JPS6034191A - L−アミノ酸の製造法 - Google Patents
L−アミノ酸の製造法Info
- Publication number
- JPS6034191A JPS6034191A JP14113983A JP14113983A JPS6034191A JP S6034191 A JPS6034191 A JP S6034191A JP 14113983 A JP14113983 A JP 14113983A JP 14113983 A JP14113983 A JP 14113983A JP S6034191 A JPS6034191 A JP S6034191A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- acid
- amino acid
- group
- culture solution
- mold
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は一般式(1)
キル基、アルアルキル基または置換基を有するこれらの
基を示す) で表わされる化合物のDL−またはL一体にシュードモ
ナス属の微生物の培養液、菌体または菌体処理物を作用
せしめることを特徴とする一般式(H) と同じ) で表わされるL−アミノ酸の製造法に関する。
基を示す) で表わされる化合物のDL−またはL一体にシュードモ
ナス属の微生物の培養液、菌体または菌体処理物を作用
せしめることを特徴とする一般式(H) と同じ) で表わされるL−アミノ酸の製造法に関する。
L−アミノ酸は医薬品または医薬品中間体として重要な
化合物であり、また必須アミノ酸として生体維持に必須
の化合物である。
化合物であり、また必須アミノ酸として生体維持に必須
の化合物である。
一般式(II)で示されるL−アミノ酸を得る方法とし
ては例えばN−カルバモイル誘導体からアミノ酸を得る
方法として特開昭52−IQ61112号に記載されて
いる。しかしこの方法はD I、 −N−カルバモイル
メチオニンのL−カルバモイル基のみを不斉的に加水分
解する能力を有する微生物を利用しており、その他につ
いては全く記載がない。また種々のカルバモイル誘導体
に使用可能であることも示唆されていない。そこで本発
明者等は各種アミノ酸のカルバモイル誘導体に使用可能
な微生物を検索した結果、この条件を満たす菌株を新た
に見出し本発明を完成した。本発明に使用する微生物は
本発明者等により、土じようより新たに分離された菌株
であり。
ては例えばN−カルバモイル誘導体からアミノ酸を得る
方法として特開昭52−IQ61112号に記載されて
いる。しかしこの方法はD I、 −N−カルバモイル
メチオニンのL−カルバモイル基のみを不斉的に加水分
解する能力を有する微生物を利用しており、その他につ
いては全く記載がない。また種々のカルバモイル誘導体
に使用可能であることも示唆されていない。そこで本発
明者等は各種アミノ酸のカルバモイル誘導体に使用可能
な微生物を検索した結果、この条件を満たす菌株を新た
に見出し本発明を完成した。本発明に使用する微生物は
本発明者等により、土じようより新たに分離された菌株
であり。
その菌学的性質は次の如くである。
a)形態
■)細胞の形及び大きさ:短稈〜桿菌
0.8〜05μ×05〜1.0μ
2)細胞の多形性の有無:な し
3)運動性の有無 :あ り
鞭毛の着性状態:極鞭毛
4)胞子の有無 :な し
5)ダラム染色性 :陰 性
6)抗酸性 :な し
b)各培地における生育゛状態
■)肉汁寒天平板培養:適度の生育2円形。
凸円状、金縁均質、光
たくあり、半透明2円
滑、ストロ−色〜灰
白色
2)肉汁寒天斜面培養:適度の生育2台状可溶性色素を
生成し ない 3)肉汁液体培地 :中等の生育、均一に濁る 4)肉汁ゼラチン穿刺培養:液化しない5) リドマス
ミルク :変化しない C)生理学的性質 1)硝酸塩の還元 二十 2)脱窒反応 ニー 8) MR,テスト ニー 4)VPテスト ニー 5)インドールの生成 ニー 6)硫化水素の生成 ニー 7)デンプンの加水分解ニー 8)クエン酸の利用 : Koserの培地 十0hr
istensenの培地+ 9)無機窒素源の利用:硝酸塩 干 アンモニウム塩 + 10)色素の生成 ニー 11) ウレアーゼ ニー 12)オキシダーゼ :+ 13)カタラーゼ :微弱 14)生育の範囲 :温度87℃で成育するが41℃で
