ES2520392T3

ES2520392T3 - Vesículas de membranas externas bacterianas mejoradas

Info

Publication number: ES2520392T3
Application number: ES10179782.7T
Authority: ES
Inventors: Mariagrazia Pizza; Davide Serruto; Rino Rappuoli
Original assignee: Novartis Vaccines and Diagnostics SRL; Novartis Vaccines and Diagnostics Inc
Current assignee: GSK Vaccines SRL; Novartis Vaccines and Diagnostics Inc
Priority date: 2002-08-30
Filing date: 2003-09-01
Publication date: 2014-11-11
Anticipated expiration: 2023-09-01
Also published as: EP1534326B1; JP2010150287A; CY1115777T1; EP1864679A2; ES2289351T3; CN102188700A; JP2006503822A; SI2258389T1; EP1864679B1; SI1864679T1; JP2013139471A; EP2258388B1; AU2003263534B2; FR13C0046I2; DK1534326T3; PT1864679E; EP2258388A1; ES2423019T3; RU2005108994A; PT2258389E

Abstract

Un proceso para la fabricación de una preparación de vesícula de membrana externa de una bacteria Gramnegativa recombinante que sobreexpresa el inmunógeno 287, en el que la membrana bacteriana se interrumpe sustancialmente en ausencia de detergente de desoxicolato.

Description

Vesículas de membranas externas bacterianas mejoradas

Campo técnico

Esta invención pertenece al campo de la preparación de vesículas para fines de inmunización.

Antecedentes de la técnica

Una de las diversas aproximaciones a la inmunización frente a una infección de N. meningitidis es usar vesículas de membranas externas (OMVs). Una vacuna de OMV eficaz frente al serogrupo B ha sido producida por el instituto Nacional Noruego de la Sanidad Pública [por ejemplo, referencia 1] pero, aunque está vacuna es segura y previene la enfermedad MenB, su eficacia está limitada a la cepa usada para preparar la vacuna.

La vacuna “RIVM” está basada en vesículas que contienen seis subtipos diferentes de PorA y se ha mostrado que es inmunógena en niños en ensayos clínicos de fase II. [2].

La referencia 3 describe una vacuna contra diferentes serotipos patógenos de meningococo del serogrupo B basada en OMV que retiene un complejo de proteínas de 65-kDa. La referencia 4 describe una vacuna que comprende OMV de cepas meningocócicas tratadas por ingeniería genética, en las que las OMVs comprenden: al menos una proteína de membrana externa (OMP) de clase 1 pero que no comprende OMP de clase 2/3. La referencia 5 describe OMVs que comprenden OMPs que tienen mutaciones en sus bucles superficiales y OMVs que comprenden derivados de lipopolisacárido meningocócico (LPS).

La referencia 6 describe composiciones que comprenden OMVs complementadas con proteínas de unión de transferrina (por ejemplo, TbpA y TbpB) y/o superóxido-dismutasa Cu, Zn. La referencia 7 describe composiciones que comprenden OMVs complementadas con diversas proteínas. La referencia 8 describe preparaciones de vesículas de membranas obtenidas a partir de N. meningitidis con un gen furK modificado.

Además de N. meningitidis del serogrupo B, han sido preparadas vesículas a partir de otras bacterias. La referencia 9 describe un procedimiento para preparar vacunas basadas en OMV para meningococos del serogrupo

A. Las referencias 10 y 11 describen vesículas a partir de N. gonorrhoeae. La Referencia 12 describe preparaciones de vesículas a partir de N. lactamica. Han sido preparadas también vesículas a partir de Moraxella catarrhalis [13,14], Shigella flexneri [15,16], Pseudomonas aeruginosa [15,16], Porphyromonas gingivalis [17], Treponema pallidum [18], Hae- mophilus influenzae [19 y 20] y Helicobacter pylori [21].

Un inconveniente de las preparaciones de vesículas bacterianas es que no están presentes agentes protectores importantes. Para retener antígenos como nspA en preparaciones de OMV, la referencia 20 expone que la expresión de NspA debe ser sobrerregulada con una desactivación concomitante de por A y cps. Es un objeto de la invención proporcionar preparaciones de vesículas adicionales y mejoradas, junto con procedimientos para su elaboración. En particular, es un objeto de la invención proporcionar vesículas que retengan componentes inmunógenos bacterianos importantes a partir de N. meningitidis.

Descripción de la invención

Los métodos de la técnica anterior para la preparación de OMV meningocócicos incluyen el uso de un detergente durante la rotura de la membrana bacteriana [por ejemplo, véase la referencia 22, en la que se usa un detergente de desoxicolato]. La invención está basada en el descubrimiento sorprendente de que la rotura de la membrana sustancialmente en ausencia de detergente da lugar a OMVs que retienen importantes componentes inmunógenos bacterianos, particularmente (i) la proteína de superficie de NspA protectora, (ii) la proteína “287” y (iii) la proteína “741”.

Por lo tanto, la invención proporciona un procedimiento para la elaboración de una preparación de vesículas de membranas externas a partir de una bacteria, en la que la membrana de bacteria es rota sustancialmente en ausencia de detergente. Se proporcionan también preparaciones de OMVs que pueden ser obtenidas mediante procedimientos de la invención.

Para la obtención de vesículas de NspA+ve, el procedimiento de la invención es mucho más sencillo que realizar las múltiples manipulaciones genéticas descritas en la referencia 20.

El procedimiento de la invención incluirá normalmente las siguientes etapas básicas (a) tratar células bacterianas en ausencia sustancial de detergente; (b) centrifugar la composición de la etapa (a) para separar las vesículas de las membranas externas de las células tratadas y los restos celulares y recoger la materia sobrenadante; (c) realizar una centrifugación a velocidad elevada de la materia sobrenadante de la etapa (b) y recoger las vesículas de membranas externas en un sedimento; (d) volver a dispersar el sedimento de la etapa (c) en un tampón; (e) realizar una segunda centrifugación a velocidad elevada de acuerdo con la etapa (c) recogiendo las vesículas de membranas externas en un sedimento; (f) volver a dispersar el sedimento de la etapa (e) en un medio acuoso.

El procedimiento puede comprender también las siguientes etapas: (g) realizar una filtración en condiciones estériles a través de al menos dos filtros de tamaño de poros decreciente de la composición nuevamente dispersada de la etapa (f); y (h) opcionalmente, incluir la composición de la etapa (g) en un vehículo farmacéuticamente aceptable y/o una composición adyuvante.

