JPH047759B2 - - Google Patents
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- JPH047759B2 JPH047759B2 JP19722086A JP19722086A JPH047759B2 JP H047759 B2 JPH047759 B2 JP H047759B2 JP 19722086 A JP19722086 A JP 19722086A JP 19722086 A JP19722086 A JP 19722086A JP H047759 B2 JPH047759 B2 JP H047759B2
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Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
<産業上の利用分野>
本発明は抗体タンパクを固定化する方法に関す
る。更に詳しくは、水溶性抗体タンパクを、その
抗原−抗体反応活性を完全に保持しながら固体基
板上に該タンパクを高密度に固定化する方法に関
する。
る。更に詳しくは、水溶性抗体タンパクを、その
抗原−抗体反応活性を完全に保持しながら固体基
板上に該タンパクを高密度に固定化する方法に関
する。
<背景及び従来技術>
抗体タンパクの抗原−抗体反応を利用した診断
技術に於て、抗体タンパクを固体基板上に固定化
する方法がこれまで数多く提案されてきた。これ
らの内、あるものは、抗体タンパクのアミノ基又
はカルボキシル基と反応又は吸着結合できる官能
基を有する固体表面に固定化するものであるが、
この場合、固定化のための反応条件の設定によつ
ては、抗体タンパクの変性や、非特異的反応によ
る活性部位の失活が起りやすいという問題点があ
つた。また、親水性ゲルの中に抗体タンパクを抱
き込ませて、固体基板上に固定化する方法も可能
性のある方法であるが、この場合、抗原タンパク
がゲル中の抗体タンパクに接近でき難くなり、抗
原−抗体反応を利用した診断材料としての感度低
下を招き易い。こうした方法に対して近年、水面
上に脂質膜を展開し、これに水中から水溶性酵素
(例、カタラーゼ,フエリチン,ヘミグロビン,
グルコースオキシダーゼ,etc.)や抗体タンパク
[免疫グロブリンG(IgG),IgE,etc]を吸着固
定化する試みが報告されている[バイオキミカ・
エト・バイオフイジカ・アクタ(Biochem.
Biophys.Acta.)225巻,382(1971)やジヤーナ
ル・オブ・セルラー・バイオケミストリー(J.
Cell.Biochem.)29,239(1985)等参照]。
技術に於て、抗体タンパクを固体基板上に固定化
する方法がこれまで数多く提案されてきた。これ
らの内、あるものは、抗体タンパクのアミノ基又
はカルボキシル基と反応又は吸着結合できる官能
基を有する固体表面に固定化するものであるが、
この場合、固定化のための反応条件の設定によつ
ては、抗体タンパクの変性や、非特異的反応によ
る活性部位の失活が起りやすいという問題点があ
つた。また、親水性ゲルの中に抗体タンパクを抱
き込ませて、固体基板上に固定化する方法も可能
性のある方法であるが、この場合、抗原タンパク
がゲル中の抗体タンパクに接近でき難くなり、抗
原−抗体反応を利用した診断材料としての感度低
下を招き易い。こうした方法に対して近年、水面
上に脂質膜を展開し、これに水中から水溶性酵素
(例、カタラーゼ,フエリチン,ヘミグロビン,
グルコースオキシダーゼ,etc.)や抗体タンパク
[免疫グロブリンG(IgG),IgE,etc]を吸着固
定化する試みが報告されている[バイオキミカ・
エト・バイオフイジカ・アクタ(Biochem.
Biophys.Acta.)225巻,382(1971)やジヤーナ
ル・オブ・セルラー・バイオケミストリー(J.