成育しない pH4〜9 15)酸素に対する態度:好気性 16) OFテスト:0 17)糖からの酸及びガスの生成 酸の生成 ガスの生成 L−アラビノース −− D−キシロース − −− D−クルコース +微弱 − D−マンノース − − D−フラクトース − − D−ガラクトース − − 麦芽糖 − ショ 糖 − 乳 糖 −− トレハロース −− D−ツルピッi・−− D−マンニット −− イノジット − − グリセリン +微弱 − デンプン −− ラフィノース −− アトニット − − ラムノース −− 18)グルコン酸の酸化ニー 19) マロン酸の利用 二十 20) フェニルアラニンのデアミナーゼ反応ニー21
) デカルボキシラーゼ活性 リジン ニー オルニチンニー アルジニンニー 22) アルギニンジヒドロラーゼ反応ニー23)カゼ
インの分解性 ニー 24)DNAの分解性 ニー 25)アシルアミダーゼ :+ 26) poly−β−ヒト和キシ酪酸蓄積の有無:有
27)栄養要求性 :な し 28)耐塩性 :NaCl2%で生育するが5%で生育
しない 29)炭素源の資化 L−アラビノース ニー 1)−キシロース ニー D−グルコース : + D−フルクトース ニー D−ガラクトース ニー 麦芽糖 :一 ショ 糖 ニー トレハロース ニー D−リボース ニー L−ラムノース ニー セロビオース ニー アトニット ニー エリスリット ニー ソルビトール ニー グリセロール :+ エタノール ニー β−アラニン ニー DL−アルギニン °− L−ヒスチジン :+ L−オルニチン ニー L−スレオニン :+ L−バリン :十 ギ酸 ニー 酢酸 :+ 酪酸 :+ DL−乳酸 二十 プロピオン酸 二十 メン酒石酸 :+ D(=)酒石酸 :+ m−ヒドロキシ安息香酸 :+ p−ヒドロキシ安息香酸 :+ グリ5−ル酸 二十 マロン酸 :+ コハク酸 :+ クエン酸 :+ DL−β−ヒドロキシ酪酸:+ パントテン酸 ニー レブリン酸 ニー シトラコン酸 ニー ピメリン酸 ニー アゼライン酸 ニー イタコン酸 ニー α−アミルアミン ニー ベタイン ニー プトレッシン ニー 80)細菌のユビキノン :Q−8 以上の菌学的性質をバージーズマニュアルオブデタミネ
ーテブバクテリオロギ−(BergeysManual
of Deteminative Bacterio
logy)(8thed)に基いて検索するとPseu
domonas属に属する。
生成し ない 3)肉汁液体培地 :中等の生育、均一に濁る 4)肉汁ゼラチン穿刺培養:液化しない5) リドマス
ミルク :変化しない C)生理学的性質 1)硝酸塩の還元 二十 2)脱窒反応 ニー 8) MR,テスト ニー 4)VPテスト ニー 5)インドールの生成 ニー 6)硫化水素の生成 ニー 7)デンプンの加水分解ニー 8)クエン酸の利用 : Koserの培地 十0hr
istensenの培地+ 9)無機窒素源の利用:硝酸塩 干 アンモニウム塩 + 10)色素の生成 ニー 11) ウレアーゼ ニー 12)オキシダーゼ :+ 13)カタラーゼ :微弱 14)生育の範囲 :温度87℃で成育するが41℃で
成育しない pH4〜9 15)酸素に対する態度:好気性 16) OFテスト:0 17)糖からの酸及びガスの生成 酸の生成 ガスの生成 L−アラビノース −− D−キシロース − −− D−クルコース +微弱 − D−マンノース − − D−フラクトース − − D−ガラクトース − − 麦芽糖 − ショ 糖 − 乳 糖 −− トレハロース −− D−ツルピッi・−− D−マンニット −− イノジット − − グリセリン +微弱 − デンプン −− ラフィノース −− アトニット − − ラムノース −− 18)グルコン酸の酸化ニー 19) マロン酸の利用 二十 20) フェニルアラニンのデアミナーゼ反応ニー21
) デカルボキシラーゼ活性 リジン ニー オルニチンニー アルジニンニー 22) アルギニンジヒドロラーゼ反応ニー23)カゼ
インの分解性 ニー 24)DNAの分解性 ニー 25)アシルアミダーゼ :+ 26) poly−β−ヒト和キシ酪酸蓄積の有無:有
