JPS5820192A - 固定化酵素 - Google Patents

固定化酵素

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JPS5820192A
JPS5820192A JP11953181A JP11953181A JPS5820192A JP S5820192 A JPS5820192 A JP S5820192A JP 11953181 A JP11953181 A JP 11953181A JP 11953181 A JP11953181 A JP 11953181A JP S5820192 A JPS5820192 A JP S5820192A
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enzyme
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immobilized
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immobilized enzyme
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Takashi Kawasaki
隆志 川崎
Yasuo Kihara
木原 康夫
Yutaka Moroishi
裕 諸石
Isoji Sakai
酒井 五十治
Akio Iwama
昭男 岩間
Isao So
宗 伊佐雄
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Nitto Denko Corp
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Nitto Electric Industrial Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は固定化酵素番と関する。
酵素反応は、その基質特異性や常温常圧での高反応性の
ために、特に食品や医薬品工業等において利用されてい
るが、従来は酵素を基質の水溶液に溶解させて酵素反応
を行なわせていた。従って、このような方法によれば、
反応条件を一定に維持しつつ、新鮮な酵素を補給したり
、また、反応後に酵素を失活させることなく、生成物と
酵素を分離することが非常に困難であって、酵素が不経
済に消費されるうえに、反応が回分式であるので、生産
性に劣る問題があった。
そこで、このような問題を解決するために、酵素を水不
溶性の担体に種々の方法にて固定化し、この固定化酵素
に基質を連続的に反応させることが提案され、既に一部
では実用化されている。酵素の固定化の方法としては、
酵素を共有結合にて担体に結合させる共有結合法が、酵
素が担体から容易には離脱しないために広(採用されて
いるが、従来、酵素の共有結合のための担体として一般
に用いられているセルロース、デキストラン、アガロー
ス等の多糖類誘導体、ポリアクリルアミドゲル等は直径
数酩程度の粒子であって、物理的強度が十分でないため
に、カラムに充填して長期間使用した場合に目詰まりが
起こり、反応効率が低下する欠点があった。一方、物理
的強度があり、比較的成形性にすぐれる再生セルロース
やエチレン−ビニルアルコール共重合体は膜状担体にし
得るが、酵素の固定に必要な官能基が水酸基であるため
、臭化シアン等による活性化処理に複雑困難な操作を要
し、特に担体が膜又はフィルムの場合、活性化が非常に
困難であって、酵素固定化量が少な(、且つ、得られる
固定化酵素の活性収率が低いという欠点があった。
本発明は上記した種々の問題を解決するためになされた
ものであって、物!的強度、成形性共にすぐれ、更に高
い活性収率を有する固定化酵素を提供することを目的と
する。
本発明は、主として一般式 (但し、Rは2価の有機基を示す。ン で表わされる繰返し単位からなる水不溶性ポリイミド成
形物が少なくともその表面に右いてイミド開環率が10
〜100%に開環され、か(して形成されたカルボキシ
ル基に酵素が固定化されていることを特徴とする。
主として前記一般式!で表わされる繰返し単位からなる
ポリイミド及びその膜の製造方法は特開昭54−717
85号公報に記載されている。上記ポリイミドは通常、
N−メチル−2−ピロリドンのような極性有機溶剤中で
1.2,3.4−ブタンテトラカルボンやと一般式 %式% (但し、Rは前記と同じである。) で表わされるジアミンとをほぼ等モル比で100〜30
0℃程度の温度に10〜50時間加熱し、脱水縮合させ
