JPS59224563A - ヒト絨毛性ゴナドトロピンの酵素免疫測定用試薬組成物および測定方法 - Google Patents
ヒト絨毛性ゴナドトロピンの酵素免疫測定用試薬組成物および測定方法Info
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- JPS59224563A JPS59224563A JP9992883A JP9992883A JPS59224563A JP S59224563 A JPS59224563 A JP S59224563A JP 9992883 A JP9992883 A JP 9992883A JP 9992883 A JP9992883 A JP 9992883A JP S59224563 A JPS59224563 A JP S59224563A
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-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/74—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving hormones or other non-cytokine intercellular protein regulatory factors such as growth factors, including receptors to hormones and growth factors
- G01N33/76—Human chorionic gonadotropin including luteinising hormone, follicle stimulating hormone, thyroid stimulating hormone or their receptors
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ヒト絨毛性ゴナドトロピン(以下HOGと略
す)の酵素免疫測定法(以下E工Aと略す)に関するも
のである。
す)の酵素免疫測定法(以下E工Aと略す)に関するも
のである。
HCGは胎盤の絨毛組織で産生、分泌される性腺刺激ホ
ルモンで、妊娠と同時にその産生量は増加し、分娩後急
激に減少するところから、妊娠診断の検査項目としてよ
く知られている。さらに近年・放射免疫測定法(以下R
IAと略す)の開発によりN血清中の微量のHOGの測
定が可能となり1妊娠とは無関係な種々の悪性腫瘍でH
cGが分泌されているという報告が数多くなされ、他の
と共に注目されている検査項目である。
ルモンで、妊娠と同時にその産生量は増加し、分娩後急
激に減少するところから、妊娠診断の検査項目としてよ
く知られている。さらに近年・放射免疫測定法(以下R
IAと略す)の開発によりN血清中の微量のHOGの測
定が可能となり1妊娠とは無関係な種々の悪性腫瘍でH
cGが分泌されているという報告が数多くなされ、他の
と共に注目されている検査項目である。
周知のように、HOGはα、βのサブユニットから構成
される糖蛋白ホルモンであり、α−サブユニットは、他
の下垂体性ホルモンである・黄体形成ホルモン、卵胞刺
激ホルモン、甲状腺刺激ホルモン等のα4−サブユニッ
トとほとんど等しいアミノ酸配列を有し、β−サブユニ
ットは各ホルモンに特異的であるが、黄体形成ホルモン
(以下LHと略す)とは蛋白質のカルボキシル基末端(
C末端)でHOGの方が30個長いペプチド鎖を有する
が、アミ7基末端(N末端)がら115個のアミノ酸配
列中23個が異なるだけで、92個は共通である。
される糖蛋白ホルモンであり、α−サブユニットは、他
の下垂体性ホルモンである・黄体形成ホルモン、卵胞刺
激ホルモン、甲状腺刺激ホルモン等のα4−サブユニッ
トとほとんど等しいアミノ酸配列を有し、β−サブユニ
ットは各ホルモンに特異的であるが、黄体形成ホルモン
(以下LHと略す)とは蛋白質のカルボキシル基末端(
C末端)でHOGの方が30個長いペプチド鎖を有する
が、アミ7基末端(N末端)がら115個のアミノ酸配
列中23個が異なるだけで、92個は共通である。
このような理由から、HC()の免疫測定ではLHとの
交叉反応が強く・前述の如く一腫瘍診断においてはLH
との交叉反応の少ないHCGの免疫測定が必要とされて
いる。そのためには、E工AによるHOGの測定にも・
LHとの交叉反応を少なくするために〜HOGに対して
特異的に結合する抗体よりもHCGのβ−サブユニット