27)栄養要求性 :な し 28)耐塩性 :NaCl2%で生育するが5%で生育
しない 29)炭素源の資化 L−アラビノース ニー 1)−キシロース ニー D−グルコース : + D−フルクトース ニー D−ガラクトース ニー 麦芽糖 :一 ショ 糖 ニー トレハロース ニー D−リボース ニー L−ラムノース ニー セロビオース ニー アトニット ニー エリスリット ニー ソルビトール ニー グリセロール :+ エタノール ニー β−アラニン ニー DL−アルギニン °− L−ヒスチジン :+ L−オルニチン ニー L−スレオニン :+ L−バリン :十 ギ酸 ニー 酢酸 :+ 酪酸 :+ DL−乳酸 二十 プロピオン酸 二十 メン酒石酸 :+ D(=)酒石酸 :+ m−ヒドロキシ安息香酸 :+ p−ヒドロキシ安息香酸 :+ グリ5−ル酸 二十 マロン酸 :+ コハク酸 :+ クエン酸 :+ DL−β−ヒドロキシ酪酸:+ パントテン酸 ニー レブリン酸 ニー シトラコン酸 ニー ピメリン酸 ニー アゼライン酸 ニー イタコン酸 ニー α−アミルアミン ニー ベタイン ニー プトレッシン ニー 80)細菌のユビキノン :Q−8 以上の菌学的性質をバージーズマニュアルオブデタミネ
ーテブバクテリオロギ−(BergeysManual
of Deteminative Bacterio
logy)(8thed)に基いて検索するとPseu
domonas属に属する。
種について検索すると既知菌種と本菌とでは。
炭素源の資化性において一致しない部分がある。
従って本菌をPseudomonas、sp、 DP−
B−1000とした。
B−1000とした。
なお、このPseudomonas、 Sp、 DP−
B−1000は微工研菌寄第7121号(FEBM P
−7121)として微生物工業技術研究所へ寄託した。
B−1000は微工研菌寄第7121号(FEBM P
−7121)として微生物工業技術研究所へ寄託した。
本発明に使用する微生物は通常の方法で培養することが
できる。即ち、培地は実施例に示す如く通常液体培地で
行なわれる。培地には1通常微生物が資化しうる炭素源
、窒素源の他無機イオン又はビタミン、アミノ酸等の有
機微量栄養素を添加すると望ましい結果が得られる場合
が多い。
できる。即ち、培地は実施例に示す如く通常液体培地で
行なわれる。培地には1通常微生物が資化しうる炭素源
、窒素源の他無機イオン又はビタミン、アミノ酸等の有
機微量栄養素を添加すると望ましい結果が得られる場合
が多い。
炭素源としてはグルコース等の炭水化物、酢酸等の有機
酸アルコール類、その他が適宜使用される。
酸アルコール類、その他が適宜使用される。
窒素源としては一般的天然窒素源の他、各種の無機酸又
は有機酸のアンモニウム塩等が用いられる。
は有機酸のアンモニウム塩等が用いられる。
無機イオンとしてはKH2PO4,に2HPO,、Na
H2HPO,、Na1l、KCI、MgSO4及びFe
、 Mn、 C。
H2HPO,、Na1l、KCI、MgSO4及びFe
、 Mn、 C。
等の重金属イオンが必要に応じ適宜使用される。
培養は好気的条件下にpH4〜9.温度20−40℃、
好ましくは30〜37℃の範囲に制御しつつ行なえば、
高活性を持つ菌培養物が得られる。
好ましくは30〜37℃の範囲に制御しつつ行なえば、
高活性を持つ菌培養物が得られる。
このようにして得た微生物の培養液はそのまま使用する
ことができる。
ことができる。
菌体を培養液から分離しそのまま使用するかあるいは凍
結乾燥し、乾燥菌体としたものを使用してもよい。また
菌体処理物としては固定化菌体、菌体抽出物または菌体
破砕し酵素を取り出し作用させてもよい。
結乾燥し、乾燥菌体としたものを使用してもよい。また
菌体処理物としては固定化菌体、菌体抽出物または菌体
破砕し酵素を取り出し作用させてもよい。
作用方法としては、菌体を使用する場合は、菌体を生理
食塩水に懸濁し、この懸濁液と緩衝液に溶解したカルバ
モイル誘導体とを接触させればよい。また菌体処理物を
使用する場合は例えば、陰イオン交換樹脂で処理して得
た活性画分とカルバモイル誘導体と接触させる。
食塩水に懸濁し、この懸濁液と緩衝液に溶解したカルバ
モイル誘導体とを接触させればよい。また菌体処理物を
使用する場合は例えば、陰イオン交換樹脂で処理して得
