JPS5854798B2 - 3↓−O↓−α↓−D↓−グルコピラノシルマルト−スの製法 - Google Patents
3↓−O↓−α↓−D↓−グルコピラノシルマルト−スの製法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、主な繰り返し単位が(3) −Glc −(
1−”4 ) −Glc−(1→4 ) −Glc−(
1−”)(但し、Glcはα−D−グルコビラノース残
基を示す。
1−”4 ) −Glc−(1→4 ) −Glc−(
1−”)(但し、Glcはα−D−グルコビラノース残
基を示す。
以後同様にGlcと略称する。)の構造を有している新
規なα−グルカン(エルシナン)にα−アミラーゼを作
用させて3−0−α−D−グルコピラノシルマルトース
を生威し、採取することを特徴とした3−0−α−D−
グルコピラノシルマルトースの製法に関するものである
。
規なα−グルカン(エルシナン)にα−アミラーゼを作
用させて3−0−α−D−グルコピラノシルマルトース
を生威し、採取することを特徴とした3−0−α−D−
グルコピラノシルマルトースの製法に関するものである
。
従来、オリゴ糖はその結合様式Iこ応じて甘味剤、医薬
品、酵素の検定用基質、あるいは種々の薬品中間体など
の用途に大量に使用されてきた。
品、酵素の検定用基質、あるいは種々の薬品中間体など
の用途に大量に使用されてきた。
しかし、現在純度よく、か°つ効率的に製造する方法が
知られているオリゴ糖は限られており、例えば砂糖、乳
糖、マルトース、マルトトリオースなどにすぎなかった
。
知られているオリゴ糖は限られており、例えば砂糖、乳
糖、マルトース、マルトトリオースなどにすぎなかった
。
特殊な結合様式を持つ3−0−α−D−グルコピラノシ
ルマルトースは、S、A、Barker らによってJ
ournal of the Chemical 5o
ciety(1957年)の第2448〜2454頁な
どに報告されているように、従来はアスペルギルスニガ
ー(Aspergillus niger )から調製
されるニゲランに酸を加えて部分加水分解し、得られる
糖混合物から精製分離されていた。
ルマルトースは、S、A、Barker らによってJ
ournal of the Chemical 5o
ciety(1957年)の第2448〜2454頁な
どに報告されているように、従来はアスペルギルスニガ
ー(Aspergillus niger )から調製
されるニゲランに酸を加えて部分加水分解し、得られる
糖混合物から精製分離されていた。
この製造法では、原料のニゲランを大量に供給すること
が困難であるばかりでなく、ニゲランからの製品収率も
低いので、この3−0−α−D−グルコピラノシルマル
トースを大量に安価に供給することは極めて困難なこと
であった。
が困難であるばかりでなく、ニゲランからの製品収率も
低いので、この3−0−α−D−グルコピラノシルマル
トースを大量に安価に供給することは極めて困難なこと
であった。
本発明者は、この3−0−α−D−グルコピラノシルマ
ルトースを大量に、効率よく製造する方法について鋭意
研究した。
ルトースを大量に、効率よく製造する方法について鋭意
研究した。
その結果、主としてマルトトリオース残基が繰り返しα
−1,3結合することによって構成される直鎖状のα−
グルカン(エルシナン)に、酵素特にα−アミラーゼを
作用させることにより3−0−α−D−グルコピラノシ
ルマルトースが得られ、これを精製分離し採取すること
によって、容易に高収率に3−0−α−D−グルコピラ
ノシルマルトースを製造し得ることを見いだし本発明を
完成した。
−1,3結合することによって構成される直鎖状のα−
グルカン(エルシナン)に、酵素特にα−アミラーゼを
作用させることにより3−0−α−D−グルコピラノシ
ルマルトースが得られ、これを精製分離し採取すること
によって、容易に高収率に3−0−α−D−グルコピラ
ノシルマルトースを製造し得ることを見いだし本発明を
完成した。
なお、本明細書に記載する係は、特記したもの以外は重
量饅を示す。
量饅を示す。
本発明に用いられるα−グルカン(エルシナン)は、砂
糖、グルコース、マルトース、果糖、水飴等の糖類の1
種又は2種以上を含有する栄養培地に、エルシノエ(E
lsinoe)属に属する微生物を植菌し、約20〜3
0℃で3〜7日間培養して得られる粘性の高い培養液か
ら分離、回収されるα−グルカンで、発明者はこれをエ
ルシナンと命名した。
糖、グルコース、マルトース、果糖、水飴等の糖類の1
種又は2種以上を含有する栄養培地に、エルシノエ(E
lsinoe)属に属する微生物を植菌し、約20〜3
0℃で3〜7日間培養して得られる粘性の高い培養液か
ら分離、回収されるα−グルカンで、発明者はこれをエ
ルシナンと命名した。
このエルシナンは、次のような性質から全く新しいα−
グルカンであることが認められる。
グルカンであることが認められる。
O均一性:超遠心法および電気泳動で均一O元素分析:
実測値 C= 43.7%、H=6.16%、N<0.