に対して特異的に結合する抗体を用いて免疫測定を行っ
た方が好ましい。
交叉反応が強く・前述の如く一腫瘍診断においてはLH
との交叉反応の少ないHCGの免疫測定が必要とされて
いる。そのためには、E工AによるHOGの測定にも・
LHとの交叉反応を少なくするために〜HOGに対して
特異的に結合する抗体よりもHCGのβ−サブユニット
に対して特異的に結合する抗体を用いて免疫測定を行っ
た方が好ましい。
H(3Gの測定方法としては一上記の妊娠診断に用いら
れている赤血球凝集反応あるいは赤血球凝集阻止反応の
他、ラテックス凝集反応、R工Aなどが知られているが
、これらの測定方法はたとえば赤血球凝集反応、ラテッ
クス凝集反相などでは定性的であり、感度が低く、血清
成分の干渉を受は易く、またR工Aでは感度は高いが、
放射性物質を使用するため特殊な設備を必要とし、どこ
でも手帖に実施するわけにはいがないといった欠点を有
している。
れている赤血球凝集反応あるいは赤血球凝集阻止反応の
他、ラテックス凝集反応、R工Aなどが知られているが
、これらの測定方法はたとえば赤血球凝集反応、ラテッ
クス凝集反相などでは定性的であり、感度が低く、血清
成分の干渉を受は易く、またR工Aでは感度は高いが、
放射性物質を使用するため特殊な設備を必要とし、どこ
でも手帖に実施するわけにはいがないといった欠点を有
している。
近年・これらの測定方法の欠点を補うべく、酵素免疫測
定法(E工A)が開発され、数多くのキットが市販され
るようになったが、測定感度の点ではR工Aにいま少し
及ばないと言われている。
定法(E工A)が開発され、数多くのキットが市販され
るようになったが、測定感度の点ではR工Aにいま少し
及ばないと言われている。
E工Aの測定原理は大別すると競争的結合法とサンドイ
ンチ法とにわけられるが、血清中の干渉物質の影響を受
けにくいという点からはサンドインチ法が優れている。
ンチ法とにわけられるが、血清中の干渉物質の影響を受
けにくいという点からはサンドインチ法が優れている。
さて−このサンドイツチ法でHOGを測定する方法を簡
単に説明する。
単に説明する。
まず・HOGに対して特異的に結合する抗体を結合させ
た固相に、HOGを含む被検液を反応させた後、反応液
を洗浄1除去する。次いで、H(jGに対して特異的に
結合する抗体に酵素を結合させた複合体(以下単に複合
体と略す)を反応させると1同相表面上に抗体−HoG
−複合体なるサンドインチ状結合物が生成する。次に余
剰の反応液を除去して、固相表面上に結合した複合体の
酵素活性を測定するか、もしくは洗浄液中の結合しなか
った複合体の酵素活性を測定することにより被検液中の
HOGの量を測定することができる。
た固相に、HOGを含む被検液を反応させた後、反応液
を洗浄1除去する。次いで、H(jGに対して特異的に
結合する抗体に酵素を結合させた複合体(以下単に複合
体と略す)を反応させると1同相表面上に抗体−HoG
−複合体なるサンドインチ状結合物が生成する。次に余
剰の反応液を除去して、固相表面上に結合した複合体の
酵素活性を測定するか、もしくは洗浄液中の結合しなか
った複合体の酵素活性を測定することにより被検液中の
HOGの量を測定することができる。
ところが従来から行われている前記のサンドイツチ法で
は一固相に被検液中のHOGの量とは無関係に1前記の
複合体が非特異的に結合し一測定のバックグランドを高
くするため、感度が低いという大きな欠点を有していた
。
は一固相に被検液中のHOGの量とは無関係に1前記の
複合体が非特異的に結合し一測定のバックグランドを高
くするため、感度が低いという大きな欠点を有していた
。
そこで一本発明者らはHOGのサンド・rフチ法におけ
る複合体の非特異的結合を低減せしめ1感度を高くする
ことを目的とし、鋭意研究した結果1本発明に到達した
のである。
る複合体の非特異的結合を低減せしめ1感度を高くする
ことを目的とし、鋭意研究した結果1本発明に到達した
のである。
すなわち、本発明は(1) HCaに対して特異的に結
合する抗体および/またはHCGに対して特異的に結合
する抗体の7ラグメントを結合させた固相と、HCGに
対して特異的に結合する抗体の7ラグメントに酵素を結
合させた複合体−と、前記酵素の活性を測定する基質と
から収ることを特徴とするHOGのλ酵素免疫測定用の
試薬組成物、(2)HOGに対して特異的に結合する抗
体および/またはHOGに対して特異的に結合する抗体
の7ラグメントを固相に結合させ・前記固相にHOGを
含む被検液を反応させた後、必要により前記同相を洗浄
し1前記固相に、HCGに対して特異的に結合する抗体
