JPS59146596A - S−アデノシル−l−ホモシステインの製造法 - Google Patents

S−アデノシル−l−ホモシステインの製造法

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JPS59146596A
JPS59146596A JP2080883A JP2080883A JPS59146596A JP S59146596 A JPS59146596 A JP S59146596A JP 2080883 A JP2080883 A JP 2080883A JP 2080883 A JP2080883 A JP 2080883A JP S59146596 A JPS59146596 A JP S59146596A
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cells
reaction
sah
homocysteine
adenosyl
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秀明 山田
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吉樹 谷
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昌 清水
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 不発明は物足微生物の菌体全酵素源として用いるアデノ
シンとホモシスティンからS−アデノシルート−ホ石ン
ステインを効率良く酵素合成して採取する方法に関する
。
S−アデノシル−L−ホモシスティン(以下、SAWと
略称する)は、生体内においで53−アデノシルメチオ
ニン(以下、SAMと略称する)が関与するメチル基供
与反応で生じる重要な生理活性物質である。而して、近
時かかるSADに鎮静剤、睡眠誘発剤などとしての効果
が見い出されておシ、その大量生産が期待されている6
゜従来、SAMの製造方法としではツ”ツカロマイセス
属またはキャンデイダ桃の酵母から抽出する方法〔例え
はアーカイブズ・オブ・パイ調グミストリー・アンド・
パイオンイジツクス(lyrcb、。
Eiochem、BiophyB)69.575(19
62)]、Sムb1からの酵素的脱メチル法〔例えばジ
ャーナル・オブ・バイオロジカル・クミストリ−(J。
131o1j;hem)240.2512(1965)
)、SA、Mからの化学的脱メチル法(例えば持分l1
845−37556号)などが知られている。しかしな
がら、これらの方法はいずれも非常に経費がかかり、工
業的製造法とは言い難い。
一方、アデノシンとホモシスティン會サツカロマイセス
属またはキャンデイダ属酵母の菌体抽出物の存在下に酵
素合成する方法し例えばアーカイブズ・オプ・バイオケ
ミストリー・アンド・バイオフィジックス(Arch−
Biochem・Biophyo)69.575(19
62)’]も知られている。しかし、この方法は菌体か
らの抽出物を用いる点で操作性に難があり、必ずしも実
用的とは召い難い。
本発明者らは以上のように実状に鑑み、SA、Hの酵素
的合成法に関して釉々検討金加えた結果、サツカロマイ
セス属またはキャンデイダ属に属する菌体を酵素源とし
て用いた時に、アゾンシンとホモシスティンから簡単に
、しかも効率良<SAI王が合成できることを見い出し
本発明全完成した。
かくして本発明によれば、ザツカ(Uマイセス属または
キャンデイダ属に属しアゾンシンとホモシスティンよJ
sAHを合成する能力を有する微生物の菌体の存在下に
アゾンシンとホモシスティン奢水性媒体中で接触させて
反応せしめ、S、AH’i合成して採取することを特徴
とするSAHの製造法が提供ちれる3゜ 本発明において酵素源として用いられる微生物は上記の
属に属し、生菌体または乾燥函体の形態でアデノシンと
ホモシスティンからSAHを合成できる能力を有するも
のであ扛はいずれでも良く、その具体例としてはサツカ
ロマイセス・セレビシェ(Pμhト5omycesce
revi5−嶋e)IFO1805゜サツカロマイセス
・セ1/ビジエIAM4175、丈ツカ01イセス、シ
x′<+)エリ(杏乏五9カー門び巴り分2皐j加W悼
去ヅリエFO1727,9ツカロマイセス・エキシブー
