の生産菌の培養の他の条件は、使用菌が
好適な生育がえられる条件を選べばよく、この分野の技
術者の常識であるので特に言及しない。
好適な生育がえられる条件を選べばよく、この分野の技
術者の常識であるので特に言及しない。
培養時間を長くしたり、遊離剤を加えると、菌体から酵
素が遊離されるが、普通では酵素活性は菌体中に主とし
て存在する。培養終了後、培養物より遠心分離またはデ
過により菌体および不溶物を除いて粗酵素液をえる。さ
らに、菌体中に含まれるカルニチンアミドヒドロラーゼ
は、菌体の磨砕もしくは超音波処理などの手段によって
菌体を破壊して酵素を抽出することによシ粗酵素液をえ
ることができる。勿論、菌体そのものを酵素標品として
使用することもできる。
素が遊離されるが、普通では酵素活性は菌体中に主とし
て存在する。培養終了後、培養物より遠心分離またはデ
過により菌体および不溶物を除いて粗酵素液をえる。さ
らに、菌体中に含まれるカルニチンアミドヒドロラーゼ
は、菌体の磨砕もしくは超音波処理などの手段によって
菌体を破壊して酵素を抽出することによシ粗酵素液をえ
ることができる。勿論、菌体そのものを酵素標品として
使用することもできる。
粗酵素液から有機溶媒分別法、硫安分画比でん法、透析
、等電点沈でん法およびカラムクロマトグラフィーなど
、通常の酵素[!!方法を単独または組合せて用いるこ
とによシ、より精製された形のカルニチンアミドヒドロ
ラーゼをえることができる。固形培地を用いた場合は、
菌体を含む固形培地に水を加え、そのまま、または菌体
だけを集めて、先に述べた超音波処理などの手段により
粗酵素液をえることができる。
、等電点沈でん法およびカラムクロマトグラフィーなど
、通常の酵素[!!方法を単独または組合せて用いるこ
とによシ、より精製された形のカルニチンアミドヒドロ
ラーゼをえることができる。固形培地を用いた場合は、
菌体を含む固形培地に水を加え、そのまま、または菌体
だけを集めて、先に述べた超音波処理などの手段により
粗酵素液をえることができる。
カルニチンアミドヒドロラーゼの活性の測定は、カルニ
チンアミドに酵素を作用させて生成するL−カルニチン
をL−カルニチンアセチルトランスフェラーゼを用いて
定量することにより行うことができる。また妨害物質の
ない場合ハ生成するアンモニアを定量することによって
も行える。
チンアミドに酵素を作用させて生成するL−カルニチン
をL−カルニチンアセチルトランスフェラーゼを用いて
定量することにより行うことができる。また妨害物質の
ない場合ハ生成するアンモニアを定量することによって
も行える。
次に本発明の、および本発明の方法で見られる、カルニ
チンアミドヒドロラーゼの酵素化学的性質を示す。
チンアミドヒドロラーゼの酵素化学的性質を示す。
(1)作用、特異性:
L−カルニチンアミドを加水分解してL−カルニチンと
アンモニアを生成する反応を触媒する。L−カルニチン
アミドに作用するがD−カルニチンアミドには作用しな
い。またアセトアミド、ブチルアミド、アクリルアミド
、ニコチンアミド、ベンズアミドなどに作用せず既知の
一般的なアミダーゼと全くことなる。
アンモニアを生成する反応を触媒する。L−カルニチン
アミドに作用するがD−カルニチンアミドには作用しな
い。またアセトアミド、ブチルアミド、アクリルアミド
、ニコチンアミド、ベンズアミドなどに作用せず既知の
一般的なアミダーゼと全くことなる。
(2)至適pH:
種々のpHでDL−カルニチンアミド2係からのL−カ
ルニチン生成量を反応1時間後に測定した結果は第−表
に示した如くであった。この結果から至適pHは6〜7
と判定される。
ルニチン生成量を反応1時間後に測定した結果は第−表
に示した如くであった。この結果から至適pHは6〜7
と判定される。
(3) p)1安定性:
本酵素は一般にpn 5〜8の範囲で安定性が高いが特
にpH7〜8の範囲でもつとも安定である。
にpH7〜8の範囲でもつとも安定である。
(4)至適作用温度:
本酵素は26〜40℃でよく作用し、その至適作用温度
は約40℃である。20℃以下、45℃以上では活性が
低下する。
は約40℃である。20℃以下、45℃以上では活性が
低下する。
第 2 表
臀■゛:クエン酸−燐酸ナトリウム緩衝液■ニリン酸ナ