の7ラグメントに酵素を結合させた複合体を反応させ、
反応後過剰の前記複合体を洗浄で除き、前記同相に結合
した複合体の酵素活性を測定するか、または洗浄液中の
結合しなかった前記複合体の酵素活性を測定することを
特徴とするHOGの酵素免疫測定方法〆である。
合する抗体および/またはHCGに対して特異的に結合
する抗体の7ラグメントを結合させた固相と、HCGに
対して特異的に結合する抗体の7ラグメントに酵素を結
合させた複合体−と、前記酵素の活性を測定する基質と
から収ることを特徴とするHOGのλ酵素免疫測定用の
試薬組成物、(2)HOGに対して特異的に結合する抗
体および/またはHOGに対して特異的に結合する抗体
の7ラグメントを固相に結合させ・前記固相にHOGを
含む被検液を反応させた後、必要により前記同相を洗浄
し1前記固相に、HCGに対して特異的に結合する抗体
の7ラグメントに酵素を結合させた複合体を反応させ、
反応後過剰の前記複合体を洗浄で除き、前記同相に結合
した複合体の酵素活性を測定するか、または洗浄液中の
結合しなかった前記複合体の酵素活性を測定することを
特徴とするHOGの酵素免疫測定方法〆である。
本発明による試薬組成物を用いてHOGの酵素免疫測定
を行うと、測定のパックグランドが低いため感度が大幅
に向上し、R1八と同等かもしくはそれ以上の感度が得
られる; 一般にHOGの妊娠女性を除く健康人における血清中の
濃度は、男女差あるいは女性でも月経周期により若干変
動するが、0.2〜1.5n9/−であ’)sHcG(
1)β−サブユニットのそれは0.1〜1.0n9/−
であるとされている。そこで、これらを測定するために
は、E工八においても、0.1〜1.5nり/−を測定
するに足りつる感度が必要である。
を行うと、測定のパックグランドが低いため感度が大幅
に向上し、R1八と同等かもしくはそれ以上の感度が得
られる; 一般にHOGの妊娠女性を除く健康人における血清中の
濃度は、男女差あるいは女性でも月経周期により若干変
動するが、0.2〜1.5n9/−であ’)sHcG(
1)β−サブユニットのそれは0.1〜1.0n9/−
であるとされている。そこで、これらを測定するために
は、E工八においても、0.1〜1.5nり/−を測定
するに足りつる感度が必要である。
しかし・前述の如くN従来から行われているE工八のサ
ンドイツチ法では、このような測定感度を満たすという
ことは側底不可能であり1本発明による試薬組成物を用
いた時にそれが可能となるわけである。
ンドイツチ法では、このような測定感度を満たすという
ことは側底不可能であり1本発明による試薬組成物を用
いた時にそれが可能となるわけである。
E工八におけるこのような測定感度の向上は・健康人血
清中の濃度が比較的高い血清中蛋白質またとえば7エリ
チン(s o 〜1oonGl/+Rt)−工qB(1
00〜800 nり/−)などでは、容易に達成されう
るかもしれないがs HOGあるいはHOGのβ−サブ
ユニットのように健康人血清中の濃度が1前述の如く、
極めて低い場合に1測定感度を向上せし得るということ
は%当該分゛野においCは驚異的な知見である。
清中の濃度が比較的高い血清中蛋白質またとえば7エリ
チン(s o 〜1oonGl/+Rt)−工qB(1
00〜800 nり/−)などでは、容易に達成されう
るかもしれないがs HOGあるいはHOGのβ−サブ
ユニットのように健康人血清中の濃度が1前述の如く、
極めて低い場合に1測定感度を向上せし得るということ
は%当該分゛野においCは驚異的な知見である。
以下−さらに本発明の詳細な説明する。
抗体の7ラグメントとは、抗体である免疫グロブリンを
ペプシン1パパインなどの蛋白分解酵素で切断して得ら
れる免疫グロブリンの断片であり、具体的にはy(ab
’)1 、Fab、Fab’、Foなどである。ここで
、これらの抗体の7ラグメントのうち−Fcは本発明か
ら除外される。なぜなら−Paフラグメントには抗原結
合部位がないためHOGを測定することができないから
である。
ペプシン1パパインなどの蛋白分解酵素で切断して得ら
れる免疫グロブリンの断片であり、具体的にはy(ab
’)1 、Fab、Fab’、Foなどである。ここで
、これらの抗体の7ラグメントのうち−Fcは本発明か
ら除外される。なぜなら−Paフラグメントには抗原結
合部位がないためHOGを測定することができないから
である。
さて、前記のサンドイツチ法でHOGを測定する場合の
具体的方法を以下に述べる。
具体的方法を以下に述べる。
まず1前記の如く1ペプシン−パパインなどの蛋白分解
酵素でHCGに対して特異的に結合する抗体(以下抗H