La etapa (a) da lugar a vesículas de la membrana externa bacteriana, y las vesículas comprenden generalmente componentes de la membrana externa sustancialmente en su forma nativa. Ventajosamente, son conservados los componentes de membranas de NspA “287” y “741”.

La etapa (b) incluirá normalmente una centrifugación a aproximadamente 5.000-10.000 g durante hasta 1 hora.

Las etapas (c) y (e) incluirán normalmente una centrifugación a aproximadamente 35.000-100.000 g durante hasta 2 hora.

Las etapas de centrifugación son realizadas preferentemente entre 2°C y 8°C.

Puede ser usado cualquier tampón adecuado en la etapa (b) por ejemplo, tampón Tris, tampón de fosfato, tampón de histidina etc. La etapa (f) puede incluir también el uso de un tampón que puede ser el mismo tampón usado en la etapa (d) o puede incluir sencillamente el uso de agua (por ejemplo, agua para inyección).

La etapa (g) finaliza preferentemente con un filtro con un tamaño de poros de aproximadamente 0,2 µm.

La invención proporciona también una composición de vesículas de N. meningitidis caracterizada porque las vesículas incluyen (i) proteína de NspA, (ii) proteína “287” y (iii) proteína “741”.

La bacteria

La bacteria a partir de la cual son preparadas las OMVs puede ser gram-positiva, pero es preferentemente gram- negativa. La bacteria puede ser del genero Moraxella, Shigella, Pseudomonas, Treponema, Porphyromonas o Helico- bacter, (véase lo que antecede para las especies preferidas) pero es preferentemente del genero Neisseria. Las especies preferidas de Neisseria son N. meningitidis y N. gonorrhoeae. Dentro de la N. meningitidis, puede ser usado cualquiera de los serogrupos A, C, W135 e Y, pero es preferido preparar vesículas a partir del serogrupo B. Las cepas preferidas dentro del serogrupo B son MC58, 2996, H4476 y 394/98.

Para reducir la actividad pirógena, es preferido que la bacteria tenga bajos niveles de endotoxinas (LPS). Son conocidas bacterias mutantes adecuadas, por ejemplo, Neisseria mutante [23] y Helicobacter mutante [24]. Los procedimientos para preparar membranas externas agotadas en LPS a partir de bacterias gram-negativas se describen en la referencia 25.

La bacteria puede ser una bacteria de tipo salvaje o puede ser una bacteria recombinante. Las bacterias recombi- nantes preferidas sobreexpresan (con relación a la correspondiente cepa de tipo salvaje) inmunógenos como NapA, 287,741, TbpA, TbpB, superóxido dismutasa [6] etc. La bacteria puede expresar más de una proteína de membrana externa de clase I PorA, por ejemplo, 2, 3, 4, 5 ó 6 de subtipos de PorA: Pl.7,16; Pl.5,2; P1.19,15; P15c,10; Pl.12,13; y P1.7h,4, [por ejemplo, referencias 26 y 27].

El procedimiento de la invención incluirá normalmente una etapa inicial de cultivo de las bacterias, opcionalmente seguida de una etapa de concentración de las células cultivadas.

Rotura de membranas

La rotura de membranas para la formación de vesículas es realizada sustancialmente en ausencia de detergente.

En particular, la rotura de membranas puede ser realizada sustancialmente en ausencia de un detergente de desoxicolato, estando presente opcionalmente otros detergentes.

La rotura de membranas puede ser realizada sustancialmente en ausencia de un detergente iónico, estando presente opcionalmente un detergente no iónico. Alternativamente, puede ser realizada sustancialmente en ausencia de un detergente no iónico, estando presente opcionalmente un detergente iónico. En algunas realizaciones, tampoco está presente un detergente no iónico.

Las etapas después de la rotura de membranas y formación de vesículas pueden incluir el uso de un detergente. Por tanto, está abarcado por la invención un procedimiento en el que se produce una rotura de membranas en ausencia de detergente, pero en el que es posteriormente añadido un detergente a las vesículas preparadas.

La expresión “sustancialmente en ausencia” significa que el detergente en cuestión está presente a una concentración de más de 0,05% (por ejemplo, <0,025%, <0,015%, <0,010%, <0,005%, <0,002%, <0,001% o incluso 0%) durante la rotura de membranas. Por tanto, no están excluidos procedimientos en los que están presentes cantidades residuales de detergentes durante la preparación de las vesículas.

La rotura de membranas en ausencia de detergente puede ser realizada sobre bacterias intactas usando técnicas físicas, por ejemplo, aplicación de ultrasonidos, homogeneización, microfluididación, cavitación, choque osmótico, trituración, prensa francesa, combinación, etc.

Las vesículas

Los procedimientos de la invención producen vesículas de membranas externas. Las OMVs son preparadas a partir de la membrana externa de bacterias cultivadas. Son obtenidas a partir de bacterias crecidas en un caldo o en un cultivo en medio sólido, preferentemente separando las células bacterianas del medio de cultivo (por ejemplo, por filtración o mediante centrifugación a baja velocidad para sedimentar las células), lisado de las células (sin detergente) y separación de una fracción de membranas externas de moléculas citoplásmicas (por ejemplo, por filtración, por precipitación diferencial o agregación de membranas externas y/o OMVs, mediante métodos de separación por afinidad usando ligandos que reconocen específicamente moléculas de membranas externas, o mediante centrifugación a velocidad elevada que sedimenta las membranas externas y/o OMVs).

Las OMVs pueden ser distinguidas de las microvesículas (MVs [28]) y las “OMVs nativas” (“NOMVs” [66]), que son vesículas de membranas que se producen de forma natural, que se forman espontáneamente durante el crecimiento bacteriano y son libradas en el medio de cultivo. Las MVs pueden ser obtenidas cultivando Neisseria en un medio de cultivo de caldo, separando las células completas del medio de cultivo de caldo (por ejemplo, por filtración o por centrifugación a baja velocidad, para sedimentar solamente las células y no las ampollas más pequeñas) y recogiendo las MVs que están presentes en el medio agotado en células (por ejemplo, por filtración, por precipitación diferencial o agregación de MVs, por centrifugación a velocidad elevada para sedimentar las MVs). Las cepas para ser usadas en la producción de MVs pueden ser generalmente seleccionadas sobre la base de la cantidad de MVs producidas en cultivo. Las referencias 29 y 30 describen Neisseria con una elevada producción de MV.