1係、灰分<0.01係 計算値 C=44.4係、H二6.17%0比旋光度:
〔α)1)+175〜280°(1=1.c二1.6.
0.5N−NaOH) O溶解性:水、0. I N−NaOH,90%蟻酸、
ホルムアミド、およびメチルスルホキシドには易溶。
実測値 C= 43.7%、H=6.16%、N<0.
1係、灰分<0.01係 計算値 C=44.4係、H二6.17%0比旋光度:
〔α)1)+175〜280°(1=1.c二1.6.
0.5N−NaOH) O溶解性:水、0. I N−NaOH,90%蟻酸、
ホルムアミド、およびメチルスルホキシドには易溶。
メタノール、エタノール、アセトン、クロロホルムおよ
び酢酸エチル等の有機溶媒には不溶。
び酢酸エチル等の有機溶媒には不溶。
O物 性:白色、無味、無臭
O呈色反応:アントロン−硫酸反応で緑色システィン−
硫酸反応で黄色 エルソンーモルガン反応で無色 ヨード反応は陰性 O赤外線吸収スペクトル:KBr錠剤法で測定した赤外
線吸収スペクトルは第1図の通りである。
硫酸反応で黄色 エルソンーモルガン反応で無色 ヨード反応は陰性 O赤外線吸収スペクトル:KBr錠剤法で測定した赤外
線吸収スペクトルは第1図の通りである。
この図で840crrL−1附近の吸収はα−結合に特
有な吸収である。
有な吸収である。
0構戒糖:IN−硫酸、IN−塩酸、IN−トリクロル
酢酸で加水分解して得た糖は、ペーパークロマトグラフ
ィー、ガスクロマトグラフィー液体クロマトグラフィー
およびグルコースオキシダーゼ・パーオキシダーゼ法に
よる分析結果からD−グルコースであることが伴明した
。
酢酸で加水分解して得た糖は、ペーパークロマトグラフ
ィー、ガスクロマトグラフィー液体クロマトグラフィー
およびグルコースオキシダーゼ・パーオキシダーゼ法に
よる分析結果からD−グルコースであることが伴明した
。
さらに、メチル化、過沃素酸酸化、完全スミス分解、お
よび緩和スミス分解などの化学的手段でエルシナンを試
験した結果、本発明のエルシナンは今までに知られてい
なかった全く新しい構造を有する新規なグルカンである
ことを認めた。
よび緩和スミス分解などの化学的手段でエルシナンを試
験した結果、本発明のエルシナンは今までに知られてい
なかった全く新しい構造を有する新規なグルカンである
ことを認めた。
即ち、(1)比旋光度が[α]D+175〜280°と
高い値を示すこと、および赤外線吸収スペクトルが84
0CrfL−1附近に吸収を示すことから、エルシナン
を構成するすべてのグルコース残基、もしくはほとんど
のグルコース残基は、α−結合をしている。
高い値を示すこと、および赤外線吸収スペクトルが84
0CrfL−1附近に吸収を示すことから、エルシナン
を構成するすべてのグルコース残基、もしくはほとんど
のグルコース残基は、α−結合をしている。
(2) a −メチル化したエルシナンの加水分解物を
ガスクロマトグラフィーおよびマススペクトルの手段で
同定し、定量した結果は、主成分として2.4.6−ト
リー〇−メチルーD−グルコース(約30%)、2.3
.6−トリー〇−メチルーD−グルコース(約68%)
が得られたほか、ごくわずかの2,4−ジーO−メチル
