JPH0221797B2 - - Google Patents
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- Publication number
- JPH0221797B2 JPH0221797B2 JP60265860A JP26586085A JPH0221797B2 JP H0221797 B2 JPH0221797 B2 JP H0221797B2 JP 60265860 A JP60265860 A JP 60265860A JP 26586085 A JP26586085 A JP 26586085A JP H0221797 B2 JPH0221797 B2 JP H0221797B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- aminoacylase
- acetyl
- valine
- reaction
- bacterial cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
(産業上の技術分野)
本発明はD−アミノアシラーゼの製造法に関す
る。さらに詳しくはD−アミノアシラーゼ生産能
力を持つストレプトミセス属の微生物の変異処理
により得られるL−アミノアシラーゼ生産能欠損
変異株を栄養培地中で培養し、D−アミノアシラ
ーゼを生成蓄積せしめ、これを採取する方法に関
する。この発明は例えば近年抗生物質の側鎖やペ
プチド医薬品等の用途に求められる光学純度の高
いD−アミノ酸の製造等に極めて有効な酸素の製
造方法を提供しようとするものである。 (従来技術) D−アミノアシラーゼの製造方法として、これ
までにシユードモナス(Pseudomonas)属細菌
による方法(ネイチヤー(Naiture)、181、1225
(1952))、フアカルタテイブ・メタノール資化性
菌による方法(特開昭55−42534)および本発明
者の一人である杉江らのストレプトミセス
(Streptomyces)属放線菌による方法(特開昭53
−59092)が知られている。 (発明が解決しようとする問題点) しかしながら、これらいずれの方法もD−選択
性に問題がある。即ち、これらの微生物を用いて
D−アミノアシラーゼを生産する時、いずれも同
時にL−アミノアシラーゼが生産され、採取した
菌体あるいは菌体から超音波等により抽出した粗
酵素液を用いての反応で得られる目的生産物の光
学純度は十分に満足し得るものではない。 (問題点を解決するための手段) かかる事情を鑑がみ、本発明者らはD−アミノ
アシラーゼの工業生産を目的にD−アミノアシラ
ーゼ生産菌の改良につき鋭意検討の結果ストレプ
トミセス属のD−アミノアシラーゼ生産菌の変異
株の中からD−アミノアシラーゼ生産能を維持し
たままで、不要酵素であるL−アミノアシラーゼ
生産能が実質的に欠損した菌株を見いだし本発明
を完成した。従来、D−アミノアシラーゼ生産菌
に関する育種については全く報告はなく、本発明
者らにより、はじめて得られたものである。 (使用する微生物) 本発明で使用する微生物はストレプトミセス属
に属するD−アミノアシラーゼ生産菌を親株とし
て、これに通常の変異誘導操作、例えば紫外線、
X−線照射あるいはN−ニトロソグアニジン
(NTGと略す)、亜硝酸等の化学薬剤処理を施し、
変異処理した菌株の中からL−アミノアシラーゼ
活性の欠損した菌株を選択することにより得られ
るものであればいずれも用いることができ、L−
アミノアシラーゼ活性の欠損している点で先行技
術で用いられた菌と区別できる。好適な菌株の具
体例としてはストレプトミセス・ツイルス
(Streptomyces tuirus)IFO13418から誘導され
たL−アミノアシラーゼ欠損変異株であるストレ
プトミセス・ツイルスO−33(微工研菌寄第8446
号)が挙げられる。 (変異誘導法) 次に本発明で使用する変異株の選抜方法を以下
の実験例にて示す。 実験例 ストレプトミセス・ツイルスIFO13418を第一
表に示す寒天斜面培地で培養し、生育した菌体を
0.01%ツイーン80を含む生理食塩水に懸濁させ
る。これを無菌ガーゼでろ過し胞子懸濁液(106
〜107コ/mlの胞子を含む)を得る。これにNTG
を加え(濃度29μg/ml)、30℃で30〜90分イン
キユベートする。続いて胞子を生理食塩水で2回
洗浄した後、第一表に示す寒天平板培地に塗沫
し、30℃で、6〜12日培養した。生育したコロニ
ーを第二表に示す液体培地で30℃、2〜4日間培
養する。得られた菌体を集め0.1Mリン酸バツフ
アー(PH7.0)で洗浄した後、N−アセチル−L
−アミノ酸と共に30℃で24時間反応させる。菌体
を除いた反応液中のアミノ酸の有無をチエツクす
ることによりL−アミノアシラーゼ生産能の低下
または欠損した変異株を選抜した。さらにN−ア
セチル−DL−アミノ酸を基質にした反応で二次
評価を行ない、親株と同等以上のD−アミノアシ