ることによって得られる。1.2,3.4−ブタンテト
ラカルボン酸の代わりにその一無水物、二無水物、ジア
ルキルエステル、アミド等も用いることができる。
上記ポリイミドにおけるR1即ち上記ジアミンにおける
Rは脂肪族、芳香族又は脂環族の2価の炭化水素基、又
はこれらが−GyHs−1−CfH(CfHs)−1−
co−、−o−1−8αm−、−8− 等で結合されて
いる2価の有機基であるが、好ましい代表例はである。
本発明において用いるポリイミドは極限粘度(N−メチ
ル−2−ピロリドンを溶剤とする30℃での測定値)が
0.55〜1.00、好ましくは0.60〜0.85で
ある。これを平均分子量に換算すれば20000〜12
0000、好まシ(ハ3oooo〜8ooo。
である。また、ポリイミドは反応条件によってはイミド
環に閉環する前駆構造としてアミド結合を有するが、本
発明において用いるポリイミド担体は、 イミド開環率= とするとき、表面においてはイミド開環率が10〜10
0%であり、表面を除く実質部即ち基体層に、おいては
イミド開環率が0〜30%であることが望ましし−0即
ち、イミド化率が70%以上、好ましくは90%以上、
特に好ましくは98〜1oo%である。このように、本
発明において好ましく用い得る担体は、表面がイミド開
環率が10〜1o。
%、内部が実質的に前記一般式で表わされるイミド繰返
し単位から構成される。このように表面と内部とが異な
る構造の担体は、実質的に前記一般式Iで表わされるポ
リイミドを粒子、フィルム、多孔性膜等所要の形状に成
形後、この成形物の表面を加水分解することによって得
られる。イミド構造の前駆構造又はイミド環の加水分解
により生じるアミド酸構造を有する繰返し単位として次
のような例が挙げられよう。
実質的に前記一般式Iで表わされるポリイミド構造は物
理的強度、化学的特性にすぐれているので、非多孔性の
フィルムや限外p過性又は逆浸透性の辺択的透過性能を
有する多孔性の膜形状に担体を成形した場合、担体表寧
は酵素固定化のためのカルボキシル基密度が高く、この
担体表面が物理的強度、化学的特性にすぐれるポリイミ
ド構造で一体的に補強されているので、実用上すぐれた
担体を得ることができる。成形物の表面を加水分解する
条件は担体の形状にもよるが、多孔性膜の場合には、通
常、pH10〜12、好ましくは9l−flO15〜1
1.5の範囲のアルカリ水浴液に10分乃至数10時間
、好ましくは30分〜5時間、35〜40℃の温度で浸
漬すればよい。非多孔性のフィルムの一合には、多孔性
膜に比べて苛酷な条件で処理すればよい。成形物表面の
加水分解の程度、即ち、イミド開環率は所要のカルボキ
シル基密度、得られる固定化酵素の活性、担体の強度等
を考慮して適宜に選ばれる。また、物理化学的には成形
物表面の赤外線吸収スペクトルにおけるカルボニル基の
吸光度の変化により加水分解の程度を知ることができる
。尚、このようにして加水分解されたポリイミドは主鎖
が切断されていないため、物理的強度は殆ど低下しない
しかしながら、本発明においては、担体が比較的強度を
要しない場合には、担体全体が一様なイミド開環率を有
していてもよい。このような担体のためのポリイミドは
、好ましくは1,2,3.4−ブ 。
タンテトラカルボン酸二無水物を前記したN−メチル−
2−ピロリドンのような極性有機溶剤中、前記ジアミン
と30〜100℃の温度で反応させてイミド1llj 
F、Vl 100%、即ちイミド構造を含まないポリア
ミド酸を得、この後、加熱温度を100〜300℃の範
囲で調整し、イミド化率を任意に制御することにより得
られる。従って、イミド化率を例えば30〜70%とし
たポリイミドを得れば、加水分解を要せずして直ちに担
体として用いることができる。
本発明において担体に酵素を結合させる方法は、共有結
合法、イオン結合法のいずれでもよい。本発明において
用いる担体はカルボキシル基を有するため、例えばカル
ボジイミド試薬或いはウッドワード試薬と共に酵素を担
体に反応させれば容易に共有結合にて酵素が固定化され
るが、これらの方法に限定されるものではない。また、
酵素を担体にイオン結合させるには、担体を酵素の水溶
液に浸漬すればよい。
また、!!11素を共有結合にて担体に結合させる場合
、カルボキシル基にヘキサメチレンジアミンやキシリレ
ンジアミン等、従来からスペーサとして用いられるもの
をスペーサ基として結合し、このスペーサ基の遊離のア
ミノ基に酵素を共有結合させることもでき、本発明にお
いて担体のカルボキシル基に酵素を結合させるとはかか
る場合をも含むものとする。
従って、本発明においては種々の酵素を担体に固定化す