OG抗体と略す)を切断して得られた免疫グロブリンの
断片またとえばFabを固。
酵素でHCGに対して特異的に結合する抗体(以下抗H
OG抗体と略す)を切断して得られた免疫グロブリンの
断片またとえばFabを固。
相に結合させる。この時、固相に結合させるものはFl
b単独であっても抗HOG抗体であっても、あるいは両
者を混合したものであっても良い。
b単独であっても抗HOG抗体であっても、あるいは両
者を混合したものであっても良い。
ここで〜固相とは一般に水に不溶性の担体と言うが1特
に好ましいのは、ポリスチレンポール−ポリスチレンチ
ューブ−ガラスビーズ、シリコーン片などである。これ
らの固相に前記Fab などを結合させるには、公知
の結合技術が用いられるがどのような方法であってもT
ab などの抗体を変性させずに行わなければならない
。たとえばFab を溶解した緩衝液に前記のポリスチ
レンボール−ポリスチレンチューブ等を数時間浸漬し、
必要であれば洗浄して、適当な保護剤を含有する緩衝液
中に懸濁して調製すること゛ができる。
に好ましいのは、ポリスチレンポール−ポリスチレンチ
ューブ−ガラスビーズ、シリコーン片などである。これ
らの固相に前記Fab などを結合させるには、公知
の結合技術が用いられるがどのような方法であってもT
ab などの抗体を変性させずに行わなければならない
。たとえばFab を溶解した緩衝液に前記のポリスチ
レンボール−ポリスチレンチューブ等を数時間浸漬し、
必要であれば洗浄して、適当な保護剤を含有する緩衝液
中に懸濁して調製すること゛ができる。
次に抗HOG抗体の7ラグメント、たとえばFILb
に酵素を結合させた複合体の調製方法を述べる。
に酵素を結合させた複合体の調製方法を述べる。
ここで用いる酵素としては、酵素免疫測定でよく知られ
ているβ−ガラクトシダーゼ−アルカリフォスファター
ゼNグルコースオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等が挙
げられるが、これらに限定されるものではない。特に好
ましい酵素としては西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ
が1安価で入手が容易であること、比較的分子量が小さ
いことなどの点から優れている。
ているβ−ガラクトシダーゼ−アルカリフォスファター
ゼNグルコースオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等が挙
げられるが、これらに限定されるものではない。特に好
ましい酵素としては西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ
が1安価で入手が容易であること、比較的分子量が小さ
いことなどの点から優れている。
これらの酵素を前記のFab に結合させるのにも公
知の結合技術を用いることができる。たとえば、2官能
性試薬であるゲルタールアルデヒドを用いてTabと酵
素とを架橋結合させても良いし、ペルオキシダーゼのよ
うに分子中に糖鎖tt持っている酵素ならば、その糖鎖
を過ヨウ素酸で酸化し、アルデヒド基を露出させ、F&
bのアミノ基と結合させれば良い。
知の結合技術を用いることができる。たとえば、2官能
性試薬であるゲルタールアルデヒドを用いてTabと酵
素とを架橋結合させても良いし、ペルオキシダーゼのよ
うに分子中に糖鎖tt持っている酵素ならば、その糖鎖
を過ヨウ素酸で酸化し、アルデヒド基を露出させ、F&
bのアミノ基と結合させれば良い。
あるいは、マレイミド基とチオール基との特異的結合反
応を利用して、酵素とFabとにそれぞれ、マレイミド
基、チオール基を導入して結合させることも可能である
。この場合、抗体の7ラグメントとしてFab を用い
ると、それ自身チオール基を有しているため、そのまま
〜結合に用いることができて有利である。このようにし
て得られた複合体は一透析、ゲル濾過などの適当な精製
操作を施して1酵素活性・HOG結合活性が共に高い区
分を使用すると有利であるのは言うまでもない。
応を利用して、酵素とFabとにそれぞれ、マレイミド
基、チオール基を導入して結合させることも可能である
。この場合、抗体の7ラグメントとしてFab を用い
ると、それ自身チオール基を有しているため、そのまま
〜結合に用いることができて有利である。このようにし
て得られた複合体は一透析、ゲル濾過などの適当な精製
操作を施して1酵素活性・HOG結合活性が共に高い区
分を使用すると有利であるのは言うまでもない。
次にN前記複合体の調製に用いた酵素の活性を測定する