た活性画分とカルバモイル誘導体と接触させる。
緩衝液はpH6〜10の範囲のものであればよいが、p
H7〜9の緩衝液を使用するのが好ましい。
H7〜9の緩衝液を使用するのが好ましい。
また9反応温度は25〜40℃がよく好ましくは37℃
である。
である。
反応時間は8〜48時間の範囲で作用させるのがよい。
本発明に使用可能なカルバモイル誘導体は一般式(1)
で示されるRがアルキル基、アルアルキル基または置換
基を有するこれらの基によって置換された化合物である
。なお、置換基としてはメルカプト基、ヒドロキシ基、
アミノ基、アシル化アミノ基、カルボキシ基またはイン
ドリル基、ピリジル基、イミダゾリル基のような複素環
等がある。上記の置換基は異なる2つ以上の基が組合さ
れたものでもよい。これらのカルバモイル誘導体は市販
されているものを使用すればよい。
で示されるRがアルキル基、アルアルキル基または置換
基を有するこれらの基によって置換された化合物である
。なお、置換基としてはメルカプト基、ヒドロキシ基、
アミノ基、アシル化アミノ基、カルボキシ基またはイン
ドリル基、ピリジル基、イミダゾリル基のような複素環
等がある。上記の置換基は異なる2つ以上の基が組合さ
れたものでもよい。これらのカルバモイル誘導体は市販
されているものを使用すればよい。
以上のように本発明は、原料がDL体あるいはL体であ
ってもL体のアミノ酸を得ることができる。従って分割
操作を必要とせずしかも培養液、菌体または菌体処理物
と原料を接触させる簡単な操作で効率よく目的物が得ら
れ、且つ経済的にも有利な工業的に優れたL−アミノ酸
の製造方法である。
ってもL体のアミノ酸を得ることができる。従って分割
操作を必要とせずしかも培養液、菌体または菌体処理物
と原料を接触させる簡単な操作で効率よく目的物が得ら
れ、且つ経済的にも有利な工業的に優れたL−アミノ酸
の製造方法である。
次に実施例で本発明を説明する。
実施例1)
グルコース20 f/乙酵母エキスFVIt、ペグ1−
ン5P/1.肉エキス2ft/l、硫酸第一鉄(Fe8
04、 ?H,,O) 8mg)/71及び硫酸−77
が7(MmSo4.5H,、O) 10mg/lを含む
培地(pH7,0)を500 ml容フラスコに100
ml入れ、121℃に15分間滅菌した。
ン5P/1.肉エキス2ft/l、硫酸第一鉄(Fe8
04、 ?H,,O) 8mg)/71及び硫酸−77
が7(MmSo4.5H,、O) 10mg/lを含む
培地(pH7,0)を500 ml容フラスコに100
ml入れ、121℃に15分間滅菌した。
これにPseudomonas、 Sp、 DP−B
−1000を接種し、30℃で48時間振盪培養した。
−1000を接種し、30℃で48時間振盪培養した。
この培養液 ぞより菌体を遠心分離により採取し、培養
液と同量の生理食塩水で2回洗浄後再び生理食塩水に湿
重量で200mg/mlとなるように懸濁した。この菌
体懸濁液に20mg/mlのDL−N−カルバモイルト
リプトファンを含む0.4M炭酸緩衝液(pH9,0)
を等量加え、DL−N−カルバモイルトリプトファン1
0 m97m1 、!:なるよう調整し、37℃にて4
8時間保温し反応させた。生成したL−トリプトファン
をバイオアッセイ法にて定量したところ35my/ml
(収率428%)であった。
液と同量の生理食塩水で2回洗浄後再び生理食塩水に湿
重量で200mg/mlとなるように懸濁した。この菌
体懸濁液に20mg/mlのDL−N−カルバモイルト
リプトファンを含む0.4M炭酸緩衝液(pH9,0)
を等量加え、DL−N−カルバモイルトリプトファン1
0 m97m1 、!:なるよう調整し、37℃にて4
8時間保温し反応させた。生成したL−トリプトファン
をバイオアッセイ法にて定量したところ35my/ml
(収率428%)であった。
実施例2)
実施例1)と同一の菌体懸濁液に20mg/mlのL
N f)ルハモイルトl)ブトファンを含む04M炭酸
緩衝液(pH9,0)を等量加えて、L−N−カルバモ
イルトリプトファンが10 m97m1となるように調
整し、87℃にて48時間保温し反応させた。生成した
L−トリプトファンをバイオアッセイ法にて定量したと
ころ8.8mg/ml(収率9゜%)であった。
N f)ルハモイルトl)ブトファンを含む04M炭酸