ラーゼ生産能を維持し、かつL−アミノアシラー
ゼ生産能の著しく低下した変異株をえた。この菌
株はストレプトミセス・ツイルス0−33(微工研
菌寄第8446号)として寄託した。 (変異株の培養方法) 本発明の変異株は、通常の栄養源、即ち炭素
源、窒素源、無機塩類の存在下で行なわれる。こ
の酵素生産誘導物質として、D−またはDL−フ
エニルグリシン、D−またはDL−バリン、D−
またはDL−ロイシンなどのD−またはDL−アミ
ノ酸、またはD−またはDL−アミノ酸の誘導体、
例えばN−アセチル−D−またはDL−フエニル
グリシンなどを例示できる。また窒素源としては
有機窒素の添加が必要で、例えばポリペプトン、
肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカーな
どを適宜添加し、また必要に応じて、培地1ml当
たり100μg程度の塩化コバルトを添加してもよ
い。培養はPH5〜8の範囲で可能であるが、PH6
〜7の範囲内で行なうのがより望ましく、また培
養温度は20〜37℃の範囲で可能であるが、30℃が
より望ましい。培養には酸素の供給が必要で、通
気撹はんを行なう必要がある。 (酵素の回収と反応方法) 本発明で得られるD−アミノアシラーゼは主に
菌体内に生産されるので、得られた菌体を水洗
後、酵素剤として回収してもよく、あるいは、常
法により菌体を破砕またはリゾチーム等で溶菌し
て酵素を抽出し、これを酵素剤として回収しても
よい。酵素剤で連続酵素反応を行なうには、水洗
菌体をそのまま使用してもよく、またこれをポリ
アクリルアミド等で包括したり、菌体から抽出し
た酵素を常法により固定化したものも使用可能で
ある。 (発明の効果) D−アミノ酸等の有用な光学活性化合物の製造
に有用なD−アミノアシラーゼの工業生産への最
大の欠点であつた菌体内のきよう雑L−アミノア
シラーゼを菌株の育種により克服した。本発明の
変異株を用いることにより、菌体からの抽出酵素
または菌体をそのまま酵素反応に利用するいずれ
の方法でも高純度のD−アミノアシラーゼ活性を
容易に得ることができ産業上の効果は極めて大き
いものである。 以下、本発明を実施例により詳述するが本発明
はこれらの実施例に限定されるものではない。
る。さらに詳しくはD−アミノアシラーゼ生産能
力を持つストレプトミセス属の微生物の変異処理
により得られるL−アミノアシラーゼ生産能欠損
変異株を栄養培地中で培養し、D−アミノアシラ
ーゼを生成蓄積せしめ、これを採取する方法に関
する。この発明は例えば近年抗生物質の側鎖やペ
プチド医薬品等の用途に求められる光学純度の高
いD−アミノ酸の製造等に極めて有効な酸素の製
造方法を提供しようとするものである。 (従来技術) D−アミノアシラーゼの製造方法として、これ
までにシユードモナス(Pseudomonas)属細菌
による方法(ネイチヤー(Naiture)、181、1225
(1952))、フアカルタテイブ・メタノール資化性
菌による方法(特開昭55−42534)および本発明
者の一人である杉江らのストレプトミセス
(Streptomyces)属放線菌による方法(特開昭53
−59092)が知られている。 (発明が解決しようとする問題点) しかしながら、これらいずれの方法もD−選択
性に問題がある。即ち、これらの微生物を用いて
D−アミノアシラーゼを生産する時、いずれも同
時にL−アミノアシラーゼが生産され、採取した
菌体あるいは菌体から超音波等により抽出した粗
酵素液を用いての反応で得られる目的生産物の光
学純度は十分に満足し得るものではない。 (問題点を解決するための手段) かかる事情を鑑がみ、本発明者らはD−アミノ
アシラーゼの工業生産を目的にD−アミノアシラ
ーゼ生産菌の改良につき鋭意検討の結果ストレプ
トミセス属のD−アミノアシラーゼ生産菌の変異
株の中からD−アミノアシラーゼ生産能を維持し
たままで、不要酵素であるL−アミノアシラーゼ
生産能が実質的に欠損した菌株を見いだし本発明
を完成した。従来、D−アミノアシラーゼ生産菌
に関する育種については全く報告はなく、本発明
者らにより、はじめて得られたものである。 (使用する微生物) 本発明で使用する微生物はストレプトミセス属
に属するD−アミノアシラーゼ生産菌を親株とし
て、これに通常の変異誘導操作、例えば紫外線、
X−線照射あるいはN−ニトロソグアニジン
(NTGと略す)、亜硝酸等の化学薬剤処理を施し、
変異処理した菌株の中からL−アミノアシラーゼ
活性の欠損した菌株を選択することにより得られ
るものであればいずれも用いることができ、L−
アミノアシラーゼ活性の欠損している点で先行技
術で用いられた菌と区別できる。好適な菌株の具
体例としてはストレプトミセス・ツイルス
(Streptomyces tuirus)IFO13418から誘導され
たL−アミノアシラーゼ欠損変異株であるストレ
プトミセス・ツイルスO−33(微工研菌寄第8446
号)が挙げられる。 (変異誘導法) 次に本発明で使用する変異株の選抜方法を以下