Cell.Biochem.)29,239(1985)等参照]。
これらは確かにタンパクを、その活性を保持し
たまま固定化する優れた方法であるが、この方法
に於て従来用いられてきた脂質膜は、ステアリン
酸、アラキン酸及びジパルミトイルホスフアチジ
ルコリン(DPPC)等の如く、水に対して可溶性
(少くとも、1μg/1水の溶解度)のもの、又
は水中で二分子膜ベシクルを形成しやすいもの
(DPPC等)であつた。従つて、水面上で該膜に
吸着された抗体タンパクは、時間が経つにつれ、
脂質膜と共に再び水中に再溶解したり、一旦固体
基板上に累積した後でも抗原水溶液に浸漬した
際、脱離しやすいという問題点を有していた。
たまま固定化する優れた方法であるが、この方法
に於て従来用いられてきた脂質膜は、ステアリン
酸、アラキン酸及びジパルミトイルホスフアチジ
ルコリン(DPPC)等の如く、水に対して可溶性
(少くとも、1μg/1水の溶解度)のもの、又
は水中で二分子膜ベシクルを形成しやすいもの
(DPPC等)であつた。従つて、水面上で該膜に
吸着された抗体タンパクは、時間が経つにつれ、
脂質膜と共に再び水中に再溶解したり、一旦固体
基板上に累積した後でも抗原水溶液に浸漬した
際、脱離しやすいという問題点を有していた。
<発明の目的>
本発明者らは、かかる従来技術の欠点を克服
し、高い抗原−抗体反応活性の保持率と、高密度
な抗体タンパクの固定化を可能にすべく鋭意検討
の結果、本発明に到達したものである。
し、高い抗原−抗体反応活性の保持率と、高密度
な抗体タンパクの固定化を可能にすべく鋭意検討
の結果、本発明に到達したものである。
<発明の開示>
すなわち本発明は、水相面上に展開された炭素
原子数24〜32の長鎖脂肪酸、その多価金属塩及
び/又はそのエステルの単分子膜に当該水相中に
溶解した水溶性抗体タンパクを接触させることに
より当該水相界面で抗体タンパク−単分子膜複合
体を形成させ、それを固体基板上に積層すること
を特徴とする脂質単分子膜を用いた抗体タンパク
の固定化方法である。
原子数24〜32の長鎖脂肪酸、その多価金属塩及
び/又はそのエステルの単分子膜に当該水相中に
溶解した水溶性抗体タンパクを接触させることに
より当該水相界面で抗体タンパク−単分子膜複合
体を形成させ、それを固体基板上に積層すること
を特徴とする脂質単分子膜を用いた抗体タンパク
の固定化方法である。
本発明でいう抗体タンパクとは、抗原−抗体反
応を起しうる水溶性タンパクの総称であり、その
分子中に抗原認識部位(Fabと略)と疎水性末端
部位(Fcと略)を有している。
応を起しうる水溶性タンパクの総称であり、その
分子中に抗原認識部位(Fabと略)と疎水性末端
部位(Fcと略)を有している。
かかる抗体タンパクの具体例としては、免疫グ
ロブリンG(IgGと略称),IgE,IgM及びこれら
の抗体,絨毛性性腺刺激ホルモン(HCG)抗体、
ガン胎児性抗原(CEA)抗体等があげられる。
ロブリンG(IgGと略称),IgE,IgM及びこれら
の抗体,絨毛性性腺刺激ホルモン(HCG)抗体、
ガン胎児性抗原(CEA)抗体等があげられる。
これらの抗体タンパクの固定化にあたつては、
Fab部分を変性しないようにすることが肝要であ
るが、前述の如く従来の化学反応による固定化の
場合Fab部分も反応に関与して抗体タンパクの活
性低下を招いていた。本発明においては抗体タン
パクは、後述の脂質単分子膜中にFc部位で疎水
的に相互作用しながら高密度にくみ込まれるか、
イオン的相互作用により免疫活性を高く保持した
まま単分子膜に吸着固定される。
Fab部分を変性しないようにすることが肝要であ
るが、前述の如く従来の化学反応による固定化の
場合Fab部分も反応に関与して抗体タンパクの活
性低下を招いていた。本発明においては抗体タン
パクは、後述の脂質単分子膜中にFc部位で疎水
的に相互作用しながら高密度にくみ込まれるか、
イオン的相互作用により免疫活性を高く保持した
まま単分子膜に吸着固定される。
上記の抗体タンパクを固定化するための脂質単
分子膜としては、水面上で固体上の凝縮単分子膜
を形成し、水に実質的に溶解しないものが好まし
い。そのようなものの具体例としては、炭素原子
数24〜32の長鎖脂肪酸、その多価金属塩及び/又
はそのエステルが用いられる。そのような性質を
有する化合物としては、リグノセリン酸
(C23H47COOH),セロチン酸(C25H51COOH),
モンタン酸(C27H55COOH),メリシン酸
(C29H59COOH),ラクセロン酸(C31H63COOH)
及びCnH2n+1COOM(n=23〜31,M=アルカ
リ土類金属、カドミウム、アルミニウム等の多価
金属イオン)で表わされる長鎖脂肪酸の多価金属