緩衝液(pH9,0)を等量加えて、L−N−カルバモ
イルトリプトファンが10 m97m1となるように調
整し、87℃にて48時間保温し反応させた。生成した
L−トリプトファンをバイオアッセイ法にて定量したと
ころ8.8mg/ml(収率9゜%)であった。
邸施例8)
実施例1)と同一の菌体懸濁液に20mg/mlのDL
−N−カルバモイルフェニルアラニンを含む0.4M炭
酸緩衝液を等惜別えDL−N−カルバモイルフェニルア
ラニンが10 mg/mlとなるように調整し37℃に
て48時間保温反応した。生成したL−フェニルアラニ
ンをバイオアッセイ法にて定量したところ8.3mg/
me(収率41.6%)であった。
−N−カルバモイルフェニルアラニンを含む0.4M炭
酸緩衝液を等惜別えDL−N−カルバモイルフェニルア
ラニンが10 mg/mlとなるように調整し37℃に
て48時間保温反応した。生成したL−フェニルアラニ
ンをバイオアッセイ法にて定量したところ8.3mg/
me(収率41.6%)であった。
実施例4)
実施例1)と同一の菌体懸濁液に20mg/mlのDL
−N−ツノルバモイルバリンヲ含tJ” 4M炭酸緩衝
液を等惜別え、DL−N−カルバモイルバリンが10m
g/mlとなるよう調整し、37℃にて48時間保温反
応した。生成したL−バリンをノ〈イオアノセイ法にて
走部したところ2.1. mg/ml (収率287%
)であった。
−N−ツノルバモイルバリンヲ含tJ” 4M炭酸緩衝
液を等惜別え、DL−N−カルバモイルバリンが10m
g/mlとなるよう調整し、37℃にて48時間保温反
応した。生成したL−バリンをノ〈イオアノセイ法にて
走部したところ2.1. mg/ml (収率287%
)であった。
実施例5)
実施例1)と同一の菌体懸濁液に2omg/mlのDL
−N−カルバモイルロイシンを含む04M炭酸緩衝液を
等惜別えD L −N−カルバモイルロイシンが10m
g/mlとなるよう調整し、87℃にて48時間保温反
応した。生成したI、−ロイシンをバイオアッセイ法に
て定量したところ2〜/ml (収率266%)であっ
た。
−N−カルバモイルロイシンを含む04M炭酸緩衝液を
等惜別えD L −N−カルバモイルロイシンが10m
g/mlとなるよう調整し、87℃にて48時間保温反
応した。生成したI、−ロイシンをバイオアッセイ法に
て定量したところ2〜/ml (収率266%)であっ
た。
実施例6)
グリセリン41/l、パフ0トン10fi’/A’、肉
エキス11−/C食塩2fi−/lを含む培地(pH7
0)を500m1のマイヤーフラスコ44本に夫々10
0m1づつ入れ121.’C,15分間滅菌した。
エキス11−/C食塩2fi−/lを含む培地(pH7
0)を500m1のマイヤーフラスコ44本に夫々10
0m1づつ入れ121.’C,15分間滅菌した。
これにPseudomonas sp、 DP−B−1
000を接種し30℃で48時間振盪培養した。
000を接種し30℃で48時間振盪培養した。
この培養液より菌体を遠心分離により採取し。
培養液上同量の生理食塩水にて2回洗浄後、再び生理食
塩水に湿重量で200my/mlとなるように懸濁した
。この懸濁液に2(Jy−/lのD L−N−カルバモ
イルトリプトファンを含む、0.25Mリン酸緩衝液(
pH7,6)を1.651を加え37℃にて7時間反応
を行なった。反応終了後バイオアッセイにて4.1g−
/VのL−トリプトファン認めた(収率496%)。
塩水に湿重量で200my/mlとなるように懸濁した
。この懸濁液に2(Jy−/lのD L−N−カルバモ
イルトリプトファンを含む、0.25Mリン酸緩衝液(
pH7,6)を1.651を加え37℃にて7時間反応
を行なった。反応終了後バイオアッセイにて4.1g−
/VのL−トリプトファン認めた(収率496%)。
反応液を50%トリクロル酢酸にてpH8.0とし遠心
分離して菌体を除き,上清を陽イオン交換樹脂(アンバ
ーライトIR120H型)に吸着。
分離して菌体を除き,上清を陽イオン交換樹脂(アンバ
ーライトIR120H型)に吸着。
水洗後者アンモニア水にて溶出して得られるL−トリプ
トファン溶液を濃縮結晶させた。L−トリプトファンの
結晶6.8g−(単純収率72%)を得, T L O
ニT 1 、2.ボ, ト(α):0− 29.1 (