Componentes inmunógenos bacterianos retenidos

La ausencia sustancial de detergente en los procedimientos de la invención da lugar a preparaciones de vesículas que retienen componentes inmunógenos de la superficie bacteriana que, de otra forma, usando métodos de la técnica anterior basados en detergentes, serían perdidos o disminuidos. En N. meningitidis, tres inmunógenos que son ventajosamente retenidos usando la invención incluyen, pero sin limitación: (1) NspA; (2) proteína “741” y

(3) proteína “287”. Según la presente invención se conserva el 287.

La NspA (proteína A de superficie de Neisseria) es descrita en las referencias 31 a 37 y como la SEQ ID 40008- 4033 de la referencia 38. Es una vacuna candidata para la prevención de una enfermedad meningocócica. Está altamente conservada entre las cepas. Sin embargo, a pesar de una esperanza inicial, se cree actualmente que la NspA no será un antígeno protector adecuado por sí mismo y necesitará ser administrada con antígenos adicionales [por ejemplo, la referencia 36 y ejemplo 11 de la referencia 38]. La NspA se ha encontrado que es separada mediante métodos de preparación basados en detergentes de la técnica anterior. Sin embrago, según la presente invención, la NspA puede ser retenida en las vesículas. Las vesículas de NspA+ve son ventajosas porque es preparada una combinación de dos inmunógenos potentes conocidos (es decir, vesículas + NspA) en un único procedimiento, y cada inmunógeno aumenta la eficacia del otro.

La proteína “741” es descrita como “NMB1870” en la referencia 39 (GenBank AAF42204, Gl:7227128). Es descrita también en las referencias 40 y 41. Provoca fuertes anticuerpos bactericidas. Se ha encontrado que la proteína “741” es parcialmente suprimida en vesículas preparadas mediante métodos basados en detergente de la técnica anterior. Sin embargo, según la presente invención, la “741” puede ser retenida en las vesículas. Estas vesículas 741+ve son ventajosas porque una combinación de dos potentes inmunógenos (es decir, vesículas +741) es preparada en un único procedimiento, y cada inmunógeno aumenta la eficacia del otro.

La proteína “287” es descrita como “NMB2132” en la referencia 39 (GenBank AAF42440, 01:7227388). Es descrita también en las referencias 40 y 42. Provoca fuertes anticuerpos bactericidas. La proteína “287” normalmente no está presente en vesículas preparadas mediante métodos basados en detergente de la técnica anterior y, para superar su supresión, ha sido previamente propuesto que las preparaciones de OMV pueden ser complementadas con 287 [43]. Sin embargo, según la presente invención, la “287” puede ser retenida en las vesículas. Estas vesículas de 287+ve son ventajosas porque una combinación de dos potentes inmunógenos (es decir, vesículas +287) es preparada en un único procedimiento, en el que cada inmunógeno aumenta la eficacia del otro.

La NspA preferida (a) tiene al menos un a% de identidad de secuencias para la secuencia de aminoácidos OI: 1518522 y/o (b) comprende un fragmento de al menos x aminoácidos de la secuencia de aminoácidos OI: 1518522. La “741” preferida (s) tiene al menos b% de identidad de secuencias para la secuencia de aminoácidos OI: 7227128 y/o (b) comprende un fragmento de al menos x aminoácidos de la secuencia de aminoácidos OI: 7227128. La “287” preferida (a) tiene al menos un c% de identidad de secuencias para la secuencia de aminoácidos OI: 7227388 y/o

(b) comprende un fragmento de al menos x aminoácidos de la secuencia de aminoácidos OI: 7227388. Los valores de a, b y c son independiente unos de otros, pero cada valor es al menos 70 (por ejemplo, 75, 80, 85, 90, 95, 96, 97, 98, 99, 99,5 ó 100). Los valores x, y, z son independientes unos de otros, pero cada valor es al menos 8 (por ejemplo, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 25, 30, 35, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100, 150, 200, 250 etc.). Los fragmentos comprenden preferentemente epítopos.

Las proteínas NspA, 287 y 741 preferidas retienen sustancialmente la capacidad de las proteínas de tipo salvaje (como se encuentra en las bacterias intactas) para provocar anticuerpos bactericidas en pacientes.

Composiciones farmacéuticas inmunógenas

El procedimiento de la invención proporciona una preparación de vesículas. Para una administración a un paciente, las vesículas son formuladas preferentemente en forma de composiciones inmunógenas y, más preferentemente en forma de composiciones adecuadas para ser usadas como una vacuna en seres humanos (por ejemplo, niños o adultos). Las vacunas de la invención pueden ser profilácticas (es decir, para prevenir una infección) o terapéuticas (es decir, para tratar una enfermedad después de una infección), pero normalmente serán profilácticas.

La composición de la invención está preferentemente esterilizada.

La composición de la invención está preferentemente exenta de agentes pirógenos.

La composición de la invención tiene generalmente un pH entre 6,0 y 7,0, más preferentemente entre 6,3 y 6,9, por ejemplo, 6,6 ± 0,2. La composición está preferentemente tamponada a este pH.

Otros componentes adecuados para una administración a seres humanos se describen en la referencia 44.

