JPH05993B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規なヒダントイナーゼに関する。
更に詳しくは、5−置換ヒダントインを開裂加水
分解してN−カルバモイル−L−アミノ酸を生成
する活性を有する新規ヒダントイナーゼに関す
る。 〔従来の技術〕 従来、5−置換ヒダントインに作用するヒダン
トイナーゼとしては、各種動物の肝臓や腎臓、豆
科植物や微生物に存在し、ジヒドロウラシルまた
はジヒドロチミンを開裂加水分解して、それぞれ
N−カルバモイル−β−アラニンまたはN−カル
バモイル−β−アミノ−イソ酪酸に変換するとと
もに、5−置換ヒダントイン類にも作用し、立体
特異的に開裂加水分解して、光学活性N−カルバ
モイル−D−アミノ酸類に変換する作用をも有す
るジヒドロピリミジナーゼ(EC3.5.2.2)が知ら
れている(特開昭53−136583)。 一方、5−置換ヒダントインからN−カルバモ
イル−L−アミノ酸を生成する酵素としてはL−
5−カルボキシメチルヒダントインからN−カル
バモイル−L−アスパラギン酸を生成するカルボ
キシメチルヒダントイナーゼ(EC3.5.2.4)が知
られている(酵素ハンドブツク朝倉書店1982年発
行、p597)。 5−置換ヒダントインからL−アミノ酸を生成
させる方法としては、特公昭42−13850号公報に
は各種微生物の菌体又は培養液、破砕液を用い
て、L−アミノ酸を生成させる方法、特公昭45−
8633号公報にはL−リジンを製造する方法、さら
に特公昭54−2274号公報及び特公昭54−8749号公
報にはフラボバクテリムアミノゲネスを作用させ
て、5−置換ヒダントインからL−フエニルアラ
ニン及びL−トリプトフアンを製造する方法が開
示されている。本発明者らも、5置換ヒダントイ
ンに、アリスロバクター属DK−200菌株を作用
させて、L−アミノ酸を製造する方法をすでに提
案した(特願昭59−70906号明細書)。これらの方
法は医薬、化学工業用原料、食品添加物として有
用なL−アミノ酸の製造に極めて有効であり、実
用効果が期待される。 〔発明が解決しようとする問題点〕 しかしながら、これらのL−アミノ酸の製造法
において、5−置換ヒダントインを開裂加水分解
する酵素については、明らかにされていない。こ
のような酵素が入手できれば有用なL−アミノ酸
の製造が経済的に行なえ、工業的利用価値は大き
い、そこで、本発明者らは、5−置換ヒダントイ
ンから、相当するL−アミノ酸を生成する反応に
関与する微生物酵素について研究を行なつた結
果、アリスロバクター属の菌株が、5−置換ヒダ
ントインを開裂加水分解して、N−カルバモイル
−L−アミノ酸に変換する酵素を効率良く多量に
生産することを見い出し、本発明を完成するに到
つた。 〔問題点を解決するための手段〕 即ち本発明は、下記の理化学的性質を有し、且
つ5−置換ヒダントインを開裂加水分解してN−
カルバモイル−L−アミノ酸を生成する活性を有
する新規ヒダントイナーゼである。 基質特異性;5−カルボキシメチルヒダントイ
ンに作用しない。 至適PH;5−置換ヒダントインからの加水分解
反応PH8.0〜9.0 N−カルバモイル−アミノ酸からの逆反応
PH5.0〜7.0 安定PH範囲;PH5.0〜10.0 作用適温の範囲;30〜40℃ 温度安定性の範囲;35℃までは安定 阻害剤、金属イオンの影響;p−クロロマーキ
ユリベンゾエイト(PCMB)、エチレンジ
アミノテトラ酢酸によつて阻害される。コ
バルトイオン、マンガンイオン、亜鉛イオ
ンによつて活性が促進される、コバルトイ
オンは熱安定性を向上させる。 以下本発明をさらに詳細に説明する。 先ず、本酵素の理化学的性質を以下に記載す
る。 (1) 作用及び基質特異性 本酵素は、5−置換ヒダントインのL体及びD
体の開裂加水分解をし、それぞれ相当するN−カ
ルバモイル−L−アミノ酸及びN−カルバモイル
−D−アミノ酸に変換する。5−置換ヒダントイ
ンのうち、置換基に芳香環を有する5−ベンジル
ヒダントインや5−インドリルメチルヒダントイ
ン等にとくによく作用する。 しかしながら、5−カルボキシメチルヒダント
イン(DL−アスパラギン酸ヒダントイン)やDL
−グルタミン酸ヒダントイン及びヒダントインに
は作用しない。従つて、公知のカルボキシメチル
ヒダントイナーゼとは異なる新規のヒダントイナ
ーゼである。 またジヒドロウラシルやジヒドロチミンには、
ほとんど作用せず、ジヒドロピリミジナーゼとは
異なる。 (2) 至適PH 至適PHは緩衝液としてアンモニア緩
衝液(0.05Mアンモニア水−塩化アンモニウム
緩衝液、PH8.0〜10.0)を用い、5−ベンジル
ヒダントインを基質とし、温度35℃で30分間反
応させ、生成したN−カルバモイル−DL−フ
エニルアラニンを測定した場合、PH8.0−9.0で
ある。また緩衝液として、酢酸緩衝液(0.05M
酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液、PH4.0−5.5)と