0−l,)(□0)であった。
トファン溶液を濃縮結晶させた。L−トリプトファンの
結晶6.8g−(単純収率72%)を得, T L O
ニT 1 、2.ボ, ト(α):0− 29.1 (
0−l,)(□0)であった。
実施例7)
グルコース2 0 f/l,酵母エキス5ft/l,ペ
プトン5 V/1.肉エキス2fl/l,FeSO4−
7H20 Bmq/l!, Mn 80, 5H20
’LOmg/lを含む培地(pH7.0)を51容ジ
ャーファーメンタ−に31入れ,121°C15分間滅
菌した。これにPseudomonas. sp. D
P−B−1000を接種し,30℃で20時間通気かく
はん培養した。
プトン5 V/1.肉エキス2fl/l,FeSO4−
7H20 Bmq/l!, Mn 80, 5H20
’LOmg/lを含む培地(pH7.0)を51容ジ
ャーファーメンタ−に31入れ,121°C15分間滅
菌した。これにPseudomonas. sp. D
P−B−1000を接種し,30℃で20時間通気かく
はん培養した。
この培養液より菌体を遠心分離により採取し。
培養液と同量の生理食塩水で1回洗浄した後。
L6rrt./lβメルロプトエタノール50m9/l
。
。
フェニルメチルスルホニルフルオライド、180m9/
Itソジウムアザイドを含む,10mMl−リス緩衝液
(pH7.4)に湿重量にて500m97mlとなるよ
うに懸濁した。
Itソジウムアザイドを含む,10mMl−リス緩衝液
(pH7.4)に湿重量にて500m97mlとなるよ
うに懸濁した。
この菌体懸濁液にリゾチームを加えた後,超音波処理を
行ない菌体破砕液を得た。この菌体破砕液を100OO
XGで10分間遠心し上清を得た。この上清を20mM
トリス緩衝液(pH7.4)にて平衡化した。
行ない菌体破砕液を得た。この菌体破砕液を100OO
XGで10分間遠心し上清を得た。この上清を20mM
トリス緩衝液(pH7.4)にて平衡化した。
陰イオン交換樹脂QAEセファデックスA−50に吸着
させ,緩衝液中のイオン濃度を上昇させることにより活
性画分を回収した。
させ,緩衝液中のイオン濃度を上昇させることにより活
性画分を回収した。
コノ活性画分zmlに2 0 my/mlのL − N
カルバモイルトリプトファン溶液を2ml加え, 37
℃20時間反応させた。
カルバモイルトリプトファン溶液を2ml加え, 37
℃20時間反応させた。
生成したL − 1− IJブトファン溶液をTLC及
びバイオアッセイ法にて測定したところ,28mg(収
率85%)のほとんど純粋なT, − 1− IJブト
ファンが含まれていた。
びバイオアッセイ法にて測定したところ,28mg(収
率85%)のほとんど純粋なT, − 1− IJブト
ファンが含まれていた。
実施例8)
実施例1)と同様の方法で調製したPseudo−mo
nas. sp. DP−B−1000洗浄菌体8g−
を02Mトリス緩衝液( pH8.9 ) 10 mi
に懸濁させ。
nas. sp. DP−B−1000洗浄菌体8g−
を02Mトリス緩衝液( pH8.9 ) 10 mi
に懸濁させ。
これにアクリルアミドモノマー?、27. NN’−メ
チレンビスアクリルアミド0.87.10%NNN’N
′テトラメチルエチレンジアミン溶液01m1゜014
%過硫酸アンモニウム溶液15m1を加えて混合した後
、室温に一時間放置し2ケル化を行なわせた。
チレンビスアクリルアミド0.87.10%NNN’N
′テトラメチルエチレンジアミン溶液01m1゜014
%過硫酸アンモニウム溶液15m1を加えて混合した後
、室温に一時間放置し2ケル化を行なわせた。
得られたゲルを破砕し、カラム(3×30cIn)に充
填した後、L−Nカルバミルトリプトファンを5%(W
/V)含む水溶液をカラム上端より200m1/day
の流速:温度87℃で流した。
填した後、L−Nカルバミルトリプトファンを5%(W
/V)含む水溶液をカラム上端より200m1/day
の流速:温度87℃で流した。
この連続反応で反応時間5時間以上でL −1−IJブ
トファンの収率は80%以上に保たれた。
トファンの収率は80%以上に保たれた。
Claims (2)
- (1)一般式(+) (但し、Rはアルキル基、アルアルキル基または置換基
を有するこれらの基を示す)で表わされる化合物のD