La composición comprenderá generalmente un adyuvante. Los adyuvantes preferidos para aumentar la eficacia de la invención incluyen, pero sin limitación: (A) MF59 (5% de escualeno, 0,5% de Tween 80, y 0,5% de Span 85, formulados en forma de partículas submicrónicas usando un microfluidizador) [véase el capítulo 10 de la referencia 45; véase también la referencia 46]; (B) micropartículas (es decir, una partícula de ~100 nm a ~150 fim de diámetro, más preferentemente ~200 nm a ~30 fim de diámetro y lo más preferentemente ~500 nm a ~ 10 fim de diámetro) formadas a partir de materiales que son biodegradables y no tóxicos (por ejemplo, un poli(a-hidroxiácido), un poli(ácido hidroxi- butírico) un poliortoéster, un polianhídrido, una policaprolactona, etc.), siendo preferido un poli(láctido-co-glicólidos) opcionalmente con materiales de carga superficiales (por ejemplo, añadiendo un detergente catiónico, amónico o no iónico como SDS (negativo) o CTAB (positivo) [por ejemplo, referencias 47 y 48); (C) liposomas [véase los capítulos 13 y 14 de la referencia 45]; (D) ISCOMs [véase el capítulo 45 de la referencia 45], que pueden estar desprovistos de detergentes adicional [49]; (E) SAF, que contiene 10% de escualeno, 0,4% de Tween 80,5% de polímero L121 de bloques plurónicos y thr-MDP, microfluidizado en forma de una emulsión submicrónica o centrifugado para generar una emulsión de tamaño de partículas mayor [véase el capítulo 12 de la referencia 45]; (F) sistema adyuvante Ribi® (RAS), (Eibi inmunochem) que contiene 2% de escualeno, 0,2% de Tween 80 y uno o más componentes de paredes celulares bacterianas del grupo que consiste en monofosforilípido A (MPL), dimicolato de trehalosa (TDM) y estructura principal de las paredes celulares (CWS), preferentemente MPL + CWS (Detox®); (G) adyuvantes de saponina, como QuilA o QS21 [véase el capítulo 22 de la referencia 45] también conocido como estimulon®; (H) quitosano [por ejemplo, 50]; (1) adyuvante completo de Freund (CFA) y adyuvante incompleto de Freund (IFA); (J) citoquinas, como interleucinas (por ejemplo, IL-1, IL-2, IL4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-12, etc.), interferones (por ejemplo, interferón- y), factor de estimulación de colonias de macrófagos, factor de necrosis tumoral, etc. [véanse los capítulos 27 y 28 de la referencia 45]; (K) una saponina (por ejemplo, QS21) + 3dMPL + IL-12 (opcionalmente + un esterol) [51]; (L) monofosforil-lipidoA (MPL) o MPL 3-Odesacilado (3dMPL) [por ejemplo, capítulo 21 de la referencia 45]; (M) combinaciones de 3sMPL con, por ejemplo, QS21 y/o emulsiones de aceite en agua [52]; (N) oligonucleótidos que comprenden restos CpG [53], es decir, que contienen al menos un dinucleótido CG, siendo usada opcionalmente 5- metilcitosina en lugar de citosina; (O) un polioxietileno-éter o un polioxietileno-estér [54]; (P) un tensioactivo de éster de polioxietileno-sorbitán en combinación con un octoxinol [55] o un polioxietileno-alquil-éter o un tensioactivo de éster en combinación con al menos un tensioactivo no iónico adicional como un octoxinol [56]; (Q) un oligonucleóti- do inmunoestimulador (por ejemplo, un poligonucleótido CpG) y una saponina [57]; (R) un inmunoestimulante y una partícula de sal metálica [58]; (S) una saponina y una emulsión de aceite en agua [59]; (T) enterotoxina lábil respecto al calor de E. coli (“LT”)

o sus mutantes destoxificados, como los mutantes K63 o R72 [por ejemplo, capítulo 5 de la referencia 60]; (U) toxina del cólera (“CT”) o sus mutantes destoxificados [por ejemplo, capítulo 5 de la referencia 60]; (V) RNA de cadena doble; (W) sales de aluminio, como hidróxidos de aluminio (incluidos los oxihidróxidos), fosfatos de aluminio (incluidos los hidroxifosfatos), sulfato de aluminio, etc. [Capítulos 8 y 9 de la referencia 61]; (X) emuladores de monofosforil-lípidos A, como derivados de aminoalquil-glucosaminida-fosfato, por ejemplo, RC-529 [62]; (Y) polifosfazeno (PCCPP); o (Z) un bioadhesivo [63] como microesferas de ácido hialurónico esterificado [64] o un mucoadhesivo seleccionado entre el grupo que consiste en derivados reticulados de poli(ácido acrílico), poli(alcohol vinílico), polivinilpirrolidona, polisacáridos y carboximetilcelulosa. Pueden ser usadas también otras sustancias que actúan como agentes inmunoestimuladores para aumentar la eficacia de la composición [por ejemplo, véase el capítulo 7 de la referencia 45]. Las sales de aluminio (especialmente los fosfatos y/o hidróxidos de aluminio) son adyuvantes preferidos para una inmunización parenteral. Las toxinas mutantes son preferidas para los adyuvantes mucosales.

Las vesículas en las composiciones de la invención estarán presentes en “cantidades inmunológicamente eficaces”, es decir, la administración de esa cantidad a un individuo, en una dosis única o como parte de una serie, es eficaz para el tratamiento o la prevención de la enfermedad. Esta cantidad varía dependiendo del estado de salud y físico del individuo que va a ser tratado, como la edad, el grupo taxonómico del individuo que va a ser tratado (por ejemplo, un primate no humano, primate, etc.), la capacidad del sistema inmune del individuo para sintetizar anticuerpos, el grado de protección deseado, la formulación de la vacuna, la valoración del facultativo encargado de la situación médica y otros factores relevantes. Se espera que la cantidad caiga en un intervalo relativamente amplio que puede ser determinado a través de ensayos rutinarios. El tratamiento mediante la dosificación puede seguir un esquema de dosis única o un esquema de dosis múltiples (por ejemplo, que incluyan dosis estimuladoras). La vacuna puede ser administrada conjuntamente con otros agentes inmunorreguladores.

Normalmente, las composiciones de la invención son preparadas en formas inyectables. El suministro directo de las composiciones será generalmente por vía parenteral (por ejemplo, por inyección, ya sea subcutánea, intraperitoneal, intravenosa o intramuscular o suministrada al espacio intersticial de un tejido) o mucosal (por ejemplo, oral o intranasal [65, 66]). Las composiciones pueden ser administradas también en una lesión.

Una vez formuladas, las composiciones de la invención pueden ser administradas directamente al sujeto. Los sujetos que van a ser tratados pueden ser animales; en particular, pueden ser tratados sujetos humanos. Las vacunas son particularmente útiles para vacunar niños y adolescentes.

La composición puede comprender vesículas de más de un serosubtipo de N. meningitidis [28]. Análogamente, la composición puede comprender más de un tipo de vesícula, por ejemplo, tanto MVs como OMVs.