トリウム−水酸化ナトリウム緩衝液 mニホウ酸−塩化ナトリウム−炭酸ナトリウム緩衝液 (5)温度安定性: 本酵素は26℃又は4℃で7日間保存してもかなり安定
であり、−70℃での保存に比してそれぞれ62%、9
2%の活性を保持していた。45℃以上では活性は急速
に低下する。
トリウム−水酸化ナトリウム緩衝液 mニホウ酸−塩化ナトリウム−炭酸ナトリウム緩衝液 (5)温度安定性: 本酵素は26℃又は4℃で7日間保存してもかなり安定
であり、−70℃での保存に比してそれぞれ62%、9
2%の活性を保持していた。45℃以上では活性は急速
に低下する。
(6)分子tニ
ゲル濾過法(セルロファインGO−700m使用)で算
出した分子量は約56万である。
出した分子量は約56万である。
(7)阻害剤:
1mMでAg イオンが僅かに阻害を示したが他の金
属イオ7 (cu HFe # Mn t ’g rZ
n、 Go、 Mi ’) による阻害はなかった。
属イオ7 (cu HFe # Mn t ’g rZ
n、 Go、 Mi ’) による阻害はなかった。
10mMではAgイオンが顕著な阻害を示し、F’e、
Niで僅かな阻害を認めた。EDTA、2−メルカプト
エタノールも1mM、10mMで阻害を示さなかった。
Niで僅かな阻害を認めた。EDTA、2−メルカプト
エタノールも1mM、10mMで阻害を示さなかった。
以下実施例についてより詳しく説明する。
実施例1
グルコース1q6.ペプトンα5%、K、HPO4(1
75%、 KH,PO,0,25%、 Mg1904
・7 H2O0,01%、FeSO4@ 7 H2O0
,001%の組成の培地に第3表に示した化合物を加え
た各培地にシュードモナス属細菌菌抹C!A28−5O
A(微工研菌寄第8909号)を植菌して、3日間振と
う培養してえた菌体iD?、−力ルニチンアミド10憾
をふくむ反応液に、生育培養液中の濃度と同等の濃度に
けん濁して、26℃で96時間靜装反応させたときのL
−カルニチンアミドのL−カルニチンへの転換率は第3
表に示した如くであった。この結果からカルニチンアミ
ドヒドロラーゼ生成に対するカルニチンアミド、カルニ
チンおよびγ−ブチロベタインの効果は明らかである。
75%、 KH,PO,0,25%、 Mg1904
・7 H2O0,01%、FeSO4@ 7 H2O0
,001%の組成の培地に第3表に示した化合物を加え
た各培地にシュードモナス属細菌菌抹C!A28−5O
A(微工研菌寄第8909号)を植菌して、3日間振と
う培養してえた菌体iD?、−力ルニチンアミド10憾
をふくむ反応液に、生育培養液中の濃度と同等の濃度に
けん濁して、26℃で96時間靜装反応させたときのL
−カルニチンアミドのL−カルニチンへの転換率は第3
表に示した如くであった。この結果からカルニチンアミ
ドヒドロラーゼ生成に対するカルニチンアミド、カルニ
チンおよびγ−ブチロベタインの効果は明らかである。
第 3 表
実施例2
DL−カルニチンアミド0.5%を含む実施例1の培地
で培養した菌株C!A28−5OAの培養液800−か
ら菌体を集め、10MIJン酸緩衝液(pH7,0)中
で石英砂とともに菌体を磨砕して遠心分離して、無細胞
抽出液20−をえた。これに50mM’Jン酸緩衝液3
00−を加え、硫安を90%飽和に加えて生ずる沈でん
を20−の50mMリン酸緩衝液(pH7,0)にとか
し、50 m M +)ン酸緩衝液に対して透析し、見
られた酵素液40−をミリボア(Millipore
)膜(工mmersible c x 1o )を通
して濃縮しく4℃、24時間)′、4−の酵素液をえた
。これをセルロファインGo−700=(チッソ株式会
社)(粒径45〜105μm)によるゲルクロマトグラ
フィーにかけ(カラム、10×5201111%ゲル容
積70−)、0.05M )リス−塩酸(PH7,5)
+αI M KCl0液を通じて溶出し、0.5−宛分
画した。
で培養した菌株C!A28−5OAの培養液800−か
ら菌体を集め、10MIJン酸緩衝液(pH7,0)中
で石英砂とともに菌体を磨砕して遠心分離して、無細胞
抽出液20−をえた。これに50mM’Jン酸緩衝液3
00−を加え、硫安を90%飽和に加えて生ずる沈でん
を20−の50mMリン酸緩衝液(pH7,0)にとか
し、50 m M +)ン酸緩衝液に対して透析し、見
られた酵素液40−をミリボア(Millipore
