JPH0660887B2 - 電気泳動方法 - Google Patents
電気泳動方法Info
- Publication number
- JPH0660887B2 JPH0660887B2 JP62230592A JP23059287A JPH0660887B2 JP H0660887 B2 JPH0660887 B2 JP H0660887B2 JP 62230592 A JP62230592 A JP 62230592A JP 23059287 A JP23059287 A JP 23059287A JP H0660887 B2 JPH0660887 B2 JP H0660887B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- electric field
- film
- gel
- electrophoresis
- electrophoretic medium
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 title claims description 45
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 44
- 230000005684 electric field Effects 0.000 claims description 49
- 239000010408 film Substances 0.000 claims description 29
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 27
- 238000013508 migration Methods 0.000 claims description 17
- 230000005012 migration Effects 0.000 claims description 17
- 150000007523 nucleic acids Chemical group 0.000 claims description 13
- HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N Acrylamide Chemical compound NC(=O)C=C HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- -1 acrylamide compound Chemical class 0.000 claims description 6
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 4
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 claims description 4
- 239000006174 pH buffer Substances 0.000 claims description 4
- 125000003917 carbamoyl group Chemical group [H]N([H])C(*)=O 0.000 claims description 3
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 claims description 3
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 claims description 3
- 229920000620 organic polymer Polymers 0.000 claims description 3
- 239000010409 thin film Substances 0.000 claims description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000003607 modifier Substances 0.000 claims description 2
- 230000000379 polymerizing effect Effects 0.000 claims description 2
- 239000002808 molecular sieve Substances 0.000 claims 1
- URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N sodium aluminosilicate Chemical compound [Na+].[Al+3].[O-][Si]([O-])=O.[O-][Si]([O-])=O URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 47
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 46
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 27
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 14
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 13
- 108010025899 gelatin film Proteins 0.000 description 12
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 8
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 6
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 4
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 4
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 4
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 4
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 4
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 4
- 150000003926 acrylamides Chemical class 0.000 description 3
- 238000000376 autoradiography Methods 0.000 description 3
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 3
- FQPSGWSUVKBHSU-UHFFFAOYSA-N methacrylamide Chemical compound CC(=C)C(N)=O FQPSGWSUVKBHSU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 3
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 3
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 description 3
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 description 3