ス(Saccharomyce2.e、xiBuu、s
、)IFO0215、ツ゛ツカ1フイゞ8゛つ′9ルア
ゝ(一旦止!2−彬慧夕−ぞ戸−!−グーどμ千−1゛
W男)11+00565.サツカロマイセス・ファーメ
ンタテ(−3a、:cha−リ三L5cosferm−
?nQリ−)王FO0422、サツカロマイセス・五コ
ウィシー(3a、c−リY五P巴−ηシー9−−L?憑
侵JIFO0487、サツカロマイセス・ハヤスス(旦
す況バー仝−Z’O巳とシソしシー茫Lリ−ピ一つ工F
O0206、サツカロマイセス・ロゼイ(−uy分−L
?−ツ9?−9rose土)丁FO1172、ツ゛ツカ
ロマイセス・デルプリュツキー(19accharom
ycQfildelbrueckii)工FO0955
、キャンプイタ・ウチリス(<2.5n共6a−4彷−
λ1s−)工F’003’96、キャンプイタ・ギリェ
ルモンディー(−9−正u史−9只−リ1す裂す4±)
IB’Ot3566、キャンプイタ゛・サケ(9−料土
蛙e+ake)IFO163”y、キャンプイタ・トロ
ビ■B’oo口16、キャンプイタ・マセドニエンシス
(Canaidamacodonienaj、s)工F
OO706、ギー・ンデイダ・ンユードトロビカリス(
−ε鼎、d、id−a−58O42、キャンプイタ・イ
ンターメディア(Can1.iidai11terIl
leaj、a)工FO0761、キャンプイタ・アルビ
カンス(−S、a、W91−一一−−リーゴ^ザー)■
ア゛01594などが挙げられる。また市販ノくン17
母、?#r/J酵母なども前記の属に属するかぎり便用
することができる。さらにこれらの菌の天然及び人工変
異菌であっても+9AH合成能を有するかき゛り同様V
こ使用することができるO本発明におけるSAHの合成
方法は微生物の生菌体又は乾燥菌体の形態で菌体円酵素
の作用金利用するものであるが、この酵素は微生物を通
常の方法で培養する事により調整する事ができる。
微生物を培養する培地は、炭素源、窒素源、無機塩、有
機微量栄養源を含有する通常の培地でよく、微生物の種
類に応じて適宜選択して使用すればよい。また培養方法
は通常液体培地で行なわれるが、固体表面培養によって
も行うことができる。
培養条件は微生物の種類に応じて適宜選択すれば良く、
温度10〜60p、PH3〜10の範囲が用いられるが
、一般的には温度20〜40C,PH4〜9の範囲で1
0〜120時間培養すれば良い3、培養中には通気・攪
拌を行って微生物の生′#を促進させることもできる。
本発明におけるSAHの合成反工6には、前記のように
して培養した微生物が生菌体または乾燥国体の形態で使
用される。例えば、微生物の4養液中の菌体をそのまま
使用してもSAHの合成反応は進行するが、培養液中の
成分が障否になる場合や菌体量を多く便用したい場合に
は培養液から分離した菌体全用いることが好ましい。1
々体は生菌体の11で充分に使用目的を達するが、貯蔵
□あるいは□取扱い°の便宜から風□乾菌体、凍・結乾
燥1菌□体、アセトン歯体などのような乾燥菌体とtて
用6ることもできる。また菌体を□常法に従って固□定
化して使用することもできる。′:□″ 本発明におけるSAH合成反応は酵素反応基質であるア
デノ7ンとホモシスティンとを微生物菌体の存在下に水
性媒体中で接触させることによって行なわれる。反応に
供されるホモシスティンは□L体、DL体のいずれ+あ
っても使用する・ことができる。また反応の条件は適宜
癲択す五ば□よく、基質濃度としてアデノジシを1’r
nM以上、□好ましくは2〜200”mM、ホ″%シス
ティン濃度雀□1+mM以上、好ましくば2−2’11
’O’lIIM’と□すればよい。
な□お、本発明におけ□る系モジスティンなる用語は反
応系内におGてホモシスティンを□供給する物置(例え
ばホモシスチシ、ホモシ艮テイツチオラクトンなど)を
も含むものとして理解されるべきである。□、・ 反応における系のPHは4−12、好ましくは6〜10
に保てばよぐ、pHの調整は通常の方法、たと、えば、
リン酸カリウムバッファー、リン酸ナトリウムバッファ
ー、トリスバツンアー、塩化アンモニウムバッファー、
グリシンバッファーナトによって調整すればよい。
反応温度は、反応がよく進行し#累活性、基質および生
成物に影響のない温度でおればよく、通常は15〜6o
’tS、爵ましくは20〜色DCである。反応時間は基
質のゐAHへの転化率が増大するように設定すればよく