Además de las vesículas, la composición de la invención puede comprender antígenos adicionales. Por ejemplo, la composición puede comprender uno o más de los siguientes antígenos adicionales:

-: antígenos de Helicobacter pylori como CagA [67 a 70], VacA [71, 72], NAP [73, 74, 75], HopX [por ejemplo, 76], HopY [por ejemplo, 76] y/o ureasa. -un antígeno de sacárido del serogrupo de N. meningitidis A, C, W135 y/o Y, como el oligosacárido descrito

en la referencia 77 del serogrupo C [véase también la referencia 78] o el oligosacárido de la referencia 79;

-: un antígeno de sacárido de Streptococcus pneumoniae [por ejemplo, 80, 81, 82];

-: un antígeno del virus de la hepatitis A, como un virus inactivado [por ejemplo, 83, 84];

-: un antígeno del virus de la hepatitis B, como los antígenos de la superficie y/o el núcleo [por ejemplo, 84,

85];

-: un antígeno de Bordetella pertussis, como holotoxina de pertussis (PT) y hemaglutinina filamentosa (FHA)

de B. pertussis, opcionalmente también en combinación con pertactina y/o aglutinógenos 2 y 3 [por ejemplo

86 y 87];

-: un antígeno de la difteria como toxoide de difteria [por ejemplo, capítulo 3 de referencia 88] por ejemplo, el

mutante CRM197 [por ejemplo, 89];

-: un antígeno del tétanos, como un toxoide del tétanos [por ejemplo, capítulo 4 de referencia 108];

-: un antígeno de sacárido de Haemophilus influenzae B [por ejemplo, 78];

-: un antígeno del virus de la hepatitis C [por ejemplo, 90];

-: un antígeno de N. gonorrhoeae [por ejemplo 91, 92, 93, 94];

-: un antígeno de Chlamydiapneumoniae [por ejemplo, referencias 95 a 101];

-: un antígeno de Chlamydia trachomatis [por ejemplo, 102].

-: un antígeno de Porphyromonas gingivalis [por ejemplo, 103];

-: antígeno(s) de la polio [por ejemplo, 104, 105] como OPV o, preferentemente, IPV;

-: antígeno(s) de la rabia [por ejemplo, 106] como virus inactivados liofilizados [por ejemplo, 107, RabAvert(®];

-: antígenos del sarampión, paperas y/o rubéola [por ejemplo, capítulos 9, 10 y 11 de la referencia 108];

-: antígeno(s) de la gripe [por ejemplo, capítulo 19 de la referencia 108], como las proteínas de superficies de

hemaglutinina y/o neuraminidasa; -un antígeno de Moraxella catarrhalis [por ejemplo, 109]; -un antígeno de proteína de Streptococcus agalactie (estreptococo del grupo B) [por ejemplo, 110, 111]; -un antígeno de sacárido de Streptococcus agalactie (estreptococo del grupo B); -un antígeno de Streptococcus pyogenes (estreptococo del grupo A) [por ejemplo, 111, 112, 113]; -un antígeno de Staphylococcus aureus [por ejemplo, 114]; -un antígeno de Bacillus anthracis [por ejemplo, 115, 116, 117]; -un antígeno de un virus de la familia de las flavivíridas (genero flavivirus), como el virus de la fiebre amarilla, virus de la encefalitis Japonesa, cuatro serotipos de virus dengue, virus de la encefalitis

transmitido por garrapatas o virus del Nilo occidental;

-: un antígeno de pestivirus, como el virus de la fiebre porcina clásica, virus de la diarrea vírica bovina y/o

virus de la enfermedad de la frontera;

-: un antígeno de parvovirus, por ejemplo, de parvovirus B 19;

-: una proteína priónica (por ejemplo, la proteína priónica CJD);

-: una proteína amiloide, como un beta-péptido [118];

-: un antígeno del cáncer, como los recogidos en la Tabla 1 de la referencia 119 o en las Tablas 3 y 4 de la

referencia 120.

La composición puede comprender uno o más de estos antígenos adicionales.

Los antígenos de proteínas tóxicas pueden ser destoxificados cuando sea necesario (por ejemplo, destoxificacidón de toxina de pertussis por medios químicos y/o genéticos [87]).

Cuando un antígeno de difteria es incluido en la composición, es preferido incluir también antígeno de tétanos y antígenos de pertussis. Análogamente, cuando un antígeno de tétanos es incluido, es preferido incluir también antígenos de difteria y de pertussis. Análogamente, cuando es incluido un antígeno de pertussis, es preferido incluir también antígenos de difteria y de tétanos. Por tanto, son preferidas combinaciones de DTP.

Los antígenos de sacáridos están preferentemente en la forma de conjugados. Las proteínas portadoras para los conjugados incluyen la proteína de membranas externas de N. meningitidis [121], péptidos sintéticos [122,123], proteínas de choque con calor [124,125], proteínas de pertussis [126,127], proteína D de H. influenzae [128], citoquinas [129], lifoquinas [129], hormonas [129], factores de crecimiento [129], toxina A o B de C. difficile [130], proteínas de absorción de hierro [131], etc. Una proteína portadora preferida es el toxoide de difteria CRM197 [132].

Los antígenos del serogrupo B de N. meningitidis pueden ser añadidos también a las composiciones de OMV. En particular, puede ser añadido un antígeno como el descrito en las referencias 133 a 139.

Los antígenos en la composición estarán presentes normalmente a una concentración de al menos 1 ¡ig/ml cada uno. En general, la concentración de cualquier antígeno dado será suficiente para provocar una respuesta inmune contra ese antígeno.

Como una alternativa para usar antígenos de proteínas en la composición de la invención, puede ser usado un ácido nucleico que codifique el antígeno. Los componentes proteicos de las composiciones de la invención, por tanto, pueden ser sustituidos con un ácido nucleico (preferentemente DNA, por ejemplo, en la forma de un plásmido) que codifique la proteína.

Medicamentos

La invención presenta vesículas de la invención para su uso como medicamentos.

La invención también presenta composiciones como se definen en las reivindicaciones para su uso como un método de obtener una respuesta inmune en un paciente, incluyendo la administración de una composición de la invención a un paciente. La respuesta inmune es, preferiblemente, protectora contra una enfermedad meningocócica, y puede comprender una respuesta inmune humoral y / o una respuesta inmune celular. El paciente es, preferiblemente, un niño.

El método puede obtener una respuesta de fuerzo, en un paciente al que ya se ha administrado un cebador contra N. meningitidis. Se describen en la ref. 65 pautas de sensibilizacion y refuerzo subcutáneas e intranasales para VMEs.

La invención también presenta una vesícula de la invención para uso en la fabricación de un medicamento para obtener una respuesta inmune en un paciente. El medicamento es, preferiblemente, una composición inmunogénica

(p. ej. una vacuna). El medicamento es, preferiblemente, para prevenir y / o tratar una enfermedad causada por un Neisseria (p. ej. Meningitidis, septicaemia, gonorrhoea, etc).

Los métodos y usos de la invención pueden incluir la administración de vesículas de más de un subtipo/serogrupo de N. meningitidis [p. ej. Ref 28].

Formulación de OMV

La invención proporciona una composición que comprende vesículas de membranas externas meningocócicas, un adyuvante de hidróxido de aluminio, un tampón de histidina y cloruro de sodio, en el cual: (a) la concentración de cloruro de sodio es mayor que 7,5 mg/ml; y/o (b) la concentración de OMVs es menor que 100 µg/ml.