)膜(工mmersible c x 1o )を通
して濃縮しく4℃、24時間)′、4−の酵素液をえた
。これをセルロファインGo−700=(チッソ株式会
社)(粒径45〜105μm)によるゲルクロマトグラ
フィーにかけ(カラム、10×5201111%ゲル容
積70−)、0.05M )リス−塩酸(PH7,5)
+αI M KCl0液を通じて溶出し、0.5−宛分
画した。
その結果、溶出分画−51でもつとも活性が高く、この
分画は280 mp の0.D、が0.039で、26
℃、60分の反応でo、5q6rnt/−のL−カルニ
チンを生成し、比活性で(占位0.D。
分画は280 mp の0.D、が0.039で、26
℃、60分の反応でo、5q6rnt/−のL−カルニ
チンを生成し、比活性で(占位0.D。
あたり)1&8であり、菌体抽出液の比活性の4181
倍の値であった。
倍の値であった。
実施例3
DL−カルニチンアミドα5%をふくむ実施例1の培地
で生育した菌株28−5OAの培養液300−から菌体
を遠心分離により集めて、石英砂と50mMリン酸緩衝
液(pH7,0)中で磨砕して、遠心分離により30−
の無細、@抽出液をえた。生菌体および無細胸抽出液を
もとの菌体量換算でそれぞれ生育培養中と同@度でDT
、+−カルニチンアミド0.2 %の反応液中で反応さ
せ、反応時間とL−カルニチンの生成量の分析結果を表
示すると第4表の如くであった。
で生育した菌株28−5OAの培養液300−から菌体
を遠心分離により集めて、石英砂と50mMリン酸緩衝
液(pH7,0)中で磨砕して、遠心分離により30−
の無細、@抽出液をえた。生菌体および無細胸抽出液を
もとの菌体量換算でそれぞれ生育培養中と同@度でDT
、+−カルニチンアミド0.2 %の反応液中で反応さ
せ、反応時間とL−カルニチンの生成量の分析結果を表
示すると第4表の如くであった。
この分析値からα5時間迄反応が直線的に進むと考え、
この速度から菌体及び抽出液の酵素力価を国際単位で表
わすと、生育培養中の菌体の力価は培養液1−あたりa
、122rq、/−÷161.2μ? (カルニチンの
1p mol ’)÷60= 0.125 u / r
ed ;抽出液では(1,1,a s my、/ td
÷161 p?÷60分=o、1su/−と計算される
。
この速度から菌体及び抽出液の酵素力価を国際単位で表
わすと、生育培養中の菌体の力価は培養液1−あたりa
、122rq、/−÷161.2μ? (カルニチンの
1p mol ’)÷60= 0.125 u / r
ed ;抽出液では(1,1,a s my、/ td
÷161 p?÷60分=o、1su/−と計算される
。
第 4 表
発明の効果
本発明は、上述したようにカルニチン合成の中間体で安
価に合成されるDL−カルニチンアミドを不斉的に加水
分解してL−カルニチンを生成する反応を触媒する新規
酵素およびその効率的製法を提供するもので、光学活性
カルニチンの製法に効率的な手段を提供するものである
。
価に合成されるDL−カルニチンアミドを不斉的に加水
分解してL−カルニチンを生成する反応を触媒する新規
酵素およびその効率的製法を提供するもので、光学活性
カルニチンの製法に効率的な手段を提供するものである
。
特許出願人 パイオール株式会社
代表者 中 山 清
中央化成品株式会社
代表者 水 島喜三部
手続補正書(自発)
昭和62年2月lS日
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、L−カルニチンアミドを加水分解してL−カルニチ
ンを生成する反応を触媒する新規酵素カルニチンアミド
ヒドロラーゼ。 2、下記の理化学的性質を有する特許請求の範囲第1項
記載の酵素カルニチンアミドヒドロラーゼ。 記 1)作用及び基質特異性 L−カルニチンアミドを加水分解してL−カルニチンと
アンモニアを生成する。 2)至適pHおよび安定pH範囲 至適pH6〜7 安定pH範囲7〜8 3)作用適温の範囲 26℃〜40℃でよく作用し、至適作用温度は40℃で
ある。 4)pH、温度などによる失活の条件 pH7〜8でもつとも安定であり、低温ほど安定である
が4℃では7日間で90% 以上の活性を保持する。 45℃以上では急速に失活する。 5)分子量 ゲルろ過法による測定で約3.6万 (セルロフアインGC−700m使用) 6)阻害剤 高濃度(10mM)の銀イオンにより阻害される。ED