の実験例にて示す。 実験例 ストレプトミセス・ツイルスIFO13418を第一
表に示す寒天斜面培地で培養し、生育した菌体を
0.01%ツイーン80を含む生理食塩水に懸濁させ
る。これを無菌ガーゼでろ過し胞子懸濁液(106
〜107コ/mlの胞子を含む)を得る。これにNTG
を加え(濃度29μg/ml)、30℃で30〜90分イン
キユベートする。続いて胞子を生理食塩水で2回
洗浄した後、第一表に示す寒天平板培地に塗沫
し、30℃で、6〜12日培養した。生育したコロニ
ーを第二表に示す液体培地で30℃、2〜4日間培
養する。得られた菌体を集め0.1Mリン酸バツフ
アー(PH7.0)で洗浄した後、N−アセチル−L
−アミノ酸と共に30℃で24時間反応させる。菌体
を除いた反応液中のアミノ酸の有無をチエツクす
ることによりL−アミノアシラーゼ生産能の低下
または欠損した変異株を選抜した。さらにN−ア
セチル−DL−アミノ酸を基質にした反応で二次
評価を行ない、親株と同等以上のD−アミノアシ
ラーゼ生産能を維持し、かつL−アミノアシラー
ゼ生産能の著しく低下した変異株をえた。この菌
株はストレプトミセス・ツイルス0−33(微工研
菌寄第8446号)として寄託した。 (変異株の培養方法) 本発明の変異株は、通常の栄養源、即ち炭素
源、窒素源、無機塩類の存在下で行なわれる。こ
の酵素生産誘導物質として、D−またはDL−フ
エニルグリシン、D−またはDL−バリン、D−
またはDL−ロイシンなどのD−またはDL−アミ
ノ酸、またはD−またはDL−アミノ酸の誘導体、
例えばN−アセチル−D−またはDL−フエニル
グリシンなどを例示できる。また窒素源としては
有機窒素の添加が必要で、例えばポリペプトン、
肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカーな
どを適宜添加し、また必要に応じて、培地1ml当
たり100μg程度の塩化コバルトを添加してもよ
い。培養はPH5〜8の範囲で可能であるが、PH6
〜7の範囲内で行なうのがより望ましく、また培
養温度は20〜37℃の範囲で可能であるが、30℃が
より望ましい。培養には酸素の供給が必要で、通
気撹はんを行なう必要がある。 (酵素の回収と反応方法) 本発明で得られるD−アミノアシラーゼは主に
菌体内に生産されるので、得られた菌体を水洗
後、酵素剤として回収してもよく、あるいは、常
法により菌体を破砕またはリゾチーム等で溶菌し
て酵素を抽出し、これを酵素剤として回収しても
よい。酵素剤で連続酵素反応を行なうには、水洗
菌体をそのまま使用してもよく、またこれをポリ
アクリルアミド等で包括したり、菌体から抽出し
た酵素を常法により固定化したものも使用可能で
ある。 (発明の効果) D−アミノ酸等の有用な光学活性化合物の製造
に有用なD−アミノアシラーゼの工業生産への最
大の欠点であつた菌体内のきよう雑L−アミノア
シラーゼを菌株の育種により克服した。本発明の
変異株を用いることにより、菌体からの抽出酵素
または菌体をそのまま酵素反応に利用するいずれ
の方法でも高純度のD−アミノアシラーゼ活性を
容易に得ることができ産業上の効果は極めて大き
いものである。 以下、本発明を実施例により詳述するが本発明
はこれらの実施例に限定されるものではない。
【表】
【表】
実施例 1
可溶性デンプン2%、マルトース1%、グリセ
リン1%、ポリペプトン0.5%、酵母エキス0.5
%、肉エキス1.5%、コーンスチープリカー1%、
NaC10.5%、DL−バリン1.5%を含む栄養培地
(PH7.0)100mlに変異株0−33株(微工研菌寄第
8446号)の胞子を接種し30℃、毎分110回転で4
日間培養した。培養液から菌体を集め生理食塩水
で十分洗浄した後、0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)
に懸濁し、超音波破砕器(19.5KHz)で細胞を破
砕する。遠心分離で細胞の破片を除去して、D−
アミノアシラーゼの粗酵素液を得た。酵素反応は
0.05MのN−アセチル−DL−バリンを基質とし
て培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて、30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は、
HPLCで行なつた。分析方法はダイセル化学工業
製光学分割カラムWHを用いる方法および、キラ
ルモビールフエイズ法(J.Am.Chem.Soc.102、
5115(1980))の二つの方法で行なつた。その結
果、24時間反応後、N−アセチル−D−バリンの
99.5%がD−バリンに転換した。一方、N−アセ
チル−L−バリンは、ほとんど反応せず、わずか
に0.4%がL−バリンに転換した。キラルモビー
ルフエイズ法での分析結果を第1図に示した。培
養液1ml中の酵素が1時間に1μモルのD−バリ
ンを生ずる酵素活性を1単位とするとき、D−ア