- VVLFAAMTGMGYBS-UHFFFAOYSA-M sodium;4-[[4-(ethylamino)-3-methylphenyl]-(4-ethylimino-3-methylcyclohexa-2,5-dien-1-ylidene)methyl]-3-sulfobenzenesulfonate Chemical compound [Na+].C1=C(C)C(NCC)=CC=C1C(C=1C(=CC(=CC=1)S([O-])(=O)=O)S(O)(=O)=O)=C1C=C(C)C(=NCC)C=C1 VVLFAAMTGMGYBS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- FYBFGAFWCBMEDG-UHFFFAOYSA-N 1-[3,5-di(prop-2-enoyl)-1,3,5-triazinan-1-yl]prop-2-en-1-one Chemical compound C=CC(=O)N1CN(C(=O)C=C)CN(C(=O)C=C)C1 FYBFGAFWCBMEDG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VLEIUWBSEKKKFX-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;2-[2-[bis(carboxymethyl)amino]ethyl-(carboxymethyl)amino]acetic acid Chemical compound OCC(N)(CO)CO.OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O VLEIUWBSEKKKFX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 1
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 1
- 108020004682 Single-Stranded DNA Proteins 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000010724 Wisteria floribunda Nutrition 0.000 description 1
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000005250 beta ray Effects 0.000 description 1
- 229910052796 boron Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 238000002144 chemical decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 229920001577 copolymer Chemical compound 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 239000011544 gradient gel Substances 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 239000006179 pH buffering agent Substances 0.000 description 1
- 229920000867 polyelectrolyte Polymers 0.000 description 1
- 229920006254 polymer film Polymers 0.000 description 1
- 239000003505 polymerization initiator Substances 0.000 description 1
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 1
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 1
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000002601 radiography Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 1
- 238000007873 sieving Methods 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
- 229920003169 water-soluble polymer Polymers 0.000 description 1
- NLIVDORGVGAOOJ-MAHBNPEESA-M xylene cyanol Chemical compound [Na+].C1=C(C)C(NCC)=CC=C1C(\C=1C(=CC(OS([O-])=O)=CC=1)OS([O-])=O)=C\1C=C(C)\C(=[NH+]/CC)\C=C/1 NLIVDORGVGAOOJ-MAHBNPEESA-M 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44704—Details; Accessories
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44704—Details; Accessories
- G01N27/44747—Composition of gel or of carrier mixture
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は核酸(DNA,RNA)塩基配列決定のためにポリ(メ
タ)アクリルアミド系水性ゲルからなる電気泳動用媒体
膜を用いる電気泳動方法に関するものであり,さらに詳
しくは,核酸塩基フラグメントの良好に分離するために
反転パルス電場を作用させて行う電気泳動方法に関する
ものである。
タ)アクリルアミド系水性ゲルからなる電気泳動用媒体
膜を用いる電気泳動方法に関するものであり,さらに詳
しくは,核酸塩基フラグメントの良好に分離するために
反転パルス電場を作用させて行う電気泳動方法に関する
ものである。
[従来の技術] 近年において遺伝子関連の研究が進むにつれて核酸(DN
A,RNA)の塩基配列決定のための操作の迅速化が求めら
れている。核酸の塩基配列決定法においてはポリアクリ
ルアミド系水性ゲル電気泳動用媒体膜(以下,ポリアクリ
ルアミドゲル膜,又は,ゲル膜ということがある)を用い
たスラブ電気泳動が必須の操作になっている。
A,RNA)の塩基配列決定のための操作の迅速化が求めら
れている。核酸の塩基配列決定法においてはポリアクリ
ルアミド系水性ゲル電気泳動用媒体膜(以下,ポリアクリ
ルアミドゲル膜,又は,ゲル膜ということがある)を用い
たスラブ電気泳動が必須の操作になっている。
核酸塩基配列の読み取り又は決定のための核酸フラグメ
ント調製方法として,化学分解法によるマクサム−ギル
バート(Maxam-Gilbert)法と酵素法によるジデオキシ(Di
deoxy)法とがあり,1回の分解操作で多くの塩基配列が決
められるジデオキシ(Dideoxy)法が主流になっている。
ント調製方法として,化学分解法によるマクサム−ギル
バート(Maxam-Gilbert)法と酵素法によるジデオキシ(Di
deoxy)法とがあり,1回の分解操作で多くの塩基配列が決
められるジデオキシ(Dideoxy)法が主流になっている。
ポリアクリルアミドゲル膜を電気泳動用媒体として用い
る電気泳動操作は例えば次のようにして実施される。
る電気泳動操作は例えば次のようにして実施される。
サンプルスロット(サンプル注入孔)が上端部に設けられ
たポリアクリルアミドゲル膜をガラス板やポリエチレン
テレフタレート等の有機ポリマー板等の光透過性水不透
過性支持体で挟んで垂直に配置し,サンプルスロットに
