JP5934657B2 - デジタル検体分析 - Google Patents

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Description

関連出願への参照
この本出願は、２０１０年１０月１日に出願された米国仮出願第６１／３８８，９３７号、２０１０年５月２１日に出願された米国仮出願第６１／３４７，１５８号、２０１０年５月５日に出願された米国仮出願第６１／３３１，４９０号、および２０１０年２月１２日に出願された米国仮出願第６１／３０４，１６３号（これらの内容は、各々それらの全体が参考として本明細書に援用される）に対する優先権を主張する。
発明の分野
本発明は、一般に、液滴ベースのデジタルＰＣＲ、およびそれを使用してターゲット核酸を分析するための方法に関する。
体液からの核酸分子を突然変異の存在について分析することに依存するアッセイが開発され、このようにして癌などの一定の疾患の早期診断に至ってきた。しかし、典型的な体液サンプルの場合、関心のある突然変異を含有するいずれの異常核酸も、その体液サンプル中の核酸の総量に対して少量（例えば１％未満）で存在することが多い。この結果、確率的サンプリングバイアスのため、その少量の異常核酸の検出に失敗することとなり得る。
ＰＣＲおよびリアルタイムＰＣＲ方法論の登場は、スループットの見地からも、定量的な見地からも、核酸の分析を大きく改善した。伝統的なＰＣＲ技術が、概して、アガロースゲル電気泳動法による増幅ＤＮＡターゲットのエンドポイント、および時として半定量的、分析に依存するが、リアルタイムＰＣＲ（またはｑＰＣＲ）法は、反応進行につれての指数関数的増幅の正確な定量に適合している。ｑＰＣＲ反応は、様々な高配列特異的蛍光プローブ技術を用いて、または非特異的ＤＮＡ挿入蛍光発生色素を使用することにより、モニターされる。
複数のターゲットを並行して分析する際のより高いスループットの必要性がゲノムおよび遺伝学の分野において漸増し続けているので、ならびにサンプルのより効率的な使用の必要性が診断などの医学関連分野において増しているので、同じ反応体積の中で複数の増幅を同時に実施および定量できること（多重化）が、ＰＣＲにとってもｑＰＣＲにとっても最重要である。エンドポイントＰＣＲは、高いレベルのアンプリコン多重化に対応することができるが、プローブベースのｑＰＣＲ反応の多重化についてのそのような十二分な能力は、多くの理由のため依然として達成困難である。例えば、殆どの市販用リアルタイム・サーマル・サイクラーは、一般的な蛍光体の限られたスペクトル分解能の結果として４色までの異なる色の検出用蛍光体にしか対応しておらず、言い換えると４×の多重化能力ということになる。加えて、単一ターゲットプライマー／プローブ反応の最適化は今や標準作業であるが、複数の反応のためのプライマーとプローブの併用は、熱力学的効率および／または化学的動態を変えるので、大々的な不具合対策および最適化を余儀なくさせる可能性を秘めている。１００×より大きい非常に高度な多重化は、「スラッピー（ｓｌｏｐｐｙ）」分子ビーコンおよび融点をフィンガープリントとして使用する病原体同定のための「ワン・オブ・メニー（ｏｎｅ ｏｆ ｍａｎｙ）」検出形式で実証されているが、このアプローチは、複数の同時に存在するターゲットの存在尤度がほんのわずかである用途に限られる。半多重化法は、第一工程での一般的な多重化プレ増幅、続いて第二工程での別のシングルプレックス定量的ＰＣＲを用いる２工程反応で、１９×を達成した。しかし、ｑＰＣＲ多重化に対する汎用シングルポットでの解決策は、まだ存在しない。
デジタルＰＣＲ（ｄＰＣＲ）は、希薄サンプルを多くの別の反応に分割する代替定量法である。例えば、Ｂｒｏｗｎら（特許文献１および特許文献２）およびＶｏｇｅｌｓｔｅｉｎら（特許文献３、特許文献４および特許文献５）を参照のこと；これらのそれぞれの内容は、その全体が参照により本明細書に援用されている。反応間のターゲットＤＮＡ分子のバックグラウンドからの分布はポアソン統計学に従い、いわゆる「終点希釈（ｔｅｒｍｉｎａｌ ｄｉｌｕｔｉｏｎ）」では反応の大多数が実際には１つかゼロのターゲットＤＮＡ分子を含有する。別の場合、いわゆる「限界希釈（ｌｉｍｉｔｉｎｇ ｄｉｌｕｔｉｏｎ）」ではポアソン分布に従って、ゼロのＤＮＡ分子を含有する反応もあり、１つの分子を含有する反応もあり、および多数の分子を含有する反応もしばしばある。終点希釈および限界希釈は、反応容器へのＤＮＡ負荷量を説明するために有用な概念であるが、それらは正式な数学的定義を有さず、必ずしも相互に排他的でないことは理解される。理想的には、終点希釈でのＰＣＲポジティブ反応（ＰＣＲ（＋））の数は、元々存在するテンプレート分子の数と等しい。限界希釈では、ＤＮＡの根本的な量を明らかにするためにポアソン統計学を用いられる。ｑＰＣＲと比較されるデジタルの原則利点は、初期サイクル中の非指数関数的増幅の主な根本的不確実性に加えて蛍光強度−アナログシグナル−の時間依存性を解釈する一切の必要を回避する点である。
米国特許第６，１４３，４９６号明細書 米国特許第６，３９１，５５９号明細書 米国特許第６，４４０，７０６号明細書 米国特許第６，７５３，１４７号明細書 米国特許第７，８２４，８８９号明細書
本発明は、一般に液滴内の核酸の操作、ならびに詳細には核酸増幅および検出に関する。１つの態様において、本発明は、単一の核酸テンプレートと該テンプレート上の複数のターゲット部位に特異的な複数のプライマー対とを含有する液滴を提供する。前記単一の核酸テンプレートは、ＤＮＡ（例えば、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡなど）である場合もあり、またはＲＮＡである場合もある。前記テンプレートを検出のために前記液滴内で増幅する；および好ましくは、本明細書に記載するように複数のプライマー対を使用して増幅することができる。
液滴内の単一の核酸を増幅および検出できることで、デジタルＰＣＲ、検出、カウント、および核酸、とりわけ不均一サンプル中に存在するもの、の間の差別化が可能になる。従って、本発明は、デジタル増幅技術に適用され、および特定の実施形態では、液滴内でのマルチプレックスＰＣＲを可能にする。例えば、液滴内の多重化プライマーは、インプットＤＮＡの量を同じにまたはより少なく保ち、同じまたはより大きなアンプリコン収量を生じさせながら、同時にＰＣＲ液滴数を増加させることを可能にする。これは、結果として、より多くのＤＮＡを消費することなくＰＣＲポジティブ液滴の量およびアンプリコン収量の総合的増加をもたらす。１液滴あたりのＰＣＲプライマー対の数がたとえ１より多くても、１液滴あたり１つのテンプレート分子しかなく、それ故、一部の実行では、１滴あたり１つのプライマー対しか１度に利用されることとならない。従って、対立遺伝子特異的ＰＣＲからのまたは異なるアンプリコン間の競合からのバイアスを無くすことについての液滴ＰＣＲの利点は維持される。しかし、ハプロタイプの検出に関して下で説明するように、他の実行は、好ましくはバイアスを最少にするように設計されたものである複数のプライマー対を使用して、単一のテンプレート上の複数の遺伝子座の検出を有利に可能にする。
本発明によるマルチプレックス分析のためのマイクロ流体液滴は、該液滴内で生産されるアンプリコンにハイブリダイズする複数のプローブを含有する。好ましくは、前記液滴は、２つ以上のプローブ、例えば、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、６０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１５０、１６０、１７０、１８０、１９０、２００、５００、またはそれ以上のプローブを含有する。前記複数のプローブの一定の構成員（ｍｅｍｂｅｒ）は、検出可能標識を含む。前記複数のプローブの構成員は、それぞれ、同じ検出可能標識を含むことがあり、または異なる検出可能標識を含むことがある。前記検出可能標識は、好ましくは蛍光標識である。前記複数のプローブは、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含むことがある。前記プローブの１つ以上の群は、同じ検出可能標識を含むことがあり、これらのプローブは、それらの様々なプローブ濃度のため、検出時に強度が様々であるだろう。本発明の液滴は、ポリメラーゼ連鎖反応を行うための１つ以上の試薬、例えばＤＮＡもしくはＲＮＡポリメラーゼおよび／またはｄＮＴＰ、をさらに含有することができる。
本発明は、マイクロ流体液滴内でデジタルＰＣＲを用いて生体サンプル中の複数のターゲットを検出するための方法にさらに関する。前記サンプルは、ヒト組織または体液であり得る。例示的体液：膿、痰、精液、尿、血液、唾液、および脳脊髄液。
単一の核酸テンプレート、およびそれぞれが該テンプレート上の複数のターゲット部位に特異的なプライマー対とプローブの不均一混合物をそれぞれが含む、１つ以上の液滴を形成する。例えば、単一の核酸テンプレート（ＤＮＡまたはＲＮＡ）を含有する第一の流体（連続的、または液滴の場合のように不連続的）を、それぞれが該核酸テンプレートの複数のターゲット部位に特異的な複数のプライマー対および複数のプローブを含有する第二の流体（同じく、連続的、または液滴の場合のように不連続的）と合体させて、単一の核酸テンプレートおよびプライマー対とプローブの不均一混合物を含有する液滴を形成する。前記第二の流体は、ＰＣＲ反応を行うための試薬、例えばポリメラーゼおよびｄＮＴＰ、も含むことができる。
前記複数のプローブの一定の構成員は、検出可能標識を含む。前記複数のプローブの構成員は、それぞれ、同じ検出可能標識を含むことがあり、または異なる検出可能標識を含むことがある。前記検出可能標識は、好ましくは蛍光標識である。前記複数のプローブは、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含むことがある。前記プローブの１つ以上の群は、同じ検出可能標識を含むことがあり、これらのプローブは、それらの様々なプローブ濃度のため、検出時に強度の点で様々である。
前記第一の流体および第二の流体は、それぞれ、液滴形態であってもよい。液滴の形成について当該技術分野において公知の任意の技術を本発明の方法と共に用いることができる。例示的方法は、核酸テンプレートを含有するサンプル流体のストリームを、流れているキャリア流体の２つの対向するストリームを交差するように流すことを含む。前記キャリア流体は、前記サンプル流体と不混和性である。前記サンプル流体と前記流れているキャリア流体の２つの対向するストリームとの交差の結果、該サンプル流体は区画化されて、第一の流体を含有する個々のサンプル液滴となる。前記キャリア流体は、前記サンプル流体と不混和性であるいずれの流体であってもよい。例示的キャリア流体は油である。一定の実施形態において、前記キャリア流体は、フッ素系界面活性剤などの界面活性剤を含む。同じ方法を利用して、プライマー対（および、一部の実行では、増幅試薬）を含有する第二の流体から個々の液滴を作ることができる。第一の流体を含有する液滴もしくは第二の流体を含有する液滴のいずれか、または両方を形成して、後のマージのためにライブラリーに保管してもよく、その一定の実行の態様は米国特許第出願第１２／５０４，７６４号に記載されており、この出願は、あらゆる意味でその全体が参照により本明細書に援用されている。形成したら、第一の流体を含有する液滴と第二の流体を含有する液滴を合体させて、単一の核酸テンプレートおよびプライマー対とプローブの不均一混合物を含有する、単一の液滴を形成することができる。例えば電場の存在下で、マージを果たすことができる。さらに、マージを行うときに両方の流体が液滴の形態である必要はない。流体部分と液滴を合体させるための１つの例示的方法は、例えば、本願と同日に出願された同時係属米国特許出願第６１／４４１，９８５号に教示されている。
合体された／形成された液滴のそれぞれの中の核酸テンプレートを、例えばＰＣＲ反応を行うために十分な温度／条件下でのそれらの液滴の熱サイクリングによって、増幅する。その後、前記液滴内の結果として生じたアンプリコンを分析することができる。例えば、１つ以上の液滴内の複数のターゲットの存在または不在を光学的に、例えば複数のプローブ上の検出可能標識によって、検出する。
本発明は、ターゲット核酸を分析するための方法にさらに関する。より詳細には、本発明の方法は、ＰＣＲ反応中に発生するポリメラーゼエラーを検出することができ、およびポリメラーゼエラーの結果である増幅産物を分析から排除することができる。本発明の方法は、ポリメラーゼエラーが、突然変異体対立遺伝子を含有すると間違って同定される、すなわち偽ポジティブである、サンプルの区分セクションをもたらすことがあるデジタルＰＣＲにおいて特に有用である。そのような偽ポジティブは、一般に、デジタルＰＣＲ結果の妥当性および精度に大きな影響を及ぼす。本発明の方法は、同じ光色を有する複数のターゲットを一意的に検出することができる。本発明の方法は、出発試験流体中に存在し得る複数の異なるターゲット分子を同定することが望ましいデジタルＰＣＲにおいて、特に有用である。
本発明の方法は、ターゲット核酸を含有するサンプル液滴の形成を含む。理想的には、本発明の方法は、デジタルＰＣＲ用の液滴の形成を含む。好ましいデジタルＰＣＲ液滴は、増幅すべき核酸の１つのコピーを含有するが、同じ核酸配列の複数のコピーを含有することもある。サンプル液滴を形成するための当該技術分野において公知の任意の技術を本発明の方法と共に用いることができる。１つの例示的方法は、核酸を含むサンプル流体のストリームを、流れているキャリア流体の２つの対向するストリームを交差するように流すことを含む。前記キャリア流体は、前記サンプル流体と不混和性である。前記サンプル流体と前記流れているキャリア流体の２つの対向するストリームとの交差の結果、該サンプル流体は区画化されて個々のサンプル液滴になる。前記キャリア流体は、前記サンプル流体と不混和性であるいずれの流体であってもよい。例示的キャリア流体は油である。一定の実施形態において、前記キャリア流体は、フッ素系界面活性剤などの界面活性剤を含む。
次に、前記ターゲットを前記液滴内で増幅する。当該技術分野において公知の任意の方法を用いて、ターゲット核酸を線形にまたは指数関数的に増幅することができる。好ましい方法は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）である。本発明のために、当該技術分野において一般に公知の任意の増幅技術、例えば、ローリングサークル増幅、等温増幅、または遺伝子座特異的プライマー、ネステッドプライマーもしくはランダムプライマーを使用する増幅法の任意の組み合わせ、を実行することができる（前述のプライマー、および／またはＰＣＲに使用されるプライマーは、用語「増幅試薬」に含まれる）。増幅したら、前記ターゲットからのアンプリコンおよび前記ターゲットの変異体からのアンプリコンを含有する液滴を排除する。アンプリコンの均一集団を含有する液滴からアンプリコンの不均一集団を含有する液滴を排除する１つの方法は、検出可能に標識されたプローブをアンプリコンにハイブリダイズさせること、前記液滴を、マイクロ流体チャネルを通して流すこと、および前記ターゲットからのアンプリコンと前記ターゲットの変異体からのアンプリコンの両方が検出される液滴を排除することを含む。
アンプリコンの不均一集団を含有する液滴を排除したら、アンプリコンの均一集団を含有する液滴を分析する。当該技術分野において公知の任意の分析技術を用いることができる。一定の実施形態において、前記液滴の分析は、野生型ターゲットのみを含有する液滴の数を決定すること、および該ターゲットの変異体のみを含有する液滴の数を決定することを含む。一般に、変異体のみを含有する液滴の存在は、癌などの疾患の指標となる。前記変異体は、対立遺伝子変異体であることがある。例示的対立遺伝子変異体は、一塩基多型である。前記変異体は特異的ハプロタイプである場合もある。ハプロタイプは、同じ核酸鎖上の２つ以上の変異体の存在を指す。ハプロタイプは、疾患の存在もしくは重症度、薬物療法への応答または細菌もしくはウイルス感染症の薬物耐性といったことを決定するために用いたとき、遺伝子型より多くの情報をもたらすまたは予測に役立つことができる。各液滴は１本のテンプレート鎖しか含有しないので、それはハプロタイプの決定にとって理想的な器である。１本の無損傷核酸鎖を含有する単一の液滴内の２つ以上の変異体の検出により、その鎖上の変異体のハプロタイプが同定される。同じ液滴内の２つ以上のマーカーの存在は、多色の色素の存在、または単一色素の強度の増加、または両方の組み合わせといった手段によって同定することができる。単一の液滴内の多数の変異体の同定を可能にする任意の方法によって、サンプルのハプロタイプを決定することができる。
本発明の一部の実行に従って、ターゲット核酸を分析するための方法を提供し、この方法は、それぞれの部分が単一のターゲット核酸を含有する複数の部分に第一の流体を区画化すること；前記部分の中の前記ターゲットを増幅すること；前記ターゲットからのアンプリコンおよび前記ターゲットの変異体からのアンプリコンを含有する部分を排除すること；およびターゲットアンプリコンを分析することを含む。
他の態様において、本発明は、一般に、患者における癌の再発を検出するための方法を
提供する。これらの方法は、患者のサンプルから採取した単一のターゲット核酸を含有す
るサンプル液滴を形成すること、前記サンプル液滴を、チャネルを通して流すこと、前記
液滴内の前記ターゲットを増幅すること、前記液滴内の増幅されたターゲットを検出する
こと、アンプリコンの不均一集団を含む液滴を排除すること、および排除されなかった液
滴を分析して再発の指標となる突然変異体対立遺伝子を決定することを含み得る。一定の
実施形態において、前記分析工程は、標識された捕捉プローブを使用して前記液滴から得
られたアンプリコンを捕捉することを含む。前記サンプルは、ヒト組織または体液であり
得る。例示的体液は、膿、痰、精液、尿、血液、唾液、糞便および脳脊髄液である。本発
明の他の態様では、低レベルのターゲット核酸を多数の他の核酸源を有する環境で法医学
的に同定する方法を一般に提供する。そのような方法を、液滴以外にまたは液滴に加えて
容器内で区画された流体を使用して実施することもできる。
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
（項目１）
単一の核酸テンプレートと前記テンプレート上の複数のターゲット部位に特異的な複数
のプライマー対とを含む微小液滴。
（項目２）
前記液滴内で生産されたアンプリコンにハイブリダイズする複数のプローブをさらに含
む、項目１に記載の微小液滴。
（項目３）
前記単一の核酸テンプレートがＤＮＡまたはＲＮＡである、項目１に記載の微小液滴
。
（項目４）
ポリメラーゼ連鎖反応を行うための試薬をさらに含む、項目１に記載の微小液滴。
（項目５）
前記複数のプローブの構成員が検出可能標識を含有する、項目２に記載の微小液滴。
（項目６）
前記複数のプローブが、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含む、項目６に記載
の微小液滴。
（項目７）
前記プローブの１つ以上の群の構成員それぞれが、同じ検出可能標識を含む、項目６
に記載の微小液滴。