ミノアシラーゼ活性は37単位であつた。 比較例 1 実施例1と同様の栄養培地100mlに親株である
ストレプトミセス・ツイルスIFO13418株の胞子
を接種し、30℃で毎分110回転の培養で4日間培
養した。実施例1と同様の方法で粗酵素液を得
た。0.05MのN−アセチル−DL−バリンを基質
として、培養液1mlに相当する粗酵素液を用い
て、30℃、24時間反応させた。反応生成物の分析
は実施例1と同様にして行なつた。24時間反応
後、N−アセチル−D−バリンの90%がD−バリ
ンに転換した。一方のN−アセチル−L−バリン
は48.6%がL−バリンに転換した。キラルモビー
ルフエイズ法での分析結果を第2図に示した。 実施例 2 実施例1と同様の栄養培地で変異株0−33株を
培養し、同様の操作で粗酵素液を得た。0.05Mの
N−アセチル−DL−フエニルグリシンを基質と
して培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は実施
例1と同様にして行なつた。24時間反応後、N−
アセチル−D−フエニルグリシンの100%がD−
フエニルグリシンに転換していた。一方、N−ア
セチル−L−フエニルグリシンは全く反応しなか
つた。 比較例 2 比較例1と同様にして粗酵素液を得た。0.05M
のN−アセチル−DL−フエニルグリシンを基質
として培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は実施
例1と同様にしておこなつた。24時間反応後、N
−アセチル−D−フエニルグリシンの84.8%がD
−フエニルグリシンに転換した。一方、N−アセ
チル−L−フエニルグリシンは13.3%がL−フエ
ニルグリシンに転換した。 実施例 3 実施例1で示した栄養培地で変異株0−33株を
培養し、菌体を集めた。さらに、この菌体を十分
洗浄した後、0.05MのN−アセチル−DL−バリ
ンを基質に、培養液1mlに相当する菌体懸濁液を
用いて30℃で酵素反応させた。10時間反応後、N
−アセチル−D−バリンの86%がD−バリンに転
換した。一方、N−アセチル−L−バリンは全く
反応しなかつた。
リン1%、ポリペプトン0.5%、酵母エキス0.5
%、肉エキス1.5%、コーンスチープリカー1%、
NaC10.5%、DL−バリン1.5%を含む栄養培地
(PH7.0)100mlに変異株0−33株(微工研菌寄第
8446号)の胞子を接種し30℃、毎分110回転で4
日間培養した。培養液から菌体を集め生理食塩水
で十分洗浄した後、0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)
に懸濁し、超音波破砕器(19.5KHz)で細胞を破
砕する。遠心分離で細胞の破片を除去して、D−
アミノアシラーゼの粗酵素液を得た。酵素反応は
0.05MのN−アセチル−DL−バリンを基質とし
て培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて、30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は、
HPLCで行なつた。分析方法はダイセル化学工業
製光学分割カラムWHを用いる方法および、キラ
ルモビールフエイズ法(J.Am.Chem.Soc.102、
5115(1980))の二つの方法で行なつた。その結
果、24時間反応後、N−アセチル−D−バリンの
99.5%がD−バリンに転換した。一方、N−アセ
チル−L−バリンは、ほとんど反応せず、わずか
に0.4%がL−バリンに転換した。キラルモビー
ルフエイズ法での分析結果を第1図に示した。培
養液1ml中の酵素が1時間に1μモルのD−バリ
ンを生ずる酵素活性を1単位とするとき、D−ア
ミノアシラーゼ活性は37単位であつた。 比較例 1 実施例1と同様の栄養培地100mlに親株である
ストレプトミセス・ツイルスIFO13418株の胞子
を接種し、30℃で毎分110回転の培養で4日間培
養した。実施例1と同様の方法で粗酵素液を得
た。0.05MのN−アセチル−DL−バリンを基質
として、培養液1mlに相当する粗酵素液を用い
て、30℃、24時間反応させた。反応生成物の分析
は実施例1と同様にして行なつた。24時間反応
後、N−アセチル−D−バリンの90%がD−バリ
ンに転換した。一方のN−アセチル−L−バリン
は48.6%がL−バリンに転換した。キラルモビー
ルフエイズ法での分析結果を第2図に示した。 実施例 2 実施例1と同様の栄養培地で変異株0−33株を
培養し、同様の操作で粗酵素液を得た。0.05Mの
N−アセチル−DL−フエニルグリシンを基質と
して培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は実施
例1と同様にして行なつた。24時間反応後、N−
アセチル−D−フエニルグリシンの100%がD−
フエニルグリシンに転換していた。一方、N−ア