塩及びそれら脂肪酸のメタノール又はエタノール
とのエステルである。これらは例えばカルボン酸
又はそのエステルの状態でベンゼンやクロロホル
ム等の有機溶媒に溶解させ、0.5〜1.5ミリモル/
の溶液となしたのち、これを蒸溜水又は多価金
属塩(例えば、塩化バリウム、塩化カドミウム、
塩化アルミニウム)を含む、PH6.5〜7.5の水溶液
表面上に展開することにより、単分子膜となしう
る。次いで、該単分子膜を、その表面圧力が1〜
30mN(ミリN)/mになるように圧縮したのち、
そのままの圧縮条件で膜面下の水相に前記の抗体
タンパクを注入する。所定時間(通常、30分〜1
時間)、該抗体タンパクと水面上の単分子膜とを
接触させておくことにより、タンパクと該単分子
膜との複合化が完了する。この時点で抗体タンパ
クと単分子膜との複合体膜を、表面圧力30〜50ミ
リN/mにて再び圧縮したのち、固体基板上にラ
ングミユア・ブロジエツト法又は水平付着法(詳
細は新実験化学講座第18巻第439頁参照)により
一層又は複数層積層することができる。
分子膜としては、水面上で固体上の凝縮単分子膜
を形成し、水に実質的に溶解しないものが好まし
い。そのようなものの具体例としては、炭素原子
数24〜32の長鎖脂肪酸、その多価金属塩及び/又
はそのエステルが用いられる。そのような性質を
有する化合物としては、リグノセリン酸
(C23H47COOH),セロチン酸(C25H51COOH),
モンタン酸(C27H55COOH),メリシン酸
(C29H59COOH),ラクセロン酸(C31H63COOH)
及びCnH2n+1COOM(n=23〜31,M=アルカ
リ土類金属、カドミウム、アルミニウム等の多価
金属イオン)で表わされる長鎖脂肪酸の多価金属
塩及びそれら脂肪酸のメタノール又はエタノール
とのエステルである。これらは例えばカルボン酸
又はそのエステルの状態でベンゼンやクロロホル
ム等の有機溶媒に溶解させ、0.5〜1.5ミリモル/
の溶液となしたのち、これを蒸溜水又は多価金
属塩(例えば、塩化バリウム、塩化カドミウム、
塩化アルミニウム)を含む、PH6.5〜7.5の水溶液
表面上に展開することにより、単分子膜となしう
る。次いで、該単分子膜を、その表面圧力が1〜
30mN(ミリN)/mになるように圧縮したのち、
そのままの圧縮条件で膜面下の水相に前記の抗体
タンパクを注入する。所定時間(通常、30分〜1
時間)、該抗体タンパクと水面上の単分子膜とを
接触させておくことにより、タンパクと該単分子
膜との複合化が完了する。この時点で抗体タンパ
クと単分子膜との複合体膜を、表面圧力30〜50ミ
リN/mにて再び圧縮したのち、固体基板上にラ
ングミユア・ブロジエツト法又は水平付着法(詳
細は新実験化学講座第18巻第439頁参照)により
一層又は複数層積層することができる。
その際の抗体タンパクの固体基板上への固定化
量は、積層時の水面展開膜の基板への転移比及び
UV−吸収スペクトル強度より算出される。
量は、積層時の水面展開膜の基板への転移比及び
UV−吸収スペクトル強度より算出される。
かくして得られた基板上の複合体は、抗体タン
パクの抗原−抗体反応活性を酵素免疫診断法
(EIA)により求めた結果、すぐれた活性を示す
ものであつた。
パクの抗原−抗体反応活性を酵素免疫診断法
(EIA)により求めた結果、すぐれた活性を示す
ものであつた。
以下、実施例により本発明を更に詳しく説明す
る。
る。
実施例 1
リグノセリン酸(C23H47CO2H)8mgを25mlの
蒸留クロロホルムに溶解し蒸溜水を張つた。π−
A測定用水槽上に上記溶液100μを徐々に滴下
した。滴下終了後、水面展開膜を5分間静置した
後表面圧20mN/mになるまで仕切板を移動し
た。ヒトIgG水溶液を水槽中濃度0.03mg/mlにな
るように水中から注入した後1時間静置した。こ
の水面展開膜を、30mN/mの表面圧下で圧縮し
ながら、疎水化処理(シランカツプリング処理)
を施した石英板上に垂直浸漬引上げ法(以下、
LB法と称す)により2層累積した処、平均累積
比は0.7であつた。紫外吸収スペクトルから求め
た石英板上に累積したヒトIgGの被覆率は1.6×
10-8mol/m2であつた。この累積膜にペルオキシ
ターゼ標識抗ヒトIgG抗体(20μ/ml)液を作
用させた後、オルトフエニレンジアミン、過酸化
水素混合溶液中に浸漬して累積膜中の抗原活性を
調べた処、活性を保持していることがわかつた。
蒸留クロロホルムに溶解し蒸溜水を張つた。π−
A測定用水槽上に上記溶液100μを徐々に滴下
した。滴下終了後、水面展開膜を5分間静置した
後表面圧20mN/mになるまで仕切板を移動し
た。ヒトIgG水溶液を水槽中濃度0.03mg/mlにな
るように水中から注入した後1時間静置した。こ