（項目８）
前記複数のプローブの構成員それぞれが、異なる検出可能標識を含む、項目５に記載
の微小液滴。
（項目９）
前記検出可能標識が蛍光標識である、項目５に記載の微小液滴。
（項目１０）
生体サンプル中の複数のターゲットを検出するための方法であって、
ａ）単一の核酸テンプレート、およびそれぞれが前記テンプレート上の複数のターゲッ
ト部位に特異的なプライマー対とプローブの不均一混合物をそれぞれが含む、１つ以上の
微小液滴を形成する工程；
ｂ）前記１つ以上の微小液滴内の前記核酸テンプレートを増幅する工程；および
ｃ）前記１つ以上の微小液滴を分析する工程
を含む方法。
（項目１１）
前記形成工程が、
ａ）単一の核酸テンプレートを含む第一の流体を供給すること；
ｂ）それぞれが前記テンプレート上の複数のターゲット部位に特異的な複数のプライマ
ーおよび複数のプローブを含む第二の流体を供給すること；
ｃ）前記第一の流体と前記第二の流体を合体させて、前記単一の核酸テンプレートおよ
びプライマー対とプローブの不均一混合物を含む液滴を形成すること
を含む、項目１０に記載の方法。
（項目１２）
前記第一の流体および前記第二の流体が、前記流体に対する電場の存在下で合体される
、項目１１に記載の方法。
（項目１３）
前記第一の流体および前記第二の流体が微小液滴である、項目１１に記載の方法。
（項目１４）
前記第二の流体が、ポリメラーゼ連鎖反応を行うための試薬をさらに含む、項目１１
に記載の方法。
（項目１５）
前記単一の核酸テンプレートがＤＮＡまたはＲＮＡである、項目１０に記載の方法。
（項目１６）
前記分析工程が、前記１つ以上の微小液滴内の前記複数のターゲットの存在または不在
を検出することを含む、項目１０に記載の方法。
（項目１７）
前記複数のプローブの構成員が、検出可能標識を含有する、項目１０に記載の方法。
（項目１８）
前記複数のプローブが、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含む、項目１７に記
載の微小液滴。
（項目１９）
前記プローブの１つ以上の群の構成員それぞれが、同じ検出可能標識を含む、項目１
８に記載の微小液滴。
（項目２０）
前記複数のプローブの構成員それぞれが、異なる検出可能標識を含む、項目１７に記
載の微小液滴。
（項目２１）
前記検出可能標識が蛍光標識である、項目１７に記載の微小液滴。
（項目２２）
ターゲット核酸を分析するための方法であって、
単一ターゲット核酸と１つ以上の増幅試薬とを含有する液滴を形成する工程；
前記液滴内の前記ターゲットを増幅する工程；
前記ターゲットからのアンプリコンおよび前記ターゲットの変異体からのアンプリコン
とを含有する液滴を排除する工程；および
ターゲットアンプリコンを分析する工程
を含む方法。
（項目２３）
前記増幅工程が、ポリメラーゼ連鎖反応であり、および前記１つ以上の増幅試薬が、１
つ以上のプライマー対を含む、項目２２に記載の方法。
（項目２４）
前記排除工程が、前記液滴をマイクロ流体チャネル内に流すことを含む、項目２２に
記載の方法。
（項目２５）
前記分析工程が、検出可能に標識されたプローブへのハイブリダイゼーションにより前
記アンプリコンを検出することを含む、項目２２に記載の方法。
（項目２６）
前記分析工程が、前記排除工程で排除されなかった液滴からのアンプリコンに対して行
われる、項目２２に記載の方法。
（項目２７）
前記形成工程が、
核酸を含む第一のサンプル流体のストリームを、流れているキャリア流体の２つの対向
するストリームを交差するように流し、それによって、前記第一のサンプル流体を含む複
数の第一の液滴を形成することであって、前記キャリア流体は前記サンプル流体と不混和
性である、形成すること；および
前記第一のサンプル流体を含む複数の第一の液滴のそれぞれと、１つ以上の増幅試薬を
含む第二の流体の部分とを合体させることであって、前記第二の流体の部分は場合により
液滴である、合体させること
を含む、項目２２に記載の方法。
（項目２８）
前記キャリア流体が油である、項目２７に記載の方法。
（項目２９）
前記油が界面活性剤を含む、項目２８に記載の方法。
（項目３０）
前記界面活性剤がフッ素系界面活性剤である、項目２９に記載の方法。
（項目３１）
前記分析工程が、
野生型ターゲットのみを含有する液滴の数を決定すること；
前記ターゲットの変異体のみを含有する液滴の数を決定すること
を含む、項目２２に記載の方法。
（項目３２）
前記変異体のみを含有する液滴の存在が疾患の指標となる、項目３１に記載の方法。
（項目３３）
前記疾患が癌である、項目３２に記載の方法。
（項目３４）
前記変異体が対立遺伝子変異体である、項目３１に記載の方法。
（項目３５）
前記対立遺伝子変異体が一塩基多型である、項目３４に記載の方法。
（項目３６）
核酸サンプルを加工するための方法であって、
１つの核酸ターゲットを含む液滴を得る工程；
前記液滴内の前記核酸を増幅する工程；および
アンプリコンの不均一集団を含む液滴を、アンプリコンの均一集団を含有する液滴から
分離する工程
を含む方法。
（項目３７）
患者における癌の再発を検出するための方法であって、
平均して各液滴が患者サンプルから採取された単一ターゲット核酸を含む、サンプル液
滴を形成する工程；
前記サンプル液滴を、チャネルを通して流す工程；
前記液滴内のターゲットを増幅する工程；
前記液滴内の増幅されたターゲットを検出する工程；
アンプリコンの不均一集団を含む液滴を排除する工程；および
排除されなかった液滴を分析して、再発の指標となる突然変異体対立遺伝子の存在を決
定する工程
を含む方法。
（項目３８）
前記形成工程が、
核酸を含むサンプル流体のストリームを、流れているキャリア流体の２つの対向するス
トリームを直行するように流すことであって、前記キャリア流体は前記サンプル流体と不
混和性である、流すこと
を含む、項目３７に記載の方法。
（項目３９）
前記サンプルがヒト組織または体液である、項目３７に記載の方法。
（項目４０）
前記体液が、膿、痰、精液、尿、血液、唾液および脳脊髄液から成る群より選択される
、項目３９に記載の方法。
（項目４１）
前記分析工程が、標識された捕捉プローブを使用して前記液滴から得られたアンプリコ
ンを捕捉することを含む、項目３７に記載の方法。
（項目４２）
ターゲット核酸を分析するための方法であって、
各部分が単一ターゲット核酸を含有する複数の部分に第一の流体を区画化する工程；
前記部分中のターゲットを増幅する工程；
前記ターゲットからのアンプリコンおよび前記ターゲットの変異体からのアンプリコン
を含有する部分を排除する工程；および
ターゲットアンプリコンを分析する工程
を含む、方法。
（項目４３）
区画が、マイクロ流体デバイス内のチャンバを含む、項目４２に記載の方法。
（項目４４）
ターゲット核酸を分析するための方法であって、
単一ターゲット核酸を含有するサンプル液滴を形成する工程；
前記液滴内のターゲットを増幅する工程；
前記ターゲットからのアンプリコンおよび前記ターゲットの変異体からのアンプリコン
を含有する液滴を排除する工程；および
ターゲットアンプリコンを分析する工程
を含む、方法。
（項目４５）
前記第一の流体が第一の液滴内に含有され、および前記第二の流体がストリームの第一
の部分であり、ならびにさらに、工程（ｃ）が、前記第一の液滴を前記第一の部分と合体
させることを含む、項目１１に記載の方法。
（項目４６）
前記第二の流体が第一の液滴内に含有され、および前記第一の流体がストリームの第一
の部分であり、ならびにさらに、工程（ｃ）が、前記第一の液滴を前記第一の部分と合体
させることを含む、項目１１に記載の方法。
図１は、液滴形成デバイスを図示するものである。 図２は、図１の液滴形成デバイスの一部分を図示するものである。 図３は、液滴生成用の例示的マイクロ流体システムおよび読み出しを図示するものである。図３ａは、液体生成チップを図示するものである；図３ｂは、読み出しのための液滴間隔どりを図示するものである；および図３ｃは、蛍光による液滴読み出しの漫画を描いたものである。 図４は、ｄＰＣＲによって定量したテンプレートＤＮＡの系列希釈を図示するものである。図４ａは、最高濃度のサンプルについての読み出し中の液滴蛍光を示すものである。別個の蛍光バーストそれぞれが個々の液滴に対応する。液滴の２つの異なる群：〜０．８Ｖでピークに達するＰＣＲ（＋）液滴、および〜０．１Ｖでピークに達するＰＣＲ（−）液滴、がはっきりとわかる；図４ｂは、（ａ）における完全データトレースからの液滴のピーク蛍光強度のヒストグラムを示すものである。ＰＣＲ（＋）およびＰＣＲ（−）液滴は、それぞれ０．７８および０．１０Ｖに中心を置く２つの非常に異なる集団として現れる；図４ｃは、テンプレートＤＮＡの系列希釈を示すものである。白丸：実測占有率；実線：Ｅｑｎ２への最良適合（Ａ＝０．１５、ｆ＝４．８、Ｒ２−０．９９９９）。 図５Ａは、テンプレート配列のＰＣＲ増幅のための５セットのプライマーと、それぞれが蛍光色素で標識されており、増幅配列に特異的に結合するものである５つのプローブとを有する液滴の略図である；図５Ｂは、ＰＣＲ増幅後の液滴から検出された蛍光強度のタイムトレースである；図５Ｃは、特異的増幅配列（ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２）を含有する液滴を表すクラスタを示す散布図である。 図６Ａは、テンプレート配列のＰＣＲ増幅のための５セットのプライマーと、それぞれが蛍光色素で標識されており、増幅配列に特異的に結合するものである５つのプローブとを有する液滴の略図である；図６Ｂは、特異的増幅配列（ＴＥＲＴ、８１５Ａ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、および８１５Ｇ）を含有する液滴を表すクラスタを示す散布図である；図６Ｃは、図６Ｂに示す特異的配列のコピー数を示す表である。 図７は、マイクロ流体デバイスでの１遺伝子配列の一色検出を図示する概略図である。 図８は、マイクロ流体デバイスでの２遺伝子配列の二色検出を図示する概略図である。 図９は、マイクロ流体デバイスでの３遺伝子配列の二色検出を図示する概略図である。 図１０は、蛍光強度によって検出された遺伝子配列のクラスタを図示する２つのドットプロットを示すものである。左のパネルは、４つのクラスタを示すドットプロットである。ＳＭＮ１配列のブロックが存在した。上部左：参照配列（ＳＭＡＲＣＣ１）を含有する微小液滴；下部左：いずれの配列も含有しない微小液滴；下部中央：ＳＭＮ１の配列を含有する微小液滴；および下部右：ＳＭＮ２の配列を含有する微小液滴。右パネルは、４つのクラスタを示すドットプロットである。ＳＭＮ１配列のブロックは存在しなかった。上部左：参照配列（ＳＭＡＲＣＣ１）を含有する微小液滴；下部左：いずれの配列も含有しない微小液滴；下部中央：ＳＭＮ１の配列を含有する微小液滴；および下部右：ＳＭＮ２の配列を含有する微小液滴。左のパネルと比較して右のパネルにおける下部中央クラスタのシフトは、蛍光強度により配列の存在についての非常に高感度の測定がもたらされることを確証する。 図１１は、デジタルＰＣＲによる１タイプのみの蛍光体を使用するデュプレックス遺伝子コピー数アッセイのヒストグラムを図示するものである；図１１ａは、液滴ピーク蛍光強度のヒストグラムを図示するものである；図１１ｂは、単色ｄＰＣＲによって測定された遺伝子コピー数の比較を示すものである。 図１２は、マイクロ流体デバイスでの特定のターゲットに対する検出可能標識の強度のチューニングについて概略図である。 図１３は、プローブ濃度への液滴蛍光強度の直線的依存性を図示する線グラフである（直線、最良直線適合（ｙ＝−０．０９２ｘ＋０．０８２、Ｒ２＝０．９９５）。 図１４は、２つだけの蛍光体を用いる棘筋萎縮症についての５プレックスｄＰＣＲアッセイを図示するものである。図１４ａは、検証のための合成モデル染色体に対する５プレックスアッセイについての、ヒートマップとして示す、液滴蛍光強度の２Ｄヒストグラムである。６つのよく分解されている液滴集団は、５つの個々のアッセイ物と空の液滴に対応する；図１４ｂは、ＳＭＡパイロット研究の結果を示すものである。 図１５は、２つだけの蛍光体を用いる棘筋萎縮症についての９プレックスｄＰＣＲアッセイを図示するものであり、液滴強度を最適化するプロセスを示している。図１５ａおよび１５ｂは、合成モデル染色体に対する９プレックスアッセイについてのヒートマップとして示す、液滴蛍光強度の２Ｄヒストグラムであり、暖色ほど高い液滴数を表す（（ａ）＝最適化前；（ｂ）＝最適化後）。 図１６は、光学的標識と多重化の併用についての光学的概略図を図示するものである。 図１７は、コ・フロー（ｃｏ−ｆｌｏｗ）・マイクロフルイディクスを用いる、多重化と光学的標識を併用するｄＰＣＲアッセイを図示するものである。すべての液滴からの、すなわち３回の異なるトリプレックスアッセイ物からの、寄与を示す。（両方のパネル）暖色ほど高い液滴数を表す、ヒートマップとして示す２−Ｄヒストグラム。（左のパネル）光学的標識のヒストグラム、すなわち、該光学的標識を含む２つの蛍光体についての波長で測定した液滴の蛍光強度。（右のパネル）アッセイヒストグラム、すなわち、ＦＡＭ検出（ｘ軸）およびＶＩＣ検出（ｙ軸）に適する波長で測定した液滴の蛍光強度。両方のヒストグラムを標準的な技術によってスペクトルオーバーラップについて補正した。 図１８は、光学的標識を使用する単一アッセイ物選択を示すものである。選択は、図１７からの液滴のすべてから行った。パネルＡ〜Ｃにおける３回の異なる選択のそれぞれが、同じアッセイ物（ＴＥＲＴ、ＳＭＮ１、およびＳＭＮ２）をコードする光学的標識についてのものであった。ヒストグラムは、図１７に記載したとおりである。（左のヒストグラム、光学的標識）重畳された線が、単一の光学的標識を選択するためのバウンディングボックスの境界を画定する。（右のヒストグラム、アッセイ物）選択された光学的標識を含有する液滴のみが表示される。 図１９は、光学的標識を使用する単一アッセイ物選択を示すものである。選択は、図１７からの液滴のすべてから行った。パネルＡ〜Ｃにおける３回の異なる選択のそれぞれが、同じアッセイ物（ＴＥＲＴ、ＳＭＮ１からのｃ．５Ｃ、およびＢＣＫＤＨＡ）をコードする光学的標識についてのものであった。ヒストグラムは、図１７に記載したとおりである。（左のヒストグラム、光学的標識）重畳された線が、単一の光学的標識を選択するためのバウンディングボックスの境界を画定する。（右のヒストグラム、アッセイ物）選択された光学的標識を含有する液滴のみが表示される。 図２０は、光学的標識を使用する単一アッセイ物選択を示すものである。選択は、図１７からの液滴のすべてから行った。パネルＡ〜Ｃにおける３回の異なる選択のそれぞれが、同じアッセイ物（ＴＥＲＴ、ＳＭＮ１からのｃ．８８Ｇ、およびＲＮａｓｅＰ）をコードする光学的標識についてのものであった。ヒストグラムは、図１７に記載したとおりである。（左のヒストグラム、光学的標識）重畳された線が、単一の光学的標識を選択するためのバウンディングボックスの境界を画定する。（右のヒストグラム、アッセイ物）選択された光学的標識を含有する液滴のみが表示される。 図２１は、液滴マージを用いる、多重化と光学的標識を併用するｄＰＣＲアッセイを図示するものある。 図２２は、液滴内のハプロタイプ検出を示す概略図である。
本発明は、生体分子の分析のための材料および方法を提供する。１つの態様において、本発明は、マイクロ流体液滴などの液滴におけるデジタル分析に備えるものである。本発明は、デジタルＰＣＲの実施を可能にし、およびエラーの有意な低減または排除に備えている。
理想的には、デジタルＰＣＲの感度は、分析することができる独立した増幅の数によってのみ制限され、これが、（他の箇所で詳細に論ずる）何百万もの単一分子ＰＣＲ反応を並行して行うことができる、幾つかの超高スループットの小型化された方法の開発の動機となった。本発明の好ましい実施形態では、マイクロフルイディクス・システムを使用して油によって分離された水性液滴においてデジタルＰＣＲを行う。もう１つの好ましい実施形態において、前記油は、Ｆｌｕｏｒｉｎｅｒｔオイル（３Ｍ）などのフッ素化油である。なおさらに好ましい実施形態において、前記フッ素化油は、液滴を増幅工程中にまたはそれらが互いに接触する任意の時点で合体しないように安定させるために、ＰＦＰＥ−ＰＥＧ−ＰＦＰＥトリブロックコポリマーなどの界面活性剤を含有する。マイクロ流体アプローチは、ピコリットル容積の反応容器として機能する多数（例えば１０６以上）の非常に均一なサイズの液滴の迅速な生成を可能にする（液滴ベースのマイクロフルイディクスの総説を参照のこと）。しかし、説明するように、本発明は、油中水型エマルジョンにおいて行われるｄＰＣＲに限定されず、むしろｄＰＣＲのためのすべての反応区画化法に対して一般的である。後に続く説明の中で、本発明は、区画化のための液滴の使用に関して説明するが、説明のこの選択は本発明にとって限定的なものでないと、および本発明の方法をｄＰＣＲのためのすべての他の反応区画化法と両立できると考える。
本発明の方法は、「多重化」として当業者に一般に知られている、複数の異なるＤＮＡターゲットの存在度を定量するための同じサンプルでの複数の異なる増幅反応の同時実施についての新規戦略を含む。多重化ｄＰＣＲアッセイのための本発明の方法は、既存のｑＰＣＲまたはｄＰＣＲ技術で可能なものより大きなプレキシティー（ｐｌｅｘｉｔｙ）−同時反応数−を約束する。それは、異なる対立遺伝子をターゲットにする複数のプライマー／プローブが存在するときでさえ、最も多くの場合、いずれの１液滴内にも単一のターゲット対立遺伝子しか決して存在しないために生ずる、終点または限界希釈での特異な性質の増幅に基づく。これは、指数関数期への様々な到達時間およびプライマー間の意図されたものでない反応などの同時に存在する競争反応をそうでなければもたらす厄介な問題を軽減する。
１つの態様において、本発明は、液滴ベースのデジタルＰＣＲにおいて感度および特異性を維持しながらアンプリコン収量を向上させるための材料および方法を提供する。より具体的には、本発明は、単一の核酸テンプレートと多重化ＰＣＲプライマーとを含有する液滴を提供し、ならびにそのような液滴を形成することおよび液滴ベースのデジタルＰＣＲを用いて核酸テンプレートを増幅することによる生体サンプル中の複数のターゲットを検出するための方法を提供する。
マイクロ流体液滴内での反応は、終点で非常に均一な蛍光強度を生じさせ、結局、その強度は、プローブ加水分解効率に依存する。従って、本発明の方法のもう１つの態様では、異なる効率を有する異なる反応を、たとえそれらが同じ色を有したとしても、終点蛍光強度のみに基づいて識別することができる。さらに、本発明のもう１つの方法では、単にプローブ濃度を調整することによって効率をチューニングすることができ、その結果、使用が容易な汎用多重化法が得られる。本発明の１つの実証実験において、５プレックスＴａｑＭａｎ（登録商標）ｄＰＣＲアッセイは、この程度に多重化するｑＰＣＲを象徴する冗長な最適化とは対照的に、「すぐに（ｒｉｇｈｔ ｏｕｔ ｏｆ ｔｈｅ ｂｏｘ）」機能した。本発明のもう１つの態様において、複数の色の追加は、個々の反応を複数の蛍光体で標識できるため、ｑＰＣＲのように直線的にではなく幾何級数的に可能な反応の数を増加させる。一例として、２つの蛍光体（ＶＩＣおよびＦＡＭ）を使用して、本発明の１回の実行で５つの異なる反応を区別した。