ることができ、具体例としてアミノ酸オキシダーゼ、カ
タラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、グルコース′・オ
キシダーゼ、グルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ
、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、チトクロムCオキシ
ダーゼ、チロシナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、ペルオ
キシダーゼ、6−ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼ、
リンゴ酸デヒドロゲナーゼのような酸化還元酵素、アス
パラギン酸アセチルトランスフェラーゼ、アスパラギン
酸アミノトランスフェラーゼ、グリシンアミノトランス
フェラーゼ、グルタミン酸−オキザロ酢酸アミノトラン
スフェラーゼ、グルタミン酸−ピルピン酸アミノトラン
スフェラーゼ、クレアチンホスホキナーゼ、ヒスタミン
メチルトランスフェラーゼ、ピルビン酸キナーゼ、フラ
クトキナーゼ、ヘキソキナーゼ、δ−リジンアセチルト
ランスフェラーゼ、ロイシンアミノペプチダーゼのよう
な転移酵素、アスパラギナーゼ、アセチルコリンエステ
ラーゼ、アミノアシラーゼ、アミラーゼ、アルギナーゼ
、L−アラニンラセマ−ゼ、インベルターゼ、ウレアー
ゼ、ウリカーゼ、ウロキナーゼ、エステラーゼ、β−ガ
ラクトシダーゼ、カリクレイン、キモトリプシン、トリ
プシン、トロンビン、ナリンギナーゼ、ヌクレオチダー
ゼ、パパイン、ヒヤクロニダーゼ、プラスミン、ペクチ
ナーゼ、ヘキソキナーゼ、ペプシン、ぺ二シリナーゼ、
ペニシリンアミダーゼ、ホスホリパーゼ、ホスファター
ゼ、ラクターゼ、リパーゼ、リボヌクレアーゼ、レンニ
ンのような加水分解酵素、アスパラギン拳デカルボキシ
ラーゼ、アスパルターゼ、クエン醐リアーゼ、グルタミ
ン酸デpルボキシラーゼ、ヒスチジンアンモニアリアー
ゼ、フェニルアラニンアンモニアリアーゼ、フマラーゼ
、フマール酸ヒドラターゼ、リンゴ酸シンテターゼのよ
うなリアーゼ、アラニンラセマーゼ、グルコースイソメ
ラーゼ、グルコースホスフェートイソメラーゼ、グルタ
ミン酸ラセマーゼ、乳酸ラセマーゼ、メチオニンラセマ
ーゼのような異性化酵素、アスパラギンシンターゼ、グ
ルタチオンシンターゼ、ビルヒン酸シンターゼのような
りガーゼ等を挙げることができる。
本発明による固定化酵素は、以上のように、酵素固定化
のための官能基としてカルボキシル基を有するため、担
体の形状を問わず酵素の固定化が簡単−行なえて、しか
も得られる固定化酵素の活性収率が高い。更に、本発明
においては、前記一般式で表わされるポリイミドを基体
とする担体を用いるため、粒子、選択性透過性能を有す
る多孔性膜或いは非多孔性のフィルム等任意形状に成形
でき、特に実質的に前記一般式で表わされるポリイミド
からなる成形物の表面を加水分解して得られる担体は、
担体の基体層が実質的にポリイミドから構成されるため
、物理的強度及び化学的特性にすぐれた固定化酵素が得
られる。
以下に本発明の実施例を挙げるが、本発明はこれらに限
定されるものではない。尚、以下に$いて部は重量部を
示す。
実施例1 特開昭54−71785号公報に記載されている方法に
従って、極限粘度〔η〕が0.76 (30”e )イ
ミド化率が99噂以上であり、前記一般式に詔いてチル
−2−ピロリドン溶液を得た(固形分25−1B型粘度
計による30℃での測定値180ポイズ)。
乳鉢で微粉砕した硝酸リチウムをポリイミド100部当
り100部の割合て上記ポリイミド溶液に加え、100
℃で5時間攪拌して均一な溶液とした。この゛溶液をア
ルミニウム板上に厚み320μに塗布し、直ちに50℃
の水浴中に投入、120分間浸漬して厚み250μの選
択透過性多孔性膜を得た。この膜を5C11X5mに切
断し、Na@m’04−NaOH緩衝液(0,15M 
 Na5HPO4,0,IM  NaOH% pH11
,0ン に浸漬し、40℃で90分間振とうしながら加
水分―シた。この後、膜を蒸留水で十分に洗浄し、担体
とした。
300d容量のビーカーに水50 dと上記担体を入れ
、室温で攪拌しながら液状グルコースイソメラーゼ(ナ
ガセ生化学工業社製、6300 U/id ) 1dを
添加後、直ちにl−エチル−3(3−ジメチルアミノプ
ロピル)カルボシイ、ミド塩#塩150119を添加し
、次に0.1N填酸又は0.I N水酸化ナトリウム水
溶液を逐次添加してpHを5.0に調整した。2時間後
、4℃に冷却し、−夜装置して、酵素の固定化を完結さ
せた。この後、トリス−マレイン酸緩衝液(0,1M)
リス(ヒドロキシメチル)゛アミノメタン、0.1Mマ
レイン酸、2mMII化コバルト、0.1Mal!マグ
ネシウム、pHを5N水酸化ナトリウム水溶液で7.5
に調整)で数回洗浄し、本発明による固定化酵素を得た
ー 100m1j容量ビーカーに1Mグルコースのトリス−
マレイン酸緩衝液25−と、上記膜状固定化酵素2.5
 CIIX 2.5 elitを入れ、振とうしながら
60”eで30分間反応させた後、0.5M過塩素酸水
溶液25 mlを添加して反応を終了させた。この固定
化酵素の活性をシスティン−カルバゾール法により生成
したフラクトース量から測定したところ、277.8 
TT/f−担体であった。但し、1分間に1部モルの7
ラクトースを生成する酵素活性をIUとした。
実施例2 実施例1と同様にして得られた膜状担体4C11X4C
I11を水50耐と共に300d容量ビーカーに入れ、
次に1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロピル)カ
ルボジイミド塩酸塩100sSFとキシリレンジアミン
1%水溶液3.6dを添加し、室温で攪拌下に0.1N
j!!酸又は0.IN水酸化ナトリウム水溶液を添加し
、pHを4,8〜5.5に調整した。3.5時間後、4
℃に冷却し、−夜装置した。この後、蒸留水で十分に洗
浄して、キシリレンジアミンをスペーサとする担体を得
た。
カルボジイミドの存在下に上記担体にグルコースイソメ
ラーゼを実施例1と同様に反応させて固定化した。この
固定化酵素の活性は308.8 UNI −担体であっ
た。
実施例3 極限粘度〔η〕が0.73、イミド化率が99%以上で
あり、前記一般式においてRが ルー2−ピロリドン溶液(固形分18%、粘度57ボイ
ズ)を調製した。硝酸カリウムの15重it%N−メチ
ルー2−ピロリドン溶液を硝酸カリウムがポリイミド1
00部当り5部の割合になるように上記ポリイミド溶液
に加え、均一に混合した。この溶液をガラス板上に厚さ
250μに塗布した後、直ちに25℃のt−ブチルアル
コール中に投入、10秒間浸漬した後、20秒後KIO
℃の水中に投入、120分間浸漬した。
得られた膜を実施例1と同様にして加水分解して担体と
し、実施例1と同様にしてグルコースイソメラーゼを固
定化した。この固定化酵素の活性は256 UNI−担
体であった。
実施例4 実施例3で得たポリイミドのN−メチル−2−ピロリド
ン溶液をガラス板上に厚み1■に塗布し、120℃で3
0分間乾燥し、更に160℃で1時間乾燥した。冷却後
、水中に一夜浸漬して非多孔性フィルムを得た。このフ
ィルムを実施例1と同S1にしてpH11のNa 1H
PO4−NaOH緩衝液に浸漬し、40℃で4時間振と
う、加水分解し、担体を得た。
この担体に1−シクロ^キシル−3−(2−モルホリノ
エチル)カルボジイミドメト−p−)ルエンスルホン酸
の存在下にジャック脅ビーン由来のウレアーゼを固定化
し、本発明による固定化酵素を得た。活性収率は68襲
であった。
実施例5 実施例4で得たフィルム状担体に同様にしてバクテリア
由来のα−アミラーゼを固定化した。活性収率は82%
、であった。
実施例6 実施例1で得た担体を室温で0.INI酸中に30分間
浸漬した後、蒸留水で十分に洗浄した。501147y
d濃度のα−アミラーゼ水溶液に上記担体を接触させ、
α−アミラーゼをイオン結合にて固定化した。活性収率
は70%であった。

Claims (3)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)主として一般式 (但し、Rは2価の有機基を示す。) で表わされる繰返し単位からなる水不溶性ポリイミド成
    形物が少なくともその表面においてイミド開環率が10
    〜100%に開環され、かくして形成されたカルボキシ
    ル基に酵素が固定化されていることを特徴とする固定化
    酵素。
  2. (2)ポリイミド成形物の基体層のイミド開環率が0〜
    30襲であることを特徴とする特許請求の範囲第1項記
    戦の固定化酵素。
  3. (3)一般式においてRが であることを特徴とする特許請求の範囲第1項又は第2
    項記載の固定化酵素。
JP11953181A 1981-07-29 1981-07-29 固定化酵素 Expired JPS597436B2 (ja)

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