ーD−グルコース(約1係)と2.3.4.6−チトラ
ーO−メチルーD−グルコース(約l係)を確認した。
ガスクロマトグラフィーおよびマススペクトルの手段で
同定し、定量した結果は、主成分として2.4.6−ト
リー〇−メチルーD−グルコース(約30%)、2.3
.6−トリー〇−メチルーD−グルコース(約68%)
が得られたほか、ごくわずかの2,4−ジーO−メチル
ーD−グルコース(約1係)と2.3.4.6−チトラ
ーO−メチルーD−グルコース(約l係)を確認した。
b、エルシナンを過沃素酸で完全に酸化すると、構成す
るグルコース残基1個当り過沃素酸の0.8モルを消費
し、同時に蟻酸が0.07モル生生成ることを確認した
。
るグルコース残基1個当り過沃素酸の0.8モルを消費
し、同時に蟻酸が0.07モル生生成ることを確認した
。
C,エルシナンの完全スミス分解したものをペーパーク
ロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィーおよび液体
クロマトグラフィー等によって同定し、定量した結果は
、68〜70条のD−エリトリトール、29〜30%の
D−グルコース、および微量のグリセロールを確認した
。
ロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィーおよび液体
クロマトグラフィー等によって同定し、定量した結果は
、68〜70条のD−エリトリトール、29〜30%の
D−グルコース、および微量のグリセロールを確認した
。
以上の事実から、エルシナン中のグルコース残基は、α
−1,4結合とα−1,3結合を主とした直鎖状の構造
で連なっており、α−1,4結合の数とα−1,3結合
の数との比は2.0〜2.3:1.0であることが認め
られる。
−1,4結合とα−1,3結合を主とした直鎖状の構造
で連なっており、α−1,4結合の数とα−1,3結合
の数との比は2.0〜2.3:1.0であることが認め
られる。
また、場合によっては、両隣のグルコース残基と1位と
3位とで結合しているグルコース残基のうち、わずかで
はあるが、その6位からさらにα−1,6結合で分岐す
るものがある。
3位とで結合しているグルコース残基のうち、わずかで
はあるが、その6位からさらにα−1,6結合で分岐す
るものがある。
しかし、その量はグルコース残基70個にせいぜい1個
の割合にすぎなかった。
の割合にすぎなかった。
(3)緩和スミス分解生成物をペーパークロマトグラフ
ィーおよびガスクロマトグラフィーにより分析した結果
、D−エリトリトールと、2−0−α−D−グルコピラ
ノシルーD−エリトリトール(この存在は一方に隣接す
るグルコース残基と3位で結合しているグルコース残基
が、他方に隣接するグルコース残基とα−1,4グルコ
シド結合していることを示す。
ィーおよびガスクロマトグラフィーにより分析した結果
、D−エリトリトールと、2−0−α−D−グルコピラ
ノシルーD−エリトリトール(この存在は一方に隣接す
るグルコース残基と3位で結合しているグルコース残基
が、他方に隣接するグルコース残基とα−1,4グルコ
シド結合していることを示す。
)とが得られ、そのモル比は1.0−1.3 : 1.