本発明の方法は、増幅反応中に発生するポリメラーゼエラーを検出することができ、およびポリメラーゼエラーの結果である産物を分析から排除することができる。本質的に、本発明の方法は、偽ポジティブである増幅産物を同定することおよび分析からそれらの産物を排除することによって、デジタルＰＣＲの感度を増大させる。
本発明の方法は、単一のターゲット核酸を含有するサンプル液滴を形成すること、該液滴内の該ターゲットを増幅すること、該ターゲットからのアンプリコンおよび該ターゲットの変異体からのアンプリコンを含有する液滴を排除すること、およびターゲットアンプリコンを分析することを含む。
核酸ターゲット分子
核酸分子は、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）および／またはリボ核酸（ＲＮＡ）を包含する。核酸分子を合成することができ、または自然に存在する源から採取することができる。１つの実施形態では、様々な他の成分、例えばタンパク質、脂質および非テンプレート核酸、を含有する生体サンプルから核酸分子を単離する。動物、植物、細菌、真菌または任意の他の細胞性生物から得られる、任意の細胞性材料から核酸テンプレート分子を得ることができる。一定の実施形態では、単個細胞から核酸分子を得る。本発明において使用するための生体サンプルは、ウイルス粒子または調製物を含む。核酸分子を生物から直接得ることができ、または生物から得た生体サンプルから、例えば血液、尿、脳脊髄液、精液、唾液、痰、糞便および組織から、得ることができる。任意の組織または体液検体を本発明において使用するための核酸の源として使用することができる。培養細胞、例えば一次細胞培養物または細胞株、から核酸を単離することもできる。テンプレート核酸を得る細胞または組織は、ウイルスまたは他の細胞内病原体に感染している場合がある。サンプルは、生物検体、ｃＤＮＡライブラリー、ウイルスまたはゲノムＤＮＡから抽出された全ＲＮＡである場合もある。一定の実施形態において、核酸分子は、他のターゲット分子、例えばタンパク質、酵素、基質、抗体、結合剤、ビーズ、小分子、ペプチドまたは任意の他の分子、に応じて確定され、ターゲット分子を定量および／もしくは検出するための代用物として役立つ。
一般に、核酸は、Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、ｐｐ．２８０−２８１（１９８２）によって記載されたものなどの様々な技術によって生体サンプルから抽出することができる。核酸分子は、一本鎖であってもよく、二本鎖であってもよく、または一本鎖領域を有する二本鎖（例えば、幹−およびループ−構造）であってもよい。
液滴形成
本発明の方法は、サンプル液滴を形成することを含み、この場合、ゼロのターゲット核酸分子を含有する液滴もあり、１つのターゲット核酸分子を含有する液滴もあり、および複数の核酸分子を含有することがあるまたはしないことがある液滴もある（上で定義したとおりの限界または終点希釈にそれぞれ対応する）。好ましい実施形態において、液滴内の分子の分布は、ポアソン分布に従う。しかし、液滴の非ポアソン負荷のための方法は当業者に公知であり、それらの方法としては、液滴の能動的選別、例えばレーザー誘導蛍光によるもの、または受動的な１対１負荷（ｏｎｅ−ｔｏ−ｏｎｅ ｌｏａｄｉｎｇ）によるものが挙げられるが、これに限定されない。後に続く説明は液滴のポアソン負荷を想定しているが、本発明は限界または終点希釈に準拠するＤＮＡ負荷量のすべての分布と両立できるので、そのような説明は非ポアソン負荷を排除することを意図したものではない。
前記液滴は、不混和性キャリア流体によって包囲されている水性液滴である。そのような液滴を形成する方法は、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）、Ｓｔｏｎｅら（米国特許第７，７０８，９４９号および米国特許出願第２０１０／０１７２８０３号）、Ａｎｄｅｒｓｏｎら（米国特許第７，０４１，４８１号および再発行番号４１，７８０として再発行されたもの）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に示されている。これらのそれぞれの内容は、その全体が参照により本明細書に援用されている。
図１は、液滴形成のためのデバイス１００の例示的実施形態を示すものである。デバイス１００は、流入チャネル１０１と、流出チャネル１０２と、２つのキャリア流体チャネル１０３および１０４とを備えている。チャネル１０１、１０２、１０３、および１０４は、接合部１０５で出会う。流入チャネル１０１は、サンプル流体を接合部１０５に流す。キャリア流体チャネル１０３および１０４は、サンプル流体と不混和性であるキャリア流体を接合部１０５に流す。流入チャネル１０１は、接合部１０５に接続するその先端部が狭くなっている（図２参照）。流入チャネル１０１は、キャリア流体チャネル１０３および１０４に垂直になるような向きになっている。サンプル流体が流入チャネル１０１から接合部１０５へと流れ、そこでサンプル流体が、キャリア流体チャネル１０３および１０４によって接合部１０５に供給される流れているキャリア流体と交差すると、液滴が形成される。流出チャネル１０２は、キャリア流体によって包囲されたサンプル流体の液滴を受け取る。
前記サンプル流体は、概して水性緩衝溶液、例えば超純水（例えばカラムクロマトグラフィーによって得られる、例えば１８メガオームの抵抗率）、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌおよび１ｍＭ ＥＤＴＡ（ＴＥ）緩衝液、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）または酢酸緩衝液、である。核酸分子と生理的に適合性である任意の液体または緩衝液を使用することができる。前記キャリア流体は、前記サンプル流体と不混和性であるものである。前記キャリア流体は、非極性溶剤、デカン（例えば、テトラデカンもしくはヘキサデカン）、フルオロカーボン油、シリコーン油または他の油（例えば、鉱物油）であり得る。
一定の実施形態において、前記キャリア流体は、１つ以上の添加剤、例えば、非ニュートン表面張力を増加させる、低減するもしくは別様に作る作用物質（界面活性剤）および／または接触時に自然に合体しないように液滴を安定させる作用物質、を含有する。界面活性剤としては、Ｔｗｅｅｎ、Ｓｐａｎ、フッ素系界面活性剤、および水に比べて油に溶ける他の作用物質を挙げることができる。幾つかの用途では、第二の界面活性剤または他の作用物質、例えばポリマーもしくは他の添加剤、をサンプル流体に添加することによって性能を向上させる。界面活性剤は、例えば交差チャネルに液滴を押し出すまたは注入するために必要な剪断力を低減することにより、液滴サイズ、流量および均一性の制御または最適化を助けることができる。これは、液滴体積および周期性、または液滴が交差チャネルへと離脱する率または頻度に影響を及ぼすことができる。さらに、界面活性剤は、フッ素化油中の水性エマルジョンが合体しないように安定させることに役立つことができる。
一定の実施形態では、液滴を界面活性剤または界面活性剤の混合物で被覆することができる。キャリア流体に添加することができる好ましい界面活性剤としては、ソルビタンモノラウレート（Ｓｐａｎ ２０）、ソルビタンモノパルミテート（Ｓｐａｎ ４０）、ソルビタンモノステアレート（Ｓｐａｎ ６０）およびソルビタンモノオレエート（Ｓｐａｎ ８０）をはじめとするソルビタン系カルボン酸エステル（例えば、「Ｓｐａｎ」界面活性剤、Ｆｌｕｋａ Ｃｈｅｍｉｋａ）ならびに過フッ素化ポリエーテル（例えば、ＤｕＰｏｎｔ Ｋｒｙｔｏｘ １５７ ＦＳＬ、ＦＳＭおよび／またはＦＳＨ）などの界面活性剤が挙げられるが、これらに限定されない。使用することができる非イオン性界面活性剤の他の非限定的な例としては、ポリオキシエチレン化アルキルフェノール（例えば、ノニル−、ｐ−ドデシル−、およびジノニルフェノール）、ポリオキシエチレン化直鎖アルコール、ポリオキシエチレン化ポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレン化メルカプタン、長鎖カルボン酸エステル（例えば、天然脂肪酸のグリセリルおよびポリグリセリルエステル、プロピレングリコール、ソルビトール、ポリオキシエチレン化ソルビトールエステル、ポリオキシエチレングリコールエステルなど）ならびにアルカノールアミン（例えば、ジエタノールアミン−脂肪酸縮合物およびイソプロパノールアミン−脂肪酸縮合物）が挙げられる。
一定の実施形態では、キャリア流体中の界面活性剤がチャネル壁を被覆するように、キャリア流体を、流出チャネルを通して流れさせることができる。１つの実施形態では、過フッ素化ポリエーテルＤｕＰｏｎｔ Ｋｒｙｔｏｘ １５７ ＦＳＬ、ＦＳＭまたはＦＳＨと水酸化アンモニウム水溶液とを揮発性フッ素化溶剤中で反応させることによって、フッ素系界面活性剤を調製することができる。溶剤ならびに残留水およびアンモニアをロータリーエバポレータで除去することができる。その後、その界面活性剤をフッ素化油（例えば、Ｆｌｏｕｒｉｎｅｒｔ（３Ｍ））に溶解することができ（例えば、２．５重量％）、すると担体液として役立つ。
ラムダインジェクタと呼ばれるデバイスを使用して、サンプル流体を合体させることへの１つのアプローチは、液滴を形成すること、および該液滴と流体ストリームを接触させることを含み、この場合、該流体ストリームの一部分が該液滴と一体化して混合液滴を形成する。このアプローチでは、１つの形態の液滴内のマージエリアに１つの相しか到達する必要がない。そのような方法のさらなる説明は、Ｙｕｒｋｏｖｅｔｓｋｙらの共同所有および同時係属米国特許出願（米国特許出願第６１／４４１，９８５号）に示されており、前記出願の内容は、その全体が参照により本明細書に援用されている。
ラムダインジェクタの動作方法に従って、上で説明したように液滴を形成する。第一のサンプル流体からのサンプル液滴の形成後、その液滴を第二のサンプル流体ストリームのフローと接触させる。前記液滴と前記流体ストリームの接触の結果、該流体ストリームの一部分が該液滴と一体化して混合液滴を形成することとなる。
不混和性キャリア流体によって互いに隔てられており、その不混和性キャリア流体に懸濁している第一のサンプル流体の液滴が、第一のチャネルを通って流れる。液滴は、容積式ポンプによって生成される圧力駆動フローによりマージエリア、すなわち第一のチャネルと第二のチャネルの接合部、に送達される。液滴がそのマージエリアに到着すると、第二のサンプル流体のボーラスが、第二のチャネルの開口部から第一のチャネルに押し出されることとなる。好ましくは、これらのチャネルは、互いに垂直な向きである。しかし、これらのチャネルを直行させる結果となる任意の角度を用いることができる。
前記第二のサンプル流体ストリームのボーラスは、チャネルに接続された容積式ポンプのポンピング作用のためサイズを増しつづけ、それがマージエリアへの第二のサンプル流体の定常ストリーム流を産出する。第一のサンプル流体を含有する流れている液滴は、その第一のチャネルの中に押し出されている第二のサンプル流体のボーラスと最終的に接触する。これら２つのサンプル流体間の接触の結果、第二のサンプル流体の一部分が、該第二のサンプル流体ストリームから分けられ、第一のサンプル流体液滴と合流して混合液滴を形成することとなる。一定の実施形態では、第一のサンプル流体の入って来る液滴それぞれを同量の第二のサンプル流体と合体させる。
一定の実施形態では、第一および第二サンプル流体に電荷を印加する。サンプル流体への電荷の印加についての説明は、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００７／０００３４４２号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃの欧州特許第２００４３１６号に提供されており、これらのそれぞれの内容はその全体が参照により本明細書に援用されている。任意の適する技術を用いて、例えば、第一および第二のサンプル流体を電場（ＡＣ、ＤＣなどであり得る）の中に置くことにより、ならびに／または第一および第二のサンプル流体に電荷を持たせる反応、例えば化学反応、イオン反応、光触媒反応など、を起こさせることにより、キャリア流体内の第一および第二のサンプル流体内で電荷を作り出すことができる。
幾つかの実施形態において、電場は、電場発生器、すなわち、流体に印加することができる電場を作り出すことができるデバイスまたはシステム、から発生される。電場発生器は、ＡＣ場（すなわち、時間に対して周期的に、例えば正弦波的に、変動するもの、鋸歯、方形など）、ＤＣ場（すなわち、時間に対して一定しているもの）、パルス場などを生じさせることができる。チャネルまたはマイクロ流体チャネル内に収容された流体の中で電場を作り出すように、電場発生器を構築および配置することができる。幾つかの実施形態によると、電場発生器は、チャネルまたはマイクロ流体チャネルを含む流体システムと一体型であることもあり、または別個であることもある。
適する電場（ＡＣ、ＤＣなどであり得る）を生じさせる技術は、当業者に公知である。例えば、１つの実施形態では、１対の電極の両端に電圧を印加することによって電場を生じさせ、それらの電極を流体システム上に配置してもよく、もしくは流体システム内に（例えば、チャネルもしくはマイクロ流体チャネルを規定する基板内に）埋め込んでもよく、および／または電場の少なくとも一部分が流体と相互作用するように流体の近位に配置してもよい。前記電極は、銀、金、銅、炭素、白金、銅、タングステン、スズ、カドミウム、ニッケル、酸化インジウムスズ（「ＩＴＯ」）など、ならびにこれらの組み合わせをはじめとする（しかしそれらに限定されない）、当業者に公知の任意の適する電極材料（単数または複数）から作ることができる。場合によっては、透明または実質的に透明な電極を使用することができる。
電場は、第二のサンプル流体と液滴を隔てる界面の破断を助長する。界面の破断は、第二のサンプル流体のボーラスと第一のサンプル流体液滴のマージを助長する。形成混合液滴は、第一のサンプル流体を含有する次の液滴の到着およびマージ前に第二のサンプル流体の一部分が第二のサンプル流体ストリームから解放されるまたは分割するまで、大きくなり続ける。第二のサンプル流体ストリームからの第二のサンプル流体の前記部分の分割は、混和性キャリア流体によって形成混合液滴に及ぼされる剪断力が表面張力（この作用は、第二のサンプル流体の分割部分を第二のサンプル流体ストリームとつながったままにすることである）に打ち勝つやいなや発生する。今や完全に形成された混合液滴が、第一のチャネルを通って流れ続ける。
他の実施形態において、界面の破断は自然発生的である場合があり、または表面化学によって破断を助長することができる。任意の手段によって破断を生じさせることができるので、本発明は、界面での破断方法に関して限定されない。
ＰＣＲに関連して、好ましい実施形態では、第一のサンプル流体は核酸テンプレートを含有する。前記第一のサンプル流体の液滴は、上で説明したように形成される。これらの液滴は、核酸テンプレートを含むであろう。一定の実施形態において、前記液滴は、単一の核酸テンプレートのみを含むこととなり、従って、デジタルＰＣＲを行うことができる。第二のサンプル流体は、ＰＣＲ反応のための試薬を含有する。そのような試薬としては、一般に、Ｔａｑポリメラーゼ、タイプＡ、Ｃ、ＧおよびＴのデオキシヌクレオチド、塩化マグネシウム、ならびにフォワードおよびリバースプライマーが挙げられ、これらのすべてが水性緩衝液に懸濁されている。前記第二の流体は、増幅されたターゲット核酸を検出するための検出可能に標識されたプローブも含み、これらの詳細は下で論ずる。次に、核酸を含有する液滴を、上で説明したような第二の流体中のＰＣＲ試薬と合体させて、Ｔａｑポリメラーゼ、タイプＡ、Ｃ、ＧおよびＴのデオキシヌクレオチド、塩化マグネシウム、フォワードおよびリバースプライマー、検出可能に標識されたプローブならびにターゲット核酸を含む液滴を生じさせる。もう１つの実施形態において、前記第一の流体は、テンプレートＤＮＡおよびＰＣＲマスターミックス（下で定義する）を含有することができ、ならびに前記第二の流体は、フォワードおよびリバースプライマーならびにプローブを含有することができる。本発明は、ＰＣＲまたはデジタルＰＣＲのための第一および第二のフルイディクスの要素構成に関して如何なる点においても制限されない。例えば、幾つかの実施形態において、前記テンプレートＤＮＡは、液滴内部の第二の流体に含有される。
ターゲット増幅
本発明の方法は、各液滴内のターゲット核酸を増幅することをさらに含む。増幅は、核酸配列の追加のコピーの生産を指し、一般に、ポリメラーゼ連鎖反応または当該技術分野において周知の他の技術を用いて行われる（例えば、Ｄｉｅｆｆｅｎｂａｃｈ ａｎｄ Ｄｖｅｋｓｌｅｒ、ＰＣＲ Ｐｒｉｍｅｒ、ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ、Ｐｌａｉｎｖｉｅｗ、Ｎ．Ｙ．［１９９５］）。増幅反応は、核酸分子を増幅する当該技術分野において公知の任意の増幅反応、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応、ネステッドポリメラーゼ連鎖反応、リガーゼ連鎖反応（Ｂａｒａｎｙ Ｆ．（１９９１）ＰＮＡＳ ８８：１８９−１９３；Ｂａｒａｎｙ Ｆ．（１９９１）ＰＣＲ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ １：５−１６）、リガーゼ検出反応（Ｂａｒａｎｙ Ｆ．（１９９１）ＰＮＡＳ ８８：１８９−１９３）、鎖置換増幅、転写ベースの増幅システム、核酸配列ベースの増幅、ローリングサークル増幅および超分岐ローリングサークル増幅であり得る。
一定の実施形態において、前記増幅反応は、ポリメラーゼ連鎖反応である。ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）は、クローニングまたは精製なしでゲノムＤＮＡの混合物中のターゲット配列のセグメントの濃度を増加させるためのＫ．Ｂ．Ｍｕｌｌｉｓによる方法（参照により本明細書に援用されている、米国特許第４，６８３，１９５号および同第４，６８３，２０２号）を指す。ターゲット配列を増幅するためのプロセスは、所望のターゲット配列を含有するＤＮＡ混合物への過剰なオリゴヌクレオチドプライマーの導入、続いてのＤＮＡポリメラーゼの存在下での的確な順序の熱サイクリングを含む。前記プライマーは、二本鎖ターゲット配列のそれらそれぞれの鎖に相補的である。
増幅を果たすために、プライマーをターゲット分子内のそれらの相補配列にアニールする。アニーリング後、それらのプライマーをポリメラーゼで伸長して、新たな相補鎖対を形成する。変性、プライマーアニーリングおよびポリメラーゼ伸長の工程を何度も繰り返して（すなわち、変性、アニーリングおよび伸長が１サイクルを構成する；非常に多くのサイクルがあり得る）、所望のターゲット配列の高濃度の増幅セグメントを得ることができる。所望のターゲット配列の増幅セグメントの長さは、プライマーの互いに対する相対的位置によっておよびサイクリングパラメータによって決定され、従って、この長さは、制御可能なパラメータである。