塩基数の異なる核酸フラグメントを含む試料(例,マクサ
ム−ギルバート(Maxam-Gilbert)法で分解した32Pラベル
DNA)を一定量注入し,次いで電場を作用させて電気泳動
操作を行う。この電気泳動操作はポリアクリルアミドゲ
ル膜に単位長さ当り一定の電界を与える直流電圧(例,25
V/cm〜70V/cm)を一定方向(一般に下側が高電位,上側が
低電位)に作用させることで行われる。電界を作用させ
ている間、負電荷を有する高分子電解質であるDNA分子
(DNAフラグメント)は低電位側(陰極)から高電位側(陽
極)に向かって移動し,移動の間にDNA分子はポリアクリ
ルアミドゲルマトリックス中でその塩基数,すなわち分
子量の差によって分離される。一定時間の電気泳動を行
った後,ゲル膜を支持体からはずし,薄いポリマーフィ
ルムで覆った状態にてオートラジオグラフィー処理,又
はイメージングプレートを有するコンピューテッドラジ
オグラフィー装置による処理を行って,分離パターンを
可視化する。色素又は蛍光色素でラベルした核酸フラグ
メントを含む試料を用いて電気泳動分離する場合には,
分離パターンを光−電気変換素子を含む装置により分離
パターンを可視化することができる。
たポリアクリルアミドゲル膜をガラス板やポリエチレン
テレフタレート等の有機ポリマー板等の光透過性水不透
過性支持体で挟んで垂直に配置し,サンプルスロットに
塩基数の異なる核酸フラグメントを含む試料(例,マクサ
ム−ギルバート(Maxam-Gilbert)法で分解した32Pラベル
DNA)を一定量注入し,次いで電場を作用させて電気泳動
操作を行う。この電気泳動操作はポリアクリルアミドゲ
ル膜に単位長さ当り一定の電界を与える直流電圧(例,25
V/cm〜70V/cm)を一定方向(一般に下側が高電位,上側が
低電位)に作用させることで行われる。電界を作用させ
ている間、負電荷を有する高分子電解質であるDNA分子
(DNAフラグメント)は低電位側(陰極)から高電位側(陽
極)に向かって移動し,移動の間にDNA分子はポリアクリ
ルアミドゲルマトリックス中でその塩基数,すなわち分
子量の差によって分離される。一定時間の電気泳動を行
った後,ゲル膜を支持体からはずし,薄いポリマーフィ
ルムで覆った状態にてオートラジオグラフィー処理,又
はイメージングプレートを有するコンピューテッドラジ
オグラフィー装置による処理を行って,分離パターンを
可視化する。色素又は蛍光色素でラベルした核酸フラグ
メントを含む試料を用いて電気泳動分離する場合には,
分離パターンを光−電気変換素子を含む装置により分離
パターンを可視化することができる。
オートラジオグラフィー処理はポリアクリルアミドゲル
膜を覆っている薄いフィルムの上にX-線用写真フィルム
を密着させて重ねて置き,低温(例えば,氷点下80℃)で一
定時間(例えば,約10時間〜約20時間)露光(32P又は35Sか
らのβ線による感光)を行い,露光終了後X線用写真用フ
ィルムを現像してDNAフラグメントの 分離泳動パターン
を可視画像化する処理である。
膜を覆っている薄いフィルムの上にX-線用写真フィルム
を密着させて重ねて置き,低温(例えば,氷点下80℃)で一
定時間(例えば,約10時間〜約20時間)露光(32P又は35Sか
らのβ線による感光)を行い,露光終了後X線用写真用フ
ィルムを現像してDNAフラグメントの 分離泳動パターン
を可視画像化する処理である。
このようにして得られた DNAフラグメントの分離泳動パ
ターンに基づいて DNAの塩基配列の読み取り又は決定を
することができる。
ターンに基づいて DNAの塩基配列の読み取り又は決定を
することができる。
しかしながら,従来の方法で得られる DNAフラグメント
の分離泳動パターンでは DNA分子の塩基数が約5×101以
下(分子量では約1.5×104以下)の低分子領域で極端に分
離パターンのバンド間隔が広がり,一方塩基数が約2×10
2以上(分子量では約6×104以上)の高分子領域で極端に
バンド間隔が狭まり,低分子量領域ではゲル媒体膜の泳
動パターンの存在しないムダな部分であり,一方高分子
量領域では塩基配列を決定することが困難となる。その
ため1枚の泳動媒体膜で配列を決定できる塩基数は限ら
れた少数である。
の分離泳動パターンでは DNA分子の塩基数が約5×101以
下(分子量では約1.5×104以下)の低分子領域で極端に分
離パターンのバンド間隔が広がり,一方塩基数が約2×10
2以上(分子量では約6×104以上)の高分子領域で極端に
バンド間隔が狭まり,低分子量領域ではゲル媒体膜の泳
動パターンの存在しないムダな部分であり,一方高分子
量領域では塩基配列を決定することが困難となる。その
ため1枚の泳動媒体膜で配列を決定できる塩基数は限ら
れた少数である。
1回の電気泳動操作当り DNAの塩基配列読み取り又は決
定数の増加方法として,ゲル膜の長さを長く,例えば80
cmから100cmのものを用いたり,分離パターンの解像性を
高める目的でβ線強度を小さくするため 32Pのかわりに
35Sで標識する方法や,ゲル膜の分離特性を変える目的
でゲル濃度勾配を有するゲル濃度グラジエントポリアク
リルアミドゲル膜が用いられている。しかしながら,こ
れらの改良方法でも DNAの低分子量領域から高分子量領
域にわたり分離パターンのバンド間隔の不均一性は大き
く,必ずしも満足できる方法ではない。
定数の増加方法として,ゲル膜の長さを長く,例えば80
cmから100cmのものを用いたり,分離パターンの解像性を
高める目的でβ線強度を小さくするため 32Pのかわりに
35Sで標識する方法や,ゲル膜の分離特性を変える目的
でゲル濃度勾配を有するゲル濃度グラジエントポリアク
リルアミドゲル膜が用いられている。しかしながら,こ
れらの改良方法でも DNAの低分子量領域から高分子量領
域にわたり分離パターンのバンド間隔の不均一性は大き
く,必ずしも満足できる方法ではない。
分画パターン(バンド間隔)をコントロールする技術とし
て前述のゲル濃度グラジエントゲル膜,及びpH緩衝剤濃
度グラジエント膜,膜厚グラジエント膜があるが,電気
泳動条件をコントロールすることによる分画パターン
(バンド間隔)を変化させることができる技術はまだ知ら
れていない。
て前述のゲル濃度グラジエントゲル膜,及びpH緩衝剤濃
度グラジエント膜,膜厚グラジエント膜があるが,電気
泳動条件をコントロールすることによる分画パターン
(バンド間隔)を変化させることができる技術はまだ知ら
れていない。
最近巨大二重螺旋DNA(約20Kbp以上)を分離する方法とし
てパルス電源を用いる電気泳動法が報告されている。例
えば,1秒〜数百秒の周期をもって電場の方向を180度逆
転させる方法(G.F.カルレ他(G.F.Carle et al)「サイ
エンス(Science)」 232,65−68頁(1968年)),2つの交差
する方向から電場を作用させる方法チャールズ R.カン
ター他(Charles R.Cantor et al)「セル(Cell)」37,67頁
(1984年);特表昭59−502037)等である。これらの技術
は104bp〜105bp(分子量 6×106〜6×107)のオーダーの
巨大な二重螺旋DNAについて103bpのオーダーで 塩基数
(分子量)の達いを分離する技術であって,塩基数101b〜
103b(分子量3×103〜3×106)の範囲の小さな1本鎖DNA
(DNAの塩基配列の読み取り又は決定のために分離する必
要のある分子量)を1塩基ユニットの違いまで分離する
DNA塩基配列読取り又は決定に用いる電気泳動法とは大
きく異なる技術である。結局,従来,電気泳動法の工夫に
よる DNA塩基配列読取り又は決定のための分離パターン
を改良技術については知られていない。
てパルス電源を用いる電気泳動法が報告されている。例
えば,1秒〜数百秒の周期をもって電場の方向を180度逆
転させる方法(G.F.カルレ他(G.F.Carle et al)「サイ
エンス(Science)」 232,65−68頁(1968年)),2つの交差