リン酸緩衝液(0.05Mリン酸−カリウム−リン
酸二ナトリウム緩衝液PH5.5〜8.0)を用い、N
−カルバモイル−L−フエニルアラニン又はN
−カルバモイル−D−フエニルアラニンを基質
として、5−ベンジルヒダントイン生成を測定
した場合の至適PH5.0〜7.0である。本酵素は、
N−カルバモイル−L−アミノ酸及びN−カル
バモイル−D−アミノ酸から5−置換ヒダント
インを生成する反応即ち逆反応作用を有する。 (3) 力価の測定法 5−ベンジルヒダントイン
2.5mgを含有し、PH8.0に調整した0.02Mトリス
−塩酸バツフアー0.8mlに、10mM塩化コバル
ト0.1ml、酵素液0.1mlを加え、35℃で30分反応
を行わせる。30分後に0.1Nの塩酸1mlを加え
て反応を停止する。本反応を薄層プレートにス
ポツトし、n−ブタノール:酢酸:水=4:
1:1の展開溶媒で展開する。乾燥後、10%p
−ジメチルアミノベンズアルデヒドのアセトン
溶液(1.5N塩酸含有)で発色させ、デンシト
メトリーにより、N−カルバモイルフエニルア
ラニンの生成量を定量する。毎分1.0μモルのN
−カルバモイルフエニルアラニンを生成させる
ヒダントイナーゼの量を1単位とし、試料のヒ
ダントイナーゼ力価を算出する。 (4) 安定PHの範囲 緩衝液として、酢酸緩衝液
(0.05M酢酸−酢酸ナトリウムPH4.0〜5.5)、リ
ン酸緩衝液(0.05Mリン酸−カリウム−リン酸
=ナトリウム緩衝液PH5.5〜8.0)、アンモニア
緩衝液(0.05Mアンモニア水−塩化アンモニウ
ム緩衝液PH8.0〜10.0)、ホウ酸緩衝液(0.05M
ホウ酸−ホウ酸ナトリウムPH9.5〜11.5)を用
いて、酵素液を各PHで、35℃、30分インキユベ
ート後、残存力価を測定することによつて求め
た安定PH範囲は、5.0〜10.0である。 (5) 作用適温の範囲 PH8.0で10〜30分間作用さ
せた場合、30〜40℃の範囲が最適である。 (6) PH、温度等による失活の条件 PH4.0以下及
びPH11以上で35℃、30分インキユベートする
と、完全に失活する。PH8.0において60℃で20
分間熱処理することにより完全に失活する。 (7) 阻害、活性化及び安定化 ○イ 阻害 阻害剤無添加時の酵素活性値を100とし、それ
ぞれ、塩化ニツケル、塩化銅、ヨード酢酸、
PCMB、エチレンジアミンテトラ酢酸、窒化ナ
トリウム、ヒドロキシルアミン塩酸を添加し、PH
8.0、温度30℃、30分間反応した場合の残存活性
を表に示す。なお、本活性測定においてコバルト
イオンは添加していない。
更に詳しくは、5−置換ヒダントインを開裂加水
分解してN−カルバモイル−L−アミノ酸を生成
する活性を有する新規ヒダントイナーゼに関す
る。 〔従来の技術〕 従来、5−置換ヒダントインに作用するヒダン
トイナーゼとしては、各種動物の肝臓や腎臓、豆
科植物や微生物に存在し、ジヒドロウラシルまた
はジヒドロチミンを開裂加水分解して、それぞれ
N−カルバモイル−β−アラニンまたはN−カル
バモイル−β−アミノ−イソ酪酸に変換するとと
もに、5−置換ヒダントイン類にも作用し、立体
特異的に開裂加水分解して、光学活性N−カルバ
モイル−D−アミノ酸類に変換する作用をも有す
るジヒドロピリミジナーゼ(EC3.5.2.2)が知ら
れている(特開昭53−136583)。 一方、5−置換ヒダントインからN−カルバモ
イル−L−アミノ酸を生成する酵素としてはL−
5−カルボキシメチルヒダントインからN−カル
バモイル−L−アスパラギン酸を生成するカルボ
キシメチルヒダントイナーゼ(EC3.5.2.4)が知
られている(酵素ハンドブツク朝倉書店1982年発
行、p597)。 5−置換ヒダントインからL−アミノ酸を生成
させる方法としては、特公昭42−13850号公報に
は各種微生物の菌体又は培養液、破砕液を用い
て、L−アミノ酸を生成させる方法、特公昭45−
8633号公報にはL−リジンを製造する方法、さら
に特公昭54−2274号公報及び特公昭54−8749号公
報にはフラボバクテリムアミノゲネスを作用させ
て、5−置換ヒダントインからL−フエニルアラ
ニン及びL−トリプトフアンを製造する方法が開
示されている。本発明者らも、5置換ヒダントイ
ンに、アリスロバクター属DK−200菌株を作用
させて、L−アミノ酸を製造する方法をすでに提
案した(特願昭59−70906号明細書)。これらの方
法は医薬、化学工業用原料、食品添加物として有
用なL−アミノ酸の製造に極めて有効であり、実
用効果が期待される。 〔発明が解決しようとする問題点〕 しかしながら、これらのL−アミノ酸の製造法
において、5−置換ヒダントインを開裂加水分解
する酵素については、明らかにされていない。こ
のような酵素が入手できれば有用なL−アミノ酸
の製造が経済的に行なえ、工業的利用価値は大き
い、そこで、本発明者らは、5−置換ヒダントイ
ンから、相当するL−アミノ酸を生成する反応に