液滴内でＰＣＲを行うための方法は、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）、Ａｎｄｅｒｓｏｎら（米国特許第７，０４１，４８１号および再発行番号４１，７８０として再発行されたもの）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に示されており、これらのそれぞれの内容はその全体が参照により本明細書に援用されている。
サンプル液滴をプライマー（単数もしくは複数）と予混してもよいし、またはプライマー（単数もしくは複数）を前記液滴に添加してもよい。幾つかの実施形態では、出発サンプルを分割することによって作られた液滴を、ターゲット核酸のための１つ以上のプライマーを含む第二のセットの液滴と合体させて、最終液滴を生じさせる。液滴のマージは、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に記載されている１つ以上の液滴マージ技術を用いて遂行することができる。
液滴のマージを含む実施形態では、２つの液滴形成モジュールを使用する。１つの実施形態において、第一の液滴形成モジュールは、ターゲット核酸の限界または終点希釈に見合ったサンプル液滴を生じさせる。第二の液滴形成または再注入モジュールは、ＰＣＲ反応用の試薬を含有する液滴を挿入する。そのような液滴は、一般に、「ＰＣＲマスターミックス」（少なくともＴａｑポリメラーゼと、タイプＡ、Ｃ、ＧおよびＴのデオキシヌクレオチドと、塩化マグネシウムとを含有する混合物として当業者に公知）ならびにフォワードおよびリバースプライマー（ひとまとめにして「プライマー」として当業者に公知）を含み、これらのすべてが水性緩衝液に懸濁されている。前記第二の液滴は、増幅されたターゲット核酸を検出するための検出可能に標識されたプローブも含み、これらの詳細は下で論ずる。２つの液滴タイプ間での試薬の異なる取り合わせが考えられる。例えば、別の実施形態では、テンプレート液滴もＰＣＲマスターミックスを含有するが、プライマーおよびプローブは第二の液滴内に残存する。試薬およびテンプレートＤＮＡの任意の取り合わせを本発明に従って用いることができる。
プライマーは、当該技術分野において周知の方法（Ｎａｒａｎｇら、Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、６８：９０（１９７９）；Ｂｒｏｗｎら、Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、６８：１０９（１９７９））を用いる適切な配列のクローニングおよび直接化学合成をはじめとする（しかしこれらに限定されない）様々な方法によって調製することができる。プライマーを商業的供給源、例えばＯｐｅｒｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ、ＳｉｇｍａおよびＬｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、から得ることもできる。前記プライマーは、同一融解温度を有することができる。前記プライマーの長さを５’末端または３’末端で伸長または短縮して、所望の融解温度を有するプライマーを生成させることができる。また、プライマー対の配列および長さが所望の融解温度を生じさせるように、各プライマー対のアニーリング位置を設計することができる。２５塩基対より小さいプライマーの融解温度を決定するための最も単純な方程式は、ウォーレスの法則（Ｗａｌｌａｃｅ Ｒｕｌｅ）（Ｔｄ＝２（Ａ＋Ｔ）＋４（Ｇ＋Ｃ））である。プライマーの融解温度を決定するためのもう１つの方法は、ニアレストネーバー法である。Ａｒｒａｙ Ｄｅｓｉｇｎｅｒ Ｓｏｆｔｗａｒｅ（Ａｒｒａｙｉｔ Ｉｎｃ．）、Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｐｒｏｂｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｓｉｇｎ Ｓｏｆｔｗａｒｅ ｆｏｒ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｓｉｓ（Ｏｌｙｍｐｕｓ Ｏｐｔｉｃａｌ Ｃｏ．）、ＮｅｔＰｒｉｍｅｒ、およびＨｉｔａｃｈｉ Ｓｏｆｔｗａｒｅ ＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇからのＤＮＡｓｉｓをはじめとする（しかしこれらに限定されない）コンピュータプログラムを使用してプライマーを設計することもできる。各プライマーのＴＭ（融解またはアニーリング温度）は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐ．から入手できるＯｌｉｇｏ Ｄｅｓｉｇｎなどのソフトウェアプログラムを使用して計算する。
１つの実施形態では、チャネルを通って流れるサンプル液滴とＰＣＲ試薬液滴の相互嵌合（ｉｎｔｅｒｄｉｇｉｔａｔｉｏｎ）を生じさせるように液滴形成モジュールを配置および制御する。そのような配置は、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に記載されている。
次に、サンプル液滴をＰＣＲ試薬液滴と合体させて、ＰＣＲマスターミックスとプライマーと検出可能に標識されたプローブとターゲット核酸とを含む液滴を生成させる。例えば、電場勾配を用いて液滴に対する誘電泳動力を生じさせて、液滴を合体させるようにその力を制御すること；異なるサイズの液滴であって、それ故、異なる速度で移動する液滴を生成し、それによって液滴を合体させること；および異なる粘度を有する液滴であって、それ故、異なる速度で移動する液滴を生成させ、それによって液滴を互いに合体させることにより、液滴を合体することができる。これらの技術のそれぞれが、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号にさらに記載されている。液滴を合体させるための液滴に対する誘電泳動力の生成および制御についてのさらなる説明は、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００７／０００３４４２号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２００４３１６号に記載されている。
単純液滴生成と呼ばれる、もう１つの実施形態では、テンプレートＤＮＡとＰＣＲマスターミックスとプライマーと検出可能に標識されたプローブとを既に含有する混合物から液滴を生成させるように単一の液滴形成モジュールまたは多数の液滴形成モジュールを配置する。コ・フローと呼ばれるさらにもう１つの実施形態では、単一の液滴形成モジュールの上流で２つのチャネルが交差し、それによって２つのフローストリームを収束させる。一方のフローストリームは、１セットの試薬とテンプレートＤＮＡを含有し、他方は、残りの試薬を含有する。コ・フローについての好ましい実施形態では、テンプレートＤＮＡおよびＰＣＲマスターミックスが一方のフローストリームの中にあり、プライマーおよびプローブが他方の中にある。しかし、本発明は、いずれのフローストリームの要素構成に関しても限定されない。例えば、もう１つの実施形態では、一方のフローストリームがテンプレートＤＮＡのみを含有し、他方はＰＣＲマスターミックス、プライマーおよびプローブを含有する。流体交差部においてフローストリームが収束するとき、該フローストリームは、液滴生成ノズルの前で混ざることもあり、または混ざらないこともある。いずれの実施形態においても、第一のストリームからの多少の量の流体、および第二のストリームからの多少の量の流体が単一の液滴内に封入される。封入後に完全混合が起こる。
上の液滴形成実施形態のいずれかにより、または任意の他の実施形態により、最終液滴を生成されたら、それらの液滴を熱サイクルに付して、各液滴内のターゲット核酸の増幅を生じさせる。一定の実施形態では、液滴をＰＣＲ熱サイクリングチューブにエマルジョンとしてオフチップで回収し、その後、従来の熱サイクラーでの熱サイクルに付す。熱サイクリングについての温度プロフィールは、ＰＣＲによる任意の従来のＤＮＡ増幅と同様に調整および最適化することができる。
一定の実施形態では、加熱ラインと冷却ラインの間の蛇行通路内のチャネルを通して液滴を流して、該液滴内の核酸を増幅する。前記チャネルの幅および深さを調整して各温度での滞留時間を設定してもよく、１秒未満と数分の間のどのような程度にも滞留時間を制御することができる。
一定の実施形態では、３つの温度ゾーンを増幅反応に用いる。二本鎖核酸の変性（高温ゾーン）、プライマーのアニーリング（低温ゾーン）および二本鎖核酸を生産するための一本鎖核酸の増幅（中温ゾーン）を生じさせるように、前記３つの温度ゾーンを制御する。これらのゾーン内の温度は、ＰＣＲ反応を行うための当該技術分野において周知の範囲内に入る。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第３版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、２００１）を参照のこと。
一定の実施形態では、前記３つの温度ゾーンを次のような温度を有するように制御する：９５℃（ＴＨ）、５５℃（ＴＬ）、７２℃（ＴＭ）。調製されたサンプル液滴は、制御された速度でチャネルを通って流れる。サンプル液滴は、熱サイクリング前に初期変性ゾーン（ＴＨ）を先ず通過する。初期予熱は、サンプル液滴内の核酸が熱サイクリング前に首尾よく変性してしまうための拡張ゾーンである。予熱ゾーンの必要条件、および必要とされる変性時間の長さは、その反応において用いられることとなる化学に依存する。サンプルは、おおよそ９５℃の高温ゾーンを通過し、そこでサンプルは、変性と呼ばれるプロセスで先ず一本鎖ＤＮＡへと分離される。次に、サンプルは、おおよそ５５℃の低温へと流れ、そこでハイブリダイゼーションプロセスが発生し、その間にプライマーがサンプルの相補配列にアニールする。最後に、サンプルがおおよそ７２℃の第三の中温を通って流れると、ポリメラーゼプロセスが発生し、このときプライマーは熱安定性酵素でＤＮＡの一本鎖に沿って伸長される。各ゾーンにおける温度を制御するための方法としては、電気抵抗、ペルチェ接合、マイクロ波照射、および赤外線での照明を挙げることができるが、これらに限定されない。
核酸は、チャネルを通って流れるにつれて液滴が各熱サイクルを通過するのと同じ熱サイクリングおよび化学反応を受ける。そのデバイスにおけるサイクルの総数は、熱ゾーンの拡張によって、または連続ループ構造を作ることによって、容易に改変される。サンプルは、それが完全熱デバイスのＮ回の増幅サイクルを通過するのと同じ熱サイクリングおよび化学反応を受ける。
他の実施形態では、ＰＣＲ反応のための２つの個々の温度ゾーンを実現するように温度ゾーンを制御する。一定の実施形態では、前記２つの温度ゾーンを、次のような温度を有するように制御する：９５℃（ＴＨ）および６０℃（ＴＬ）。サンプル液滴は、場合により、熱サイクリングに入る前に初期予熱ゾーンを通って流れる。この予熱ゾーンは、活性化のための、およびまた、熱サイクリング反応が始まる前に液滴内の二本鎖核酸を確実に十分に変性させるための、何らかの化学にとって重要であり得る。例示的実施形態では、その予熱ドウェル長が、より高温での液滴のおおよそ１０分の予熱をもたらす。
サンプル液滴は、おおよそ９５℃の高温ゾーンへと続き、そこでこのサンプルは変性と呼ばれるプロセスで先ず一本鎖ＤＮＡに分離される。次に、そのサンプルは、そのデバイスを通っておおよそ６０℃の低温ゾーンへと流れ、そこでハイブリダイゼーションプロセスが起こり、その間にプライマーがそのサンプルの相補配列にアニールする。最後に、ポリメラーゼプロセスが発生し、このときプライマーは熱安定性酵素でＤＮＡの一本鎖に沿って伸長される。サンプルは、完全デバイスの各熱サイクルを通過するのと同じ熱サイクリングおよび化学反応を受ける。そのデバイスにおけるサイクルの総数は、ブロック長および配管によって容易に改変される。
もう１つの実施形態では、液滴をオンチップで作成および／またはマージし、その後、ＰＣＲチューブなどの何らかのタイプの保管容器内に同じチップ若しくは別のチップ上またはオフチップで保管する。その後、液滴を収容しているチップまたは保管容器全体をサイクルに付して、所望のＰＣＲ加熱および冷却サイクルを達成する。
もう１つの実施形態では、液滴を除去することなく液滴と周囲の油の間の密度差によって油を迅速に交換することができるチャンバに、液滴を回収する。このとき、容器内の油を異なる温度の油と交換することによって、液滴の温度を容易に変えることができる。この技術は、大まかに、２および３工程温度サイクリングまたは任意の他の温度順序で有用である。
本発明は、液滴を熱サイクルに付す方法によって限定されない。任意の液滴熱サイクリング法を用いることができる。
ターゲット検出
増幅後、増幅産物の検出のための検出モジュールに液滴を流す。液滴をオフチップで熱サイクルに付す実施形態については、液滴は、読み出しのために第二の流体回路−液滴生成のための流体回路（単数もしくは複数）と同じチップ上にあってもよいし、なくてもよい−への再注入を必要とし、または一定の実施形態では読み出しのために液滴を液滴生成に使用した元の流体回路に戻って再注入してもよい。当該技術分野において公知の任意の方法、例えばレポーターの存在または量の検出、を用いて、それらの液滴を個々に分析および検出することができる。一般に、前記検出モジュールは、１つ以上の検出装置と連通している。前記検出装置は、光学的もしくは電気的検出器またはこれらの組み合わせであり得る。適する検出装置の例としては、光導波路、顕微鏡、ダイオード、光刺激デバイス（例えば、レーザー）、光電子倍増管およびプロセッサ（例えば、コンピュータおよびソフトウェア）、ならびに特性、マーカーまたはレポーターのシグナル表示を検出するためにおよび選別モジュールでの測定または選別動作を決定および命令するために共働するこれらの組み合わせが挙げられる。検出モジュールおよび液滴中の増幅産物の検出方法についてのさらなる説明は、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に示されている。
一定の実施形態では、増幅されたターゲットを、検出可能に標識されたプローブを使用して検出する。特定の実施形態において、前記検出可能に標識されたプローブは、蛍光標識されたプローブなどの光学的に標識されたプローブである。蛍光標識の例としては、Ａｔｔｏ色素、４−アセトアミド−４’−イソチオシアナトスチルベン−２，２’ジスルホン酸；アクリジンおよび誘導体；アクリジン、アクリジンイソチオシアネート；５−（２’−アミノエチル）アミノナフタレン−１−スルホン酸（ＥＤＡＮＳ）；４−アミノ−Ｎ−［３−ビニルスルホニル）フェニル］ナフタルイミド−３，５ジスルホネート；Ｎ−（４−アニリノ−１−ナフチル）マレイミド；アントラニルアミド；ＢＯＤＩＰＹ；ブリリアント・イエロー；クマリンおよび誘導体；クマリン、７−アミノ−４−メチルクマリン（ＡＭＣ、クマリン１２０）、７−アミノ−４−トリフルオロメチルクマリン（ｔｒｉｆｌｕｏｒｏｍｅｔｈｙｌｃｏｕｌｕａｒｉｎ）（クマラン１５１）；シアニン色素；シアノシン；４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ）；５’，５’’ジブロモピロガロール−スルホンフタレイン（ｓｕｌｆｏｎａｐｈｔｈａｌｅｉｎ）（ブロモピロガロール・レッド）；７−ジエチルアミノ−３−（４’−イソチオシアナトフェニル）−４−メチルクマリン；ジエチレントリアミンペンタアセテート；４，４’−ジイソチオシアナトジヒドロ−スチルベン−２，２’−ジスルホン酸；４，４’−ジイソチオシアナトスチルベン−２，２’−ジスルホン酸；５−［ジメチルアミノ］ナフタレン−１−スルホニルクロリド（ＤＮＳ、ダンシルクロリド）；４−ジメチルアミノフェニルアゾフェニル−４’−イソチオシアネート（ＤＡＢＩＴＣ）；エオシンおよび誘導体；エオシン、エオシンイソチオシアネート、エリトロシンおよび誘導体；エリトロシンＢ、エリトロシン、イソチオシアネート；エチジウム；フルオレセインおよび誘導体；５−カルボキシフルオレセイン（ＦＡＭ）、５−（４，６−ジクロロトリアジン−２−イル）アミノフルオレセイン（ＤＴＡＦ）、２’，７’−ジメトキシ−４’５’−ジクロロ−６−カルボキシフルオレセイン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ＱＦＩＴＣ、（ＸＲＩＴＣ）；フルオレスカミン；ＩＲ１４４；ＩＲ１４４６；マラカイトグリーンイソチオシアネート；４−メチルウンベリフェロンオルトクレゾールフタレイン；ニトロチロシン；パラローズアニリン；フェノールレッド；Ｂ−フィコエリトリン；ｏ−フタルジアルデヒド；ピレンおよび誘導体；ピレン、ピレンブチレート、スクシンイミジル１−ピレン；ブチレート量子ドット；リアクティブレッド４（Ｃｉｂａｃｒｏｎ（商標）ブリリアント・レッド ３Ｂ−Ａ）ローダミンおよび誘導体；６−カルボキシ−Ｘ−ローダミン（ＲＯＸ）、６−カルボキシローダミン（Ｒ６Ｇ）、リサミンローダミンＢスルホニルクロリドローダミン（Ｒｈｏｄ）、ローダミンＢ、ローダミン１２３、ローダミンＸイソチオシアネート、スルホローダミンＢ、スルホローダミン１０１、スルホローダミン１０１のスルホニルクロリド誘導体（テキサス・レッド）；Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’テトラメチル−６−カルボキシローダミン（ＴＡＭＲＡ）；テトラメチルローダミン；テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）；リボフラビン；ロゾール酸；テルビウムキレート誘導体；Ｃｙ３；Ｃｙ５；Ｃｙ５．５；Ｃｙ７；ＩＲＤ ７００；ＩＲＤ ８００；ラホーヤブルー（Ｌａ Ｊｏｌｔａ Ｂｌｕｅ）；フタロシアニン；ならびにナフタロシアニンが挙げられるが、これらに限定されない。好ましい蛍光標識は、ＦＡＭおよびＶＩＣ（商標）（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓから）である。他の光学的に検出可能な標識を含めて、蛍光標識以外の標識が本発明により考えられる。
一定の態様において、本発明の液滴は、液滴内で生産されるアンプリコンにハイブリダイズする多数の検出可能プローブを含有する。前記複数のプローブの構成員は、それぞれ、同じ検出可能標識を含むことがあり、または異なる検出可能標識を含むことがある。前記複数のプローブは、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含むこともある。様々な濃度のプローブの前記群は、様々なプローブ濃度のため強度の点で様々である、同じ検出可能標識を含むことができる。
別の実施形態において、方法または検出のための波長に対して透明である保管デバイス内の単層に閉じ込められた液滴のスキャンによって、検出を行うことができる。この仕方で保管された液滴は、スキャナーによる保管デバイスの移動または保管デバイスの上でのスキャナー移動のいずれかによってスキャンすることができる。