する方向から電場を作用させる方法チャールズ R.カン
ター他(Charles R.Cantor et al)「セル(Cell)」37,67頁
(1984年);特表昭59−502037)等である。これらの技術
は104bp〜105bp(分子量 6×106〜6×107)のオーダーの
巨大な二重螺旋DNAについて103bpのオーダーで 塩基数
(分子量)の達いを分離する技術であって,塩基数101b〜
103b(分子量3×103〜3×106)の範囲の小さな1本鎖DNA
(DNAの塩基配列の読み取り又は決定のために分離する必
要のある分子量)を1塩基ユニットの違いまで分離する
DNA塩基配列読取り又は決定に用いる電気泳動法とは大
きく異なる技術である。結局,従来,電気泳動法の工夫に
よる DNA塩基配列読取り又は決定のための分離パターン
を改良技術については知られていない。
[発明の目的] 本発明の目的は DNA塩基配列読み取り又は決定のための
電気泳動法における,前述のようなバンド間隔(分画パ
ターン)のアンバランスを排除し,バンド間隔を一様化
し,1枚の分離泳動パターンで従来法に比べて格段に多く
の塩基配列決定をできる,改良された DNA塩基配列読取
り又は決定のための電気泳動法を提供することにある。
電気泳動法における,前述のようなバンド間隔(分画パ
ターン)のアンバランスを排除し,バンド間隔を一様化
し,1枚の分離泳動パターンで従来法に比べて格段に多く
の塩基配列決定をできる,改良された DNA塩基配列読取
り又は決定のための電気泳動法を提供することにある。
[発明の構成] 本発明は,(メタ)アクリルアミド系化合物と架橋剤が水
の存在下に架橋重合してなるポリ(メタ)アクリルアミド
系水性ゲル及び変性剤として少なくとも1個のカルバモ
イル基を含む化合物を含む電気泳動用ゲル電気泳動用媒
体の内部に異なる塩基数の核酸フラグメントを含む試料
を位置させ,実質的に交差せず対向する向きに交互に反
転をくり返す矩形波状,鋸歯波状又は正弦波状のいずれ
かの波形からなる2方向のパルス電場を,DNAフラグ
メントを目的とする泳動方向に進ませる方向に作用する
電界パルスのパルス1個の継続時間のほうがDNAフラ
グメントを目的とする泳動方向から戻す方向に作用する
電界パルスのパルス1個の継続時間より長くなるように
して前記電気泳動媒体に作用させ,前記核酸フラグメン
トを分子篩作用の存在下で目的とする泳動方向に移動さ
せて,前記核酸フラグメントの分離を行う電気泳動方法
である。
の存在下に架橋重合してなるポリ(メタ)アクリルアミド
系水性ゲル及び変性剤として少なくとも1個のカルバモ
イル基を含む化合物を含む電気泳動用ゲル電気泳動用媒
体の内部に異なる塩基数の核酸フラグメントを含む試料
を位置させ,実質的に交差せず対向する向きに交互に反
転をくり返す矩形波状,鋸歯波状又は正弦波状のいずれ
かの波形からなる2方向のパルス電場を,DNAフラグ
メントを目的とする泳動方向に進ませる方向に作用する
電界パルスのパルス1個の継続時間のほうがDNAフラ
グメントを目的とする泳動方向から戻す方向に作用する
電界パルスのパルス1個の継続時間より長くなるように
して前記電気泳動媒体に作用させ,前記核酸フラグメン
トを分子篩作用の存在下で目的とする泳動方向に移動さ
せて,前記核酸フラグメントの分離を行う電気泳動方法
である。
[発明の構成の詳細な説明] 本明細書においては単量体であるアクリルアミド及びそ
の誘導体をアクリルアミド系化合物,メタアクリルアミ
ド及びその誘導体をメタアクリルアミド系化合物とい
い,これらを総称して(メタ)アクリルアミド系化合物と
いう。また,アクリルアミド系化合物とメタアクリルア
ミド系化合物に共通する説明は,アクリルアミド系化合
物について説明することがある。ポリ(メタ)アクリルア
ミド系水性ゲルはポリアクリルアミド系水性ゲル,ポリ
メタアクリルアミド系水性ゲル,及びコポリ(アクリル
アミド−メタアクリルアミド)系水性ゲルを意味し,こ
れらのゲルに共通する説明は,ポリアクリルアミド系水
性ゲルについて説明することがある。
の誘導体をアクリルアミド系化合物,メタアクリルアミ
ド及びその誘導体をメタアクリルアミド系化合物とい
い,これらを総称して(メタ)アクリルアミド系化合物と
いう。また,アクリルアミド系化合物とメタアクリルア
ミド系化合物に共通する説明は,アクリルアミド系化合
物について説明することがある。ポリ(メタ)アクリルア
ミド系水性ゲルはポリアクリルアミド系水性ゲル,ポリ
メタアクリルアミド系水性ゲル,及びコポリ(アクリル
アミド−メタアクリルアミド)系水性ゲルを意味し,こ
れらのゲルに共通する説明は,ポリアクリルアミド系水
性ゲルについて説明することがある。
本発明の電気泳動方法に用いられる電気泳動用媒体は通
常用いられる形態,例えば薄層状,薄板状,薄膜状(これら
を総称して膜という),円柱状,角柱状いずれをも用いる
ことができるが,通常は膜状の電気泳動用媒体膜が好ま
しい。
常用いられる形態,例えば薄層状,薄板状,薄膜状(これら
を総称して膜という),円柱状,角柱状いずれをも用いる
ことができるが,通常は膜状の電気泳動用媒体膜が好ま
しい。
本発明の電気泳動方法に用いられる電気泳動用媒体とし
ては,ゲル濃度,膜厚が一定のゲル膜及びグラジエント
膜,例えば膜厚グラジエント膜,ゲル濃度グラジエント
膜,pHバッファー濃度グラジエント膜,ゲル濃度グラジ
エント−膜厚グラジエント併用膜のいずれも用いること
ができる。ゲル媒体のゲル濃度としては通常用いること
ができる範囲で制限はないが,例えば4w/v%から25w/v%
の範囲,膜厚としては通常用いることができる範囲で制
限はないが,例えば 操作しやすい100μmから500μmの範
囲である。
ては,ゲル濃度,膜厚が一定のゲル膜及びグラジエント
膜,例えば膜厚グラジエント膜,ゲル濃度グラジエント
膜,pHバッファー濃度グラジエント膜,ゲル濃度グラジ
エント−膜厚グラジエント併用膜のいずれも用いること
ができる。ゲル媒体のゲル濃度としては通常用いること
ができる範囲で制限はないが,例えば4w/v%から25w/v%
の範囲,膜厚としては通常用いることができる範囲で制
限はないが,例えば 操作しやすい100μmから500μmの範
囲である。
本発明の電気泳動方法に用いられる電気泳動用媒体は単
量体である(メタ)アクリルアミド系化合物と架橋剤が水
の存在下に架橋重合してなるポリ(メタ)アクリルアミド
系水性ゲル及び変性剤として少なくとも1個のカルバモ
イル基を含む化合物(例,尿素)を含む電気泳動用ゲル電
気泳動用媒体である。ゲル媒体の成分組成及びゲル形成
方法は,例えば青木,永井共著「最新電気泳動法」(広川書
店,1976年)370−415頁;エレクトロフォレシス(Electr
ophoresis)」2,213−219頁(1981年),同誌 2,220−228頁
(1981年);特開昭59−126236;特開昭60−60548;特開
昭61−18852;特開昭61−2058;特願昭61−214878;特
開昭62−91849;特開昭60−235819;特開昭61−28512等
に 記載のものを用いることができる。
量体である(メタ)アクリルアミド系化合物と架橋剤が水
の存在下に架橋重合してなるポリ(メタ)アクリルアミド
系水性ゲル及び変性剤として少なくとも1個のカルバモ
イル基を含む化合物(例,尿素)を含む電気泳動用ゲル電
気泳動用媒体である。ゲル媒体の成分組成及びゲル形成
方法は,例えば青木,永井共著「最新電気泳動法」(広川書
店,1976年)370−415頁;エレクトロフォレシス(Electr
ophoresis)」2,213−219頁(1981年),同誌 2,220−228頁
(1981年);特開昭59−126236;特開昭60−60548;特開
昭61−18852;特開昭61−2058;特願昭61−214878;特
開昭62−91849;特開昭60−235819;特開昭61−28512等