関与する微生物酵素について研究を行なつた結
果、アリスロバクター属の菌株が、5−置換ヒダ
ントインを開裂加水分解して、N−カルバモイル
−L−アミノ酸に変換する酵素を効率良く多量に
生産することを見い出し、本発明を完成するに到
つた。 〔問題点を解決するための手段〕 即ち本発明は、下記の理化学的性質を有し、且
つ5−置換ヒダントインを開裂加水分解してN−
カルバモイル−L−アミノ酸を生成する活性を有
する新規ヒダントイナーゼである。 基質特異性;5−カルボキシメチルヒダントイ
ンに作用しない。 至適PH;5−置換ヒダントインからの加水分解
反応PH8.0〜9.0 N−カルバモイル−アミノ酸からの逆反応
PH5.0〜7.0 安定PH範囲;PH5.0〜10.0 作用適温の範囲;30〜40℃ 温度安定性の範囲;35℃までは安定 阻害剤、金属イオンの影響;p−クロロマーキ
ユリベンゾエイト(PCMB)、エチレンジ
アミノテトラ酢酸によつて阻害される。コ
バルトイオン、マンガンイオン、亜鉛イオ
ンによつて活性が促進される、コバルトイ
オンは熱安定性を向上させる。 以下本発明をさらに詳細に説明する。 先ず、本酵素の理化学的性質を以下に記載す
る。 (1) 作用及び基質特異性 本酵素は、5−置換ヒダントインのL体及びD
体の開裂加水分解をし、それぞれ相当するN−カ
ルバモイル−L−アミノ酸及びN−カルバモイル
−D−アミノ酸に変換する。5−置換ヒダントイ
ンのうち、置換基に芳香環を有する5−ベンジル
ヒダントインや5−インドリルメチルヒダントイ
ン等にとくによく作用する。 しかしながら、5−カルボキシメチルヒダント
イン(DL−アスパラギン酸ヒダントイン)やDL
−グルタミン酸ヒダントイン及びヒダントインに
は作用しない。従つて、公知のカルボキシメチル
ヒダントイナーゼとは異なる新規のヒダントイナ
ーゼである。 またジヒドロウラシルやジヒドロチミンには、
ほとんど作用せず、ジヒドロピリミジナーゼとは
異なる。 (2) 至適PH 至適PHは緩衝液としてアンモニア緩
衝液(0.05Mアンモニア水−塩化アンモニウム
緩衝液、PH8.0〜10.0)を用い、5−ベンジル
ヒダントインを基質とし、温度35℃で30分間反
応させ、生成したN−カルバモイル−DL−フ
エニルアラニンを測定した場合、PH8.0−9.0で
ある。また緩衝液として、酢酸緩衝液(0.05M
酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液、PH4.0−5.5)と
リン酸緩衝液(0.05Mリン酸−カリウム−リン
酸二ナトリウム緩衝液PH5.5〜8.0)を用い、N
−カルバモイル−L−フエニルアラニン又はN
−カルバモイル−D−フエニルアラニンを基質
として、5−ベンジルヒダントイン生成を測定
した場合の至適PH5.0〜7.0である。本酵素は、
N−カルバモイル−L−アミノ酸及びN−カル
バモイル−D−アミノ酸から5−置換ヒダント
インを生成する反応即ち逆反応作用を有する。 (3) 力価の測定法 5−ベンジルヒダントイン
2.5mgを含有し、PH8.0に調整した0.02Mトリス
−塩酸バツフアー0.8mlに、10mM塩化コバル
ト0.1ml、酵素液0.1mlを加え、35℃で30分反応
を行わせる。30分後に0.1Nの塩酸1mlを加え
て反応を停止する。本反応を薄層プレートにス
ポツトし、n−ブタノール:酢酸:水=4:
1:1の展開溶媒で展開する。乾燥後、10%p
−ジメチルアミノベンズアルデヒドのアセトン
溶液(1.5N塩酸含有)で発色させ、デンシト
メトリーにより、N−カルバモイルフエニルア
ラニンの生成量を定量する。毎分1.0μモルのN
−カルバモイルフエニルアラニンを生成させる
ヒダントイナーゼの量を1単位とし、試料のヒ
ダントイナーゼ力価を算出する。 (4) 安定PHの範囲 緩衝液として、酢酸緩衝液
(0.05M酢酸−酢酸ナトリウムPH4.0〜5.5)、リ
ン酸緩衝液(0.05Mリン酸−カリウム−リン酸
=ナトリウム緩衝液PH5.5〜8.0)、アンモニア
緩衝液(0.05Mアンモニア水−塩化アンモニウ
ム緩衝液PH8.0〜10.0)、ホウ酸緩衝液(0.05M
ホウ酸−ホウ酸ナトリウムPH9.5〜11.5)を用
いて、酵素液を各PHで、35℃、30分インキユベ
ート後、残存力価を測定することによつて求め
た安定PH範囲は、5.0〜10.0である。 (5) 作用適温の範囲 PH8.0で10〜30分間作用さ
せた場合、30〜40℃の範囲が最適である。 (6) PH、温度等による失活の条件 PH4.0以下及
びPH11以上で35℃、30分インキユベートする
と、完全に失活する。PH8.0において60℃で20
分間熱処理することにより完全に失活する。 (7) 阻害、活性化及び安定化 ○イ 阻害 阻害剤無添加時の酵素活性値を100とし、それ
ぞれ、塩化ニツケル、塩化銅、ヨード酢酸、
PCMB、エチレンジアミンテトラ酢酸、窒化ナ
トリウム、ヒドロキシルアミン塩酸を添加し、PH