本発明は、上で説明したようなＴａｑＭａｎアッセイに限定されず、むしろ本発明は、すべての蛍光発生性ＤＮＡハイブリダイゼーションプローブ、例えば分子ビーコン、Ｓｏｌａｒｉｓプローブ、スコーピオンプローブ、およびハイブリダイゼーションによるターゲットＤＮＡの配列特異的認識によって機能し、そのターゲット配列の増幅により蛍光増加を生じさせる任意の他のプローブ、の使用を包含する。
液滴内でのデジタルＰＣＲ性能
エマルジョン形式でのデジタルＰＣＲ性能を、参照遺伝子、分岐鎖ケト酸デヒドロゲナーゼＥ１（ＢＣＫＤＨＡ）、の系列希釈物を測定することによって検証した。液滴生成マイクロ流体チップを使用して、ＰＣＲマスターミックスと、１×プライマーと、ＢＣＫＤＨＡ用のプローブと、様々な濃度のヒトゲノムＤＮＡ混合物（１：１ ＮＡ１４０９１とＮＡ１３７０５）との混合物を、フッ素化油中水型エマルジョン中の１００万個を超える５．３ｐＬ液滴に区画化した。そのエマルジョンをオフチップで熱サイクルに付し、その後、各液滴の蛍光を読み出しチップにおいて蛍光によって分析した（図３参照）。
液滴生成および読み出しのための例示的マイクロ流体システムを、図３に図示する。液滴生成および読み出しのためのマイクロ流体システム。図３ａ（液滴生成チップ）に示すように、ＰＣＲマスターミックスとプライマーとプローブとテンプレートＤＮＡとを含有する連続水性相が左から流体交差部へと流れ、キャリア油が上部および下部から入った。水性液の新生ボーラスを、交差部内で、流体の張力が水性液の表面張力を超えはじめて耐えきれなくなって別個の４ｐＬ液滴になる直前に撮像した。交差部を出て右へと向かう液滴の定常的つらなりを熱サイクリング用の安定したエマルジョンとしてオフチップで回収した。図３ｂは、読み出しのための液滴間隔どりを図示するものである。連続相の代わりに（ａ）からのエマルジョンを熱サイクリング後に左から交差部に注入したことを除き、３ａの場合と同様にフローを準備した。オフチップ処理中にエマルジョンから油が排液される故、エマルジョンは、この画像では交差部の前は密充填されているように見えた。交差部に導入された油によって液滴は分離され、矢印によってしるしをつけた位置で各液滴の蛍光を測定した。図３ｃは、蛍光による液滴読み出しの漫画を描いたものである。比較的頻度の低いＰＣＲ（＋）液滴（薄灰色）が大多数のＰＣＲ（−）液滴（濃灰色）と一緒に検出器のほうに流れる。液滴は、検出領域を通過している間にレーザー誘導蛍光による問い合わせを逐次的に受ける。
系列希釈の場合、１液滴あたりのターゲットＤＮＡ分子の平均数−この時点以降「占有率」と呼ぶ−は、ＤＮＡ濃度に正比例して増加するはずである。この占有率は、当業者に周知の次の方程式を用いてポアソン統計から計算した：
（この式中、ＰおよびＮは、それぞれ、ＰＣＲ（＋）およびＰＣＲ（−）液滴の数である）。
読み出しチップを通って流れているときに蛍光によって液滴を分析して、ＰＣＲ（＋）およびＰＣＲ（−）液滴の数をカウントした（図３ｃ参照）。各液滴が（図３ｂにおいて矢印でしるしをつけた）検出ゾーンを通過すると、蛍光のバーストが観察された。異なるチップ配置などのために起こり得る蛍光強度のラン間の小さな差を説明するために、各データセットを、空の液滴の平均蛍光強度が０．１Ｖになるように拡大縮小した。図４ａは、その系列の中で最高ＤＮＡ濃度を有するサンプルについての個々の液滴からの蛍光バーストの典型的トレースの非常に短い継続時間を示している。ＰＣＲ（＋）およびＰＣＲ（−）液滴は、蛍光強度によって容易に識別された。〜０．８Ｖでピークに達する２つの大きな蛍光バーストがＰＣＲ（＋）液滴から発生し、これに対してＰＣＲ（−）液滴では不完全な蛍光消光に起因するより小さいバーストが〜０．１Ｖでピークに達した。完全データセットからのピーク強度のヒストグラムは、０．１０および０．７８Ｖに中心を有する２つの明確な集団を明示した（図４ｂ）。これは、図４ａにおける短いトレースにおいて明白な傾向が、はるかに長い期間にわたって安定していたことの証拠となる。図４ｂにおける２つの集団の統合により、合計１９７，５０７個のＰＣＲ（＋）および１，２４０，１２６個のＰＣＲ（−）液滴を得た。従って、Ｅｑｎ．１によりこのサンプルについての占有率は０．１５であり、これは、１１０ｎｇ／μＬの測定ＤＮＡ濃度に基づく０．１８の期待占有率に対応した。系列希釈での各サンプルについての占有率を測定し、希釈方程式：
に当てはめた。この直線当てはめは、データと非常によく一致しており、Ｒ２値は０．９９９９であり、および当てはめられた希釈係数は５．０の期待値とほぼ一致して４．８であった。
デジタルＰＣＲ反応における多重化プライマー
Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）、Ａｎｄｅｒｓｏｎら（米国特許第７，０４１，４８１号および再発行番号４１，７８０として再発行されたもの）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃの欧州特許出願公開第２０４７９１０号（これらのそれぞれの内容は、それら全体が参照により本明細書に援用されている）に記載されているような液滴ベースのデジタルＰＣＲ技術は、１ライブラリー液滴あたり単一のプライマー対を用いる。このライブラリー液滴を、プライマーを除いてゲノムＤＮＡを含むすべてのＰＣＲ試薬を含有するテンプレート液滴と合体させる。テンプレート液滴とプライマーライブラリー液滴のマージ後、その新たな液滴は今やＰＣＲを行うために必要なすべての試薬を含有する。その後、その液滴を熱サイクルに付してアンプリコンを生産する。１つの実施形態では、平均して１液滴あたり１未満の半数体が存在するようにテンプレートＤＮＡをテンプレートミックスで希釈する。
１液滴あたり１つの半数体ゲノム（すなわち、１つの対立遺伝子）しか有さないことは、チューブまたはマイクロウエルにおける標準的なシングルプレックスまたはマルチプレックスＰＣＲに勝る液滴ＰＣＲの利点をもたらす。例えば、伝統的なＰＣＲでは、両方の対立遺伝子が反応ミックス中に存在するので、対立遺伝子間のＰＣＲ効率に差がある場合、最高効率を有する対立遺伝子が過剰に示されることとなる。加えて、注意深いプライマー設計にもかかわらず、ＰＣＲプライマーがハイブリダイズする配列に不一致がある場合がある。プライマーハイブリダイゼーション配列の不一致は、野生型配列を有する対立遺伝子と比較してこの不一致を有する対立遺伝子についてのほうが低いハイブリダイゼーション効率をプライマーが有する原因となり得る。これは、両方の対立遺伝子が同じ反応ミックス中に存在する場合、一方の対立遺伝子が他方の対立遺伝子より優先的に増幅される原因にもなり得る。
液滴ベースのＰＣＲでは、１液滴あたり１つのテンプレート分子、従って１液滴あたり１つの対立遺伝子、しか存在しないため、これらの問題は回避される。従って、１つの対立遺伝子についてのＰＣＲ効率を低減するプライマー不一致がたとえ存在したとしても、対立遺伝子は分離されるおよび従って均一に増幅されるため、対立遺伝子間の競合がない。
チューブまたはウエルにおける標準的なＰＣＲプライマーの伝統的多重化の最適化が難しいことは公知である。同じ反応で産生される複数のＰＣＲアンプリコンは、配列または長さの違いのために異なる効率を有するアンプリコン間での競合をもたらすことがある。これは、競合するアンプリコン間での収量の変動をもたらし、その結果、不均一なアンプリコン収量となり得る。しかし、液滴ベースのデジタルＰＣＲは、１液滴あたり１つのテンプレート分子しか利用しないため、液滴内に複数のＰＣＲプライマー対がたとえ存在したとしても、１つのプライマー対しか活性にならない。１液滴あたり１つのアンプリコンしか生成されることとならないので、アンプリコン間に競合はなく、その結果、異なるアンプリコン間でより均一なアンプリコン収量が得られる。
１塩基あたりの十分なシークエンシング網羅を達成するための特定の量のＤＮＡおよび／または特定の数のＰＣＲポジティブ液滴のいずれかを生成させるために、一定の量のＤＮＡが必要とされる。液滴のわずかな割合、標準的な手順でおおよそ３分の１、しかＰＣＲポジティブでないため、テンプレートＤＮＡ分子あたりの当量ＰＣＲ収率を達成するには、より多くのＤＮＡがかかる。より多くのゲノムＤＮＡを加えることにより、ＰＣＲポジティブ液滴の数および従ってアンプリコン収量を増加させることができる。例えば、液滴の数を一定に維持しながらのゲノムＤＮＡの量を２倍増加させると、アンプリコン収量は２倍になるだろう。しかし、同じ液滴内の遺伝子が両方の対立遺伝子を有する有意な機会が存在する前に加えることができるゲノムＤＮＡの量には限界があり、その結果、対立遺伝子特異的ＰＣＲに打ち勝つことおよび対立遺伝子ドロップアウトをもたらすことについての液滴ＰＣＲの利点は無くなる。
より多くのゲノムＤＮＡのインプットを可能にする１つの方法は、より多くの液滴を生成させて液滴あたりの半数体分子の比率を一定に保つことによる。例えば、ＤＮＡの量を２倍にすることおよび液滴の量を２倍にすることで、同じ液滴あたりの半数体ゲノム比を維持しながらアンプリコン収量を２Ｘ増加させる。しかし、液滴の数を２倍にすることは問題が多い上、ＤＮＡの量を増加させることは、限られた量のＤＮＡを有する使用者には難しい。
液滴内でのＰＣＲプライマーの多重化は、インプットＤＮＡ量を同じにまたはより少なく保って同等のまたはより大きいアンプリコン収量を生じさせながら、同時にＰＣＲ液滴数を増加させることができる。これは、より多くのＤＮＡを消費することなく、ＰＣＲポジティブ液滴の量とアンプリコン収量の総合的増加をもたらす。
例として、４液滴ごとに平均１つの半数体ゲノムまたは１液滴あたり平均１／４の半数体ゲノムおよび１液滴あたり１つのＰＣＲプライマーがある場合、液滴内にＰＣＲプライマーにとって適正なテンプレートが存在する機会は、４分の１である。しかし、１液滴あたり２つのＰＣＲプライマーがある場合には、液滴内に適切なテンプレートが存在することとなる機会は２倍になる。この結果、２個のうち１個の液滴がＰＣＲポジティブとなり、これは、インプットＤＮＡを２倍にすることなくアンプリコン収量を２倍にする。２ｘ多重化プライマーを含有する液滴の数を２倍にし、ＤＮＡを一定に保った場合には、ＰＣＲポジティブ液滴の数は落ちて４分の１に戻るが、液滴数が倍増されているためＰＣＲ液滴の総数は同じままである。各液滴内の多重化レベルを４ｘに増加させ、インプットＤＮＡが同じである場合、各液滴内に適正なテンプレート分子が存在する機会は２倍になる。この結果、ＰＣＲポジティブ液滴の数は２分の１に増加することとなり、これは、インプットＤＮＡの量を増加させることなくアンプリコン収量の量を２倍にする。このように、各液滴内のＰＣＲプライマーの多重化を増すことにより、および全体的に液滴の数を増加させることにより、インプットＤＮＡの量を増加させることなくアンプリコン収量を４倍増加させることができる。
あるいは、アンプリコン収量がすでに十分である場合、各液滴内のＰＣＲプライマーについての多重化レベルを増すことにより、アンプリコン収量を犠牲にすることなくインプットゲノムＤＮＡの量を低下させることができる。例えば、ＰＣＲプライマーの多重化レベルが１ｘから２ｘになると、同じ総アンプリコン収量をなお維持しながらインプットゲノムＤＮＡの量を２ｘ減少させることができる。
１液滴あたりのＰＣＲプライマー対の数が、たとえ１より多かったとしても、やはり１液滴あたり１つのテンプレート分子しかなく、従って、１液滴あたり１つのプライマー対しか一度に利用されることとならない。これは、対立遺伝子特異的ＰＣＲまたは異なるアンプリコン間の競合のいずれかからのバイアスを無くすことについての液滴ＰＣＲの利点が維持されることを意味する。
液滴ベースの増幅および単一液滴内の複数のターゲット配列の検出についての例示的実証実験をここに示す。５セットのプライマー（ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２についてのプライマー）の複数のコピーを、テンプレートＤＮＡおよびＰＣＲマスターミックスと一緒に、様々な濃度で単一の液滴に封入した。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、ＳＭＮ１またはＳＭＮ２に特異的に結合するプローブも、それらのプライマーを含有する液滴に封入した。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰおよびＥ１ａについてのプローブをＶＩＣ色素で標識し、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２についてのプローブをＦＡＭ色素で標識した。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２の配列をＰＣＲによって増幅した。標準的な熱サイクリング設定でＰＣＲを行った。例えば：
１０分間９５℃
３１サイクル
１５秒間９２℃
６０秒間６０℃ 。
ＰＣＲ終了時、各液滴からの蛍光放射を決定し、その波長および強度に基づいて散布図にプロットした。対応する蛍光波長を有する液滴をそれぞれが表す６つのクラスタを示した。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰおよびＥ１ａクラスタは、３つの別個の強度でＶＩＣ色素の蛍光を示し、ＳＭＮ１およびＳＭＮ１クラスタは、２つの別個の強度でＦＡＭ色素の蛍光を示した（図５）。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２から選択される１つ以上の配列をそれぞれが有する液滴の数をその散布図から決定することができる。
液滴ベースの増幅および単一液滴内の複数のターゲット配列の検出についてのもう１つの実証実験では、５セットのプライマー（ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび８１５Ｇについてのプライマー）を、テンプレートＤＮＡ、ＰＣＲマスターミックスおよびプローブと一緒に、様々な濃度で単一の液滴に封入した。５つの異なるプローブＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび８１５Ｇも、それらのプライマーを含有する液滴に封入した。ＴＥＲＴおよび８１５ＡについてのプローブをＶＩＣ色素で標識し、８１５ＧについてのプローブをＦＡＭ色素で標識した。ＲＮａｓｅＰおよびＥ１ａのそれぞれについては、一方をＶＩＣ色素で標識し、他方をＦＡＭ色素で標識した、２つのプローブを封入した。
プライマーとプローブの両方を含有する液滴を、テンプレートを含有する液滴と融合させた。それらの融合液滴でＰＣＲ反応を行って、ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび８１５Ｇの配列を増幅した。標準的な熱サイクリング設定でＰＣＲを行った。
ＰＣＲ終了時、各融合液滴からの蛍光放射を決定し、その波長および強度に基づいて散布図にプロットした。対応する蛍光波長および強度を有する液滴をそれぞれが表す６つのクラスタを示した。ＴＥＲＴおよび８１５Ａクラスタは、２つの別個の強度でＶＩＣ色素の蛍光を示し；８１５Ｇクラスタは、ＦＡＭ色素の蛍光を示し；ならびにＲＮａｓｅＰおよびＥ１ａクラスタは、別個の強度でＦＡＭおよびＶＩＣ両方の色素の蛍光を示した（図６）。ＴＥＲＴ、ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび８１５Ｇから選択される１つ以上の配列をそれぞれが有する液滴の数をその散布図から決定することができる。ＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび／または８１５Ｇ配列を有する液滴の数とＴＥＲＴ配列を有する液滴の数の間の比によって、テンプレート内のＲＮａｓｅＰ、Ｅ１ａ、８１５Ａおよび８１５Ｇのコピー数を決定した（図６）。
液滴ベースのデジタルＰＣＲ反応における多重化プライマー対のもう１つの例示的実証実験では、２つの液滴ライブラリーを生成させた：各液滴が１つのプライマー対しか含有しない、液滴ライブラリーＡを生成させ；およびプライマー対が各液滴内で５ｘレベルで多重化された、液滴ライブラリーＢを生成させた。標準的な手順を用いて液滴ライブラリーＡおよびＢでＨａｐＭａｐサンプルＮＡ１８８５８を二重反復で処理した。液滴ライブラリーＡには２μｇのサンプルＤＮＡを使用し、５ｘマルチプレックス液滴ライブラリーＢには１μｇのサンプルＤＮＡを使用した。ＰＣＲ増幅後、両方の液滴ライブラリーをばらし、Ｑｉａｇｅｎ ＭｉｎＥｌｕｔｅカラムで精製し、その後、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒにかけた。サンプルは、ＩｌｌｕｍｉｎａによりＩｌｌｕｍｉｎａ ＧＡＩＩを用いて５０ヌクレオチド読み取りでシークエンシングされ、標準的なシークエンシング測定基準を用いてそれらのシークエンシング結果を分析した。下の表に示す標準的な測定基準を用いて、５ｘ多重化液滴ライブラリーＢからの結果をシングルプレックス液滴ライブラリーＡと比較した。
５ｘ多重化液滴ライブラリーＢから得た結果は、液滴ライブラリーＡから得たものと等価またはそれより良好であった。プライマーの多重化は、インプットＤＮＡ低減の追加の利点と共に、塩基網羅（ｂａｓｅ ｃｏｖｅｒａｇｅ）、特異性および均一性について一重化（ｓｉｎｇｌｅｐｌｅｘ）が成すものと同じシークエンシング結果をもたらす。
全読み取り：与えられたサンプルデータの中で見いだされたシークエンシング読み取りの総数
位置づけられた読み取り（％）：ヒトゲノムにマップされた全読み取りの百分率。
特異性：ターゲットを含むマップされた読み取りの百分率。前記ターゲットはすべてのアンプリコン配列を含むが、プライマー配列を含まない。
平均塩基網羅：ターゲット内の平均塩基網羅。前記ターゲットはすべてのアンプリコン配列を含むが、プライマー配列を含まない。
Ｃ１：少なくとも１ｘ塩基網羅を有するターゲットの％。注記：非一意的シークエンシング読み取りがランダムにマップされる。
Ｃ２０：少なくとも２０ｘ塩基網羅を有するターゲットの％。
Ｃ１００：少なくとも１００ｘ塩基網羅を有するターゲットの％
塩基網羅（平均の０．２ｘ）：平均塩基網羅の少なくとも２０％を有するターゲットの％。
単色遺伝子コピー数アッセイ
伝統的なデジタルＰＣＲ法は、個々のターゲットに特異的な単一標識プローブの使用を含む。図７は、液滴ベースのデジタルＰＣＲを用いるターゲット配列の一色検出を図示する概略図である。図７のパネルＡに示すように、テンプレートＤＮＡをフォワードプライマー（Ｆ１）およびリバースプライマー（Ｒ１）で増幅する。カラー１の蛍光体で標識されたプローブ（Ｐ１）は、ターゲット遺伝子配列（ターゲット１）に結合する。限界または終点希釈条件下でテンプレートＤＮＡの希釈溶液で微小液滴を作製する。ターゲット配列を含有する液滴は蛍光を放射し、レーザによって検出される（パネルＢおよびＣ）。ターゲット配列を含有するまたは含有しないマイクロカプセルの数を、ヒストグラムで示し（Ｄ）、定量した（Ｅ）。