La concentración de cloruro de sodio es preferentemente mayor que 8 mg/ml, y es más preferentemente de forma aproximada 9 mg/ml.

La concentración de OMVs es preferentemente menor que 75 mg/ml, por ejemplo, aproximadamente 50 mg/ml.

El tampón de histidina tiene preferentemente un pH entre 6,3 y 6,7, por ejemplo, un pH de 6,5.

El adyuvante puede ser usado a aproximadamente 3,3 mg/ml (expresada como concentración de Al3+).

Definiciones

Las referencias al porcentaje de identidad de secuencias entre dos secuencias de aminoácidos significa que, cuando están alineadas, ese porcentaje de aminoácidos es el mismo al comparar las dos secuencias. Esta alineación y el porcentaje de homología de la identidad de secuencias pueden ser determinados usado programas informáticos conocidos en la técnica, por ejemplo, los descritos en la sección 7.7.18de la referencia 140. Una alineación preferida es determinada mediante el algoritmo de búsqueda de homologías de Smith-Waterman usando una búsqueda de espacios de afinado con una penalización de espacios abiertos de 12 y una penalización de la extensión de los espacios de 2, matriz BLOSUM de 62. El algoritmo de búsqueda de homologías de Smith-Waterman es bien conocido y está descrito en la referencia 141.

La expresión “que comprende” significa “que incluye” así como “que consiste”, por ejemplo, una composición “que comprende” X puede consistir exclusivamente en X o puede incluir algo adicional, por ejemplo X + Y.

El término “aproximadamente” en relación con un valor numérico x significa, por ejemplo, x ± 10%.

La palabra “sustancialmente” no excluye “completamente” por ejemplo, una composición que está “sustancialmente exenta” de Y puede estar completamente exenta de Y. cuando sea necesario, la palabra “sustancialmente” puede ser omitida de la definición de la invención.

Breve descripción de los dibujos

Las Figuras 1 y 2 muestran la presencia/ausencia de (1) proteína “287” y (2) proteína “741” en bacterias (“TOT”) y vesículas de membranas externas (“OMV”) preparadas a partir de las cepas MC58, H4476 y 394/98 de N. meningitidis. La flecha muestra la posición de “287” en la Figura 1 y “741” en la Figura 2.

La Figura 3 muestra las secuencias de aminoácidos de las entradas de GenBank GI: 7227128, GI: 7227388 y GI: 1518522 de fecha de 29 de agosto de 2002.

Modos de llevar a cabo la invención

Preparación de OMV

Fueron preparadas OMVs mediante métodos “noruegos” de la técnica anterior (cepas H4476 y 394/98) o mediante el siguiente procedimiento (cepa MC58):

-: Fueron recogidas bacterias de 2-5 placas en 10 ml de tampón de Tris-HCl 10 mM (pH 8,0) y fueron

destruidas con calor a 56°C durante 45 minutos. Las muestras fueron seguidamente sometidas a

ultrasonidos en hielo (ciclo de funcionamiento 50 durante 10 minutos con la punta a 6/7) para romper las

membranas.

-: El debris celular fue separado por centrifugación a 5.000 g durante 30 minutos a 4°C, o a 10.000 g durante

10 minutos.

-: La materia sobranadante fue nuevamente centrifugada a 50.000 g durante 75 minutos a 4°C.

-: El sedimento se volvió a poner en suspensión en 7 mi sarcosinato de N-lauroilo al 2% (Sarcosil) en Tris-HCl

10 mM (pH 8,0) durante 20 minutos a temperatura ambiente para solubilizar las membranas citoplásmicas.

-: La muestra fue centrifugada a 10.000 g durante 10 minutos para separar las partículas y la materia

sobrenadante fue centrifugada a 75.000 g durante 75.000 minutos a 4°C. La muestra fue lavada en Tris-

HCl 10 mM (pH 8,0) y centrifugada a 75.000 g durante 75 minutos.

-: El sedimento se volvió a poner en suspensión en Tris-HCl 10 mM (pH 8,0) o agua destilada.

Las bacterias y las preparaciones de OMV fueron ensayadas mediante una transferencia Western en presencia de NspA, 287 y 741 (Figuras 1 y 2) y los resultados se resumen en la siguiente Tabla:

Cepa: Detergente NspA 287 741

Bacteria: OMV Bacteria OMV Bacteria OMV

MC58: - +++ +++ +++ +++ +++ +++

H44/76: + +++ -(20) +++ - +++ +

394/98: + +++ n.d. +++ +++ +++ +

En contraste con los métodos basados en detergentes de la técnica anterior, por lo tanto, la ausencia de detergente da lugar a que la NspA este retenida en las OMVs y evite la pérdida de 287 y 741.

Formulación de OMVs preparadas a partir de cepa de Nueva Zelanda de MenB

Se prepararon OMVs a partir de cepa de serogrupo B 394/98 de N. meningitidis. Estas fueron formuladas de dos formas diferentes, en las que los componentes tenían las siguientes concentraciones:

Formulación “A”: Formulación “B”

OMVs: 50 µ/ml 50 µg/ml

Adyuvante de hidróxido de aluminio: 3,3 µ.ml 3,3 µg.ml

Sacarosa: 3% -

Tampón de histidina, pH 6,5: - 5 mM

Cloruro de sodio: - 9 mg/ml

La formulación “B” se encontró que era inmunológicamente superior a la formulación “A”. La formulación “B” difiere de la descrita en la referencia 142 por tener la mitad de la concentración de OMV y una mayor concentración de NaCl, y un pH ligeramente diferente.

Se comprenderá que la invención ha sido escrita a modo de ejemplo solamente y que pueden hacerse modificaciones, permaneciendo dentro del alcance de la invención.

Referencias

[1] Bjune et al. (1991) Lancet 338 (8775): 1093-1096.

[2] de Kleijn et al. (2001) Vaccine 20: 352-358.

[3] Patentes de EE.UU. 5,597, 572 y 5, 747,653; véase también patente europea 0301992.

[4] Patente europea 0449958 (concedida a partir de WO90/06696).

[5] Patente de EE.UU. 5,705, 161; véase también WO94/08021.

[6] Solicitud de patente internacional WO00/25811.

[7] Solicitud de patente internacional WO01/52885.

[8] Solicitud de patente internacional WO98/56901.

[9] Solicitud de patente internacional WO01/91788.

[10] Parmaretal. (1997) Vaccine 15: 1641-1651.

[11] Solicitud de patente internacional WO99/59625.

[12] Solicitud de patente internacional WO00/50074.