に 記載のものを用いることができる。
ゲル媒体の成分組成は,例えば,アクリルアミド(単量
体),架橋剤(例,N′,N′-メチレンビスアクリルアミ
ド:1,3,5-トリアクリロイルヘキサヒドロ-s-トリアジ
ン),重合開始剤組成物,pH緩衝剤,必要により添加され
る水溶性ポリマー(例,アガロース;ポリビニルピロリド
ン;ポリアクリルアミド)を含有する水溶液(ゲル形成
液)があり,この水溶液を細長い円筒,角筒,2枚のガラ
ス板の間の薄い空間又は容器,有機ポリマーシート(支
持体)の上等で酸素不存在雰囲気中でアクリルアミドゲ
ルを架橋重合させて水性ゲル媒体を形成させる。前記の
ゲル形成液から長尺状の水性ゲル媒体を連続して形成さ
せる場合には特開昭59−126236;特開昭62−91849等に
記載の方法に従って,ポリエチレンテレフタレートと長
尺状シートの上で酸素不存在雰囲気中で形成させたもの
が好ましい。
体),架橋剤(例,N′,N′-メチレンビスアクリルアミ
ド:1,3,5-トリアクリロイルヘキサヒドロ-s-トリアジ
ン),重合開始剤組成物,pH緩衝剤,必要により添加され
る水溶性ポリマー(例,アガロース;ポリビニルピロリド
ン;ポリアクリルアミド)を含有する水溶液(ゲル形成
液)があり,この水溶液を細長い円筒,角筒,2枚のガラ
ス板の間の薄い空間又は容器,有機ポリマーシート(支
持体)の上等で酸素不存在雰囲気中でアクリルアミドゲ
ルを架橋重合させて水性ゲル媒体を形成させる。前記の
ゲル形成液から長尺状の水性ゲル媒体を連続して形成さ
せる場合には特開昭59−126236;特開昭62−91849等に
記載の方法に従って,ポリエチレンテレフタレートと長
尺状シートの上で酸素不存在雰囲気中で形成させたもの
が好ましい。
本発明の方法においては,電気泳動媒体,pH緩衝剤,塩基
数の異なる核酸フラグメントを含む試料のゲル媒体への
付着,注入等の電場印加までの操作は常法と同様にして
行うことができる。例えば,試料をゲル媒体膜のサンプ
ル注入口に付着させ,通常の泳動方向に直流電界を 約5
分〜約10分作用させて,試料を目的とする泳動方向に短
距離移動させ,試料をゲル媒体膜の内部の予め定めた泳
動開始部位に位置させる方法は好ましい1方法である。
ついで試料を注入されたゲル媒体にはパルス電場を作用
させる。パルス電場は特定の時間周期で180゜(反対方向
に)反転される。パルス電界は同時に反対向きに作用さ
せることはない。パルス電場強度は常法で作用させる直
流電場と同様の強度範囲である。作用させるパルス電場
の波形は,例 えば,矩形波,鋸歯波,正弦波が好ましい
が,いかなる波形でもよく,制限はない。
数の異なる核酸フラグメントを含む試料のゲル媒体への
付着,注入等の電場印加までの操作は常法と同様にして
行うことができる。例えば,試料をゲル媒体膜のサンプ
ル注入口に付着させ,通常の泳動方向に直流電界を 約5
分〜約10分作用させて,試料を目的とする泳動方向に短
距離移動させ,試料をゲル媒体膜の内部の予め定めた泳
動開始部位に位置させる方法は好ましい1方法である。
ついで試料を注入されたゲル媒体にはパルス電場を作用
させる。パルス電場は特定の時間周期で180゜(反対方向
に)反転される。パルス電界は同時に反対向きに作用さ
せることはない。パルス電場強度は常法で作用させる直
流電場と同様の強度範囲である。作用させるパルス電場
の波形は,例 えば,矩形波,鋸歯波,正弦波が好ましい
が,いかなる波形でもよく,制限はない。
反転パルス電場を作用させる条件は,例えば次の条件が
ある。ここで, EF:DNAフラグメントを進ませる方向の電界強度 ER:DNAフラグメントを戻す方向の電界強度 TF:DNAフラグメントを進ませる方向の 電界パルス1個を継続させる時間 TR:DNAフラグメントを戻す方向の 電界パルス1個を継続させる時間 とすると, EFとERはそれぞれ約10V/cm〜約150V/cmの範囲,好まし
くは約20V/cm〜約100V/cmの範囲で, EF=ER;EF>EREF<ERいずれも作用させうる;TFとTRは
それぞれ約0.1msec〜約100msecの範囲,好ましくは約1m
sec〜約50msecの範囲で, TFはTRより長い時間とする;TF:TRは約 5:1から約
2:1の範囲,好ましくは約 3:1; ただし,EF,ER,TF,TRの組合せはDNAフラグメントを進ま
せる方向になるように組合せる必要があるのはいうまで
もないことである。
ある。ここで, EF:DNAフラグメントを進ませる方向の電界強度 ER:DNAフラグメントを戻す方向の電界強度 TF:DNAフラグメントを進ませる方向の 電界パルス1個を継続させる時間 TR:DNAフラグメントを戻す方向の 電界パルス1個を継続させる時間 とすると, EFとERはそれぞれ約10V/cm〜約150V/cmの範囲,好まし
くは約20V/cm〜約100V/cmの範囲で, EF=ER;EF>EREF<ERいずれも作用させうる;TFとTRは
それぞれ約0.1msec〜約100msecの範囲,好ましくは約1m
sec〜約50msecの範囲で, TFはTRより長い時間とする;TF:TRは約 5:1から約
2:1の範囲,好ましくは約 3:1; ただし,EF,ER,TF,TRの組合せはDNAフラグメントを進ま
せる方向になるように組合せる必要があるのはいうまで
もないことである。
これらの組合せのうちで, EF=ER;TF>TRかつTF:TR約 3:1が好ましい。
電気泳動時間は DNAの塩基配列の読み取り又は決定に必
要な塩基数が分離されるのに必要な時間であって,制限
されるものではない。例えば,マーカー色素(例,キシレ
ンシアノール)をゲル媒体の1レーンに注入してその泳動
距離を読み取り,適当な泳動距離に達した時刻に電界印
加をやめる方法がある。
要な塩基数が分離されるのに必要な時間であって,制限
されるものではない。例えば,マーカー色素(例,キシレ
ンシアノール)をゲル媒体の1レーンに注入してその泳動
距離を読み取り,適当な泳動距離に達した時刻に電界印
加をやめる方法がある。
特定の時間周期で反転されるパルス電場を作用させて電
気泳動分離することにより,1枚の(1個)の分離パターン
の最下端の塩基数は同じにして,従来の一定方向の電場
(直流電場)による電気泳動分離では読取りが困難になる
塩基数2×102〜3×102の範囲のバンド間隔を適当に広げ
るようにコントロールすることによって,塩基配列の読
取りのできる塩基数範囲を増加させることができる。
気泳動分離することにより,1枚の(1個)の分離パターン
の最下端の塩基数は同じにして,従来の一定方向の電場
(直流電場)による電気泳動分離では読取りが困難になる
塩基数2×102〜3×102の範囲のバンド間隔を適当に広げ
るようにコントロールすることによって,塩基配列の読
取りのできる塩基数範囲を増加させることができる。
電気泳動分離操作が終った後の分離パターンの可視画像
化処理は,常法に従って実施することができる(従来の
技術の欄の記載参照)。
化処理は,常法に従って実施することができる(従来の
技術の欄の記載参照)。
[発明の効果] 本発明の電気泳動方法は DNA塩基フラグメントの分離パ
ターンのバンド間隔をパルス電場の条件をコントロール
することにより容易に変化させることができるので,諸
種の DNA塩基配列の読取り又は決定のための電気泳動法
に簡易に適用できるという特徴を有する。
ターンのバンド間隔をパルス電場の条件をコントロール
することにより容易に変化させることができるので,諸
種の DNA塩基配列の読取り又は決定のための電気泳動法
に簡易に適用できるという特徴を有する。
本発明の電気泳動方法は 塩基数が102オーダー程度の1
本鎖DNAについても作用させるパルス電場の条件を適宜
に選択することにより,目的とする塩基数領域の DNAフ
ラグメントのバンド間隔を広げることも狭めることも可
能になるという特徴を有する。
本鎖DNAについても作用させるパルス電場の条件を適宜
に選択することにより,目的とする塩基数領域の DNAフ