セチル−L−フエニルグリシンは全く反応しなか
つた。 比較例 2 比較例1と同様にして粗酵素液を得た。0.05M
のN−アセチル−DL−フエニルグリシンを基質
として培養液1mlに相当する粗酵素液を用いて30
℃、24時間反応させた。反応生成物の分析は実施
例1と同様にしておこなつた。24時間反応後、N
−アセチル−D−フエニルグリシンの84.8%がD
−フエニルグリシンに転換した。一方、N−アセ
チル−L−フエニルグリシンは13.3%がL−フエ
ニルグリシンに転換した。 実施例 3 実施例1で示した栄養培地で変異株0−33株を
培養し、菌体を集めた。さらに、この菌体を十分
洗浄した後、0.05MのN−アセチル−DL−バリ
ンを基質に、培養液1mlに相当する菌体懸濁液を
用いて30℃で酵素反応させた。10時間反応後、N
−アセチル−D−バリンの86%がD−バリンに転
換した。一方、N−アセチル−L−バリンは全く
反応しなかつた。
第1図は実施例1で得られた酵素反応液の、
HPLCによる分析のクロマトグラムを示したもの
である。第2図は比較例1で得られた酵素反応液
の、HPLCによる分析のクロマトグラムを示した
ものである。
HPLCによる分析のクロマトグラムを示したもの
である。第2図は比較例1で得られた酵素反応液
の、HPLCによる分析のクロマトグラムを示した
ものである。
Claims (1)
- 1 ストレプトミセス属に属し、L−アミノアシ
ラーゼ生産能が実質的に欠損し、かつD−アミノ
アシラーゼ生産能を有する微生物を栄養培地中で
培養し、D−アミノアシラーゼを生成・採取する
ことを特徴とするD−アミノアシラーゼの製造
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60265860A JPS62126976A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | D−アミノアシラ−ゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60265860A JPS62126976A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | D−アミノアシラ−ゼの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62126976A JPS62126976A (ja) | 1987-06-09 |
| JPH0221797B2 true JPH0221797B2 (ja) | 1990-05-16 |
Family
ID=17423087
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60265860A Granted JPS62126976A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | D−アミノアシラ−ゼの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62126976A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05243773A (ja) * | 1992-03-03 | 1993-09-21 | Fujitsu Ltd | プリント板シェルフ |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0783711B2 (ja) * | 1987-06-29 | 1995-09-13 | ダイセル化学工業株式会社 | 新規なd―アミノアシラーゼの製造法 |
| JP2000041684A (ja) | 1998-07-29 | 2000-02-15 | Daicel Chem Ind Ltd | 新規なd−アミノアシラーゼおよびその製造方法、並びに該d−アミノアシラーゼを利用したd−アミノ酸の製造方法 |
| KR20010075649A (ko) * | 1998-10-20 | 2001-08-09 | 마르크 젠너 | 아미노아실라제 및 이를 사용한 디-아미노산의 제조방법 |
-
1985
- 1985-11-26 JP JP60265860A patent/JPS62126976A/ja active Granted
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05243773A (ja) * | 1992-03-03 | 1993-09-21 | Fujitsu Ltd | プリント板シェルフ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS62126976A (ja) | 1987-06-09 |
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