TA、2−メルカプトエタノールは10mMでも阻害し
ない。 3、カルニチンアミド、カルニチン、γ−ブチロベタイ
ンの群からなる化合物の1種または1種以上をふくむ培
地中で微生物に培養することを特徴とするカルニチンア
ミドヒドロラーゼの製造法。
Priority Applications (9)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9193887A JPH0191780A (ja) | 1987-04-16 | 1987-04-16 | カルニチンアミドヒドロラ−ゼおよびその製造法 |
| GB8719507A GB2195630B (en) | 1986-08-26 | 1987-08-18 | Method for producing carnitine, l-carnitineamide hydrolase and method for producing same |
| CH2910/89A CH679401A5 (ja) | 1986-08-26 | 1987-08-24 | |
| IT8748319A IT1211732B (it) | 1986-08-26 | 1987-08-24 | Per la sua produzione metodo per produrre carnitina ,lcarnitinammide idrolasi e metodo |
| CH3239/87A CH674018A5 (ja) | 1986-08-26 | 1987-08-24 | |
| DE19873728321 DE3728321A1 (de) | 1986-08-26 | 1987-08-25 | Verfahren zur herstellung von carnitin, l-carnitinamid-hydrolase und verfahren zu ihrer gewinnung |
| FR878711963A FR2603303B1 (fr) | 1986-08-26 | 1987-08-26 | Procede de preparation de la carnitine par hydrolyse du carnitinamide, l'enzyme nouvelle utilisee dans ce procede et sa preparation |
| US07/089,454 US4918012A (en) | 1986-08-26 | 1987-08-26 | Method for producing carnitine, L-carnitinamide hydrolase and method for producing same |
| KR870009312A KR880003009A (ko) | 1986-08-26 | 1987-08-26 | 카르니틴의 제조방법 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9193887A JPH0191780A (ja) | 1987-04-16 | 1987-04-16 | カルニチンアミドヒドロラ−ゼおよびその製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0191780A true JPH0191780A (ja) | 1989-04-11 |
Family
ID=14040534
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9193887A Pending JPH0191780A (ja) | 1986-08-26 | 1987-04-16 | カルニチンアミドヒドロラ−ゼおよびその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0191780A (ja) |
-
1987
- 1987-04-16 JP JP9193887A patent/JPH0191780A/ja active Pending
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