[13] Patentes de EE.UU. 5,552, 146,5, 981, 213 y 5, 993,826; véase también WO93/03761.

[14] Zhou eí al. (1998) FEMS Microbiol Lett 163: 223-228.

[15] Kadurugamuwa y Beveridge (1999) Microbiology 145: 2051-2060.

[16] Solicitud de patente internacional WO97/05899.

[17] Kesavalu eí al. (1992) Infecí. Immun. 60: 1455-1464.

[18] Blanco et al. (1999) J. Immunol 163: 2741-2746.

[19] Solicitud de patente internacional WO01/09350.

[20] Solicitud de patente internacional WO02/09746.

[21] Keenan et al. (1998) FEMS Microbiol Lett 161: 21-27.

[22] Patente europea 0011243.

[23] Solicitud de patente internacional WO99/10497.

[24] Solicitud de patente internacional WO02/07763.

[25] Patente europea 0624376.

[26] Claassen et al. (1996) Vaccine 14: 1001-1008.

[27] Peeters et al. (1996) Vaccine 14: 1009-1015.

[28] Solicitud de patente internacional WO02/09643.

[29] Patente de EE.UU. 6,180,111.

[30] Solicitud de patente internacional WOOl/34642.

[31] Martin et al. (1997) /. Exp. Med. 185: 1173-1183.

[32] Plante et al. (1999) Infecí. Immun. 67: 2855-2861.

[33] Cadieux et al. (1999) Infecí. Immun. 67: 4955-4959.

[34] Moe eí al. (1999) Infecí. Immun. 67: 5664-5675.

[35] Martin eí al. (2000) J. Bioíechnol. 83: 27-31.

[36] Moe eí al. (2001) Infecí. Immun. 69: 3762-3771.

[37] Solicitud de patente internacional WO96/29412.

[38] Solicitud de patente internacional WOOO/71725.

[39] Tettelin eí al. (2000) Science 287: 1809-1815.

[40] Solicitud de patente internacional WO99/57280.

[41] Solicitud de patente internacional WO03/020756 (SEQ IDs 1-22 en particular).

[42] Solicitud de patente internacional WO00/66741.

[43] Solicitud de patente internacional WO01/52885.

[44] Gennaro (2000) Remington: The Science and Practice of Pharmacy. 20th edition, ISBN: 0683306472.

[45] Vaccine design: the subunit and adjuvant approach, eds. Powell y Newman, Plenum Press 1995 (ISBN 0306- 44867-X).

[46] WO90/14837.

[47] WO02/26212.

[48] WO98/33487.

[49] WO00/07621.

[50] WO99/27960.

[51] WO98/57659.

[52] Solicitudes de patentes europeas 0835318,0735898 y 0761231.

[53] Krieg (2000) Vaccine 19: 618-622; Krieg (2001) Curr opin Mol Ther 2001 3: 15-24; WO96/02555, WO98/16247, WO98/18810, WO98/40100, WO98/55495, WO98/37919 y WO98/52581 etc.

[54] WO99/52549.

[55] WO01/2120.

[56] WO01/21152.

[57] WO00/6280.

[58] WO00/23105.

[59] WO99/11241.

[60] Del Giudice et al. (1998) Molecular Aspects of Medicine, vol. 19, number 1.

[61] Vaccine Design (1995) eds. Powell y Newman. ISBN: 030644867X. Plenum.

[62] Johnson et al. (1999) Bioorg Med Chem Lett 9: 2273-2278.

[63] Solicitud de patente internacional W000/50078.

[64] Singh et al. (2001) J. Cont. Rele. 70: 267-276.

[65] Bakke et al. (2001) Infecí. Immun. 69: 5010-5015.

[66] Katial et al. (2002) Infecí. Immun. 70: 702-707.

[67] Covacci y Rappuoli (2000) J. Exp. Med. 19: 587-592.

[68] WO93/18150.

[69] Covacci eí al. (1993) Proc. Naíl. Acad. Sci. USA 90: 5791-5795.

[70] Tummuru eí al. (1994) Infecí. Immun. 61: 1799-1809.

[71] Marchetti eí al. (1998) Vaccine 16: 33-37.

[72] Telford eí al. (1994) /. Exp. Med. 179: 1653-1658.

[73] Evans eí al. (1995) Gene 153: 123-127.

[74] WO96/01272 y WO96/01273, especialmente SEQ ID NO: 6.

[75] WO97/25429.

[76] WO98/04702.

[77] Costantino eí al. (1992) Vaccine 10: 691-698.

[78] Costantino eí al. (1999) Vaccine 17: 1251-1263.

[79] Solicitud de patente internacional W003/007985.

[80] Watson (2000) Pediatr Infecí Dis J 19: 331-332.

[81] Rubin (2000) Pediatr Clin NorthAm 47: 269-285, v.

[82] Jedrzejas (2001) Microbiol Mol Biol Rev 65: 187-207.

[83] Bell (2000) Pediatr Infecí Dis J 19: 1187-1188.

[84] Iwarson (1995)APMIS 103: 321-326.

[85] Gerlich eí al. (1990) Vaccine 8 Suppl: S63-68 y 79-80.

[86] Gustafsson eí al. (1996) N. Engl. J. Med. 334: 349-355.

[87] Rappuoli eí al. (1991) TIBTECH 9: 232-238.

[88] Vaccines (1988) eds. Ploíkin y Moríimer. ISBN 0-7216-1946-0.

[89] Del Guidice eí al. (1998) MolecularAspecís of Medicine 19: 1-70.

[90] Hsu eí al. (1999) Clin Liver Dis 3: 901-915.

[91] Solicitud de patente internacional WO99/24578.

[92] Solicitud de patente internacional WO99/36544.

[93] Solicitud de patente internacional WO99/57280.

[94] Solicitud de patente internacional WO02/07924.

[95] Solicitud de patente internacional WO02/02606.

[96] Kalman eí al. (1999) Naíure Geneíics 21: 385-389.

[97] Read eí al. (2000) Nucleic Acids Res 28: 1397-406.

[98] Shirai eí al. (2000) J. Infecí. Dis. 181 (Suppl 3): S524-S527.

[99] Solicitud de patente internacional WO99/27105.

[100] Solicitud de patente internacional WO00/27994.

[101] Solicitud de patente internacional WO00/37494.

[102] Solicitud de patente internacional WO99/28475.

[103] Ross eí al. (2001) Vaccine 19: 4135-4142.

[104] Sutter eí al. (2000) Pediaír Clin NoríhAm 47: 287-308.