、バッチ式の場合、通常0.1〜48時間好ましくは0
5〜66時間である。
その他目的に応じて本性媒体中にアセトン、エタノール
の如き有機溶媒や各種の界面活性剤を添加して反応を行
わせることもでき意。
かくしてSAHを含有する反応液が得ら扛るが、該反応
液からSAHを採取する方法は公知方法によればよい・
門の分竺棒としては、例えばSAH含有液を癲酸性カチ
オン交換樹脂に接触させてSAHを吸着させた後、硫酸
で溶出させ、溶出液に□リンタングステン酸を加えてS
AHを沈殿させる方法、SAH含有液を活性炭に接触さ
せてSAHを吸着させた後、エタノビル/永、/mアン
モニア呆”(5o:5o”:1’)で溶出させ、溶出液
を減圧上濃縮して譲縮物の・Hを酢酸手17I/C調m
した赫、SAWをOCで晶出させる方法雇哩が例票され
る。
以下に実施例を挙けて本発明を、さらに具体的に説明す
る。ただし本発明はこれらの例のみに限定されるもので
はない。□ なお、実施例における5A)lの定量は次のようにして
行った。すなわち、反応終了後、反応液を直ちにθ〜5
Cに冷却し過塩素Ei添加して反応を停止した□次いで
遠心分離にて不溶物を除去したのち、得られた上置液に
リン酸カリウムバッファー(p’H7,□0)を添加し
て、生成した過塩素酸カリウムを遠心分離によシ除去し
た。かくして得られた上澄液の所定蓋を採取して高速液
体クロマトクランイー(日立製作所製、63′・8−3
0型、カラム:Ooamocil5CIB、])ate
cter:UV260nm)を用いることによりEIA
Hの定量を実施したO 実施fIi1 グルコース5ダンdz’Qペプトンo、59/clz。
酵母xキy、”0.1’f’/dl、[1”21?”0
40.’2’l/”l、K2HPO40。1g/dl、
MgSO4・7H2O0。02y7aQ′、寒天211
7titからなる寒天斜面培地(p”H40)で2”8
’t”、’48時間培−した第1表□記載の菌棟1白金
耳′を、グルコース5j/lt’t、ヘフ’)’7o:
5aAi’、gp母x’*ス’o1f7ctl!、KT
12po40.2i7ctt、K2HPO4’o1’y
7ctt’。
MgSO4・7H’20o、o2y7cttがらなりp
H6,5に調整、加熱滅菌した液体培地1[1mlに植
□繭し、2””8””C’で40時間振盪培養を行なっ
た。□遠心分離にて集函し、0.1Mリン曜ナナトリウ
ムバッファーpaa、5)で洗浄した後、tM菌体アデ
ノシン2mM、DLホモシス ン酸ナトリ多ムバッファー(’p’H8,!5)lO’
OmMからなる基質溶液1ゴに懸濁し、3ocで4時間
振盪して反応させた。sAHの収量を測定し、その結果
を第1表に示した◎: 第1表 実施例2 液体培地量が5mlであること以外は実施例1と同様に
培養したキャンデイダ・ウチリスIF″0039乙の培
養液5m1i工NNaORでpH8,5に調整した後、
アデノンン5μmol、DL−ホモシスティン5μmo
l!f添加し、60Cで4時間振盪して反応させた。S
AHの収量は0,24μTIIol/m!であった。
実施例5 液体培地量が500mであること以外は実施例1と同様
に培養したサツカロマイセス・セレビジエエFO180
5の培養液よl)m体を遠心分離にて集菌(〜、生理食
塩水で一回洗浄した後、再び遠心分離にて集菌した。次
にこの洗浄菌体を用いて下記の手順に従い風乾菌体、凍
結乾燥菌体及びアセトン乾燥菌体をそれぞれ調整した。
すなわち洗浄歯体を通風下に約15時間室温にて乾燥し
た後、更に五酸化リンを入れた減圧デシケータ−中5C
で1日乾燥した。次にこの乾燥菌体を乳鉢で粉末状にす
りつぶし、町び減圧デシケ実施例5 実施例6と同じ培養方法及び乾燥方法で調整したサツカ
ロマイセス・セレビシェIP01805の風乾菌体50
rvをアデノシン10mM5L−ホモシスチン10mM
、リン酸カリウムバッファー(pH8,o’)1oOm
Mからなる基質溶液1aに懸濁し、57Cで4時間反応
させた。SAHの収量は396μmO/尼であった。
実施1づンリ6 実施例6と同じ方法で調整したサツカロマイセス・セレ
ビシェIF01805の風乾菌体200mノを10mM
リン酸カリウムバッファー(pH7,0)2rttlに
加えて懸濁し、氷冷したのちアクリルアミド375jl
lp、N、N’−メチレンビスアクリルアミド20ノダ
、5%のN、N、N、′N’Nチーラメチレンジアミン
水溶液0.25dを加えて溶解させ、減圧にして脱気し