8.0、温度30℃、30分間反応した場合の残存活性
を表に示す。なお、本活性測定においてコバルト
イオンは添加していない。
【表】
表より、明らかな如く、PCMBの他に、エチ
レンジアミンテトラ酢酸により、本酵素は顕著に
阻害され、金属酵素と考えられる。 ○ロ 活性化 本酵素は、0.1〜10mMのコバルトイオン、マ
ンガンイオン、亜鉛イオン、マグネシウムイオ
ン、鉄イオンのような金属イオンの存在下で反応
させると、無添加の場合に比べ、活性が促進され
る。 ○ハ 安定化 本酵素は、0.1〜10mMのコバルトイオンが共
存すると熱安定性が向上し、40℃で1時間、PH8
でインキユベートすると、無添加の酵素の残存活
性は30〜40%となるが、1mMコバルトイオン共
存下では活性低下は見られない。 (8) 精製方法 培養物を遠心分離して湿潤菌体を集菌し、この
菌体を0.02Mトリス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化
マンガン1mM含有)に懸濁し、超音波処理によ
り、菌体を破砕し、遠心分離にて固形分を除き、
粗酵素液を得る。 次いで、その粗酵素液に、3%プロタミン硫酸
水溶液(PH7.0)を加え、生じた沈澱を遠心分離
で除き、次いでこの上清液に硫酸アンモニウムを
0.30飽和になるまで加え、生じた沈澱を遠心分離
で除く。得られた上清液に更に硫酸アンモニウム
を0.60飽和になるまで加え、生じた沈澱を分離し
て、0.02Mトリス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マ
ンガン1mM含有)に溶解し、この溶液を同緩衝
液で24時間透析する。 以上のようにして得た硫安分画を、上記緩衝液
で平衡化した蛋白精製用陰イオン交換樹脂カラム
(MONO Qフアマシア製)による液体クロマト
グラフイーにかけ、酵素をカラムに吸着させる。
次いで、塩化ナトリウム濃度を0〜1Mに直線的
に増加させた上記緩衝液を流して、流出液をフラ
クシヨンコレクターで分画し、活性区分を集め
る。 次いでその活性区分を、0.05Mトリス塩酸緩衝
液(0.2M塩化ナトリウム、1mM塩化マンガン含
有)で平衡化したゲルろ過用カラム(G3000SW
×2東洋曹達工業社製)にかけ、同組成の緩衝液
で溶出し、活性区分を集める。この活性区分を再
度、ゲルろ過用カラムにかけて、クロマトグラフ
イーを行い、活性区分を精製標品とする。 (9) 分子量 本酵素の分子量は高速液体クロマトグラフイー
(G3000SW×2東洋曹達工業社製)によるゲルろ
過法で測定した結果、約20万であり、エチレンジ
アミンテトラ酢酸処置して後測定すると、約10万
である。これらの分子量の異なる酵素は、分子量
の異なること以外は、その理化学的性質において
同様である。 (10) 等電点 MONOP(フアマシア製)を用い
た、クロマトフオーカシング法により測定した
結果4〜4.5であつた。 本酵素は、以上の性質から新規ヒダントイナー
ゼと認められ、本酵素の性質を活用すれば、極め
て有用なN−カルバモイル−L−アミノ酸製造が
可能となる。 次に本酵素を製造するための具体的手段を以下
に述べる。本酵素を製造する方法としては如何な
る方法でも良く、例えば以下の方法が挙げられ
る。 先ず、本酵素を製造するにあたり使用される菌
としては、アリスロバクター属に属し、上記ヒダ
ントイナーゼ生産能を有する菌であれば如何なる
菌でもよく、またこれらの菌の変種もしくは変異
株でも良い。そして、アリマロバクター属に属
し、新規ヒダントイナーゼ生産能を有する菌の具
体例として、例えばアリスロバクター属
(Arthro−bacter SP)DK−200が挙げられる。 上記アリスロバクターDK−200は本発明者ら
が、土壌中より新たに検索して得た菌株で、その
菌学的性質は、以下に示す通りである。 アリスロバクターDK−200の菌学的性質 (a) 形態的顕微鏡的観察 (1)細胞の形及び大きさ:0.3〜0.5μ×0.8〜
5.0μmの桿菌である。 (2)細胞の多形性の有無:多形性が認められる (3)運動の有無:運動性なし(鞭毛は認められな
い。) (4)胞子の有無:なし (5)グラム染色:陰性〜弱陽性だがグラム陽性粒
子を有する (6)抗酸性:陰性 (b) 各培地での生育状態 (1)肉汁寒天平板培養:コロニーの形状は円形
で、隆起は凸状であり、周辺は全縁状であ
り、コロニーの色は淡白色である。 (2)肉汁寒天斜面培養:適度の生育状態で糸状の
生育を示す。光沢がある (3)肉汁液体培養:混濁の程度は均一で、液面で
の生育は特になし。沈澱がある (4)肉汁ゼラチン穿刺培養:液化する。 (5)リトマスミルク培養:中性で液体しない。 (c) 生理的性質 (1)硝酸塩の還元:還元しない。 (2)脱窒反応:陽性 (3)MRテスト:陰性 (4)VPテスト:陰性 (5)インドールの生成:生成しない。 (6)硫化水素の生成:生成しない。 (7)デンプン加水分解:加水分解しない。 (8)クエン酸の利用:両方とも利用しない。 (Kosevの培地及びChristensenの培地使用 (9)無機窒素源の利用:利用する。(硝酸塩及び