0であった。
0であった。
このほかに非還元性末端のグルコース残基に由来する極
わずかのグリセロールも検出した。
わずかのグリセロールも検出した。
(4)希酸で部分分解すると、生成物中にマルトトリオ
ース、微量のマルトラオース、α−1,4のおよびα−
1,3結合を含む三糖類、四糖類などが確認された。
ース、微量のマルトラオース、α−1,4のおよびα−
1,3結合を含む三糖類、四糖類などが確認された。
上述の(1) 、 f2) 、 (3) 、 (4)の
結果を総合的に判断すると、本発明のエルシナンは、は
とんど分枝を有しないα−1,3結合およびα−1,4
結合から構成される多糖類であって、その主要構造はα
−1,4結合した約3個のグルコース残基がα−1,3
結合で繰り返し結合して連なっている。
結果を総合的に判断すると、本発明のエルシナンは、は
とんど分枝を有しないα−1,3結合およびα−1,4
結合から構成される多糖類であって、その主要構造はα
−1,4結合した約3個のグルコース残基がα−1,3
結合で繰り返し結合して連なっている。
換言すれば、エルシナンは主としてマルトトリオース残
基がα−1,3結合で連なった直鎖状の構造を有してい
る。
基がα−1,3結合で連なった直鎖状の構造を有してい
る。
なお、前述の(2) 、 (3) 、 (4)の結果か
ら主な繰り返し単位は、マルトトリオース残基であるが
、その他**にわずかにマルトテトラオース残基も含ま
れている。
ら主な繰り返し単位は、マルトトリオース残基であるが
、その他**にわずかにマルトテトラオース残基も含ま
れている。
即ち、エルシナンは主な繰り返し単位に、〔3)−Gl
c−(1−”4)−Glc−(1→4)−Glc−(1
→〕の構造を有する新規なグルカンである。
c−(1−”4)−Glc−(1→4)−Glc−(1
→〕の構造を有する新規なグルカンである。
エルシナンの主要構造をさらにくわしく示すと次の通り
である。
である。
エルシナンの平均分子量は、エルシナンが化学的方法に
よっても、生化学的方法によっても製造できること、お
よびエルシナンが塩酸や硫酸等で容易に加水分解される
こと等から約5,000〜約10.000,000の範
囲で自由に調節することができる。
よっても、生化学的方法によっても製造できること、お
よびエルシナンが塩酸や硫酸等で容易に加水分解される
こと等から約5,000〜約10.000,000の範
囲で自由に調節することができる。
このようにして調整したエルシナンの酵素分解性につい
て検討したところ、動植物、微生物起源のα−アミラー
ゼ(B、C,3,2,1,1)がエルシナンに作用して
、そのα−1,4結合を特異的に加水分解し、特殊な結
合様式を持つ3−0−α−D−グルコピラノシルマルト
ースを極めて効率よく生成することを見いだしたのであ
る。
て検討したところ、動植物、微生物起源のα−アミラー
ゼ(B、C,3,2,1,1)がエルシナンに作用して
、そのα−1,4結合を特異的に加水分解し、特殊な結
合様式を持つ3−0−α−D−グルコピラノシルマルト
ースを極めて効率よく生成することを見いだしたのであ
る。
本発明において使用するα−アミラーゼとしては、エル
シナンから3−0−α−D−グルコピラノシルマルトー
スを生成するものであれば何れのものでもよく、例えば
ヒトの唾液、ブタの膵臓などの動物由来のα−アミラー
ゼ、麦芽などの植物由来のα−アミラーゼ、バチルス
ズブチリス(Bacillus 5ubtilis)、
バチルスポリミキサ(Bacil lus polym
yxa)などの微生物由来のα−アミラーゼなどが挙げ
られる。
シナンから3−0−α−D−グルコピラノシルマルトー
スを生成するものであれば何れのものでもよく、例えば
ヒトの唾液、ブタの膵臓などの動物由来のα−アミラー
ゼ、麦芽などの植物由来のα−アミラーゼ、バチルス
ズブチリス(Bacillus 5ubtilis)、
バチルスポリミキサ(Bacil lus polym
yxa)などの微生物由来のα−アミラーゼなどが挙げ
られる。
微生物由来のα−アミラーゼとしては、液化型のα−ア
ミラーゼよりも、糖化型のα−アミラーゼの方がエルシ
ナンによく作用するので好ましい。
ミラーゼよりも、糖化型のα−アミラーゼの方がエルシ
ナンによく作用するので好ましい。
なお、グルコアミラーゼ、β−アミラーゼ、プルラナー
ゼ、イ゛ノアミラーゼは、エルシナンにほとんど作用し
ないか全く作用しなかった。
ゼ、イ゛ノアミラーゼは、エルシナンにほとんど作用し
ないか全く作用しなかった。
また、α−アミラーゼ標品は、粗酵素であっても本発明
の目的を達することができるが、目的物である3−0−
α−D−グルコピラノシルマルトースを分解するような