図８は、マイクロ流体デバイスでの２つの遺伝子配列の二色検出を図示する概略図である。図８のパネルＡに示すように、テンプレートＤＮＡを２セットのプライマー：フォワードプライマー（Ｆ１）とリバースプライマー（Ｒ１）、およびフォワードプライマー（Ｆ２）とリバースプライマー（Ｒ２）、で増幅する。カラー１の蛍光体で標識されたプローブ（Ｐ１）は、ターゲット１に結合し、カラー２の蛍光体で標識されたプローブ（Ｐ２）は、ターゲット２に結合する（パネルＢおよびＣ）。限界または終点希釈条件下でテンプレートＤＮＡの希釈溶液で微小液滴を作製する。ターゲット配列１または２を含有する液滴は、カラー１または２の蛍光をそれぞれ放射し、レーザによって光学的に検出される（パネルＢおよびＣ）。ターゲット１または２を含有するマイクロカプセルの数を、ヒストグラムによってパネル（Ｄ）に示す。
本発明の方法は、同じ蛍光体を有するプローブを使用してｄＰＣＲにより複数の異なるＤＮＡターゲットの正確な定量を行うことを含む。図９は、マイクロ流体デバイスでの３つの遺伝子配列の二色検出を図示する概略図である。図９のパネルＡに示すように、テンプレートＤＮＡを３セットのプライマー：フォワードプライマー（Ｆ１、Ｆ２およびＦ３）とリバースプライマー（Ｒ１、Ｒ２およびＲ３）、で増幅する。プローブ（Ｐ１、Ｐ２およびＰ３）は、蛍光体（カラー１、カラー２およびカラー１）で標識されており、ターゲット遺伝子配列（ターゲット１、ターゲット２およびターゲット３）に結合する（パネルＢおよびＣ）。限界または終点希釈条件下でテンプレートＤＮＡの希釈溶液で微小液滴を作製する。ターゲット配列１または３を含有する微小液滴は、２つの異なる強度でカラー１の蛍光を放射し；ならびにターゲット配列２を含有する微小液滴は、カラー２の蛍光を放射する。ターゲット１、２または３を含有する微小液滴の数を、ヒストグラムによりパネルＤに示す。
液滴デジタルＰＣＲ（ｄＰＣＲ）からの先程の結果は、同じ蛍光体を使用して複数の独立したＰＣＲ反応をランでき、別々に定量できることを示している。とりわけ、ＳＭＮ２アッセイは、ＦＡＭ検出チャネルにおいて有意に高いシグナルを有する予期せぬ液滴集団を生じさせる。
結果を図１０に図示する。図１０における左側のドットプロットは、反応に存在するＳＭＮ１ブロッカーを有することの効果を図示している。左側のドットプロットに図示されている４つのクラスタは、次のとおりである：上部左クラスタは、参照配列（ＳＭＡＲＣＣ１）を含有する微小液滴を含み；下部左クラスタは、いずれの配列も含有しない微小液滴を含み；下部中央クラスタは、ＳＭＮ１の配列を含有する微小液滴を含み；および下部右クラスタは、ＳＭＮ２の配列を含有する微小液滴を含む。図１０の右側のドットプロットは、ＳＭＮ１ブロッカーが反応に存在しなかった４つのクラスタを図示しており；上部左クラスタは、参照配列（ＳＭＡＲＣＣ１）を含有する微小液滴を含み；下部左クラスタは、いずれの配列も含有しない微小液滴を含み；下部中央クラスタは、ＳＭＮ１の配列を含有する微小液滴を含み；および下部右クラスタは、ＳＭＮ２の配列を含有する微小液滴を含む。左のパネルと比較して右のパネルにおける下部中央クラスタのシフトは、蛍光強度により配列の存在についての非常に感度の高い測定がもたらされることを確証する。
いずれの理論によっても拘束されることを意図しないが、ＳＭＮ１遺伝子へのＳＭＮ２プローブへの弱い会合から、その遺伝子に対するブロッカー（ＳＭＮ１遺伝子に対する非蛍光相補的プローブ）の存在にもかかわらず、クラスターが発生することが、その最も簡単な説明である。
予期せぬクラスタ源としてのＳＭＮ１の１つの決定的確証は、ＳＭＮ１ブロッカーの存在への、この特徴の強度について観察される依存であった。より高いＦＡＭ蛍光強度への明確なシフトが、ブロッカー不在下で観察された（図１０）。もう１つの決定的確証では、予想と完全に一致して０．９６の参照サイズに対するＳＭＮ１（推定）集団サイズの比（それぞれの２つのコピー）（Ｓ＿１３１サンプル）。同数のＳＭＮ１コピーを有するもう１つのサンプル、Ｓ＿１２２、は、あるランでは０．８８および別のランでは０．９３の比を生じさせ、これも予期せぬクラスタについて提案した説明と一致した。
いずれの理論によっても拘束されることを意図しないが、これらの観察は、ＳＭＮ１ ＤＮＡへのＳＭＮ２プローブの結合が高い蛍光シグナルを生じさせることを示している。この現象を説明する単純な動態モデルは、ポリメラーゼが相補鎖をふさぐより速い速度でＳＭＮ２プローブのＳＭＮ１ ＤＮＡへのハイブリダイゼーションが平衡に達することを想定している。従って、各熱サイクルの際に放出されるプローブ蛍光体の量は、結合しているプローブの数に比例する（または等しいことさえある）。それ故、結合親和性が低いほど、放出されるプローブ蛍光体の数は少ない。ＳＭＮ２プローブとＳＭＮ１配列のミスマッチ（単数または複数）のため、プローブの親和性は、ＳＭＮ２よりＳＭＮ１に対するほうが低いと確かに予想される。このモデルは、ｓＭＮ１ブロッカーへのシグナル依存性も説明する：該ブロッカーは、ポリメラーゼエキソヌクレアーゼ活性によるＳＭＮ２プローブ加水分解を競合的に阻害する。
しかし、プローブハイブリダイゼーションがエキソヌクレアーゼ活性の前に平衡に達しない場合もある。この場合、会合速度がより支配的な役割を果たすであろう。同様の理論が適用される。マッチング部位への結合速度は、ミスマッチ部位へより速い可能性が高く、ブロッカーは、ミスマッチ部位へのプローブ結合を減速させるように作用するであろう。ＳＭＮ１ ＤＮＡへのＳＭＮ２プローブの結合は、従来のバルクｑＰＣＲによって、とりわけＳＭＮ２の不在下で、検出可能であり得るが、ここで示すもののような高定量的結果は、非常に見込み薄である。確かに、同じ色の蛍光体で２つの異なるＤＮＡ配列モチーフを定量するｑＰＣＲまたは任意の他の技術についての報告はない。液滴内での単一分子増幅による個々の反応の隔離は、シグナルへの種々雑多な寄与に関する一切の混乱を無くす。
同じ色の蛍光体の複数のプローブでＤＮＡを定量することの利点は、ここに示す２つの高相同性配列の実施例を超えて広がる。むしろ、いかなる類似度または非類似度のいかに多数の配列も、異なるプローブがそれらのそれぞれのＤＮＡ結合部位への有意に異なる結合占有率を有する限り、定量することができる。
多重化反応のためのｄＰＣＲアプローチのもう１つの利点は、異なる反応が、バルクｑＰＣＲアッセイでのように試薬について互いに競合しない点である。しかし、予期せぬ交差反応性についての可能性は残存する。マルチプレクセスアッセイ（ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｅｓ ａｓｓａｙ）は、より希薄なサンプルを必要とし得る。例えば、１０％占有率で、デュプレックス反応は、その時の２倍の占有率１％を有するであろう。それ故、１０個のＰＣＲ＋液滴のうちの１つは２倍となり、その結果、２つのプローブの増白剤と少なくとも同様の高さのおよびことによるとそれより高い最終強度をもたらす。単純なデュプレックス系については、各プローブからの寄与を回収することができた。この実施例では、プローブ１に対するＰＣＲ＋液滴の総数は、（プローブ１）＋（プローブ１＋プローブ２）となるだろう。多重度が高いほど、大きな希釈を必要とする。例えば、１％占有率での４プレックスについては、他の３つのいずれかとオーバーラップする１つのプローブの確率は、〜３％であり、その誤差は、一部の用途にとっては高すぎる。大きな希釈の必要は、数の多いｄＰＣＲ反応に好都合に働く。
本発明のもう１つの実施例では、参照ＤＮＡとターゲットＤＮＡの両方についての遺伝子コピー数アッセイにおいて単一の蛍光体（ＦＡＭ）を使用した。１細胞あたりターゲット遺伝子の０〜１６コピーに相当する、参照遺伝子に対するターゲット遺伝子コピー数の変化を表すために、様々な濃度のプラスミドＤＮＡを有するモデルシステムを使用した。ＢＣＫＤＨＡおよびＳＭＮ２プラスミドＤＮＡは、それぞれ１×および０．５×プライマーおよびプローブと共に参照およびターゲットとして役立った。８：１ ＳＭＮ２対ＢＣＫＤＨＡの出発比率で、サンプルを同じ濃度のＢＡＣＤＨＡの溶液で２×系列希釈して、ＳＭＮ２の量だけを変動させた。得られたサンプルを乳化させ、熱サイクルに付し、１０５個を超える液滴を、前のセクションで説明したように各サンプルについて分析した。このプロセスを三重反復で繰り返した。
本発明の方法は、各プローブに一意的な蛍光シグネチャの同定のための分析技術も含む。本発明のこの実施例では、３つの異なるテンプレートＤＮＡサンプルについての液滴蛍光強度のヒストグラムを図１１ａに示す：無テンプレート対照（点線）、ＢＣＫＤＨＡのみ（実線）、および１：１ ＢＣＫＤＨＡ対ＳＭＮ２（一点鎖線）。明瞭さのために、一定のピークについての類似性を強調するためにオーバーラップさせたヒストグラム、および特徴のすべてを明らかにするために互いに並置したヒストグラム、両方を示す。１：１ ＢＣＫＤＨＡ対ＳＭＮ２の場合、３つの集団が容易に認められる：最も有力な特徴が０．０８Ｖに現れ、ならびに０．２７および０．７１Ｖでの２つの小さなピークがはっきりわかった。無テンプレート対照では両方の小さいピークが消失したが、大きいものは残存したので、０．０８Ｖでの最も有力な特徴をＰＣＲ（−）液滴に割り当てた。０．７１Ｖでのピークは、ＢＣＫＤＨＡだけの添加に伴って生ずる唯一の特徴であるので、ＢＣＫＤＨＡに割り当て、そしてその後、ＳＭＮ２を添加すると０．２７Ｖでのピークが現れ、割当てを終えた。図１１ａのスケールでは見えない非常に小さいピークが〜０．９Ｖに現れ、これは、両方の遺伝子によって占有された液滴に対応する。本発明のもう１つの方法として、異なるピークが同定されたら、各ピーク内の液滴をそれぞれの可能な状態（ＢＣＫＤＨＡもしくはＳＭＮ２または両方についてはＰＣＲ（＋）、あるいはＰＣＲ（−））に応じてカウントし、その後、遺伝子コピー数を占有の比率から決定した。系列希釈での各サンプルについての遺伝子コピー数を期待値に対して図１１ｂにプロットし（ＳＭＮ２のＢＳＫＤＨＡに対する期待比率に対するＳＭＮ２のＢＣＫＤＨＡに対する観察比率）、十分な範囲にわたって非常によく直線（ｙ＝１．０１ｘ）に当てはまった（Ｒ２＝０．９９９７、勾配１．０１）。これは、１細胞あたり０から１６のＳＭＮ２コピーの等価物の正確で的確な測定を確証している。
選択的にスプライスされた転写産物の検出
同じ原理を用いて、選択的にスプライスされた転写産物を検出し、カウントした。ＲＮＡ転写産物内のそれぞれのエキソンに特異的であるＴａｑＭａｎアッセイ物を設計することができる。ＲＮＡをｃＤＮＡにした後、それを液滴に１液滴あたり１コピー以下で封入することができる。この液滴は、それぞれのエキソンについての多重化ＴａｑＭａｎアッセイ物も含有するであろう。それぞれのＴａｑＭａｎアッセイ物は、異なるプローブを含有するが、すべてのプローブに同じ蛍光色素が付いているだろう。それらの液滴を熱サイクルに付して、それぞれのＴａｑＭａｎアッセイ物についてのシグナルを生成させることとなる。サンプル中に多数のスプライス変異体がある場合、それらは、スプライシング事象に依存して異なる数のエキソンを含有するだろう。各液滴の蛍光強度は、存在するエキソンの数に依存して異なるだろう。異なる強度を有する液滴の数をカウントすることにより、サンプル中の異なるスプライス変異体の存在および存在度を同定することが可能であろう。
不均一サンプル中のコピー数変異体
不均一サンプルが異なるコピーレベル数を有する成分を含有するかどうかを決定することが可能だろう。アッセイすべきコピー数変異体を染色体に沿って十分近い間隔で配置した場合、サンプルからのＤＮＡをフラグメント化し、１液滴あたり１半数体ゲノム当量以下のレベルで液滴に封入することができよう。この液滴は、そのコピー数変異体に特異的なＴａｑＭａｎアッセイ物も含有するだろう。各液滴におけるシグナルの強度は、そのサンプルについての存在するコピー数変異体の数に依存するであろう。異なる強度の液滴の数のカウントは、特定のサンプル中の幾つの細胞が如何なるレベルのコピー数変異体を有するかというようなことを示すだろう。
ＴａｑＭａｎ（登録商標）プローブ蛍光強度のチューニング
蛍光強度によるプローブの同定は、プローブ、特に、密なプローブパタンを有するより高プレックスの（ｈｉｇｈｅｒ−ｐｌｅｘ）アッセイのためのプローブ、の輝度の調整を必要とすることが多い。前のセクションにおいて、遺伝子コピー数アッセイ用のプローブは、非常によく分解されたピークを生じさせた（図１１ａ）。明らかに、測定値の分解にコピー数アッセイにおける１つまたは多数のさらなるプローブを適応させる余地が存在するが、既存のアッセイ物への干渉を避けるために新たなプローブの蛍光強度を調整するための方法が求められる。本発明の１つの方法は、より高プレックスの反応における相対強度を最適化するための非常に単純な技術としてプローブおよびプライマー濃度を共に変化させることを含む。
図１２は、マイクロ流体デバイスでの特定のターゲットに対する検出可能標識の強度のチューニングについての概略図である。図１２のパネルＡに示すように、テンプレートＤＮＡを２セットのプライマー：フォワードプライマー（Ｆ１およびＦ２）およびリバースプライマー（Ｒ１およびＲ２）、で増幅する。プローブ（Ｐ１およびＰ２）は、カラー１の蛍光体で標識されており、ターゲット１およびターゲット２にそれぞれ結合する。ターゲット２からの蛍光は、Ｐ２とターゲット２の間の一塩基ミスマッチのため、ターゲット１からのものより強度が低い。パネルＢに示すように、テンプレートＤＮＡを２セットのプライマー：フォワードプライマー（Ｆ１およびＦ２）およびリバースプライマー（Ｒ１およびＲ２）、で増幅する（パネルＢ）。ターゲット２からの蛍光は、蛍光体で標識されていない競合プローブ２の存在のため、ターゲット１からのものより強度が低い。パネルＣに示すように、テンプレートＤＮＡを２セットのプライマー：フォワードプライマー（Ｆ１およびＦ２）およびリバースプライマー（Ｒ１およびＲ２）、で増幅する。プローブ（Ｐ１およびＰ２）は、カラー１の蛍光体で標識されており、ターゲット１およびターゲット２にそれぞれ結合する。ターゲット２からの蛍光は、異なる蛍光体で標識されている競合プローブ２の存在のため、ターゲット１からのものより強度が低い。
図１３は、異なる参照遺伝子、リボヌクレアーゼＰ（ＲＮａｓｅＰ）、についてのプローブおよびプライマーの系列希釈全体を通してのプローブ蛍光強度を、１液滴あたり０．０２のターゲットＤＮＡ分子の占有率でＣｏｒｉｅｌｌ細胞株ＮＡ３８１４からの一定量のゲノムＤＮＡに対して示すものである。プローブ蛍光強度は、希釈誤差および他のラン間の差についての補正、例えば、ＰＣＲ（−）液滴を参照として使用する光学的再アラインメントの後、〜０．１５から０．４μＭにわたる狭い濃度範囲−大体、０．２μＭの典型的なプローブ濃度あたりが中心−にわたってプローブ濃度に正比例して変動した（Ｒ２＝０．９９５）。要約すると、増幅それ自体に影響を及ぼすことなく多重化アッセイのチューニングのために小さいが適正な範囲にわたって希釈によりプローブ強度を変えることができる。
プローブ蛍光強度を調整するための上の実施例は、プローブおよびプライマー濃度を共に同じ率で変えることを含むが、本発明は、プローブ強度を変えるためにこの方法のみに限定されない。プローブ強度を変えるための当業者に公知の他の方法も考えられる。そのような方法としては、プローブ濃度のみを変えること；プライマー濃度のみを変えること；フォワードプライマー濃度のみを変えること；リバースプライマー濃度のみを変えること；プローブ、フォワードおよびリバースプライマー濃度を任意の方法で変えること；熱サイクリングプログラムを変えること；ＰＣＲマスターミックスを変えること；蛍光体を欠くプローブの何らかの部分をアッセイ物に組み込むこと；またはプローブ結合に対する任意のハイブリダイゼーションベースの競合阻害剤、例えばブロッキングオリゴマーヌクレオチド、ペプチド核酸およびロックド核酸、をアッセイ物に組み込むことが挙げられる。本発明は、単独でまたは任意の組み合わせで用いられる、プローブ蛍光強度を調整するこれらの方法、またはプローブ蛍光強度を調整するための任意の他の方法の使用を援用する。
より高プレックスの反応
本発明の１つの方法は、単一プローブカラー（すなわち蛍光体）を用いてより高プレックスのアッセイを行うことを含む。上で説明したように、様々な手段により、各強度レベルがＤＮＡターゲットを一意的に同定するようにプローブ蛍光強度を調整することができる。例えば、ターゲットＴ１、Ｔ２、Ｔ３およびＴ４は、強度レベルＩ１、Ｉ２、Ｉ３およびＩ４によって一意的に同定され得る。理論により拘束されることを意図しないが、ターゲットの一意的同定のために可能な強度レベルの最大数は、異なる強度レベルの分解−すなわち、プローブの平均強度間の隔たりと比較した特定のプローブそれぞれについての強度の幅−に関連づけられ、ならびにプローブの数が増加するにつれて増す傾向がある空の液滴の強度にも関係づけられる。強度レベル数は、０、または１、または２、または３、または４、または１０以下、または２０以下、または５０以下、または１００以下であり得る。強度レベル数は、１００より上であることもある。下に示す実施例においては、３ほどもの多さの強度レベルを実証する。
本発明のもう１つの方法は、多数の異なるプローブカラー（すなわち蛍光体）を用いてより高プレックスのアッセイを行うことを含む。上の単色多重化アッセイについてと同様に、各カラープローブについて、強度に基づき複数のターゲットを同定することができる。加えて、スペクトル的に分離可能である多数の色を同時に使用することができる。例えば、単一の液滴が、４つの異なるターゲットのための４つの異なるプローブを含有してもよい。２つのプローブが、異なる強度のカラーＡのもの（例えば、Ａ１およびＡ２）であってもよく、他の２つのプローブが異なる強度を有するカラーＢのもの（例えば、Ｂ１およびＢ２）であってもよい。対応するターゲットは、Ａ１、Ａ２、Ｂ１およびＢ２についてそれぞれＴ１、Ｔ２、Ｔ３およびＴ４である。液滴がカラーＡの蛍光の増加を示す場合には、その液滴はターゲットＴ１またはＴ２のいずれかを含有した。このとき、カラーＡの蛍光強度に基づき、ターゲットがＴ１と同定されることもあり、またはターゲットがＴ２と同定されることもあった。しかし、液滴が、カラーＢの蛍光の増加を示す場合には、その液滴はターゲットＴ３またはＴ４のいずれかを含有した。このとき、カラーＢの蛍光強度に基づき、ターゲットがＴ３と同定されることもあり、またはターゲットがＴ４と同定されることもあった。理論により拘束されることを意図しないが、可能な異なる色の最大数は、異なる蛍光体の蛍光放射間のスペクトルのオーバーラップによって限定される。色の最大数は、１、または２、または３、または４、または１０以下、または２０以下であり得る。色の最大数は、２０より高いこともある。後続の実証実験において、色の最大数は２である。
本発明のもう１つの方法は、多数の異なるプローブカラー（すなわち、蛍光体）を用いてより高プレックスのアッセイを行うことを含むが、一意的な色および強度を有する単一のタイプのプローブで各ターゲットを同定する上記戦略とは異なり、代わりにこの方法では色と強度の両方の一意的シグネチャを構成する複数のプローブによって単一のターゲットを同定することができる。例えば、単一の液滴が、３つの異なるターゲット（例えば、Ｔ１、Ｔ２およびＴ３）を測定するために４つの異なるプローブを含有してもよい。２つのプローブがカラーＡのもの（例えば、Ａ１およびＡ２）であってもよく、２つのプローブがカラーＢのもの（例えば、Ｂ１およびＢ２）であってもよい。Ｔ１をプローブＡ１によって測定し、Ｔ２をプローブＢ１によって測定するが、Ｔ３は、プローブＡ２とＢ２の両方によって測定する。従って、液滴がＴ１のみを含有するとき、カラーＡの蛍光増加が現れる。液滴がＴ２のみを含有するとき、カラーＢの蛍光増加が現れる。しかし、液滴がＴ３を含有するとき、カラーＡとＢの両方の蛍光増加が現れる。