アンモニウム塩) (10)色素の生成:生成しない (11)ウレアーゼ:陰性 (12)オキシダーゼ:陰性 (13)カタラーゼ:陽性 (14)酸素に対する態度:好気性 (15)生育の範囲:温度:17.8〜33.2℃ PH:5〜10 (16)O−Fテスト:酸化 (17)糖類からの酸及びガスの生成の有無:
レンジアミンテトラ酢酸により、本酵素は顕著に
阻害され、金属酵素と考えられる。 ○ロ 活性化 本酵素は、0.1〜10mMのコバルトイオン、マ
ンガンイオン、亜鉛イオン、マグネシウムイオ
ン、鉄イオンのような金属イオンの存在下で反応
させると、無添加の場合に比べ、活性が促進され
る。 ○ハ 安定化 本酵素は、0.1〜10mMのコバルトイオンが共
存すると熱安定性が向上し、40℃で1時間、PH8
でインキユベートすると、無添加の酵素の残存活
性は30〜40%となるが、1mMコバルトイオン共
存下では活性低下は見られない。 (8) 精製方法 培養物を遠心分離して湿潤菌体を集菌し、この
菌体を0.02Mトリス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化
マンガン1mM含有)に懸濁し、超音波処理によ
り、菌体を破砕し、遠心分離にて固形分を除き、
粗酵素液を得る。 次いで、その粗酵素液に、3%プロタミン硫酸
水溶液(PH7.0)を加え、生じた沈澱を遠心分離
で除き、次いでこの上清液に硫酸アンモニウムを
0.30飽和になるまで加え、生じた沈澱を遠心分離
で除く。得られた上清液に更に硫酸アンモニウム
を0.60飽和になるまで加え、生じた沈澱を分離し
て、0.02Mトリス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マ
ンガン1mM含有)に溶解し、この溶液を同緩衝
液で24時間透析する。 以上のようにして得た硫安分画を、上記緩衝液
で平衡化した蛋白精製用陰イオン交換樹脂カラム
(MONO Qフアマシア製)による液体クロマト
グラフイーにかけ、酵素をカラムに吸着させる。
次いで、塩化ナトリウム濃度を0〜1Mに直線的
に増加させた上記緩衝液を流して、流出液をフラ
クシヨンコレクターで分画し、活性区分を集め
る。 次いでその活性区分を、0.05Mトリス塩酸緩衝
液(0.2M塩化ナトリウム、1mM塩化マンガン含
有)で平衡化したゲルろ過用カラム(G3000SW
×2東洋曹達工業社製)にかけ、同組成の緩衝液
で溶出し、活性区分を集める。この活性区分を再
度、ゲルろ過用カラムにかけて、クロマトグラフ
イーを行い、活性区分を精製標品とする。 (9) 分子量 本酵素の分子量は高速液体クロマトグラフイー
(G3000SW×2東洋曹達工業社製)によるゲルろ
過法で測定した結果、約20万であり、エチレンジ
アミンテトラ酢酸処置して後測定すると、約10万
である。これらの分子量の異なる酵素は、分子量
の異なること以外は、その理化学的性質において
同様である。 (10) 等電点 MONOP(フアマシア製)を用い
た、クロマトフオーカシング法により測定した
結果4〜4.5であつた。 本酵素は、以上の性質から新規ヒダントイナー
ゼと認められ、本酵素の性質を活用すれば、極め
て有用なN−カルバモイル−L−アミノ酸製造が
可能となる。 次に本酵素を製造するための具体的手段を以下
に述べる。本酵素を製造する方法としては如何な
る方法でも良く、例えば以下の方法が挙げられ
る。 先ず、本酵素を製造するにあたり使用される菌
としては、アリスロバクター属に属し、上記ヒダ
ントイナーゼ生産能を有する菌であれば如何なる
菌でもよく、またこれらの菌の変種もしくは変異
株でも良い。そして、アリマロバクター属に属
し、新規ヒダントイナーゼ生産能を有する菌の具
体例として、例えばアリスロバクター属
(Arthro−bacter SP)DK−200が挙げられる。 上記アリスロバクターDK−200は本発明者ら
が、土壌中より新たに検索して得た菌株で、その
菌学的性質は、以下に示す通りである。 アリスロバクターDK−200の菌学的性質 (a) 形態的顕微鏡的観察 (1)細胞の形及び大きさ:0.3〜0.5μ×0.8〜
5.0μmの桿菌である。 (2)細胞の多形性の有無:多形性が認められる (3)運動の有無:運動性なし(鞭毛は認められな
い。) (4)胞子の有無:なし (5)グラム染色:陰性〜弱陽性だがグラム陽性粒
子を有する (6)抗酸性:陰性 (b) 各培地での生育状態 (1)肉汁寒天平板培養:コロニーの形状は円形
で、隆起は凸状であり、周辺は全縁状であ
り、コロニーの色は淡白色である。 (2)肉汁寒天斜面培養:適度の生育状態で糸状の
生育を示す。光沢がある (3)肉汁液体培養:混濁の程度は均一で、液面で