基質について説明する。
基質について説明する。
基質としては酵素化学の分野で用いられるものならビど
のようなものでも良いが・測定感度の高い基質が好まし
いことは言うまでもない。そのような基質として、たと
えば酸素が西洋ワサビ由来酵素がβ−ガラクトシダーゼ
であるならば争−ニトロフェニル−β−D−ガラクトピ
ラノシトー4−メチルウンベリフエリルーβ−D−ガラ
クトシド等を挙げることができる。
のようなものでも良いが・測定感度の高い基質が好まし
いことは言うまでもない。そのような基質として、たと
えば酸素が西洋ワサビ由来酵素がβ−ガラクトシダーゼ
であるならば争−ニトロフェニル−β−D−ガラクトピ
ラノシトー4−メチルウンベリフエリルーβ−D−ガラ
クトシド等を挙げることができる。
次に本発明の実施例を示す。
実施例 L
a、抗HcG抗体のFab’フラグメントの調製家兎に
免疫して得られた抗HOG血清から1硫安分画、DEA
EセルロースクロマFにより、Iya 画分を取得し
、20119を0.1 M酢酸緩衝t(pH4,5)に
溶解した。次にペプシン(ぺ一ファデツクスG−115
0にてゲル濾過を行い1F(ab’)、両分11.5”
Pを得た。これに0.1 Mメルカプトエチルアミンを
0.24加え、37℃で90分間反応させた後、セファ
デックスG−25にてゲル濾過を行い、F&b’画分8
.2〜を得、使用まで0.1M酢酸緩衝液(Ii(5,
0)に懸濁して保存した。
免疫して得られた抗HOG血清から1硫安分画、DEA
EセルロースクロマFにより、Iya 画分を取得し
、20119を0.1 M酢酸緩衝t(pH4,5)に
溶解した。次にペプシン(ぺ一ファデツクスG−115
0にてゲル濾過を行い1F(ab’)、両分11.5”
Pを得た。これに0.1 Mメルカプトエチルアミンを
0.24加え、37℃で90分間反応させた後、セファ
デックスG−25にてゲル濾過を行い、F&b’画分8
.2〜を得、使用まで0.1M酢酸緩衝液(Ii(5,
0)に懸濁して保存した。
b、 Fab’結合固相試薬の調製
aで調製したFab’フラグメントを0.1MNaHO
O3溶液で50μ9/−に希釈した。この溶液にポリス
チレン球(直径4−)を浸漬し、4時間放置した後、洗
浄し、牛血清アルブミンとアジ化ナトリウムを含む緩衝
液中に保存して〜Fab’結合固相を調製した。
O3溶液で50μ9/−に希釈した。この溶液にポリス
チレン球(直径4−)を浸漬し、4時間放置した後、洗
浄し、牛血清アルブミンとアジ化ナトリウムを含む緩衝
液中に保存して〜Fab’結合固相を調製した。
Q、、 F&b’と西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼ
との複合体の調製 西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼ(東洋紡製)6W9に
N−サクシニミジル−4−(N−マレイミドメチル)シ
クロヘキサン−1−カルホキシレー12119を加え、
室温で1時間反応させた後・セファデックスG−25に
てゲル濾過を行い一マレイミドペルオキシダーゼを得た
。これにaで得たFab’ 7ラグメント3.0ηを混
合して、4℃で24時間反応させた後、ウルトロゲルへ
〇A44(LKB社製)にてゲルー過を行い複合体を得
た。
との複合体の調製 西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼ(東洋紡製)6W9に
N−サクシニミジル−4−(N−マレイミドメチル)シ
クロヘキサン−1−カルホキシレー12119を加え、
室温で1時間反応させた後・セファデックスG−25に
てゲル濾過を行い一マレイミドペルオキシダーゼを得た
。これにaで得たFab’ 7ラグメント3.0ηを混
合して、4℃で24時間反応させた後、ウルトロゲルへ
〇A44(LKB社製)にてゲルー過を行い複合体を得
た。
d、ペルオキシダーゼの活性測定用基質の調製0−フェ
ニレンジアミンを0.02%のH2O2ヲ含むクエン酸
−リン酸緩衝液に3■/−となるように溶解して基質溶
液とした。
ニレンジアミンを0.02%のH2O2ヲ含むクエン酸
−リン酸緩衝液に3■/−となるように溶解して基質溶
液とした。
e、HOGの測定
ブラスチン′り製の試験管(10鰭φX 7511@
)に、HOGを含む被検液または種々濃度のHCG標準
液50μlと0.02Mリン酸緩衝液200μlとを添
加し、bで得たFab’結合ポリスチレン球を1個人れ
て37℃n1時間振とうした後、生理食塩水で3回洗浄
した。次いで0で得た複合体を牛血清アルブミンを含む