一般に、理論により拘束されることを望まないが、より高プレックスのｄＰＣＲについての上記３つの方法は、終点希釈の条件下で、すなわち、複数の異なるターゲット分子が同じサンプルを共に占有する確率が、任意の単一のターゲットが液滴を占有する確率に比べて非常に低いとき、実行が最も簡単である。多重占有により、同じ反応液滴内で競合する同時に存在するアッセイ物の複雑さ、およびまた、個々の反応生成物の２つの蛍光強度の合計に等しいこともあり等しくないこともある２つの異なる反応生成物からの蛍光の組み合わせを含む得られる蛍光強度の割り当ての複雑さが生ずる。しかし、本発明の方法は、多重占有から生ずるこれらの複雑化に対応することができる。
より高プレックスの反応のための本発明の方法は、プライマーおよびプローブを対にする方法も含む。最も単純な場合、例えば、ターゲットが異なる細胞からのものであるとき；またはターゲットが単一の細胞タイプの中の異なる染色体からのものであるとき；またはターゲットが、単一の染色体の中で互いに遠く離れているので、ＤＮＡフラグメント化中に物理的に分離した状態になるとき；またはターゲットが、染色体の中で互いに非常に接近しているが、それにもかかわらず、ＤＮＡのターゲッティングされた切断により、例えば制限酵素消化により、分離した状態になるとき；または任意の他の理由のため、ターゲットは同じＤＮＡフラグメント上にある可能性が低い。そのような場合、各プローブを単一のプライマー（フォワードおよびリバース）セットと対にすることができる。しかし、他の場合、例えば、ターゲットが同じコドン内にあるとき、または任意の他の理由のため、ターゲット領域は、しばしば、同じＤＮＡフラグメント上にあり得る。そのような場合、単一のプライマーセットが複数のプローブのために役立つだろう（一例として、Ｐｅｋｉｎら参照）。
より高マルチプレックスの反応を行って、２つのＳＮＰのハプロタイプを区別することができる。例えば、位置１に遺伝子型ＡまたはＡ’があり得、位置２にＢまたはＢ’の遺伝子型があり得ると仮定する。二倍体ゲノムでは、４つの特有のハプロタイプが可能である（Ａ、Ｂ；Ａ、Ｂ’；Ａ’、Ｂ；およびＡ’、Ｂ’）。例えば、Ａ’およびＢ’が感染に対する薬物耐性突然変異を表す場合、Ａ’ＢおよびＡＢ’は、細心の注意を払って処置しなければならない有意な薬物耐性を表すＡ’Ｂ’より重症でなく、Ａ’Ｂ’とは異なって処置される場合が多い。強度識別を伴うデジタルＰＣＲは、他の３つのハプロタイプの混合物のバックグラウンドの中での低い頻度のＡ’Ｂ’の同定に理想的に適する。ハプロタイピング情報は、ＨＬＡにおけるハプロタイプの構築にも重要である。本実施例を構築できる１つの方法は、カラー１をＡのために用い、カラー１が、対立遺伝子ＡまたはＡ’を示すそれぞれ高いまたは低い強度のものであり、およびカラー２をＢのために用い、カラー２が、ＢまたはＢ’を示すそれぞれ高いまたは低い強度のものであるようなアッセイ設計による。［低、低］に対応する［カラー１、カラー２］の集団は、ＡＢの対立遺伝子の測度であり、［高、低］対立遺伝子Ａ’Ｂおよび［Ａ’Ｂ’］の対立遺伝子は、主にＡ’ＢとＡＢ’の混合物であるバックグラウンドにおいても［高、高］と容易に区別可能であろう。図２２参照。ある場合には、Ａ ＳＮＰ位置とＢ ＳＮＰ位置の両方を含有する核酸の長い単一分子を液滴に封入することによって開始することが有利であろうし、別の場合には、単個細胞、細菌または他の生物を液滴に封入することによって開始して、その後、生物から核酸を放出させることが望ましいであろう。さらに他の実施形態では、ターゲット材料の結合相互作用または標識の複数のタイプについての代用マーカーとして、複数の同時に存在するターゲットのマルチプレックス強度検出を用いることができる。この技術もまた、単一分子検出に限定されず、および単個細胞（例えば、細菌、体細胞など）におけるハプロタイプ検出に使用することができる。単個細胞分析の場合、選別工程をハプロタイピングの前に適用してもよい。
棘筋萎縮症についての５プレックスアッセイ
本発明の１つの態様を、棘筋萎縮症（ＳＭＡ）についての幾つかの遺伝マーカーの定量の実例実証実験の実施にまとめた。ＳＭＡは、その重要な臨床的有用性とその複雑な遺伝的特質の両方のため、実例実証実験の１つに選択した。それは二番目に高頻度の致命的神経変性疾患であり、１０，０００のうち〜１の出生を襲う。ＳＭＡは、生存運動ニューロン１遺伝子（ＳＭＮ１、Ｗｉｒｔｈらにより総説されている）内のエキソン７のホモ接合不在に、最も多くの場合、起因するが、この容態の重症度は、ＳＭＮ２の遺伝子コピーの数によって変調され、１〜５コピー数で致死性から無症候性にわたる予後となる（Ｅｌｓｈｅｉｋｈらにより総説されている）。従って、ＳＭＮ２コピー数の正確な定量は、臨床的予後および遺伝学カウンセリングに重量である。ＳＭＮ１の大きな欠失とは別に、同じ遺伝子内の点突然変異または短い欠失／重複の数もＳＭＡの症例の〜４％の原因である。総合ＳＭＡアッセイへの有意な工程において、ここで実証実験する多重化ｄＰＣＲアッセイは、（ＳＭＮ１および２についての）コピー数アッセイと高頻度ＳＮＰのもの（ｃ．８１５Ａ＞Ｇ）についてのアッセイの両方を含む。
本発明の１つの実施形態は、ＳＭＡ診断のための５プレックスアッセイである。この５プレックスアッセイは、ＳＭＡに影響を与える共通の遺伝子変異体を定量するものであり、参照としてＢＣＫＤＨＡを用いるＳＭＮ１およびＳＭＮ２遺伝子についての２つのコピー数アッセイおよびとｃ．８１５Ａ＞Ｇ突然変異についてのＳＮＰアッセイを含む。２つの異なる色の蛍光体、ＦＡＭおよびＶＩＣ、を使用して、アッセイ物のそれぞれを一意的に定量した。ＳＭＮ１およびＳＭＮ２についてのプローブは、ＦＡＭのみを含有し、ｃ．８１５Ａについてのプローブは、ＶＩＣのみを含有した。しかし、ＢＣＫＤＨＡおよびｃ．８１５ＧにはＶＩＣ標識プローブとＦＡＭ標識プローブの混合物を使用した。この実施例におけるＶＩＣおよびＦＡＭ蛍光体の使用は、本発明を限定せず、むしろ、ＴａｑＭａｎアッセイと適合性の任意のスペクトル分離可能蛍光体での、または任意の他の蛍光発生性ハイブリダイゼーションベースのプローブ化学での、５プレックスアッセイを用いることができる。アッセイを検証するために、異なるプライマー／プローブ対のそれぞれについての単一のターゲット領域を含有するモデル染色体を合成した。ＥｃｏＲＶ制限部位が各ターゲットに隣接しており、それによってフラグメントを分離することができた。
本発明のもう１つの方法として、１つのプローブシグネチャ（色および強度）から生ずる液滴の統計的に類似した集団の同定および特性付けのために、ならびに１つの液滴集団と他のものとを識別するために、ヒストグラムベースのデータ提示および分析を本発明に組み込む。図１４ａは、液滴蛍光強度の２次元ヒストグラムを等高線付きヒートマップ（ｃｏｎｔｏｕｒｅｄ ｈｅａｔ ｍａｐ）として示すものであり、暖色ほど高い出現率を表す。標準的な技術を用いて、ＦＡＭおよびＶＩＣシグナルのスペクトルのオーバーラップを補正した。サンプルを１ターゲットあたり０．００６占有率でランした。６集団、アッセイ物について５およびＰＣＲ（−）液滴について１、が明瞭にはっきりと見える。本発明の１つの方法として、前記集団をアッセイ成分の選択的排除によって割当てた。例えば、ＳＭＮ２プライマーおよびプローブの排除は、前記ヒストグラムの下部右の集団を消去したが、他の点では分布は、不変のままであった。図１４ａにおいて割り当てを標識した。本発明者らは、この多重化方法が一般に当てはまることを発見したので、各ターゲットの十分分解されたまたは少なくとも区別可能な集団を対象に直ちにアッセイを行った。次に、本発明のもう１つの方法として、前のセクションにおいて説明したようにプローブ濃度をチューニングすることによって前記ヒストグラム中の異なる集団の相対的位置を調整して規則正しい間隔の長方形アレイにした。通常、２回以下の反復が最適化に必要である。
本発明のもう１つの方法では、異なる集団を十分によく分解して、長方形の境界を越えて統合することによって各集団内の液滴のカウントを可能にした。境界は、隣接ピーク間の中間部に位置する。本発明の方法は、長方形の境界、およびピーク間の特定の境界位置に拘束されない。むしろ、いずれの閉または開境界条件でも十分である。境界条件は、液滴数に到達するために境界を越えて重み付け統合を行うこともできるという意味で、「バイナリ」である必要がない。各クラスタのピーク位置は、検出効率の変動を説明するための空の液滴の強度に対する正規化後、ラン間で２％より大きく変動しない（データを示さない）。従って、一旦同定されると、統合のために同じ境界をサンプル間で再利用することができた。本発明の方法は、固定された境界位置に限定されない。サンプルまたは研究間での動的集団同定および境界選択を前もって処理する。Ｃｏｒｉｅｌｌ細胞レポジトリーからの２０の異なる患者サンプルをこのアッセイで分析した：ＳＭＡに罹患している４つ、１つのＳＭＡ保因者、および１５のネガティブ対照。アッセイ結果を図１４ｂに示す。遺伝子コピー数を、前のように、ターゲット液滴対参照液滴の数から誘導した占有率の比として計算した。図１１におけるコピー数測定と同様に、各アッセイによって期待整数値に非常に近い比を得たが、患者データのすべてを期待整数比に対する実際の比としてプロットしたとき、１の理想勾配から小さな系統的偏差が観察された。実測勾配は、ＳＭＮ１、ＳＭＮ２およびｃ．８１５Ａについてそれぞれ０．９２、０．９２および０．９９であった。明瞭さのために、図１４ｂにおけるデータを１の理想勾配に応じて拡大縮小した。
異なる患者についての観察された遺伝子型は、彼らの疾病状態（罹患していない、保因者、または罹患している）と一致した。ＳＭＡに罹患している患者は、それぞれ、ＳＭＮ１のゼロ個のコピーを有し（図１４ｂ中の番号ＳＭＡ１〜４）、保因者は、ちょうど１個のコピーを有し、およびネガティブ対照すべてが、２個または３個のコピーを有した（番号１〜１５）。３人の無関係な個体（番号６、８および９）がＳＭＮ１の３個のコピーを有し、これは、健常個体についての以前の報告と同様である２０％の率で生じた。ＳＭＮ１コピー数のばらつきは、それが染色体５ｑ１３の不安定な領域内に存するので、驚くべきことではない。より多種多様なＳＭＮ２コピー数が観察された。１から２個のコピーが対照群では最も一般的であったが、１人の個体は、ゼロ個のコピー（正常個体についての期待値と一致する分布）を有した。ＳＭＡ保因者および罹患患者は、平均してＳＭＮ２の高いコピー数を有した：保因者は５；罹患している２人は３個のコピーを有し、その他は２個のコピーを有した。罹患患者はすべて、Ｃｏｒｉｅｌｌレポジトリーによる臨床観察に基づき、ＳＭＡ タイプＩ、最重症形態、と診断された。ＳＭＮ２コピー数と疾患重症度の間の強い遺伝子型／表現型相関関係は、ＳＭＮ２の３個のコピーを有する２人の個体が、とりわけ、２年のＳＭＡタイプＩについての典型的な最大余命をはるかに超えてサンプリング時点で３年より長く生きていた患者ＳＭＡ１に関して、改善されたタイプＩＩ予後を有し得ることを示唆している。しかし、他のあまり十分に特性づけされていないまたは未知の修飾遺伝子が予後に影響を及ぼすかもしれないので、またすべてのＳＭＮ２コピーが完全遺伝子であることができるとは限らないため、ＳＭＮ２コピーのみに基づいて疾患の結果を予測することは、依然としてためらわれる。さらに、一部のタイプＩ患者は、より新しい臨床環境でより長く生存し始めている。従って、本発明者らが入手できる患者に関するわずかな臨床情報で、本発明者らのＳＭＮ２アッセイ結果は、疾患重症度についての広い期待値と一致した。
前記ＳＮＰアッセイは、すべての患者が正常なｃ．８１５Ａ遺伝子型を保有することを示し、ｃ．８１５Ｇの事例は観察されなかった。突然変異は比較的稀であり、従って、小さな患者パネルにおいて現れると予想されなかった。しかし、ＳＮＰアッセイでカバーされなかった２人の無関係な個体における明らかな余分な遺伝子フラグメントの存在は、興味深かった。ｃ．８１５Ａ＞Ｇアッセイは、ＳＭＮ１とＳＭＮ２とを、それらの高配列類似性のため、識別せず、それ故、ｃ８．１５ＡおよびＧの全コピーは、ＳＭＮ１およびＳＭＮ２のコピーの合計に等しいだろう。これは、健常患者、番号１および２（両方ともｃ．８１５Ａの１個の余分コピーを有した）を除いてすべての患者に当てはまった。ｃ．８１５は、エキソン６上に存し、ＳＭＮ１遺伝子とＳＭＮ２遺伝子とを識別するＳＮＰは、エキソン７上に存する故、前記余分な遺伝子は、エキソン７を欠くＳＭＮ１のフラグメントであり得る。これは、エキソン７の欠失がＳＭＡの症例の９５％の原因となる共通の突然変異であり、１／４０から１／６０の成人がそれを保有するため、妥当と思われる。従って、これらの患者は、同じ染色体上のＳＭＮ１の健常コピーを補償する少なくとも１個の獲得がなかったなら、ＳＭＡの典型的保因者であっただろう。
棘筋萎縮症についての９プレックスアッセイ
一定のＳＭＡ関連ターゲットについての９プレックスアッセイも、２色（ＦＡＭおよびＶＩＣ蛍光体を含有するプローブ）だけで実証した。最適化プライマーおよびプローブ濃度を除いて、アッセイ条件および実験手順は、上記５プレックスアッセイと同一であった。図１５ａは、プローブ濃度の最適化前の様々な液滴集団を２Ｄヒストグラムに示すものである。異なるターゲットの素性をその図自体に示す。本発明の１つの方法として、異なる集団の同定を、前のように、１つ以上のアッセイ物の選択的排除および／または追加によって行った。空の液滴に対応するクラスタと極めて近接していたｃ．８１５Ａ遺伝子型についてのプローブを除き、集団の大部分は既に十分に分解されていた。プローブ濃度の最適化を３回繰り返した後、すべてのターゲット集団は互いに十分に分解され、空の液滴からも十分に分解され（図１５ｂ）。この実証実験では本発明の３つの方法に光を当てた：（１）９つのＤＮＡターゲットを、従来のｑＰＣＲの能力をはるかに超えて、二次元ヒストグラムで一意的に同定した；（２）同じターゲットに対する１つまたは複数のプローブから生ずる色と強度の両方の何らかの組み合わせに基づいてターゲットＤＮＡ分子を区別した；および（３）様々な液滴集団間で増加された分解についての色および強度のパターンを最適化するようにプローブ濃度を変えることによって、ヒストグラム内のターゲット分子の相対位置を調整した。
本発明の１つの方法として、上の実施例におけるアッセイ物の選択的追加または排除によって、異なる液滴集団を同定した。しかし、本発明はこの方法のみに限定されない。むしろ、当業者に公知の任意の集団割り当て方法が考えられる。本発明の方法は、プローブおよびプライマーを共に同じ率または異なる率で変えること；プローブ濃度のみを変えること；プライマー濃度のみを変えること；熱サイクリング条件を変えること；ならびにマスターミックス組成を変えることを含めて、ヒストグラム内の１つ以上の集団の同定可能な置換、出現または消失を生じさせることができる任意の方法を含む。本発明のもう１つの方法は、割り当てを支援するためにヒストグラム内のアッセイ物の位置についての以前の知識を利用する。
多重化能力
前記ＳＭＡ実施例において実証した多重化のレベルは、ｑＰＣＲでの最大実行可能数を有意に超える９×であった。理論により拘束されることを望まないが、２つの主な制限は、アッセイ間の分解と、プローブの負荷量がより多い空の液滴の漸増蛍光強度とである。本発明の方法は、最大多重化のために異なるプローブの色および強度のパターンを最適化する上に、尚、個々の反応それぞれに対する適切な特異性を実現することを含む。液滴集団の長方形アレイを５および９プレックス反応について実証したが、もう１つの望ましいパターンは、密充填六角形アレイである。しかし、本発明はいずれの特定のアレイ戦略にも拘束されない。
余分な色を加えることは、さらにいっそうその可能性を増大させるだろうが、空の液滴の蛍光が強まり続けるため、リターンは多少減少する。この能力は、より大きな差分シグナルを生じさせるより良好なプローブ、例えば、接触消光によってバックグラウンドを低減するが、遊離未消光蛍光体に特有の明るいシグナルを呈示するハイブリッド５’−ヌクレアーゼ／分子ビーコンプローブを用いて、さらにいっそう増加させることができる。そのような改善により、５０×を超える多重化能力を構想することができる。
光学的標識づけとの併用多重化
液滴ベースのマイクロフルイディクスを用いて、複数のターゲットを異なる方法により同時に測定することもできる。代替方法によると、アッセイ物を一意的に同定するための光学的標識と共に、プライマーおよびプローブを液滴に個々に負荷することができる。典型的に、前記光学的標識は、１つの蛍光体であるか、プローブ蛍光体とはスペクトル的に違う異なる蛍光体の組み合わせである。異なる光学的標識によって一意的に同定される異なるアッセイ物をそれぞれが含有する様々な異なるタイプの液滴を混合して液滴の「ライブラリー」にすることができる。次に、上の本発明の方法に従って、テンプレートＤＮＡを含有する液滴とライブラリー液滴を１個ずつ合体させる。熱サイクリング後、テンプレートＤＮＡを含有する幾つかの液滴は、プローブの放射波長でより明るい蛍光を呈示する。その後、これらのＰＣＲ（＋）シグナルを生じさせる特異的ターゲットＤＮＡ分子を、光学的プローブによって同定する。１つの研究では、異なるＫＲＡＳ突然変異または野生型ＫＲＡＳに特異的なＴａｑＭａｎ（登録商標）プローブおよび光学コードをそれぞれが含有する７つの異なるタイプの液滴（７員ライブラリー）のいずれか１つとゲノムＤＮＡを含有する液滴とを１個ずつ融合させることによって、ＫＲＡＳコドン１２における６つの共通突然変異を１回の実験で並行してスクリーニングした。
本発明の１つの方法では、本発明に既に組み込まれているｄＰＣＲの様々な多重化方法と光学的標識づけを併用することができる。例えば、単一の光学的標識は、上のＫＲＡＳ実施例の場合のように単一アッセイ物だけでなく、５プレックスＳＭＡアッセイ物全体をコードし得る。この要領で、他の光学的標識は、新生児についての種々のスクリーニングアッセイ物をコードし得る。上の本発明の他の方法に従って、このとき、乳児からの単一のＤＮＡサンプルとすべてのアッセイ物とを、そのＤＮＡを含有する液滴と光学的にコードされたアッセイ物を含有するライブラリー液滴とを１個ずつ合体させることによって、同時に分析することができるだろう。