の生育は特になし。沈澱がある (4)肉汁ゼラチン穿刺培養:液化する。 (5)リトマスミルク培養:中性で液体しない。 (c) 生理的性質 (1)硝酸塩の還元:還元しない。 (2)脱窒反応:陽性 (3)MRテスト:陰性 (4)VPテスト:陰性 (5)インドールの生成:生成しない。 (6)硫化水素の生成:生成しない。 (7)デンプン加水分解:加水分解しない。 (8)クエン酸の利用:両方とも利用しない。 (Kosevの培地及びChristensenの培地使用 (9)無機窒素源の利用:利用する。(硝酸塩及び
アンモニウム塩) (10)色素の生成:生成しない (11)ウレアーゼ:陰性 (12)オキシダーゼ:陰性 (13)カタラーゼ:陽性 (14)酸素に対する態度:好気性 (15)生育の範囲:温度:17.8〜33.2℃ PH:5〜10 (16)O−Fテスト:酸化 (17)糖類からの酸及びガスの生成の有無:
以下実施例を挙げて、本発明を具体的に説明す
るが、本発明はこれらに限定されるものではな
い。 実施例 1 ヒダントイナーゼの製造例 ポリペプトン1.0g、酵母エキス1.0g、グルコ
ース1.0g、塩化ナトリウム1.0g、N−カルバモ
イルトリプトフアン0.2gを水道水に溶解し、こ
のPHを7.5に調整し、全量を200mlとしたもの500
mlの坂口フラスコに100mlずつ2本分注した。こ
の培地を温度120℃で15分間殺菌後、アリスロバ
クターDK−200(微工研菌与第7472号)を接種
し、温度30℃で20時間振盪培養(100s.p.mの往
復)した。 培養終了後培養液200mlを遠心分離して得られ
た菌体を生理食塩水で1回洗浄後、0.02Mトリス
−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含有)
に懸濁し、液量を20mlにした。この菌体懸濁液を
10mlずつに分け、20K Hzの超音波破砕機で、そ
れぞれ3分間1回処理して、遠心分離し、固形分
を除去し、粗酵素液を得た。その粗酵素液を集め
て、上記トリス−塩酸緩衝液で30mlとした後、3
%プロタミン硫酸水溶液1mlを攪拌しながら加
え、30分間攪拌を続けた。遠心分離によつて沈殿
を除去し、上清液を得た。その上清液に、硫酸ア
ンモニウムを0.30飽和になるまで加え、生じた沈
殿を遠心分離で除く。得られた上清液に更に硫酸
アンモニウムを0.60飽和になるまで加え、遠心分
離により沈殿を得る。この沈殿を、0.02Mトリス
−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含有)
に溶解し、この溶液を同緩衝液で24時間透析し、
10mlの酵素液を得た。 以上のようにして硫安分画液5mlを、0.02Mト
リス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含
有)で平衡化した蛋白精製用陰イオン交換樹脂カ
ラム(Mono Qフアマシア社製)に吸着させる。
次いで、高速液体クロマトグラフイーにより、そ
の緩衝液を用いて充分に洗浄し、食塩濃度を0〜
1.0Mまで連続的に上昇させる方法により溶出を
行ないフラクシヨンコレクターで分画し、活性区
分を得た。本高速液体クロマトグラフイーを2回
行なうことにより、10mlの硫安分画液からの陰イ
オン交換樹脂精製酵素液が得られた。この酵素液
に0.80飽和硫酸アンモニウムを加えて塩析し、濃
縮酵素液を2ml得た。 次いで、0.2M塩化ナトリウム、1mM塩化マン
ガンを含有した0.05Mトリス塩酸緩衝液で平衡化
したゲルろ過用カラム(G3000SW×2、東洋曹
達製)にかけ、高速液体クロマトグラフイーによ
り、同緩衝液で溶出し、活性区分を集めた。この
活性区分を再度、同じゲルろ過用カラムにかけ、
高速液体クロマトグラフイーにより集めた活性区
分を精製酵素液とした。本酵素液の蛋白濃度を、
プロテイン・アツセイ(バイオラツド社製)によ
り測定し、活性を測定したところ、比活性34.2単
位/mgであつた。 本発明のヒダントイナーゼの利用例 本酵素液0.5単位を用い、5−ベンジルヒダン
トイン2mg、0.02Mトリス−塩酸バツフアー(PH
8),1mM塩化コバルトを含む1mlの溶液中、35
℃、15時間反応させた。煮沸により反応を停止し
て後生成したN−カルバモイル−フエニルアラニ
ンを薄層クロマトグラフイーにより、n−ブタノ
ール:酢酸:水=4:1:1で展開し、p−ジメ
チルアミノベンズアルデヒド試薬で発色させ、デ
ンシトメトリーにより定量したところ、2.1mg/
mlのN−カルバモイルフエニルアラニンが生成し
ていた。この反応液にN−カルバモイル−L−ア
ミノ酸に特異的に反応してL−アミノ酸を生成す
るシユードモナスDK−910微工研菌寄第7473号
(FERM P−7473)の酵素を0.05Mトリス・塩酸
緩衝液(PH8.0)中、35℃、15時間反応させた。
生成したL−フエニルアラニンをラクトバチル
ス、アラビノザスATCC8014を用いるバイオアツ
セイ法により測定したところ、0.83mgのL−フエ
ニルアラニンが生成していた(モル収率49.8%対