ラグメントのバンド間隔を広げることも狭めることも可
能になるという特徴を有する。
また,従来の技術では,数百程度の塩基数の領域のバンド
間隔は極めて接近していて DNA塩基配列の読取り誤りが
生じやすいという問題点があったが,本発明の方法にお
いてはパルス電場の条件をコントロールすることにより
DNA塩基フラグメントの分離パターンのバンド間隔を容
易に広げることができるので,この問題点も解決され
る。
間隔は極めて接近していて DNA塩基配列の読取り誤りが
生じやすいという問題点があったが,本発明の方法にお
いてはパルス電場の条件をコントロールすることにより
DNA塩基フラグメントの分離パターンのバンド間隔を容
易に広げることができるので,この問題点も解決され
る。
本発明の電気泳動方法においてはパルス電場の条件をコ
ントロールすることにより DNA塩基フラグメントの分離
パターンのバンド間隔を低分子領域で狭め,高分子領域
で広げることができるので,従来と同じ泳動距離を有す
る1つのポリアクリルアミドゲル媒体で従来技術による
よりも多くの塩基数を読み取ることができる特徴も有す
る。
ントロールすることにより DNA塩基フラグメントの分離
パターンのバンド間隔を低分子領域で狭め,高分子領域
で広げることができるので,従来と同じ泳動距離を有す
る1つのポリアクリルアミドゲル媒体で従来技術による
よりも多くの塩基数を読み取ることができる特徴も有す
る。
実施例1及び比較例1 [DNA試料と電気泳動分離操作の準備] 常法に従い2本の平滑表面の透明ガラス板を支持体とし
て 200μmの間隔で対向させてゲル容器を形成し,容器
の中でポリアクリルアミド水性ゲル膜(濃度8.0w/v%)を
作成し,このポリアクリルアミドゲル膜を電気泳動用媒
体膜として使用した。
て 200μmの間隔で対向させてゲル容器を形成し,容器
の中でポリアクリルアミド水性ゲル膜(濃度8.0w/v%)を
作成し,このポリアクリルアミドゲル膜を電気泳動用媒
体膜として使用した。
この2枚のガラスに挟まれたゲル膜を上下端部に電極液
槽(上部が陰極,下部が陽極)を備えた泳動装置に垂直に
立てて載置した。上下端部に電極液槽に電極液として,T
BEバッファー(トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン
−エチレンジアミン四酢酸・2ナトリウム−硼素バッファ
ー;pH8.3)を満たした。M-13mp8 DNAを用い ジデオキシ
法により調製した DNAフラグメント試料をゲル媒体膜上
部のサンプルスロットにマイクロシリンジを用いて1μL
ずつ注入した。
槽(上部が陰極,下部が陽極)を備えた泳動装置に垂直に
立てて載置した。上下端部に電極液槽に電極液として,T
BEバッファー(トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン
−エチレンジアミン四酢酸・2ナトリウム−硼素バッファ
ー;pH8.3)を満たした。M-13mp8 DNAを用い ジデオキシ
法により調製した DNAフラグメント試料をゲル媒体膜上
部のサンプルスロットにマイクロシリンジを用いて1μL
ずつ注入した。
[電気泳動操作] 本発明の方法 DNA試料を注入した後 約10分ゲル媒体膜に35V/cmの直流
電場(下端側が高電位)を作用させて DNA試料をゲル膜内
部の泳動開始位置に移動させた。その後第1表に記載の2
通りのスイッチングサイクルでほぼ矩形波に相当する下
端側高電位(EF)電界と上端側高電位(ER)電界を、両者
の繰り返しの間に休止時間を置かずに、連接して交互に
印加してマーカー色素(キシレンシアノール FF;カラー
インデックス(Colour Index)▲No-▼42135;ケミカル・
アブストラクツ・レジストリ番号(CA Registry ▲No
-▼)[2650-17-1])が27cm移動するまで(DNAフラグ
メントを進ませる方向のパルス電界印加時間の合計約13
5分,DNAフラグメントを戻す方向のパルス電界印加時
間の合計約45分,反転パルス電界印加時間の総計約180
分)電気泳動分離を行った。
電場(下端側が高電位)を作用させて DNA試料をゲル膜内
部の泳動開始位置に移動させた。その後第1表に記載の2
通りのスイッチングサイクルでほぼ矩形波に相当する下
端側高電位(EF)電界と上端側高電位(ER)電界を、両者
の繰り返しの間に休止時間を置かずに、連接して交互に
印加してマーカー色素(キシレンシアノール FF;カラー
インデックス(Colour Index)▲No-▼42135;ケミカル・
アブストラクツ・レジストリ番号(CA Registry ▲No
-▼)[2650-17-1])が27cm移動するまで(DNAフラグ
メントを進ませる方向のパルス電界印加時間の合計約13
5分,DNAフラグメントを戻す方向のパルス電界印加時
間の合計約45分,反転パルス電界印加時間の総計約180
分)電気泳動分離を行った。
従来技術による方法 DNA試料を注入した後ゲル媒体膜に 平均35V/cmの直流電
場(下端側が高電位)を作用させマーカー色素(キシレン
シアノール FF)が27cm移動するまで(電界印加時間約90
分)電気泳動分離を行った。
場(下端側が高電位)を作用させマーカー色素(キシレン
シアノール FF)が27cm移動するまで(電界印加時間約90
分)電気泳動分離を行った。
[分離パターンの可視化] 電気泳動操作が終了したゲル媒体膜を常法に従いオート
ラジオグラフィー処理を行い,DNAフラグメント試料の分
離泳動パターンをX-線用写真フィルムに可視画像として
得た。
ラジオグラフィー処理を行い,DNAフラグメント試料の分
離泳動パターンをX-線用写真フィルムに可視画像として
得た。
[電気泳動方法の評価] X-線用写真フィルムの DNAフラグメント試料の分離泳動
パターン可視画像のバンド間隔と読み取り可能な塩基数
を調べたところ,第1表に記載の結果が得られた。
パターン可視画像のバンド間隔と読み取り可能な塩基数
を調べたところ,第1表に記載の結果が得られた。
180゜反転する2方向のパルス電界を周期的に作用させ
る本発明の電気泳動方法においては,DNAフラグメント試
料の分離泳動パターンを最上端領域のバンドがゲル膜の
上向きにシフトしており,その結果高分子量部分領域で
バンド間隔が広がっていた。第1表のデータから,本発
明の方法によると読みとれる塩基数が従来技術の直流電
界を作用させる方法に比べて実施例例1Aで約33%,実施
例例1Bで約13%増加したことが明らかである。
る本発明の電気泳動方法においては,DNAフラグメント試
料の分離泳動パターンを最上端領域のバンドがゲル膜の
上向きにシフトしており,その結果高分子量部分領域で
バンド間隔が広がっていた。第1表のデータから,本発
明の方法によると読みとれる塩基数が従来技術の直流電
界を作用させる方法に比べて実施例例1Aで約33%,実施
例例1Bで約13%増加したことが明らかである。
実施例2及び比較例例2 2枚のポリエチレンテレフタレートフィルム(透明支持
体)に挟まれたプレハブ ポリアクリルアミドゲル膜(富
士写真フイルム(株)製;ゲル濃度8.0w/v%,膜厚0.2mm,
長さ40cm×幅20cm)を用いて実施例1及び比較例例2と
同様にして操作を行ったところ,第2表に記載の結果が
得られた。
体)に挟まれたプレハブ ポリアクリルアミドゲル膜(富
士写真フイルム(株)製;ゲル濃度8.0w/v%,膜厚0.2mm,
長さ40cm×幅20cm)を用いて実施例1及び比較例例2と
同様にして操作を行ったところ,第2表に記載の結果が
得られた。
本発明の180゜反転する2方向のパルス電界を周期的に
作用させる本発明の電気泳動方法においては,DNAフラグ
メント試料の分離泳動パターンの最上端領域のバンドが
ゲル膜の上向きにシフトしており,その結果高分子量部
分領域でバンド間隔が広がっていた。第2表のデータか
ら,本発明の方法によると読みとれる塩基数が従来技術