酵素、例えばα−グルコシダーゼなどを含まないものが
好ましい。
の目的を達することができるが、目的物である3−0−
α−D−グルコピラノシルマルトースを分解するような
酵素、例えばα−グルコシダーゼなどを含まないものが
好ましい。
本発明の3−0−α−D−グルコピラノシルマルトース
は、次のようにして調整すればよい。
は、次のようにして調整すればよい。
エルシナンの水溶液を、例えば濃度的O11〜5係、P
H5〜10.温度20〜70℃とし、これにエルシナン
の固形物1グラム当り約1o〜i、o o 。
H5〜10.温度20〜70℃とし、これにエルシナン
の固形物1グラム当り約1o〜i、o o 。
単位のα−アミラーゼを加えて作用させる。
1多回溶性澱粉溶液5mlと0.01M塩化カルシウム
を含有するpH5,5の0.1M酢酸緩衝液(但し、動
物からのα−アミラーゼの場合には、0.01M塩化ナ
トリウムを含有するpH6,9の0.1Mリン酸塩緩衝
液)4rrtlとを試験管にとり、40℃に予熱した後
、この混合液に適当に希釈した酵素液1mlを加えて作
用させ、40℃で30分間に生じる還元糖の還元力をグ
ルコースとして定量し、10IIIgのグルコースを生
じる活性を1単位とした。
を含有するpH5,5の0.1M酢酸緩衝液(但し、動
物からのα−アミラーゼの場合には、0.01M塩化ナ
トリウムを含有するpH6,9の0.1Mリン酸塩緩衝
液)4rrtlとを試験管にとり、40℃に予熱した後
、この混合液に適当に希釈した酵素液1mlを加えて作
用させ、40℃で30分間に生じる還元糖の還元力をグ
ルコースとして定量し、10IIIgのグルコースを生
じる活性を1単位とした。
本発明による時は、α−アミラーゼの作用とともにエル
シナン水溶液は粘度が低下し、還元糖が増加してくる。
シナン水溶液は粘度が低下し、還元糖が増加してくる。
約5〜100時間作用させた後、加熱するか、または適
当な薬剤を加えるなどして酵素を失活させて反応を終了
する。
当な薬剤を加えるなどして酵素を失活させて反応を終了
する。
得られた溶液は、そのまま濃縮し、またこれをさらに乾
燥することにより、固形物当り約50〜90%の純度を
有する3−0−α−D−グルコピラノシルマルトースの
シラツブ状、または粉末状粗製品が容易に得られる。
燥することにより、固形物当り約50〜90%の純度を
有する3−0−α−D−グルコピラノシルマルトースの
シラツブ状、または粉末状粗製品が容易に得られる。
必要ならば、公知の精製方法、例えば活性炭による脱色
法、イオン交換樹脂による脱イオン法、アルコール、ア
セトンなどの有機沈澱剤による分別沈澱法、カラムクロ
マトグラフィーによる分画法など各種の精製方法を用い
て、さらに高純度の製品にすることもできる。
法、イオン交換樹脂による脱イオン法、アルコール、ア
セトンなどの有機沈澱剤による分別沈澱法、カラムクロ
マトグラフィーによる分画法など各種の精製方法を用い
て、さらに高純度の製品にすることもできる。
さらに必要ならば、アセチル誘導体にして結晶化し、こ
れを純化した後、希アルカリ、またはアルカリ性メタノ
ール中で脱アセチル化することにより、高度に純化した
3−0−α−D−グルコピラノシルマルトースを採取す
ることも可能である。
れを純化した後、希アルカリ、またはアルカリ性メタノ
ール中で脱アセチル化することにより、高度に純化した
3−0−α−D−グルコピラノシルマルトースを採取す
ることも可能である。
このようにして、3−0−α−D−グルコピラノシルマ
ルトースは、原料のエルシナンに対して、固形物当り約
40〜90%の高収率で採取することができるのである
。
ルトースは、原料のエルシナンに対して、固形物当り約
40〜90%の高収率で採取することができるのである
。
このようにして精製された3−0−α−D−グルコピラ
ノシルマルトースの理化学的性質は、次の通りである。
ノシルマルトースの理化学的性質は、次の通りである。
O元素分析:
実測値C= 49.37%、H= 5.60係、0=4
5.03多計算値C= 49.69係、H= 5.63
%、0= 44.68条(ウンデカアセチル誘導体、化
学式C40H54oz7)O分子量:504 o融点(ウンデカアセチル誘導体): 95〜98°C(再結晶品) 0比旋光度:〔α)D+164°(c= 1.1. H
2O)文献値は〔α)D+169.5°(Journa
l ofthe Chemical 5ociety(
1957年)P、2448〜2454) Q紫外線吸収スペクトル:特徴的な吸収を示さず。
5.03多計算値C= 49.69係、H= 5.63
%、0= 44.68条(ウンデカアセチル誘導体、化