N−カルバモイルフエニルアラニン)。 実施例 2 本発明ヒダントイナーゼの利用例 実施例1と同様にして得た酵素液を用い、5−
ベンジルヒダントインのかわりに、5−インドリ
ルメチルヒダントインを用いて、実施例1と同様
にして反応させた。生成したN−カルバモイル−
トリプトフアンを実施例1と同様にして薄層クロ
マトグラフイーにより定量したところ2.1mg/ml
のN−カルバモイルトリプトフアンが生成してい
た。この反応液に実施例1と同様にして、シユー
ドモナスDK−910微工研菌寄第7473号(FERM
P−7473)の酵素を反応させた。生成したL−ト
リプトフアンをバイオアツセイ法により、測定し
たところ、0.86mgのL−トリプトフアンが生成し
ていた(モル収率49.6%対N−カルバモイルトリ
プトフアン)。 〔発明の効果〕 有機合成化学的に製造される5−置換ヒダント
インから、本酵素によつて常温常圧の温和な条件
下で、効率よく、N−カルバモイル−L−アミノ
酸を製造することが可能である。さらに、本酵素
はN−カルバモイル−L−アミノ酸加水分解酵素
との併用もしくは逐次反応により医薬・食品添加
物等として有用なL−アミノ酸の製造に有効であ
る。
るが、本発明はこれらに限定されるものではな
い。 実施例 1 ヒダントイナーゼの製造例 ポリペプトン1.0g、酵母エキス1.0g、グルコ
ース1.0g、塩化ナトリウム1.0g、N−カルバモ
イルトリプトフアン0.2gを水道水に溶解し、こ
のPHを7.5に調整し、全量を200mlとしたもの500
mlの坂口フラスコに100mlずつ2本分注した。こ
の培地を温度120℃で15分間殺菌後、アリスロバ
クターDK−200(微工研菌与第7472号)を接種
し、温度30℃で20時間振盪培養(100s.p.mの往
復)した。 培養終了後培養液200mlを遠心分離して得られ
た菌体を生理食塩水で1回洗浄後、0.02Mトリス
−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含有)
に懸濁し、液量を20mlにした。この菌体懸濁液を
10mlずつに分け、20K Hzの超音波破砕機で、そ
れぞれ3分間1回処理して、遠心分離し、固形分
を除去し、粗酵素液を得た。その粗酵素液を集め
て、上記トリス−塩酸緩衝液で30mlとした後、3
%プロタミン硫酸水溶液1mlを攪拌しながら加
え、30分間攪拌を続けた。遠心分離によつて沈殿
を除去し、上清液を得た。その上清液に、硫酸ア
ンモニウムを0.30飽和になるまで加え、生じた沈
殿を遠心分離で除く。得られた上清液に更に硫酸
アンモニウムを0.60飽和になるまで加え、遠心分
離により沈殿を得る。この沈殿を、0.02Mトリス
−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含有)
に溶解し、この溶液を同緩衝液で24時間透析し、
10mlの酵素液を得た。 以上のようにして硫安分画液5mlを、0.02Mト
リス−塩酸緩衝液(PH8.0、塩化マンガン1mM含
有)で平衡化した蛋白精製用陰イオン交換樹脂カ
ラム(Mono Qフアマシア社製)に吸着させる。
次いで、高速液体クロマトグラフイーにより、そ
の緩衝液を用いて充分に洗浄し、食塩濃度を0〜
1.0Mまで連続的に上昇させる方法により溶出を
行ないフラクシヨンコレクターで分画し、活性区
分を得た。本高速液体クロマトグラフイーを2回
行なうことにより、10mlの硫安分画液からの陰イ
オン交換樹脂精製酵素液が得られた。この酵素液
に0.80飽和硫酸アンモニウムを加えて塩析し、濃
縮酵素液を2ml得た。 次いで、0.2M塩化ナトリウム、1mM塩化マン
ガンを含有した0.05Mトリス塩酸緩衝液で平衡化
したゲルろ過用カラム(G3000SW×2、東洋曹
達製)にかけ、高速液体クロマトグラフイーによ
り、同緩衝液で溶出し、活性区分を集めた。この
活性区分を再度、同じゲルろ過用カラムにかけ、
高速液体クロマトグラフイーにより集めた活性区
分を精製酵素液とした。本酵素液の蛋白濃度を、
プロテイン・アツセイ(バイオラツド社製)によ
り測定し、活性を測定したところ、比活性34.2単
位/mgであつた。 本発明のヒダントイナーゼの利用例 本酵素液0.5単位を用い、5−ベンジルヒダン
トイン2mg、0.02Mトリス−塩酸バツフアー(PH
8),1mM塩化コバルトを含む1mlの溶液中、35
℃、15時間反応させた。煮沸により反応を停止し
て後生成したN−カルバモイル−フエニルアラニ
ンを薄層クロマトグラフイーにより、n−ブタノ
ール:酢酸:水=4:1:1で展開し、p−ジメ
チルアミノベンズアルデヒド試薬で発色させ、デ
ンシトメトリーにより定量したところ、2.1mg/
mlのN−カルバモイルフエニルアラニンが生成し
ていた。この反応液にN−カルバモイル−L−ア
ミノ酸に特異的に反応してL−アミノ酸を生成す
るシユードモナスDK−910微工研菌寄第7473号
(FERM P−7473)の酵素を0.05Mトリス・塩酸
緩衝液(PH8.0)中、35℃、15時間反応させた。