の直流電界を作用させる方法に比べて約28%増加しとこ
とが明らかである。
作用させる本発明の電気泳動方法においては,DNAフラグ
メント試料の分離泳動パターンの最上端領域のバンドが
ゲル膜の上向きにシフトしており,その結果高分子量部
分領域でバンド間隔が広がっていた。第2表のデータか
ら,本発明の方法によると読みとれる塩基数が従来技術
の直流電界を作用させる方法に比べて約28%増加しとこ
とが明らかである。
Claims (7)
- 【請求項1】(メタ)アクリルアミド系化合物と架橋剤が
水の存在下に架橋重合してなるポリ(メタ)アクリルアミ
ド系水性ゲル及び変性剤として少なくとも1個のカルバ
モイル基を含む化合物を含む電気泳動用ゲル電気泳動用
媒体の内部に異なる塩基数の核酸フラグメントを含む試
料を位置させ, 実質的に交差せず対向する向きに交互に反転をくり返す
矩形波状、鋸歯波状又は正弦波状のいずれかの波形から
なる2方向のパルス電場を,DNAフラグメントを目的
とする泳動方向に進ませる方向に作用する電界パルスの
パルス1個の継続時間のほうがDNAフラグメントを目
的とする泳動方向から戻す方向に作用する電界パルスの
パルス1個の継続時間より長くなるようにして前記電気
泳動媒体に作用させ,前記核酸フラグメントを分子篩作
用の存在下で目的とする泳動方向に移動させて,前記核
酸フラグメントの分離を行う電気泳動方法。 - 【請求項2】前記2方向のパルス電場を作用させる条件
が,TFを DNAフラグメントを進ませる方向の電界パ
ルス1個を継続させる時間, TRを DNAフラグメントを戻す方向の電界パルス1個
を継続させる時間, とすると, TFとTRは それぞれ 0.1msec〜100msecの範囲であり,
かつ, TF:TR比が 5:1から 2:1 の範囲である 特許請求の範囲第1項に記載の電気泳動方法。 - 【請求項3】前記2方向の電場が実質的に等しい強度で
交互に作用させられる特許請求の範囲第1項又は第2項
に記載の電気泳動方法。 - 【請求項4】前記電気泳動媒体が実質的に一定のゲル濃
度と実質的に一定の厚さを有する薄板状又は薄膜状の電
気泳動媒体膜である特許請求の範囲第1項又は第2項に
記載の電気泳動方法。 - 【請求項5】前記電気泳動媒体が薄板状又は薄膜状の膜
であり,かつ膜厚グラジエント,ゲル濃度グラジエント
及びpH緩衝剤濃度グラジエントのいずれか少なくとも一
つのグラジエントを有する電気泳動媒体膜である特許請
求の範囲第1項又は第2項に記載の電気泳動方法。 - 【請求項6】前記電気泳動用媒体膜が有機ポリマーから
なるシート状支持体の上に設けられている特許請求の範
囲第1項ないし第5項のいずれかに記載の電気泳動方
法。 - 【請求項7】前記電気泳動用媒体膜がガラスからなるシ
ート状支持体の上に設けられている特許請求の範囲第1
項ないし第5項のいずれかに記載の電気泳動方法。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62230592A JPH0660887B2 (ja) | 1987-09-14 | 1987-09-14 | 電気泳動方法 |
| US07/243,975 US4900416A (en) | 1987-09-14 | 1988-09-13 | Electrophoretic method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62230592A JPH0660887B2 (ja) | 1987-09-14 | 1987-09-14 | 電気泳動方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6473246A JPS6473246A (en) | 1989-03-17 |
| JPH0660887B2 true JPH0660887B2 (ja) | 1994-08-10 |
Family
ID=16910155
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62230592A Expired - Fee Related JPH0660887B2 (ja) | 1987-09-14 | 1987-09-14 | 電気泳動方法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4900416A (ja) |
| JP (1) | JPH0660887B2 (ja) |
Families Citing this family (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA2012379C (en) * | 1989-04-24 | 2000-01-25 | Gary W. Slater | Processes for the preparation and separation of macromolecules |
| US5225062A (en) * | 1991-02-27 | 1993-07-06 | W. R. Grace & Co. -Conn. | Electrophoretic gel for separation and recovery of substances and its use |
| US5238545A (en) * | 1991-02-27 | 1993-08-24 | W. R. Grace & Co.-Conn. | Electrophoretic gel for separation and recovery of substances and its use |
| US5453162A (en) * | 1993-09-09 | 1995-09-26 | University Of North Carolina At Chapel Hill | Method and apparatus for gel electrophoresis using two electric fields |
| WO1995023245A1 (en) * | 1994-02-25 | 1995-08-31 | Labintelligence, Inc. | Real time in-gel assay |
| US7056426B2 (en) * | 2003-01-17 | 2006-06-06 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Pre-cast electrophoresis slab gels with extended storage life |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3506554A (en) | 1968-03-15 | 1970-04-14 | Samuel Raymond | Apparatus for separating electrophoretically active substances |
Family Cites Families (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5025383B2 (ja) * | 1973-05-28 | 1975-08-22 | ||
| US4473452A (en) * | 1982-11-18 | 1984-09-25 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Electrophoresis using alternating transverse electric fields |
| JPS59164950A (ja) * | 1983-03-11 | 1984-09-18 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動用媒体材料 |