学式C40H54oz7)O分子量:504 o融点(ウンデカアセチル誘導体): 95〜98°C(再結晶品) 0比旋光度:〔α)D+164°(c= 1.1. H
2O)文献値は〔α)D+169.5°(Journa
l ofthe Chemical 5ociety(
1957年)P、2448〜2454) Q紫外線吸収スペクトル:特徴的な吸収を示さず。
0赤外線吸収スペクトル:α−結合に特徴的な840(
1771”附近に吸収を示す。
1771”附近に吸収を示す。
0溶解性:水に易溶、エタノール、ブタノールに徴溶、
エーテル、クロロホルムに不溶 0アントロン反応:陽性 0銀鏡反応:陽性 O物性:水溶液は無色であり、微酸性もしくは中性。
エーテル、クロロホルムに不溶 0アントロン反応:陽性 0銀鏡反応:陽性 O物性:水溶液は無色であり、微酸性もしくは中性。
粉末は白色0構戒:ウンデカメチル誘導体を酸で加水分
解して得た混合物をガスクロマトグラフィーで分析した
。
解して得た混合物をガスクロマトグラフィーで分析した
。
その結果、混合物は2.3.4.6−チトラー〇−メチ
ルグルコース、2.4.6−トリーO−メチルグルコー
ス、2,3.6−トリー〇−メチルグルコースがモル比
で1:1:1から戒っていることが判明した。
ルグルコース、2.4.6−トリーO−メチルグルコー
ス、2,3.6−トリー〇−メチルグルコースがモル比
で1:1:1から戒っていることが判明した。
以上の結果から、エルシナンにα−アミラーゼを作用さ
せることによって生ずるグルコ三糖類は、3−0−α−
D−グルコピラノシルマルトース(〇−α−D−グルコ
ピラノシルー(1→3)−〇−α−D−グルコピラノシ
ルー(1→4)−り一グルコース)であり、その構造は
次の通りである。
せることによって生ずるグルコ三糖類は、3−0−α−
D−グルコピラノシルマルトース(〇−α−D−グルコ
ピラノシルー(1→3)−〇−α−D−グルコピラノシ
ルー(1→4)−り一グルコース)であり、その構造は
次の通りである。
このようにして得られた3−0−α−D−グルコピラノ
シルマルトースは、例えばα−1,3−クルコシダーゼ
の定量用基質や、酵素誘導剤などとして自由に利用でき
る。
シルマルトースは、例えばα−1,3−クルコシダーゼ
の定量用基質や、酵素誘導剤などとして自由に利用でき
る。
次に本発明の原料であるエルシナンの製造を参考例とし
て例示する。
て例示する。
参考例 1
シュクロース5w/v%、酵母エキス0.5 w/v係
、Na2HPO,O,O−42w/v%、KH2P0,
0.018w/v%、ポテト熱水抽出物の透析外液(培
地11につき新鮮ポテト301の割合で使用した。
、Na2HPO,O,O−42w/v%、KH2P0,
0.018w/v%、ポテト熱水抽出物の透析外液(培
地11につき新鮮ポテト301の割合で使用した。
)および水とからなる液体培地を1200で20分間滅
菌した後、冷却し、始発−を6.8としてエルシノエ
ロイコスピーラFERM−P/163874を植菌し、
24℃で5日間通気攪拌培養した。
菌した後、冷却し、始発−を6.8としてエルシノエ
ロイコスピーラFERM−P/163874を植菌し、
24℃で5日間通気攪拌培養した。
この培養液を85℃に15分間保って殺菌した後、遠心
分離(5,001で20分間)して菌体を除去した。
分離(5,001で20分間)して菌体を除去した。
この時に得た透明な上清に1.5倍容のエタノールを加
えると、白色羽毛状のまたはゴム状の沈澱物として粗製
のエルシナンが得られた。
えると、白色羽毛状のまたはゴム状の沈澱物として粗製
のエルシナンが得られた。
この粗製のエルシナンを、水に溶解し、前記と同様に遠
心分離して不溶物を除去した後、その上清に再びエタノ
ールを加えて沈澱させた。
心分離して不溶物を除去した後、その上清に再びエタノ
ールを加えて沈澱させた。
この操作を3回繰り返した後の沈澱物を凍結乾燥し、精
製エルシナンの白色粉末を、培地に用いたシュクロース
に対して約30係の収率で得た。
製エルシナンの白色粉末を、培地に用いたシュクロース
に対して約30係の収率で得た。
この精製エルシナンの水溶液における粘度は3%、ao
℃で407cpであった。
℃で407cpであった。
この精製エルシナンの分子量分布をゲル沢過法で測定し
たところ、第2図に示すように約i o、o o oか
ら約10,000,000以上にわたって分布している
ことがわかった。
たところ、第2図に示すように約i o、o o oか
ら約10,000,000以上にわたって分布している
ことがわかった。
参考例 2
澱粉部分加水分解物(D、E、30の御j3) 3 w
/v係、小麦胚芽0.3 w/v%、NH4N030.