生成したL−フエニルアラニンをラクトバチル
ス、アラビノザスATCC8014を用いるバイオアツ
セイ法により測定したところ、0.83mgのL−フエ
ニルアラニンが生成していた(モル収率49.8%対
N−カルバモイルフエニルアラニン)。 実施例 2 本発明ヒダントイナーゼの利用例 実施例1と同様にして得た酵素液を用い、5−
ベンジルヒダントインのかわりに、5−インドリ
ルメチルヒダントインを用いて、実施例1と同様
にして反応させた。生成したN−カルバモイル−
トリプトフアンを実施例1と同様にして薄層クロ
マトグラフイーにより定量したところ2.1mg/ml
のN−カルバモイルトリプトフアンが生成してい
た。この反応液に実施例1と同様にして、シユー
ドモナスDK−910微工研菌寄第7473号(FERM
P−7473)の酵素を反応させた。生成したL−ト
リプトフアンをバイオアツセイ法により、測定し
たところ、0.86mgのL−トリプトフアンが生成し
ていた(モル収率49.6%対N−カルバモイルトリ
プトフアン)。 〔発明の効果〕 有機合成化学的に製造される5−置換ヒダント
インから、本酵素によつて常温常圧の温和な条件
下で、効率よく、N−カルバモイル−L−アミノ
酸を製造することが可能である。さらに、本酵素
はN−カルバモイル−L−アミノ酸加水分解酵素
との併用もしくは逐次反応により医薬・食品添加
物等として有用なL−アミノ酸の製造に有効であ
る。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 下記の理化学的性質を有し且つ5−置換ヒダ
ントインを開裂加水分解してN−カルバモイル−
L−アミノ酸を生成する活性を有する新規ヒダン
トイナーゼ。 基質特異性;5−カルボキシメチルヒダントイ
ンに作用しない。 至適PH;5−置換ヒダントインからの加水分解
反応PH8.0〜9.0 N−カルバモイル−アミノ酸からの逆反応
PH5.0〜7.0 安定PH範囲;PH5.0〜10.0 作用適温の範囲;30〜40℃ 温度安定性の範囲;35℃までは安定 阻害剤、金属イオンの影響;p−クロロマーキ
ユリベンゾエイト、エチレンジアミンテト
ラ酢酸によつて阻害される、コバルトイオ
ン、マンガンイオン、亜鉛イオンによつて
活性が促進される、コバルトイオンは熱安
定性を向上させる。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9957884A JPS60241888A (ja) | 1984-05-17 | 1984-05-17 | 新規ヒダントイナ−ゼ |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9957884A JPS60241888A (ja) | 1984-05-17 | 1984-05-17 | 新規ヒダントイナ−ゼ |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60241888A JPS60241888A (ja) | 1985-11-30 |
| JPH05993B2 true JPH05993B2 (ja) | 1993-01-07 |
Family
ID=14250982
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9957884A Granted JPS60241888A (ja) | 1984-05-17 | 1984-05-17 | 新規ヒダントイナ−ゼ |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60241888A (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE3535987A1 (de) * | 1985-10-09 | 1987-04-23 | Basf Ag | Verfahren zur herstellung von meophilen mikroorganismen, die eine bei hoeherer temperatur aktive d-hydantoinase enthalten |
| WO1994000577A1 (en) * | 1992-06-30 | 1994-01-06 | Smithkline Beecham P.L.C. | D-n-carbamoyl-amino acid amidohydrolase and hydantoinase |
-
1984
- 1984-05-17 JP JP9957884A patent/JPS60241888A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS60241888A (ja) | 1985-11-30 |
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