た後、2.5%の過硫酸アンモニウム水溶液0.’25
ynlを加えて水冷下に静置した。1時間後生成した菌
体含有ゲルを細かく粉砕し、10mMリン酸カリウムバ
ッファー(pH7,0)で洗浄・し菌体固定化物を調整
した。この固定化物1.97をアデノシン10mM、D
L−ホモシスティン10mM。
リン酸ナトリウムバッファー(PH9,0)100mM
からなる基質溶液2mlに加え、30Cで8時間反応さ
せた。SADの収量は110μno!!〜であった0 実施例7 実施例3と同じ方法で調整したサツカロマイセス、セレ
ビシェエF○18o5の風乾菌体2.s2をアデノシン
10mM1DL−ホモシスティン10mM、リン酸ナト
リウムバッファー(pH9,5)100mMからなる基
質溶液50ゴに懸濁し、67Cで6時間反応させたとこ
ろ、反応液中に238μmol(91m9)のSAHが
合成された。その後、水冷下50予過塩素酸水溶液51
aを添加して反応を停止した後、遠心分離によシ菌体残
清などの不溶物を除去した。次いで得られた上清液に工
MKHOo、水溶液を添加しpH6,0に調整し、生成
した過塩素酸カリウムの沈殿を遠心分離にて除去した。
かくして得られた土7胃液を強酸性陽イオン交換樹脂ダ
ウエックス50X8(H型)カラムに通液したのちカラ
ムを0.025%チオジグリコール水溶液および0.0
25%チオジグリコール含有2NWtWで洗浄したのち
、0.025%チオジグリコール含有6N硫酸で溶出さ
れる部分を集めて、こfLに20%リンタングステン酸
水溶液を添加し、生成した沈殿物を遠心分離にて集めて
冷水で洗浄したのち、5倍容量のアセトン/水(501
50・v7v)に溶解し、インアミルアルコール/エー
テル(1/1・V/V)で抽出した後、得られた水層に
BaOO5を加えてpHを3.9に調整し、生成したJ
3aSO4をロカにて除去した上清液を凍結乾燥したと
ころ、白色固体物が56mノ得られた。シリカゲル薄層
クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、ペ
ーパークロマトグラフィー、赤外吸収スペクトル、比旋
光度を測定したところ、この白色固体物はSAH″″C
あることが確認された。
特許出願人日本ゼオン株式会社

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1ダ゛ツカロマイセス属またはキーヤンデイダ属に属し
    アデノシンとホモ/スティンよりS−アデノシル−■、
    −ホモシスディンを合成する能力を有する微生物の菌体
    の存在下にアデノシンとホモシスディンを水性媒体中で
    接触させて反応せしめ、S−アテノシルーL−ホモシス
    ティンを合成1〜で採取することを特徴とするS−アテ
    ノシルーL−ホモシスティンの製造法。 2微生物の菌体が生菌体または乾燥菌体である特許請求
    の範囲第1項記載の製造法。
JP2080883A 1983-02-10 1983-02-10 S−アデノシル−l−ホモシステインの製造法 Granted JPS59146596A (ja)

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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2540886A1 (fr) * 1983-02-10 1984-08-17 Nippon Zeon Co Procede de production de s-adenosyl-l-homocysteine
FR2549853A1 (fr) * 1983-07-29 1985-02-01 Nippon Zeon Co Procede de production de la s-adenosyl-l-homocysteine hydrolase

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FR2549853A1 (fr) * 1983-07-29 1985-02-01 Nippon Zeon Co Procede de production de la s-adenosyl-l-homocysteine hydrolase

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