1 w/v%、K 2HP040.1 vi/v %、
Mg S 04 ・7H200,05w/v係、Kc
l O,05w/v%、Mn S 04 ’ 4H20
0,0001w/v%および水とからなる液体培地を1
2・0℃で20分間滅菌した後、冷却し、始発−を6.
0として、エルシノエ フォーセラティ(Elsino
efawcetti) I FO8417を植菌し、2
8℃で4日間通気攪拌培養した。
/v係、小麦胚芽0.3 w/v%、NH4N030.
1 w/v%、K 2HP040.1 vi/v %、
Mg S 04 ・7H200,05w/v係、Kc
l O,05w/v%、Mn S 04 ’ 4H20
0,0001w/v%および水とからなる液体培地を1
2・0℃で20分間滅菌した後、冷却し、始発−を6.
0として、エルシノエ フォーセラティ(Elsino
efawcetti) I FO8417を植菌し、2
8℃で4日間通気攪拌培養した。
この培養液を参考例1と同様に処理して、精製したエル
シナン(白色粉末)を、培地に用いた澱粉部分加水分解
物に対して約70係(固形物当り)の収率で得た。
シナン(白色粉末)を、培地に用いた澱粉部分加水分解
物に対して約70係(固形物当り)の収率で得た。
このようにして得られたエルシナンは、以下に述べる実
施例に示すように、3−0−α−D−グルコピラノシル
マルトースを製造するのに自由に用いることができる。
施例に示すように、3−0−α−D−グルコピラノシル
マルトースを製造するのに自由に用いることができる。
実施例 1
エルシナン1重量部を0.001Mの塩化ナトリウムを
含有するpH6,9の0.05MIJン酸塩緩衝液10
0重量部に溶解し、これに部分精製したヒト唾液のα−
アミラーゼをエルシナン固形物1グラム当り200単位
の割合で加え、37℃で72時間作用させた結果、生成
された還元糖の還元力は、グルコースとして原料エルシ
ナンに対し約30%であった。
含有するpH6,9の0.05MIJン酸塩緩衝液10
0重量部に溶解し、これに部分精製したヒト唾液のα−
アミラーゼをエルシナン固形物1グラム当り200単位
の割合で加え、37℃で72時間作用させた結果、生成
された還元糖の還元力は、グルコースとして原料エルシ
ナンに対し約30%であった。
得られた反応液をペーパークロマトグラフィーで分析し
たところ、3−0−α−D−グルコピラノシルマルトー
スが75.0%、グルコースz8俤、マルトース1.8
%、グルコ四糖13.0%およびグルコ五糖以上の高分
子物2.4多であった。
たところ、3−0−α−D−グルコピラノシルマルトー
スが75.0%、グルコースz8俤、マルトース1.8
%、グルコ四糖13.0%およびグルコ五糖以上の高分
子物2.4多であった。
この反応液を、90℃に10分間保った後に濾過し、得
られるF液を活性炭カラムクラマドグラフィーにかけた
。
られるF液を活性炭カラムクラマドグラフィーにかけた
。
エタノール10〜12 v / v %を含む水溶液で
溶出される画分を集め、減圧濃縮し次いで凍結乾燥した
。
溶出される画分を集め、減圧濃縮し次いで凍結乾燥した
。
さらに精製するために、これを少量の水に溶解させた後
、済過して不溶物を炉別した。
、済過して不溶物を炉別した。
得られたP液を攪拌しつつ、これにエタノールを徐々に
加えて終末濃度85v/v%とした。
加えて終末濃度85v/v%とした。
生じた白色沈澱を採取し、減圧濃縮して3−0−α−D
−グルコピラノシルマルトースの無色透明なシラツブを
、原料エルシナンに対して固形物当り約42%の収率で
採取することができた。
−グルコピラノシルマルトースの無色透明なシラツブを
、原料エルシナンに対して固形物当り約42%の収率で
採取することができた。
この製品は、極めて高純度であり、ペーパークロマトグ
ラフィーで単一のスポットを与え、その比旋光度は(α
、II)+164°(C=t、t 、H2O)であった
。
ラフィーで単一のスポットを与え、その比旋光度は(α
、II)+164°(C=t、t 、H2O)であった
。
実施例 2
エルシナン1重量部を0.001M塩化カルシウムを含
有するpH5,5の0.05M酢酸塩緩衝液50重量部
に溶解し;これに市販のバチルス ズブチリスのα−ア
ミラーゼ(糖化型)をエルシナン固型物1グラム当り1
00単位の割合で加え、50℃で40時間作用させた結
果、生成する還元糖の還元力は、グルコースとして原料
エルシナンに対して約35俤であった。
有するpH5,5の0.05M酢酸塩緩衝液50重量部
に溶解し;これに市販のバチルス ズブチリスのα−ア
ミラーゼ(糖化型)をエルシナン固型物1グラム当り1
00単位の割合で加え、50℃で40時間作用させた結
果、生成する還元糖の還元力は、グルコースとして原料
エルシナンに対して約35俤であった。
得られた反応液をペーパークロマトグラフィーで定性分
析したところ、はとんどが3−0−α−D−グルコピラ
ノシルマルトースであって、これ以外に微量のグルコー
スとグルコ四糖のスポットを認めた。
析したところ、はとんどが3−0−α−D−グルコピラ
ノシルマルトースであって、これ以外に微量のグルコー
スとグルコ四糖のスポットを認めた。
この反応液を実施例1と同様に加熱してα−アミラーゼ
を失活させた後、濾過して得られるF液に0.002重
量部の活性炭を加えて脱色し、次いでH型およびOH型
イオン交換樹脂を用いて脱塩した。
を失活させた後、濾過して得られるF液に0.002重
量部の活性炭を加えて脱色し、次いでH型およびOH型
イオン交換樹脂を用いて脱塩した。
得られた溶液を減圧濃縮し、乾燥して固形物当り約95
優の純度を有する3−0−α−D−グルコピラノシルマ
ルトースの白色粉末を、原料エルシナンに対して固形物
当り約90%の収率で採取することができた。
優の純度を有する3−0−α−D−グルコピラノシルマ
ルトースの白色粉末を、原料エルシナンに対して固形物
当り約90%の収率で採取することができた。
第1図は精製したエルシナンの赤外線スペクトルを示す
グラフ。 第2図は精製したエルシナンのゲル濾過パターンによる
分子量の分布を示すグラフである。
グラフ。 第2図は精製したエルシナンのゲル濾過パターンによる
分子量の分布を示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 主な繰り返し単位がC3) −Glc −(1−=
4)−Glc−(1−+4 )−Glc−(1−))(
但し、G l cはα−D−グルコビラノース残基を示
す。 )の構造を有するα−グルカンにα−アミラーゼを作用
させて3−0−α−D−グルコピラノシルマルトースを
生成し、採取することを特徴とした3−O−一α−D−
グルコピラノシルマルトースの製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1920078A JPS5854798B2 (ja) | 1978-02-22 | 1978-02-22 | 3↓−O↓−α↓−D↓−グルコピラノシルマルト−スの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1920078A JPS5854798B2 (ja) | 1978-02-22 | 1978-02-22 | 3↓−O↓−α↓−D↓−グルコピラノシルマルト−スの製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5519004A JPS5519004A (en) | 1980-02-09 |
| JPS5854798B2 true JPS5854798B2 (ja) | 1983-12-06 |
Family
ID=11992703
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1920078A Expired JPS5854798B2 (ja) | 1978-02-22 | 1978-02-22 | 3↓−O↓−α↓−D↓−グルコピラノシルマルト−スの製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5854798B2 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6362686U (ja) * | 1986-10-15 | 1988-04-25 |
-
1978
- 1978-02-22 JP JP1920078A patent/JPS5854798B2/ja not_active Expired
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6362686U (ja) * | 1986-10-15 | 1988-04-25 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5519004A (en) | 1980-02-09 |
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