の水面展開膜を、30mN/mの表面圧下で圧縮し
ながら、疎水化処理(シランカツプリング処理)
を施した石英板上に垂直浸漬引上げ法(以下、
LB法と称す)により2層累積した処、平均累積
比は0.7であつた。紫外吸収スペクトルから求め
た石英板上に累積したヒトIgGの被覆率は1.6×
10-8mol/m2であつた。この累積膜にペルオキシ
ターゼ標識抗ヒトIgG抗体(20μ/ml)液を作
用させた後、オルトフエニレンジアミン、過酸化
水素混合溶液中に浸漬して累積膜中の抗原活性を
調べた処、活性を保持していることがわかつた。
実施例 2
実施例1に於て、リグノセリン酸を用いる代り
に、ラクセロン酸(C31H63COOH)を用いて水
面展開膜を形成し水中よりヒトIgGを吸着させた
のち、石英ガラス基板上に累積した処、平均累積
比は0.82であつた。また、実施例1と同様にして
このものの抗原活性を調べた処、水中に溶解して
いるIgGと同じ程度の高い活性を保持していた。
に、ラクセロン酸(C31H63COOH)を用いて水
面展開膜を形成し水中よりヒトIgGを吸着させた
のち、石英ガラス基板上に累積した処、平均累積
比は0.82であつた。また、実施例1と同様にして
このものの抗原活性を調べた処、水中に溶解して
いるIgGと同じ程度の高い活性を保持していた。
比較例 1
ステアリン酸溶液を用いて実施例1と同様にし
て水面上に単分子膜を展開し、その後、水中にヒ
トIgGを注入した。5分間静置後、表面圧30ミリ
N/mを保つよう仕切り板を移動させた処、水面
展開膜の面積は減少し続け、ステアリン酸のIgG
水溶液中への部分溶解が見られた。この水面展開
膜を、石英ガラス板上にLB法によつて2層累積
した処、その累積比は0.41と低く、累積中に膜の
部分的剥離が観察された。この膜の抗原活性を実
施例1と同様にして評価した処、水溶液状態での
IgG活性の1/3〜1/4に低下していた。
て水面上に単分子膜を展開し、その後、水中にヒ
トIgGを注入した。5分間静置後、表面圧30ミリ
N/mを保つよう仕切り板を移動させた処、水面
展開膜の面積は減少し続け、ステアリン酸のIgG
水溶液中への部分溶解が見られた。この水面展開
膜を、石英ガラス板上にLB法によつて2層累積
した処、その累積比は0.41と低く、累積中に膜の
部分的剥離が観察された。この膜の抗原活性を実
施例1と同様にして評価した処、水溶液状態での
IgG活性の1/3〜1/4に低下していた。
Claims (1)
- 1 水相面上に展開された炭素原子数24〜32の長
鎖脂肪酸、その多価金属塩及び/又はそのエステ
ルの単分子膜に当該水相中に溶解した水溶性抗体
タンパクを接触させることにより当該水相界面で
抗体タンパク−単分子膜複合体を形成させ、それ
を固体基板上に積層することを特徴とする脂質単
分子膜を用いた抗体タンパクの固定化方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19722086A JPS6354399A (ja) | 1986-08-25 | 1986-08-25 | 脂質単分子膜を用いた抗体タンパクの固定化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP19722086A JPS6354399A (ja) | 1986-08-25 | 1986-08-25 | 脂質単分子膜を用いた抗体タンパクの固定化方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6354399A JPS6354399A (ja) | 1988-03-08 |
| JPH047759B2 true JPH047759B2 (ja) | 1992-02-12 |
Family
ID=16370833
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP19722086A Granted JPS6354399A (ja) | 1986-08-25 | 1986-08-25 | 脂質単分子膜を用いた抗体タンパクの固定化方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6354399A (ja) |
-
1986
- 1986-08-25 JP JP19722086A patent/JPS6354399A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6354399A (ja) | 1988-03-08 |
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