L−またはL一体にシュードモナス属の微生物の培養液
、菌体または菌体処理物を作用せしめることを特徴とす
る一般式(It) IJ2 (但し1式中Rは前記と同じ) で表わされるL−アミノ酸の製造法 - (2)Rがベンジル基、インドリルメチル基、イソブチ
ル基またはイソプロピル基である特許請求の範囲第(1
)項記載のL−アミノ酸の製造法
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14113983A JPS6034191A (ja) | 1983-08-03 | 1983-08-03 | L−アミノ酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14113983A JPS6034191A (ja) | 1983-08-03 | 1983-08-03 | L−アミノ酸の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6034191A true JPS6034191A (ja) | 1985-02-21 |
Family
ID=15285072
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14113983A Pending JPS6034191A (ja) | 1983-08-03 | 1983-08-03 | L−アミノ酸の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6034191A (ja) |
-
1983
- 1983-08-03 JP JP14113983A patent/JPS6034191A/ja active Pending
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| KR960014702B1 (ko) | 산성 우레아제 및 그의 제조방법 | |
| JPS6034191A (ja) | L−アミノ酸の製造法 | |
| CN100510090C (zh) | 茶氨酸的制造方法 | |
| JPH0516832B2 (ja) | ||
| JP3685814B2 (ja) | アミノペプチダーゼおよびその生産方法 | |
| JP3006907B2 (ja) | 発酵法によるl−アラニンの製造法 | |
| JPS6057833B2 (ja) | L−トリプトフアンの製造方法 | |
| JPS619292A (ja) | L−アミノ酸の製造方法 | |
| Sack et al. | Factors affecting the production of staphylocoagulase in a chemically defined medium | |
| JPS61280269A (ja) | 新規微生物 | |
| JPS62275694A (ja) | ジフルクト−ス、ジアンヒドリド▲iii▼の製造法 | |
| JPH0431672B2 (ja) | ||
| KR880002315B1 (ko) | 히아론산과 스트렙토 키나제를 동시에 생산하기 위한 스트렙토코커스속 미생물의 배양방법 | |
| KR920002894B1 (ko) | 신규 세포융합주 및 이를 이용한 l-아르기닌의 제조방법 | |
| JPH02163082A (ja) | キトサナーゼの製造方法 | |
| JPS63146796A (ja) | L−ヒスチジンの製造法 | |
| JPS61128897A (ja) | 発酵法によるl−フエニルアラニンの製造法 | |
| JPS6075283A (ja) | 新菌株 | |
| JPH0889269A (ja) | L−シトルリンの製造法および新種細菌 | |
| JPS60156394A (ja) | L−2−アミノ−4−フエニル酪酸の製法 | |
| JPS6231919B2 (ja) | ||
| JPS641115B2 (ja) | ||
| JPS6363377A (ja) | シユウドモナス属ns303菌及びl−アミノ酸の製法 | |
| JPS6117473B2 (ja) | ||
| JPS5860995A (ja) | 発酵法によるl−プロリンの製法 |