| JPS59171849A (ja) * | 1983-03-18 | 1984-09-28 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動用媒体 |
| JPS59171848A (ja) * | 1983-03-18 | 1984-09-28 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動用媒体 |
| JPS59212751A (ja) * | 1983-05-19 | 1984-12-01 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動媒体材料の製造方法 |
| JPS59212753A (ja) * | 1983-05-19 | 1984-12-01 | Science & Tech Agency | 電気泳動用媒体材料 |
| JPS59212752A (ja) * | 1983-05-19 | 1984-12-01 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動用媒体材料 |
| JPS6060548A (ja) * | 1983-09-14 | 1985-04-08 | Fuji Photo Film Co Ltd | 電気泳動用媒体 |
| JPS6060549A (ja) * | 1983-09-14 | 1985-04-08 | Fuji Photo Film Co Ltd | ゲル電気泳動用媒体 |
| EP0155833A3 (en) * | 1984-03-15 | 1988-07-27 | Fuji Photo Film Co., Ltd. | Element for electrophoresis |
| DE3581657D1 (de) * | 1984-05-14 | 1991-03-14 | Fuji Photo Film Co Ltd | Elektrophoretischer bestandteil. |
| EP0167373A3 (en) * | 1984-06-30 | 1989-06-14 | Fuji Photo Film Co., Ltd. | Element for electrophoresis |
| US4737251A (en) * | 1985-09-27 | 1988-04-12 | Washington University | Field-inversion gel electrophoresis |
| JP2659396B2 (ja) * | 1988-05-25 | 1997-09-30 | 株式会社リコー | 電子写真感光体 |
| JPH031963A (ja) * | 1989-05-30 | 1991-01-08 | Canon Inc | 記録装置 |
| JPH09212751A (ja) * | 1996-02-02 | 1997-08-15 | Sharp Corp | 電子式金銭登録機 |
-
1987
- 1987-09-14 JP JP62230592A patent/JPH0660887B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
1988
- 1988-09-13 US US07/243,975 patent/US4900416A/en not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3506554A (en) | 1968-03-15 | 1970-04-14 | Samuel Raymond | Apparatus for separating electrophoretically active substances |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US4900416A (en) | 1990-02-13 |
| JPS6473246A (en) | 1989-03-17 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA2249886C (en) | Acrylic microchannels and their use in electrophoretic applications | |
| US5631337A (en) | Thermoreversible hydrogels comprising linear copolymers and their use in electrophoresis | |
| Garoff et al. | Improvements of DNA sequencing gels | |
| EP0680516B1 (en) | High resolution dna sequencing method using low viscosity medium | |
| Yoshino et al. | Temperature sweep gel electrophoresis: a simple method to detect point mutations | |
| US20060088867A1 (en) | Purification devices comprising immobilized capture probes and uses therefor | |
| EP0773225B1 (en) | Entrapment of nucleic acid sequencing template in sample mixtures by entangled polymer networks | |
| JP2002515586A (ja) | 分子の分離を実施するための改良された方法およびシステム | |
| JPS6060548A (ja) | 電気泳動用媒体 | |
| JPS59126236A (ja) | 電気泳動用媒体 | |
| JPH0457974B2 (ja) | ||
| JPH0660887B2 (ja) | 電気泳動方法 | |
| EP0644420A2 (en) | Method and apparatus for gel electrophoresis | |
| Westermeier | Gel electrophoresis | |
| EP0320937B1 (en) | Elektrophoresis method | |
| JP3935146B2 (ja) | 電気泳動用の緩衝液およびそれらの使用 | |
| JP3186259B2 (ja) | キャピラリー電気泳動法を用いた遺伝子多型解析方法および解析装置 | |
| JPH01173858A (ja) | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 | |
| JPH01162144A (ja) | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 | |
| JPH01267450A (ja) | 電気泳動方法及び装置 | |
| JP4423397B2 (ja) | 特異的配列をもつニ本鎖dnaを検出する方法 | |
| JPH0815222A (ja) | 電気泳動用ゲル、その製造方法および電気泳動法 | |
| WO1995014922A1 (en) | Entrapment of nucleic acid sequencing template in sample mixtures by entangled polymer networks | |
| JPS6332362A (ja) | 電気泳動分析用材料の製造法 | |
| JPS6120849A (ja) | 電気泳動用媒体 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |