JPS597436B2 - 固定化酵素 - Google Patents
固定化酵素Info
- Publication number
- JPS597436B2 JPS597436B2 JP11953181A JP11953181A JPS597436B2 JP S597436 B2 JPS597436 B2 JP S597436B2 JP 11953181 A JP11953181 A JP 11953181A JP 11953181 A JP11953181 A JP 11953181A JP S597436 B2 JPS597436 B2 JP S597436B2
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- carrier
- enzyme
- immobilized
- polyimide
- immobilized enzyme
- Prior art date
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- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は商定化酵素に関する。
酵素反応は、その基質特異性や常湛常圧での高反応性の
ために、特に食品や医薬品工業等において利用されてい
るが、従来は酵素を基質の水溶液に溶解させて酵素反応
を行なわせていた。
ために、特に食品や医薬品工業等において利用されてい
るが、従来は酵素を基質の水溶液に溶解させて酵素反応
を行なわせていた。
従って、このような方法によれば、反応条件を一定に維
持しつつ、新鮮な酵素を補給したり、また、反応後に酵
素を失活させることなく、生成物と酵素を分離すること
が非常に困難であって、酵素が不経済に消費されるうえ
に、反応が回分式であるので、生産性に劣る問題があっ
た。
持しつつ、新鮮な酵素を補給したり、また、反応後に酵
素を失活させることなく、生成物と酵素を分離すること
が非常に困難であって、酵素が不経済に消費されるうえ
に、反応が回分式であるので、生産性に劣る問題があっ
た。
そこで、このような問題を解決するために、酵素を水不
溶性の担体に種々の方法にて固定化し、この固定化酵素
に基質を連続的に反応させることが提案され、既に一部
では実用化されている。
溶性の担体に種々の方法にて固定化し、この固定化酵素
に基質を連続的に反応させることが提案され、既に一部
では実用化されている。
酵素の固定化の方法としては、酵素を共有結合にて担体
に結合させる共有結合法が、酵素が担体から容易には離
脱しないために広く採用されているが、従来、酵素の共
有結合のための担体として一般に用いられているセルロ
ース、デキストラン、アガロース等の多糖類誘導体、ポ
リアクリルアミドゲル等は直径数mm程度の粒子であっ
て、物理的強度が十分でないために、カラムに充填して
長期間使用した場合に目詰まりが起こり、反応効率が低
下する欠点があった。
に結合させる共有結合法が、酵素が担体から容易には離
脱しないために広く採用されているが、従来、酵素の共
有結合のための担体として一般に用いられているセルロ
ース、デキストラン、アガロース等の多糖類誘導体、ポ
リアクリルアミドゲル等は直径数mm程度の粒子であっ
て、物理的強度が十分でないために、カラムに充填して
長期間使用した場合に目詰まりが起こり、反応効率が低
下する欠点があった。
一方、物理的強度があり、比較的成形性にすぐれる再生
セルロースやエチレンービニルアルコール共重合体は膜
状担体にし得るが、酵素の固定に必要な官能基が水酸基
であるため、臭化シアン等による活性化処理に複雑困難
な操作を要し、特に担体が膜又はフイルムの場合、活性
化が非常に困難であって、酵素固定化量が少なく、且つ
、得られる固定化酵素の活性収率が低いという欠点があ
った。
セルロースやエチレンービニルアルコール共重合体は膜
状担体にし得るが、酵素の固定に必要な官能基が水酸基
であるため、臭化シアン等による活性化処理に複雑困難
な操作を要し、特に担体が膜又はフイルムの場合、活性
化が非常に困難であって、酵素固定化量が少なく、且つ
、得られる固定化酵素の活性収率が低いという欠点があ
った。
本発明は上記した種々の問題を解決するためになされた
ものであって、物理的強度、成形性共にすぐれ、更に高
い活性収率を有する固定化酵素を提供することを目的と
する。
ものであって、物理的強度、成形性共にすぐれ、更に高
い活性収率を有する固定化酵素を提供することを目的と
する。
本発明は、主として一般式
(但し、Rは2価の有機基を示す。
)で表わされる繰返し単位からなる水不溶性ポリイミド
成形物が少なくともその表面においてイミド開環率が1
0〜100%に開環され、かくして形成されたカルボキ
シル基に酵素が固定化されていることを特徴とする。
成形物が少なくともその表面においてイミド開環率が1
0〜100%に開環され、かくして形成されたカルボキ
シル基に酵素が固定化されていることを特徴とする。
主として前記一般式Iで表わされる繰返し単位からなる
ポリイミド及びその膜の製造方法は特開昭54−717
85号公報に記載されている。
ポリイミド及びその膜の製造方法は特開昭54−717
85号公報に記載されている。
上記ポリイミドは通常、N−メチル−2−ピロリドンの
ような極性有機溶剤中で1.2,3.4−ブタンテトラ
カルボン酸と一般式 NH−R−NH2 2 (但し、Rは前記と同じである。
ような極性有機溶剤中で1.2,3.4−ブタンテトラ
カルボン酸と一般式 NH−R−NH2 2 (但し、Rは前記と同じである。
)で表わされるジアミンとをほぼ等モル比で100〜3
00℃程度の温度に10〜50時間加熱し、脱水縮合さ
せることによって得られる。
00℃程度の温度に10〜50時間加熱し、脱水縮合さ
せることによって得られる。
1,2,3,4−ブタンテトラカルボン酸の代わりにそ
の一無水物、二無水物、ジアルキルエステル、アミド等
も用いることができる。
の一無水物、二無水物、ジアルキルエステル、アミド等
も用いることができる。
上記ポリイミドにおけるR、即ち上記ジアミンにおける
Rは脂肪族、芳香族又は脂環族の2価の炭化水素基、又
はこれらがーCH2−、−CH(CH3)−、一CO−
、一〇−、−SO2−、へS一等で結合されている2価
の有機基であるが、好ましい代表例は である。
Rは脂肪族、芳香族又は脂環族の2価の炭化水素基、又
はこれらがーCH2−、−CH(CH3)−、一CO−
、一〇−、−SO2−、へS一等で結合されている2価
の有機基であるが、好ましい代表例は である。
本発明において用いるポリイミドは極限粘度(N−メチ
ル−2−ピロリドンを溶剤とする30℃での測定値)が
0.55〜1,00、好ましくは060〜0.85であ
る。
ル−2−ピロリドンを溶剤とする30℃での測定値)が
0.55〜1,00、好ましくは060〜0.85であ
る。
これを平均分子量に換算すれば20000〜12000
0、好ましくは30000;80000である。
0、好ましくは30000;80000である。
また、ポリイミドは反応条件によってはイミド環に閉環
する前,駆構造としてアミド結合を有するが、本発明に
おいて用いるポリイミド担体は、 イミド環の数 イミド化率= x1oo
(L:fAイミド環の数+アミド結合の数 イミド開環率 アミド結合の数 二一一一一一一7−− X 10 0 (輪イミド環の
数+アミド結合の数 とするとき、表面においてはイミド開環率が10〜10
0%であり、表面を除く実質部即ち基体層においてはイ
ミド開環率がO〜30%であることが望ましい。
する前,駆構造としてアミド結合を有するが、本発明に
おいて用いるポリイミド担体は、 イミド環の数 イミド化率= x1oo
(L:fAイミド環の数+アミド結合の数 イミド開環率 アミド結合の数 二一一一一一一7−− X 10 0 (輪イミド環の
数+アミド結合の数 とするとき、表面においてはイミド開環率が10〜10
0%であり、表面を除く実質部即ち基体層においてはイ
ミド開環率がO〜30%であることが望ましい。
即ち、イミド化率が70係以上、好ましくは90楚以上
、特に好ましくは98〜100%である。
、特に好ましくは98〜100%である。
このように、本発明において好ましく用い得る担体は、
表面がイミド開環率が10〜100係、内部が実質的に
前記一般式で表わされるイミド繰返し単位から構成され
る。
表面がイミド開環率が10〜100係、内部が実質的に
前記一般式で表わされるイミド繰返し単位から構成され
る。
このように表面と内部とが異なる構造の担体は、実質的
に前記一般式■で表わされるポリイミドを粒子、フイル
ム、多孔性模等所要の形状に成形後、この成形物の表面
を加水分解することによって得られる。
に前記一般式■で表わされるポリイミドを粒子、フイル
ム、多孔性模等所要の形状に成形後、この成形物の表面
を加水分解することによって得られる。
イミド構造の前1駆構造又はイミド環の加水分解により
生じるアミド酸構造を有する繰返し単位として次のよう
な例が挙げられよう。
生じるアミド酸構造を有する繰返し単位として次のよう
な例が挙げられよう。
実質的に前記一般式■で表わされるポリイミド構造は物
理的強度、化学的特性にすぐれているので、非多孔性の
フイルムや限外沖過性又は逆浸透性の選択的透過性能を
有する多孔性の膜形状に担体を成形した場合、担体表面
は酵素固定化のためのカルボキシル基密度が高く、この
担体表面が物理的強度、化学的特性にすぐれるポリイミ
ド構造で一体的に補強されているので、実用上すぐれた
担体を得ることができる。
理的強度、化学的特性にすぐれているので、非多孔性の
フイルムや限外沖過性又は逆浸透性の選択的透過性能を
有する多孔性の膜形状に担体を成形した場合、担体表面
は酵素固定化のためのカルボキシル基密度が高く、この
担体表面が物理的強度、化学的特性にすぐれるポリイミ
ド構造で一体的に補強されているので、実用上すぐれた
担体を得ることができる。
成形物の表面を加水分解する条件は担体の形状にもよる
が、多孔性膜の場合には、通常、pH10〜12、好ま
しくはpH10.5〜11.5の範囲のアルカリ水溶液
に10分乃至数10時間、好ましくは30分〜5時間、
35〜40゜Cの温度で浸漬すればよい。
が、多孔性膜の場合には、通常、pH10〜12、好ま
しくはpH10.5〜11.5の範囲のアルカリ水溶液
に10分乃至数10時間、好ましくは30分〜5時間、
35〜40゜Cの温度で浸漬すればよい。
非多孔性のフイルムの場合には、多孔性膜に比べて苛酷
な条件で処理すればよい。
な条件で処理すればよい。
成形物表面の加水分解の程度、即ち、イミド開環率は所
要のカルボ,キシル基密度、得られる固定化酵素の活性
、担体の強度等を考慮して適宜に選ばれる。
要のカルボ,キシル基密度、得られる固定化酵素の活性
、担体の強度等を考慮して適宜に選ばれる。
また、物理化学的には成形物表面の赤外線吸収スペクト
ルにおけるカルボニル基の吸光度の変化により加水分解
の程度を知ることができる。
ルにおけるカルボニル基の吸光度の変化により加水分解
の程度を知ることができる。
尚、このようにして加水分解されたポリイミドは主鎖が
切断されていないため、物理的強度は殆ど低下しない。
切断されていないため、物理的強度は殆ど低下しない。
しかしながら、本発明においては、担体が比較的強度を
要しない場合には、担体全体が一様なイミド開環率を有
していてもよい。
要しない場合には、担体全体が一様なイミド開環率を有
していてもよい。
このような担体のためのポリイミドは、好ましくは1,
2,3,4−ブタンテトラカルボン酸二無水物を前記し
たN−メチル−2−ピロリドンのような極性有機溶剤中
、前記ジアミンと30〜100℃の混度で反応させてイ
ミド開環率100%、即ちイミド構造を含まないポリア
ミド酸を得、この後、加熱淵度を100〜300℃の範
囲で調整し、イミド化率を任意に制御することにより得
られる。
2,3,4−ブタンテトラカルボン酸二無水物を前記し
たN−メチル−2−ピロリドンのような極性有機溶剤中
、前記ジアミンと30〜100℃の混度で反応させてイ
ミド開環率100%、即ちイミド構造を含まないポリア
ミド酸を得、この後、加熱淵度を100〜300℃の範
囲で調整し、イミド化率を任意に制御することにより得
られる。
従って、イミド化率を例えば30〜70%としたポリイ
ミドを得れば、加水分解を要せずして直ちに担体として
用いることができる。
ミドを得れば、加水分解を要せずして直ちに担体として
用いることができる。
本発明において担体に酵素を結合させる方法は、共有結
合法、イオン結合法のいずれでもよい。
合法、イオン結合法のいずれでもよい。
本発明において用いる担体はカルボキシル基を有するた
め、例えばカルボジイミド試薬或いはウツドワード試薬
と共に酵素を担体に反応させれば容易に共有結合にて酵
素が固定化されるが、これらの方法に限定されるもので
はない。
め、例えばカルボジイミド試薬或いはウツドワード試薬
と共に酵素を担体に反応させれば容易に共有結合にて酵
素が固定化されるが、これらの方法に限定されるもので
はない。
また、酵素を担体にイオン結合させるには、担体を酵素
の水溶液に浸漬すればよい。
の水溶液に浸漬すればよい。
また、酵素を共有結合にて担体に結合させる場合、カル
ボキシル基にヘキサメチレンジアミンやキシリレンジア
ミン等、従来からスペーサとして用いられるものをスペ
ーサ基として結合し、このスペーサ基の遊離のアミノ基
に酵素を共有結合させることもでき、本発明において担
体のカルボキシル基に酵素を結合させるとはかかる場合
をも含むものとする。
ボキシル基にヘキサメチレンジアミンやキシリレンジア
ミン等、従来からスペーサとして用いられるものをスペ
ーサ基として結合し、このスペーサ基の遊離のアミノ基
に酵素を共有結合させることもでき、本発明において担
体のカルボキシル基に酵素を結合させるとはかかる場合
をも含むものとする。
従って、本発明においては種々の酵素を担体に固定化す
ることができ、具体例としてアミノ酸オキシダーゼ、カ
タラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、クルコース・オキ
シダーゼ、グルコース−6ーリン酸デヒドロゲナーゼ、
グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、チトクロムCオキシダ
ーゼ、チロシナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、ベルオキ
シダーゼ、6−ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼ、リ
ンゴ酸デヒドロゲナーゼのような酸化還元酵素、アスパ
ラギン酸アセチルトランスフエラーゼ、アスパラキン酸
アミノトランスフエラーゼ、グリシンアミノトランスフ
エラーゼ、グルタミン酸一オキザ口酢酸アミントランス
フエラーゼ、グルタミン酸一ピルビン酸アミントランス
フエラーゼ、クレアチンホスホキナーゼ、ヒスタミンメ
チルトランスフエラーゼ、ピルビン酸キナーゼ、フラク
トキナーゼ、ヘキソキナーゼ、δ−リジンアセチルトラ
ンスフエラーゼ、ロイシンアミノペプチダーゼのような
転移酵素、アスパラギナーゼ、アセチルコリンエステラ
ーゼ、アミノアシラーゼ、アミラーゼ、アルキナーゼ、
L−アルギニンデイミナーゼ、インベルターゼ、ウレア
ーゼ、ウリカーゼ、ウロキナーゼ、エステラーゼ、β−
ガラクトシダーゼ、カリクレイン、キモトリプシン、ト
リプシン、トロンビン、ナリンギナーゼ、ヌクレオチダ
ーゼ、パパイン、ヒヤウロニダーゼ、プラスミン、ペク
チナーゼ、ヘスペリジナーゼ、ペプシン、ペニシリナー
ゼ、ペニシリンアミダーゼ、ホスホリ;パーゼ、ホスフ
ァターゼ、ラククーゼ、リパーゼ、リボヌクレアーゼ、
レンニンのような加水分解酵素、アスパラキン酸デカル
ボキシラーゼ、アスパルターゼ、クエン酸リアーゼ、グ
ルタミン酸デカルボキシラーゼ、ヒスチジンアンモニア
リアーゼ、フエニルアラニンアンモニアリアーゼ、フマ
ラーゼ、フマール酸ヒドラターゼ、リンゴ酸シンテター
ゼのようなリアーゼ、アラニンラセマーゼ、グルコース
イソメラーゼ、グルコースホスフエートイソメラーゼ、
グルタミン酸ラセマーゼ、乳酸ラセマーゼ、メチオニン
ラセマーゼのような異性化酵素、アスパラギンシンター
ゼ、グルタチオンシンターゼ、ピルヒン酸シンターゼの
ようなりガーゼ等を挙げることができる。
ることができ、具体例としてアミノ酸オキシダーゼ、カ
タラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、クルコース・オキ
シダーゼ、グルコース−6ーリン酸デヒドロゲナーゼ、
グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、チトクロムCオキシダ
ーゼ、チロシナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、ベルオキ
シダーゼ、6−ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼ、リ
ンゴ酸デヒドロゲナーゼのような酸化還元酵素、アスパ
ラギン酸アセチルトランスフエラーゼ、アスパラキン酸
アミノトランスフエラーゼ、グリシンアミノトランスフ
エラーゼ、グルタミン酸一オキザ口酢酸アミントランス
フエラーゼ、グルタミン酸一ピルビン酸アミントランス
フエラーゼ、クレアチンホスホキナーゼ、ヒスタミンメ
チルトランスフエラーゼ、ピルビン酸キナーゼ、フラク
トキナーゼ、ヘキソキナーゼ、δ−リジンアセチルトラ
ンスフエラーゼ、ロイシンアミノペプチダーゼのような
転移酵素、アスパラギナーゼ、アセチルコリンエステラ
ーゼ、アミノアシラーゼ、アミラーゼ、アルキナーゼ、
L−アルギニンデイミナーゼ、インベルターゼ、ウレア
ーゼ、ウリカーゼ、ウロキナーゼ、エステラーゼ、β−
ガラクトシダーゼ、カリクレイン、キモトリプシン、ト
リプシン、トロンビン、ナリンギナーゼ、ヌクレオチダ
ーゼ、パパイン、ヒヤウロニダーゼ、プラスミン、ペク
チナーゼ、ヘスペリジナーゼ、ペプシン、ペニシリナー
ゼ、ペニシリンアミダーゼ、ホスホリ;パーゼ、ホスフ
ァターゼ、ラククーゼ、リパーゼ、リボヌクレアーゼ、
レンニンのような加水分解酵素、アスパラキン酸デカル
ボキシラーゼ、アスパルターゼ、クエン酸リアーゼ、グ
ルタミン酸デカルボキシラーゼ、ヒスチジンアンモニア
リアーゼ、フエニルアラニンアンモニアリアーゼ、フマ
ラーゼ、フマール酸ヒドラターゼ、リンゴ酸シンテター
ゼのようなリアーゼ、アラニンラセマーゼ、グルコース
イソメラーゼ、グルコースホスフエートイソメラーゼ、
グルタミン酸ラセマーゼ、乳酸ラセマーゼ、メチオニン
ラセマーゼのような異性化酵素、アスパラギンシンター
ゼ、グルタチオンシンターゼ、ピルヒン酸シンターゼの
ようなりガーゼ等を挙げることができる。
本発明による固定化酵素は、以上のように、酵素固定化
のための官能基としてカルボキシル基を有するため、担
体の形状を問わず酵素の固定化が簡単に行なえて、しか
も得られる固定化酵素の活性収率が高い。
のための官能基としてカルボキシル基を有するため、担
体の形状を問わず酵素の固定化が簡単に行なえて、しか
も得られる固定化酵素の活性収率が高い。
更に、本発明においては、前記一般式で表わされるポリ
イミドを基体とする担体を用いるため、粒子、選択性透
過性能を有する多孔性膜或いは非多孔性のフイルム等任
意形状に成形でき、特に実質的に前記一般式で表わされ
るポリイミドからなる成形物の表面をD口水分解して得
られる担体は、担体の基体層が実質的にポリイミドから
構成されるため、物理的強度及び化学的特性にすぐれた
固定化酵素が得られる。
イミドを基体とする担体を用いるため、粒子、選択性透
過性能を有する多孔性膜或いは非多孔性のフイルム等任
意形状に成形でき、特に実質的に前記一般式で表わされ
るポリイミドからなる成形物の表面をD口水分解して得
られる担体は、担体の基体層が実質的にポリイミドから
構成されるため、物理的強度及び化学的特性にすぐれた
固定化酵素が得られる。
以下に本発明の実施例を挙げるが、本発明はこれらに限
定されるものではない。
定されるものではない。
尚、以下において部は重量部を示す。
実施例 1
特開昭54−71785号公報に記載されている方法に
従って、極限粘度〔η〕が0.76(30℃)イミド化
率が99%以上であり、前記一般式においてRが00《
巨xであるポリイミ ドのN−メチル−2−ピロリドン溶液を得た(固形分2
5%、B型粘度計による30゜Cでの測定値180ポイ
ズ)。
従って、極限粘度〔η〕が0.76(30℃)イミド化
率が99%以上であり、前記一般式においてRが00《
巨xであるポリイミ ドのN−メチル−2−ピロリドン溶液を得た(固形分2
5%、B型粘度計による30゜Cでの測定値180ポイ
ズ)。
乳鉢で微粉砕した硝酸リチウムをポリイミド100部当
り100部の割合で上記ポリイミド溶液に加え、100
℃で5時間檀拌して均一な溶液とした。
り100部の割合で上記ポリイミド溶液に加え、100
℃で5時間檀拌して均一な溶液とした。
この溶液をアルミニウム板上に厚み320μに塗布し、
直ちに50℃の水浴中に投入、120分間浸漬して厚み
250μの選択透過性多孔性膜を得た。
直ちに50℃の水浴中に投入、120分間浸漬して厚み
250μの選択透過性多孔性膜を得た。
この膜を5cfrL×5crI′Lに切断し、Na2H
PO4 − NaOH緩衝液(0.15MNa2HPO
4、0.1M NaOH1pH1 1.0)に浸漬し
、40℃で90分間振とうしながら加水分解した。
PO4 − NaOH緩衝液(0.15MNa2HPO
4、0.1M NaOH1pH1 1.0)に浸漬し
、40℃で90分間振とうしながら加水分解した。
この後、膜を蒸留水で十分に洗浄し、担体とした。
300rnl容量のビーカーに水50mlと上記担体を
入れ、室淵で攪拌しながら液状グルコースイソメラーゼ
(ナガセ生化学工業社製、6300U/ml)1麻を添
加後、直ちに1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロ
ピル)カルボジイミド塩酸塩150m9を添カロし、次
に0,IN塩酸又は0.IN水酸化ナトリウム水溶液を
逐次添加してpHを5.0に調整した。
入れ、室淵で攪拌しながら液状グルコースイソメラーゼ
(ナガセ生化学工業社製、6300U/ml)1麻を添
加後、直ちに1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロ
ピル)カルボジイミド塩酸塩150m9を添カロし、次
に0,IN塩酸又は0.IN水酸化ナトリウム水溶液を
逐次添加してpHを5.0に調整した。
2時間後、4°Cに冷却し、一夜放置して、酵素の固定
化を完結させた。
化を完結させた。
この後、トリス− マL/ イン酸緩衝液( 0.1
M トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン、0,I
Mマレイン酸、2T7LM塩化コバルト、0.1M硫酸
マグネシウム、pHを5N水酸化ナトリウム水溶液で7
.5に調整)で数回洗浄し、本発明による固定化酵素を
得た。
M トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン、0,I
Mマレイン酸、2T7LM塩化コバルト、0.1M硫酸
マグネシウム、pHを5N水酸化ナトリウム水溶液で7
.5に調整)で数回洗浄し、本発明による固定化酵素を
得た。
100ml容量ビーカーにIMグルコースのトリスーマ
レイン酸緩衝液25mlと、上記嘆状固定化酵素2.5
cfrLX2.5CrrLを入れ、振とうしながら60
゜Cで30分間反応させた後、0.5M過塩素酸水溶液
25mlを添加して反応を終了させた。
レイン酸緩衝液25mlと、上記嘆状固定化酵素2.5
cfrLX2.5CrrLを入れ、振とうしながら60
゜Cで30分間反応させた後、0.5M過塩素酸水溶液
25mlを添加して反応を終了させた。
この固定化酵素の活性をシステインー力ルバゾール法に
より生成したフラクトース量から測定したところ、2
7 7. 8 U\g一担体であった。
より生成したフラクトース量から測定したところ、2
7 7. 8 U\g一担体であった。
但し、1分間に1μモルのフラクトースを生成する酵素
活性をIUとした。
活性をIUとした。
実施例 2
実施例1と同様にして得られた嘆状担体4crrL×4
cfrLを水50mlと共に300ml容量ビーカーに
入れ、次に1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロピ
ル)カルボジイミド塩酸塩100■とキシリレンジアミ
ン1%水溶液3.6m/!を添加し、室淵で攪拌下に0
.IN塩酸又は0.IN水酸化ナl− IJウム水溶液
を添加し、pHを4.8〜5.5に調整した。
cfrLを水50mlと共に300ml容量ビーカーに
入れ、次に1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロピ
ル)カルボジイミド塩酸塩100■とキシリレンジアミ
ン1%水溶液3.6m/!を添加し、室淵で攪拌下に0
.IN塩酸又は0.IN水酸化ナl− IJウム水溶液
を添加し、pHを4.8〜5.5に調整した。
35時間後、4℃に冷却し、一夜放置した。
この後、蒸留水で十与に洗浄して、キシリレンジアミン
をスペーサとする担体を得た。
をスペーサとする担体を得た。
カルボジイミドの存在下に上記担体にグリコースイソメ
ラーゼを実施例1と同様に反応させて固定化した。
ラーゼを実施例1と同様に反応させて固定化した。
この固定化酵素の活性は308.8U/y一担体であっ
た。
た。
実施例 3
極限粘度〔η〕が0.73、イミド化率が99%以上で
あり、前記一般式においてRが 《巨刈CH2《巨XであるポリイミドのN −メチル−
2−ピロリドン溶液(固形分18%、粘度57ポイズ)
を調製した。
あり、前記一般式においてRが 《巨刈CH2《巨XであるポリイミドのN −メチル−
2−ピロリドン溶液(固形分18%、粘度57ポイズ)
を調製した。
硝酸カリウムの15重量%N−メチル−2−ピロリドン
溶液を硝酸カリウムがポリイミド100部当り5部の割
合になるように上記ポリイミド溶液に加え、均一に混合
した。
溶液を硝酸カリウムがポリイミド100部当り5部の割
合になるように上記ポリイミド溶液に加え、均一に混合
した。
この溶液をガラス板上に厚さ250μに塗布した後、直
ちに25℃のt−ブチルアルコール中に投入、10秒間
浸漬した後、20秒後に10゜Cの水中に投入、120
分間浸漬した。
ちに25℃のt−ブチルアルコール中に投入、10秒間
浸漬した後、20秒後に10゜Cの水中に投入、120
分間浸漬した。
得られた膜を実施例1と同様にして加水分解して担体と
し、実施例1と同様にしてグルコースイソメラーゼを固
定化した。
し、実施例1と同様にしてグルコースイソメラーゼを固
定化した。
この固定化酵素の活性は256U/g一担体であった。
実施例 4
実施例3で得たポリイミドのN−メチル−2−ピロリド
ン溶液をガラス板上に厚み1mmに塗布し、120℃で
30分間乾燥し、更に160°Cで1時間乾燥した。
ン溶液をガラス板上に厚み1mmに塗布し、120℃で
30分間乾燥し、更に160°Cで1時間乾燥した。
冷却後、水中に一夜浸漬して非多孔性フイルムを得た。
このフイルムを実施例1と同様にしてpH11のNa
2HPO4− N aOH緩衝液に浸漬し、40゜Cで
4時間振とう、加水分解し、担体を得た。
2HPO4− N aOH緩衝液に浸漬し、40゜Cで
4時間振とう、加水分解し、担体を得た。
この担体に1−シクロへキシル−3−(2−モルホリノ
エチル)カルボジイミドメト−p−トルエンスルホン酸
の存在下にジャック・ビーン由来のウレアーゼを固定化
し、本発明による固定化酵素を得た。
エチル)カルボジイミドメト−p−トルエンスルホン酸
の存在下にジャック・ビーン由来のウレアーゼを固定化
し、本発明による固定化酵素を得た。
活性収率は68係であった。実施例 5
実施例4で得たフイルム状担体に同様にしてバクテリア
由来のα−アミラーゼを固定化した。
由来のα−アミラーゼを固定化した。
活性収率は82係であった。
実施例 6
実施例1で得た担体を室淵で0.IN塩酸中に30分間
浸漬した後、蒸留水で十分に洗浄した。
浸漬した後、蒸留水で十分に洗浄した。
50m9/rI′Ll濃度のα−アミラーゼ水溶液に上
記担体を接触させ、α−アミラーゼをイオン結合にて固
定化した。
記担体を接触させ、α−アミラーゼをイオン結合にて固
定化した。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 主として一般式 で表わされる繰返し単位からなる水不溶性ポリイミド成
形物が少なくともその表面においてイミド開環率が10
〜100係に開環され、かくして形成されたカルボキシ
ル基に酵素が固定化されていることを特徴とする固定化
酵素。 2 ポリイミド成形物の基体層のイミド開環率が0〜3
0係であることを特徴とする特許請求の範囲第1項記載
の固定化酵素。 3 一般式においてRが であることを特徴とする特許請求の範囲第1項又は第2
項記載の固定化酵素。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11953181A JPS597436B2 (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 固定化酵素 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11953181A JPS597436B2 (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 固定化酵素 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5820192A JPS5820192A (ja) | 1983-02-05 |
| JPS597436B2 true JPS597436B2 (ja) | 1984-02-18 |
Family
ID=14763584
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11953181A Expired JPS597436B2 (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 固定化酵素 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS597436B2 (ja) |
-
1981
- 1981-07-29 JP JP11953181A patent/JPS597436B2/ja not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5820192A (ja) | 1983-02-05 |
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