リン酸緩衝液で500倍に希釈した液を250μ!添加
して%37℃で1時間振とうし、生理食塩水で3回洗浄
した。次にポリスチレン球を別の試験管に移し、dで得
た基質溶液を0.5−加えて、暗所で1時間酵素反応さ
せた後、1規定の硫酸溶液を2 ml加えて反応を停め
、492 nmの吸光度を測定した。
)に、HOGを含む被検液または種々濃度のHCG標準
液50μlと0.02Mリン酸緩衝液200μlとを添
加し、bで得たFab’結合ポリスチレン球を1個人れ
て37℃n1時間振とうした後、生理食塩水で3回洗浄
した。次いで0で得た複合体を牛血清アルブミンを含む
リン酸緩衝液で500倍に希釈した液を250μ!添加
して%37℃で1時間振とうし、生理食塩水で3回洗浄
した。次にポリスチレン球を別の試験管に移し、dで得
た基質溶液を0.5−加えて、暗所で1時間酵素反応さ
せた後、1規定の硫酸溶液を2 ml加えて反応を停め
、492 nmの吸光度を測定した。
比較例
実施例1の0に記載した複合体の替りに、次のようにし
て調製した複合体を用いた。
て調製した複合体を用いた。
家兎に免疫して得られた抗HOG血清から精製した工9
G抗体5哩と西洋ワサビ由来のベルオキに シダーゼ(東洋紡製)5〜とをP、に、Na客aneら
の方法(Na1ane 、 P、に、 and Kaw
aoi 、 A、、 J、H1stochem+Oyt
oohem、、22.1084〜1091 (1974
)t Na1ane。
G抗体5哩と西洋ワサビ由来のベルオキに シダーゼ(東洋紡製)5〜とをP、に、Na客aneら
の方法(Na1ane 、 P、に、 and Kaw
aoi 、 A、、 J、H1stochem+Oyt
oohem、、22.1084〜1091 (1974
)t Na1ane。
P、に、 i MethlLds Enzymol、、
37,133〜136(1975))により結合させ
、セファデックスG−200でゲル濾過を行い、高活性
画分を複合体として得た。・このようにして得た複合体
を牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液で500倍に希
釈し、実施例1のeに記載した複合体の替りに用いてH
OGの測定を行った。
37,133〜136(1975))により結合させ
、セファデックスG−200でゲル濾過を行い、高活性
画分を複合体として得た。・このようにして得た複合体
を牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液で500倍に希
釈し、実施例1のeに記載した複合体の替りに用いてH
OGの測定を行った。
第1図に比較例と実施例1におけるHOGの検量線を示
した。第1図から、本発明方法では測定のバンクグラン
ド値が低く、感度が著しく高くなっていることが明らか
である。
した。第1図から、本発明方法では測定のバンクグラン
ド値が低く、感度が著しく高くなっていることが明らか
である。
実施例 2
実施例1の抗HOG抗体の替りに抗HOG−β−サブユ
ニット抗体を用い、被測定検体としてHCGの替りに5
HOGのβ−サブユニットを用いた以外は実施例1と同
様にしてHCGのβ−サブこの時の結果を第2図に示し
た。第2図からも、本発明方法では測定のバックグラン
ド値が低く〜比較例に比べて著しく高い感度を有してい
ることが明らかである。
ニット抗体を用い、被測定検体としてHCGの替りに5
HOGのβ−サブユニットを用いた以外は実施例1と同
様にしてHCGのβ−サブこの時の結果を第2図に示し
た。第2図からも、本発明方法では測定のバックグラン
ド値が低く〜比較例に比べて著しく高い感度を有してい
ることが明らかである。
第1図は本発明方法と比較例とにおけるHCGの検量線
を示し一第2図は本発明方法によるHeGのβ−サブユ
ニットの検量線と比較例とを示したグラフである。第1
,2図において、0−0は本発明方法を示し〜・−・は
比較例の方法を示す。 特許出願人 東洋紡績株式会社 亮1a 第2図 ng/mffi
を示し一第2図は本発明方法によるHeGのβ−サブユ
ニットの検量線と比較例とを示したグラフである。第1
,2図において、0−0は本発明方法を示し〜・−・は
比較例の方法を示す。 特許出願人 東洋紡績株式会社 亮1a 第2図 ng/mffi
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1) ヒト絨毛性ゴナドトロピン(以下HOGと・
略す)に対して特異的に結合する抗体および/またはH
CGに対して特異的に結合する抗体の7ラグメントを結