[105] Zimmerman y Spann (1999) Am Fam Physician 59: 113-118,125-126.

[106] Dreesen (1997) Vaccine 15 Suppl: S2-6.

[107] MMWR Morb Mortal Wkly Rep 1998 Jan 16; 47 (1): 12, 19.

[108] Vaccines (1988) eds. Plotkin y Mortimer. ISBN 0-7216-1946-0.

[109] McMichael (2000) Vaccine 19 Suppl 1: S101-107.

[110] Schuchat (1999) Lanceí 353 (9146): 51-6.

[111] Solicitud de patente internacional W002/34771.

[112] Dale (1999) Infecí Dis Clin Noríh Am 13: 227-43, viii.

[113] Ferretti eí al. (2001) PNAS USA 98: 4658-4663.

[114] Kuroda eí al. (2001) Lanceí 357 (9264): 1225-1240; véase también paginas 1218-1219.

[115] J Toxicol Clin Toxicol (2001) 39: 85-100.

[116] Demicheli eí al. (1998) Vaccine 16: 880-884.

[117] Stepanov eí al. (1996) J Bioíechnol 44: 155-160.

[118] Ingram (2001) Trends Neurosci 24: 305-307.

[119] Rosenberg (2001) Naíure 411: 380-384.

[120] Moingeon (2001) Vaccine 19: 1305-1326.

[121] EP-A-0372501

[122] EP-A-0378881

[123] EP-A-0427347

[124] WO93/17712

[125] WO94/03208

[126] WO98/58668

[127] EP-A-0471177

[128] WO00/56360

[129] WO91/01146

[130] WO00/61761

[131] WO00/723

[132] Research Disclosure, 453077 (Jan 2002)

[133] WO99/24578.

[134] WO99/36544.

[135] WO99/57280.

[136] WO00/22430.

[137] Tettelin eí al. (2000) Science 287: 1809-1815.

[138] WO96/29412.

[139] Pizza eí al. (2000) Science 287: 1816-1820.

[140] Current Protocols in Molecular Biology (F.M. Ausubel eí al., eds., 1987) Supplement 30.

[141] Smith and Waterman, Adv. Appl. Math. (1981) 2: 482-489.

[142] WO03/009869

LISTADOS DE SECUENCIAS

<110> NOVARTIS VACCINES AND DIAGNOSTICS S.R.L.

<120> VESÍCULAS DE MEMBRANAS EXTERNAS BACTERIANAS MEJORADAS

<130> P055400EP

<140> EP <141> 2002-08-30

<150> GB 0220194.5

<151> 2002-08-30

<160> 3

<170> SeqWin99, version 1.02

<210> 1

<211> 174

<212> PRT

<213> Neisseria meningitidis

<400> 1

<210> 2

<211> 488

<212> PRT

<213> Neisseria meningitidis

<400> 2

<210> 3

<211> 320

<212> PRT

<213> Neisseria meningitidis

<400> 3

Claims

REIVINDICACIONES

1.

Un proceso para la fabricación de una preparación de vesícula de membrana externa de una bacteria Gramnegativa recombinante que sobreexpresa el inmunógeno 287, en el que la membrana bacteriana se interrumpe sustancialmente en ausencia de detergente de desoxicolato.
2.

El proceso de la reivindicación 1, en el que la membrana bacteriana se interrumpe sustancialmente en ausencia de cualquier detergente.
3.

El proceso de la reivindicación 1 o la reivindicación 2, que comprende las siguientes etapas básicas: (a) tratar células bacterianas en ausencia sustancial de detergente; (b) centrifugar la composición de la etapa (a) para separar las vesículas de membrana externa de las células tratadas y los residuos celulares, y recoger el sobrenadante; (c) realizar una centrifugación del sobrenadante de la etapa (b) a alta velocidad y recoger las vesículas de membrana externa en un pellet; (d) redispersar el sedimento de la etapa (c) en un tampón; (e) realizar una segunda centrifugación a alta velocidad según la etapa (c), recoger las vesículas de membrana externa en un sedimento; (f) volver a dispersar el sedimento de la etapa (e) en un medio acuoso.
4.

El proceso de la reivindicación 3, que comprende, además, las etapas siguientes: (g) realizar una filtración estéril a través de, al menos, dos filtros de tamaño de poro decreciente de la composición redispersada de la etapa (f); y (h) opcionalmente, incluir la composición de la etapa (g) en un vehículo farmacéuticamente aceptable y / o una composición adyuvante.
5.

El proceso de la reivindicación 3 o la reivindicación 4, en el que la etapa (b) comprende una centrifugación a alrededor de 5000 a 10000 g como máximo 1 hora, y los pasos (c) y (e) comprenden una centrifugación a alrededor de 35000 hasta 100000 g como máximo 2 horas.
6.

El proceso de cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que la ruptura de la membrana se lleva a cabo mediante sonicación, homogeneización, microfluidización, cavitación, choque osmótico, trituración, prensa francesa, homogeneización, o cualquier otra técnica física.
7.

El proceso de cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que el tampón usado en la etapa (d) y / o en la etapa (f) es un tampón Tris, un tampón fosfato, o un tampón de histidina.
8.

El procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, en el que la etapa (g) finaliza con un filtro de tamaño de poro de alrededor de 0.2 μm.
9.

El proceso de cualquiera de las reivindicaciones anteriores en el que la bacteria de la que se preparan las VME es del género Moraxella, Shigella, Pseudomonas, Treponema, Porphyromonas, Helicobacter o Neisseria.
10.

El proceso de la reivindicación 9, en el que la bacteria es N. meningitidis o N. gonorrhoeae.
11.

El proceso de la reivindicación 10, en el que la bacteria es N. meningitidis del serogrupo B.
12.

El proceso de la reivindicación 11, en el que la bacteria es la cepa MC58, 2996, H4476 o 394 / 98.
13.

El proceso de cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que comprende, además, la etapa de formular una cantidad inmunológicamente eficaz de las VME como una composición inmunogénica.
14.

Una composición de VME obtenible por el procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
15.

La composición de la reivindicación 14, que comprende, además, un adyuvante.
16.

La composición de la reivindicación 15, que comprende fosfato de aluminio y / o adyuvante de hidróxido (s).
17.

La composición de cualquiera de las reivindicaciones 14 a 16 para su uso como un medicamento.
18.

El uso de una composición de vesículas de membrana externa de cualquiera de las reivindicaciones 14 a 16 en la fabricación de un medicamento para aumentar una respuesta inmune en un paciente.