合させた同相と、HOGに対して特異的に結合する抗体
の7ラグメントに酵素を結合させた複合体と・前記酵素
の活性を測定する基質とからなることを特徴とするHC
Gの酵素免疫測定用試薬組成物二 (2)HCGがHCGのβ−サブユニットである特許請
求の範囲第1項記載の試薬組成物。 (8)酵素が西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼである
特許請求の範囲第1項記載の試薬組成物。 (4)HC!Gに対して特異的に結合する抗体および/
またはHCGに対して特異的に結合する抗体のフラグメ
ントを固相に結合させ、前記同相にHCGを含む被検液
を反応させた後、必要により前記同相を洗浄し、前記固
相に、HcGに対して特休を洗浄で除き1前記固相に結
合した複合体の酵素活性を測定するか−または洗浄液中
の結合しなかった前記複合体の酵素活性を測定すること
を特徴とするHOGの酵素免疫測定方法。 (5)HOGがHCGのβ−サブユニットである特許請
求の範囲第4項記載の方法。 (6)#素が西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼである
特許請求の範囲第4項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9992883A JPS59224563A (ja) | 1983-06-03 | 1983-06-03 | ヒト絨毛性ゴナドトロピンの酵素免疫測定用試薬組成物および測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9992883A JPS59224563A (ja) | 1983-06-03 | 1983-06-03 | ヒト絨毛性ゴナドトロピンの酵素免疫測定用試薬組成物および測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59224563A true JPS59224563A (ja) | 1984-12-17 |
Family
ID=14260407
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9992883A Pending JPS59224563A (ja) | 1983-06-03 | 1983-06-03 | ヒト絨毛性ゴナドトロピンの酵素免疫測定用試薬組成物および測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS59224563A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62159046A (ja) * | 1985-12-31 | 1987-07-15 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | ホルモンのサブユニツトの測定方法 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS55152458A (en) * | 1979-05-17 | 1980-11-27 | Amano Pharmaceut Co Ltd | Method of eliminating immunoreaction interference in immunological measurement method |
-
1983
- 1983-06-03 JP JP9992883A patent/JPS59224563A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS55152458A (en) * | 1979-05-17 | 1980-11-27 | Amano Pharmaceut Co Ltd | Method of eliminating immunoreaction interference in immunological measurement method |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62159046A (ja) * | 1985-12-31 | 1987-07-15 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | ホルモンのサブユニツトの測定方法 |
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