多重化を光学的標識と併用する一例として、いわゆる３×３×３の組み合わせのマルチプレックス反応と光学的標識づけを実証した（トリプレックスアッセイ物をそれぞれがコードする、２つの蛍光体での３×３光学的標識づけ、合計で２７プレックス）。それぞれが合計９つの光学的標識を生じさせる３つの強度レベルを有する２つの蛍光体、（６４０ｎｍレーザーによって励起される）Ａｌｅｘａ６３３およびＣＦ６８０、を光学的標識づけに利用した。前のＳＭＡについての５および９プレックスアッセイでのように、ＴａｑＭａｎアッセイ物を（４８８ｎｍレーザーによって励起する）ＦＡＭおよびＶＩＣ蛍光体と共に使用した。ＦＡＭおよびＶＩＣ蛍光体からの蛍光を光学的標識からの蛍光と同時に記録し、これは、ＳＭＡアッセイについて説明した器械使用の光学的レイアウトへの変更を必要とした（２レーザー励起および４色検出についての光学的概略図を全体として図１６に示す）。また、この実施例ではコ・フロー・マイクロフルイディクスを用いた（本出願のためのコ・フロー・ベースのマイクロフルイディクスの使用は、上で説明した本発明の方法の１つである）。この場合、一方のフローにおいてチップにテンプレートＤＮＡを導入し、もう一方のフローにおいてチップに１回のトリプレックスアッセイのためのＰＣＲマスターミックス、プライマーおよびプローブと光学的標識のための蛍光体の一意的組成とを同時に導入した。それらの２つのフローストリームは、液滴形成モジュールの上流の流体交差部で収束し、このようにして形成された各液滴は、両方のフローストリームの内容物を含有した。コ・フロー・マイクロフルイディクスを実行する方法は当業者に周知である。液滴を回収し、その後、次のトリプレックスアッセイ物および光学的標識を用いてその手順を繰り返す。その手順を、アッセイ物と光学的標識のそれぞれの対について１回、合計９回繰り返した。すべての液滴を１本のＰＣＲチューブに回収し、オフチップで熱サイクルに付した。熱サイクルに付した液滴の混合物を、上でＳＭＡアッセイのために使用したものと同じ読み出しチップに再注入し、４つすべての蛍光体からのアッセイ物の蛍光強度を記録した。
図１７は、コ・フロー・マイクロフルイディクスを用いる３×３×３アッセイにおけるすべての液滴からの累積結果を示すものである。この図は、液滴蛍光強度の２Ｄヒストグラムを、すべての光学的標識からのヒストグラムを左に、およびアッセイ物からのヒストグラムを右に示すものである。標準的な方法を用いて、光学的標識のヒストグラムにおいてスペクトルのオーバーラップを補正した。これらのヒストグラムをヒートマップとして示し、暖色であるほど大きな液滴数を表す。液滴の９つの異なるクラスタが光学的標識のヒストグラムに明瞭にはっきりと見えた。これら９つのそれぞれが異なる光学的標識に対応する：最低蛍光強度を有する光学的標識に対応する４つクラスタの小さな群がヒストグラムの下部左隅にあり；ならびにより高い強度で直線状のすじのように見える５つのクラスタがある。アッセイ物についてのヒストグラムでは液滴クラスタがあまり明確でなかったが、これは、示されている液滴がトリプレックスアッセイ物のすべてを含有するためと予想された。下記のように、光学的標識を使用することによって単一のタイプアッセイ物を選択すると、個々のアッセイ物が明瞭に明確になった。
本発明の方法は、すべてが同じ光学的標識、または光学的標識の群、を含有するものである液滴の、個々の集団を選択することを含む。本発明の幾つかの方法では、蛍光強度の境界を用いて集団を特定した。ここに示す実施例では、長方形の境界を用いて、各蛍光体についての最小および最大蛍光強度を特定した。しかし、本発明の方法は、長方形の境界に拘束されない。閉じているまたは開いている任意の境界を用いることができる。さらに、本発明の方法によると、液滴集団の選択は、任意の方法によって行うことができ、境界選択などの閾値ベースの方法に拘束されない。
図１８Ａは、１つだけの光学的標識を選択したとき（左ヒストグラム）のアッセイ物の液滴蛍光強度（右ヒストグラム）を示すものである。光学的標識のヒストグラム上の重った線により、両方の蛍光体に対して最低蛍光を有する光学的標識のみを選択するために使用した長方形の境界が確認される。両方のヒストグラムが、選択された液滴のみを示した。選択後、液滴の４つの別個のクラスタ、異なるアッセイ（この場合、ＳＭＮ１、ＳＭＮ２およびＴＥＲＴについてのアッセイ（ＴＥＲＴはもう１つの共通参照遺伝子である））について３つおよび空の液滴に付いて１つ、が、アッセイヒストグラムに現れた。ＳＭＮ１およびＳＭＮ２についてのコピー数を、５プレックスＳＭＡアッセイについて上で説明したのと同じ本発明の方法によって測定し、それぞれ、２および１の期待値に近い１．８および０．９４の値であった。同じアッセイ物を２つの他の光学的標識と共にコード化した。それらの選択を図１８ＢおよびＣに示す。同様の結果が達成され、それぞれＳＭＮ１およびＳＭＮ２の１．９±０．１および０．９±０．１コピーの総合測定値であり、実験不確実性の範囲内の正確な測定値を示した。
図１９Ａ、ＢおよびＣは、異なるアッセイ（ＴＥＲＴ、ＳＭＮ１遺伝子中のｃ．５Ｃ、およびＢＣＫＤＨＡ（この図ではＥ１ａと標識した））のための光学的標識選択を示すものである。各場合、４つの異なるクラスタも現れ、上と同じ本発明の方法により、３および２と比較してそれぞれ２．９±０．１および２．０±０．２の、ＴＥＲＴを参照にしてｃ．５ＣおよびＢＣＫＤＨＡについての遺伝子コピー数の正確な測定を行った。図２０Ａ、ＢおよびＣは、第三のアッセイ（ＴＥＲＴ、ＳＭＮ１遺伝子中のｃ．８８Ｇ、およびＲＮａｓｅＰ（ＲＮａｓｅＰは、共通参照遺伝子である））のための光学的標識選択を示すものである。２の期待値と比較して２．１±０．１の正確な遺伝子コピー数が、ＴＥＲＴを参照してｃ．８８ＧおよびＲＮａｓｅＰの両方について測定された。
要約すると、ここでの実証実験は、単一の実験において３つのトリプレックスアッセイ物の独立した測定を可能にする９つの異なる光学的標識の使用を示す。この実施例では前記光学的標識のうちの幾つかが重複するアッセイ物をコードした（９つの光学的標識を有するにもかかわらず３つの異なるアッセイ物しかない）が、本発明は、アッセイ物および光学的標識のいずれの特定の形式設定にも限定されない。本発明の実施形態は、アッセイ物のすべてが、光学的標識のすべてにわたって同じである形式；光学的標識のすべてにわたって同じであるアッセイ物がない形式；アッセイ物の幾つかが、光学的標識のすべてにわたって同じである形式；アッセイ物の幾つかが、光学的標識のすべてにわたって他の物より大きいプレキシティーを有する形式；アッセイ物のすべてが、光学的標識のすべてにわたって同じプレキシティーを有する形式；および光学的標識のすべてにわたってアッセイ物の任意の他の取り合わせが考えられる形式を含む。
この実施例では光学的標識を作成するために２つの異なる蛍光体を使用したが、本発明は、それらの光学的標識を含む蛍光体のいずれの特定の数にも限定されない。本発明の実施形態は、１つの蛍光体、または２つの蛍光体、３つの蛍光体、または４つの蛍光体、または１０以下の蛍光体、または２０以下の蛍光体から成る光学的標識を含む。光学的標識は、２０より多い蛍光体を含むこともある。
ここで実証する実施例ではトリプレックスアッセイ物のみを使用したが、本発明は、トリプレックスアッセイ物と光学的標識の使用に拘束されない。本発明の実施形態は、光学的標識と共に使用するとき、次の量のプレキシティーを含む：シングルプレックス、デュプレックス、トリプレックス、４プレックス、１０プレックス以下、２０プレックス以下、５０プレックス以下、および１００プレックス以下。本発明の実施形態は、光学的標識と共に使用するとき、１００を超えるプレキシティーも含む。
本発明のもう１つの方法は、多重化と光学的標識を併用するために、コ・フローではなく液滴マージの使用を含む。コ・フローでの前記実施例の場合と同じ３×３×３アッセイで、液滴マージを使用する実証実験を行った。先ず、それらの一意的光学標識と併用されるアッセイ物（プローブおよびプライマー）をＰＣＲマスターミックスと共に液滴に封入した。その後、上で説明した本発明の方法に従って、９つすべての光学的に標識されたアッセイ物からの液滴の混合物を含有するライブラリーを、同じ患者からのテンプレートＤＮＡを含有する液滴と、前の実施例の場合と同様に１つずつ合体させた。本発明のもう１つの方法は、参照により本明細書に援用されている米国特許仮出願第６１／４４１，９８５号に記載されているようなラムダ・インジェクタ型マージモジュールを使用して、液滴マージを行った。コ・フローとマージとの違いを別にすれば、アッセイ物および実験手順は上のコ・フロー実験のものと同一であった。図２１は、図１７〜２０におけるものに類似している光学的標識およびアッセイ物についての液滴蛍光強度の２Ｄヒストグラムを示すものである。コ・フローについての場合と同様に、個々の光学的標識を含有する液滴の選択に基づき、各アッセイ物に対応する液滴の予想された別個のクラスタが明確にはっきりと見えた。さらに、各アッセイ物について、実測遺伝子コピー数は、実験不確実性の範囲内の期待値と合致したまたは非常に近しく合致した（表１参照）。
本発明の方法は、コ・フローでのマイクロフルイディクスまたは液滴マージでのマイクロフルイディクスのいずれかの使用を含むが、本発明は、これに関して限定されない。蛍光発生性ＤＮＡハイブリダイゼーションプローブも含有する光学的に標識された液滴を生成させることができる任意の流体工学的方法が考えられる。例えば、当該技術分野において周知の他の実施形態は、液滴生成チップへの注入前にマイクロ流体環境で光学的標識とアッセイ物を混合すること；およびサーペンタインミキサーなどで、専用混合モジュール内の液滴形成モジュールの上流で光学的標識とアッセイ物を入念に混合することである。
データ分析
本発明の１つの方法は、一意的プローブシグネチャ（色および強度）から生ずる統計的に類似した液滴の集団を同定および特性づけするための、ならびに他のものからの液滴の１つの集団を識別するための、ヒストグラムベースのデータ提示および分析を含む。本発明のもう１つの方法は、光学的標識からの一意的シグネチャに基づいて液滴の集団を同定および選択するための、ヒストグラムベースのデータ提示および分析を含む。これらの方法についての一および二次元ヒストグラムの例を提供したが、本発明は、これに関して限定されない。上で説明したように、より多くの色を多重化にも光学的標識にも使用することとなることが予想される。従って、本発明の実施形態は、２より大きい、例えば３、または４、または１０以下、または２０以下の次元数のヒストグラムを含む。２０より大きい次元数のヒストグラムも本発明に組み込まれる。
本発明のもう１つの方法は、カウントのための、または光学的標識の場合のようなアッセイ物選択のための、または任意の他の目的のための、ヒストグラム内の液滴の選択を含む。本発明の方法は、任意の可能な形状および次元の、閉じたまたは開いた、境界による選択を含む。本発明の方法は、単一のタイプの蛍光体からの、または多数のタイプの蛍光体からの、例えば共通のＤＮＡターゲットに対して複数のプローブから生ずる、蛍光を呈示する液滴の選択も含む。
ポリメラーゼエラー訂正
超高感度を必要とする用途、例えば豊富な野生型ＤＮＡの中での稀な突然変異についての検索、については、偽ポジティブ結果がＤＮＡポリメラーゼ自体からのエラーから生ずることがある。例えば、初期熱サイクルうちの１つのサイクルの間に、ポリメラーゼは、野生型テンプレートからＤＮＡの突然変異体鎖を合成することがあるだろう。このタイプのエラーは、突然変異体と野生型の間の差が非常に小さいとき、例えば一塩基多型（ＳＮＰ）のとき、発生する可能性が最も高い。本発明のこの方法において、各液滴は、あったとしても単一のターゲット核酸しか含有しない。好ましい実施形態において、これは、終点希釈条件下で遂行される。野生型のターゲットである増幅産物を含有する液滴を、その野生型のターゲットにハイブリダイズするプローブから放出される蛍光体からの放射に基づいて検出する。変異体のターゲットを含有する液滴を、その変異体のターゲットにハイブリダイズするプローブから放出される蛍光体の放射に基づいて検出する。各液滴は、単一の核酸分子のみで出発するので、各液滴内の結果として生ずる増幅産物は、ターゲットについて均一であるか、ターゲットの変異体について均一である。
しかし、一定の液滴は、ＰＣＲ反応中のポリメラーゼエラーのため、ターゲットおよびターゲット変異体両方の不均一混合物を含有するであろう。ＰＣＲのエラー率は、正確な核酸配列、使用される熱安定性酵素、およびインビトロでのＤＮＡ合成条件に従って変動する。例えば、熱安定性Ｔｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ（Ｔａｑ）ＤＮＡポリメラーゼによって触媒されるＰＣＲ中のエラー頻度（１サイクルあたりの１ヌクレオチドあたりの突然変異）は、−２×１０−４から＜１×１０−５まで、１０倍より大きく変動する。Ｅｃｋｅｒｔら（Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ．１：１７−２４、１９９１）、この内容はその全体が参照により本明細書に援用されている。１サイクルあたり１０，０００ヌクレオチドにつき１の突然変異の頻度でのポリメラーゼ媒介エラーは、少量の出発原料（例えば、合計１０，０００ヌクレオチド未満のターゲットＤＮＡ）で始まる、または最終ＰＣＲ集団中の個々のＤＮＡ分子に焦点を合わせている、いずれのＰＣＲ用途にとっても重要な考慮事項である。
配列変化を含有するＤＮＡ分子の比率は、１サイクルあたりの１ヌクレオチドあたりのエラー率、増幅サイクル数、および出発集団サイズの関数である。改変ＤＮＡ分子の集団が、ＰＣＲ中に２つの原因：（１）各ＰＣＲサイクルでの新たなエラー；および（２）前のサイクルからのエラーを含有するＤＮＡ分子の増幅、から発生する。式
は、ｐを各サイクルにおいて一定であると仮定して、ＰＣＲ増幅についての平均突然変異頻度
を、１サイクルあたりの１ヌクレオチドあたりのポリメラーゼエラー率（ｐ）およびサイクル数（ｎ）の関数として示す。ＰＣＲの指数関数的性質のため、初期エラーの発生は、
によって示される平均より上に最終エラー頻度を増加させ得る。なぜなら、変異体ＤＮＡ分子は各サイクルで増幅されることとなり、その結果、平均数より多い変異体を有する集団となるからである。
初期増幅ラウンド中に野生型ターゲットを変異体ターゲットに変換するポリメラーゼエラーは、液滴内のターゲットおよびターゲット変異体の不均一集団を生じさせる結果となり、ならびに液滴がターゲットの変異体を含有すると不正確に同定されること（すなわち、偽ポジティブ）に至ることがある。そのような偽ポジティブは、デジタルＰＣＲ結果の妥当性および精度に大きな影響を及ぼす。
本発明の方法は、どの液滴が分子の不均一集団を含有するかを検出することができ、それらの液滴を分析から排除することができる。増幅産物を含有する液滴が検出モジュールを通ってチャネル内を流れると、そのモジュールは、各液滴における蛍光放出を検出することができる。単一のシグナルのみを生じさせる液滴を、ターゲットの均一集団を含有する液滴として分類する。野生型のターゲットにハイブリダイズするプローブは、野生型ターゲットの変異体にハイブリダイズするプローブとは異なる蛍光体が付いているので、本発明の方法は、それぞれの液滴を、ターゲットのアンプリコンの均一集団またはターゲットの変異体のアンプリコンの均一集団のいずれかを含有するものとして分類することができる。
２つのシグナルを生じさせる液滴を、分子の不均一集団を含有する液滴として分類する。各液滴は、多くても単一のターゲット核酸で出発するので、ターゲットのアンプリコンとターゲットの変異体のアンプリコンの両方である増幅産物を含む液滴は、ターゲットの変異体がＰＣＲ反応中のポリメラーゼエラー、大抵の場合、ＰＣＲ反応の初期サイクル中のポリメラーゼエラー、によって生産された。そのような液滴を検出し、分析から排除する。
分析
次に、分子の均一集団を含有する液滴のみに関して分析を行った。この分析は、カウンティング、すなわち、野生型ターゲットのみを含有する液滴の数の決定、および該ターゲットの変異体のみを含有する液滴の数の決定、に基づくものであり得る。そのような方法は、当該技術分野において周知である。例えば、Ｌａｐｉｄｕｓら（米国特許第５，６７０，３２５号および同第５，９２８，８７０号）ならびにＳｈｕｂｅｒら（米国特許第６，２０３，９９３号および同第６，２１４，５５８号）（これらのそれぞれの内容は、その全体が参照により本明細書に援用されている）を参照のこと。
一般に、変異体のみを含有する液滴の存在は、癌などの疾患の指標となる。一定の実施形態において、前記変異体は、対立遺伝子変異体、例えば挿入、欠失、置換、転座、または一塩基多型（ＳＮＰ）、である。
癌に関連づけられるバイオマーカーは、当該技術分野において公知である。乳癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｅｒｌａｎｄｅｒら（ＵＳ ７，５０４，２１４）、Ｄａｉら（ＵＳ ７，５１４，２０９および７，１７１，３１１）、Ｂａｋｅｒら（ＵＳ ７，０５６，６７４およびＵＳ ７，０８１，３４０）、Ｅｒｌａｎｄｅｒら（ＵＳ ２００９／００９２９７３）に示されている。前記特許出願およびこれらの特許のそれぞれの内容はそれら全体が参照により本明細書に援用されている。子宮頚癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｐａｔｅｌ（ＵＳ ７，３００，７６５）、Ｐａｒｄｅｅら（ＵＳ ７，１５３，７００）、Ｋｉｍ（ＵＳ ６，９０５，８４４）、Ｒｏｂｅｒｔｓら（ＵＳ ６，３１６，２０８）、Ｓｃｈｌｅｇｅｌ（ＵＳ ２００８／０１１３３４０）、Ｋｗｏｋら（ＵＳ ２００８／００４４８２８）、Ｆｉｓｈｅｒら（ＵＳ ２００５／０２６０５６６）、Ｓａｓｔｒｙら（ＵＳ ２００５／００４８４６７）、Ｌａｉ（ＵＳ ２００８／０３１１５７０）およびＶａｎ Ｄｅｒ Ｚｅｅら（ＵＳ ２００９／００２３１３７）に示されている。膣癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｇｉｏｒｄａｎｏ（ＵＳ ５，８４０，５０６）、Ｋｒｕｋ（ＵＳ ２００８／０００９００５）、Ｈｅｌｌｍａｎら（Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ．１００（８）：１３０３−１３１４、２００９）に示されている。脳の癌（例えば、神経膠腫、小脳、髄芽腫、星状細胞腫、上衣腫、膠芽腫）の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｄ’Ａｎｄｒｅａ（ＵＳ ２００９／００８１２３７）、Ｍｕｒｐｈｙら（ＵＳ ２００６／０２６９５５８）、Ｇｉｂｓｏｎら（ＵＳ ２００６／０２８１０８９）、およびＺｅｔｔｅｒら（ＵＳ ２００６／０１６０７６２）に示されている。腎癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｐａｔｅｌ（ＵＳ ７，３００，７６５）、Ｓｏｙｕｐａｋら（ＵＳ ７，４８２，１２９）、Ｓａｈｉｎら（ＵＳ ７，５２７，９３３）、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｒａｉｔａｎｏ（ＵＳ ７，５０７，５４１）、およびＢｅｃｋｅｒら（ＵＳ ２００７／０２９２８６９）に示されている。肝癌（例えば、肝細胞癌腫）の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｈｏｒｎｅら（ＵＳ ６，９７４，６６７）、Ｙｕａｎら（ＵＳ ６，８９７，０１８）、Ｈａｎａｕｓｅｋ−Ｗａｌａｓｚｅｋら（ＵＳ ５，３１０，６５３）、およびＬｉｅｗら（ＵＳ ２００５／０１５２９０８）に示されている。胃、胃腸および／または食道癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｃｈａｎｇら（ＵＳ ７，５０７，５３２）、Ｂａｅら（ＵＳ ７，３６８，２５５）、Ｍｕｒａｍａｔｓｕら（ＵＳ ７，０９０，９８３）、Ｓａｈｉｎら（ＵＳ ７，５２７，９３３）、Ｃｈｏｗら（ＵＳ ２００８／０１３８８０６）、Ｗａｌｄｍａｎら（ＵＳ ２００５／０１００８９５）、Ｇｏｌｄｅｎｒｉｎｇ（ＵＳ ２００８／００５７５１４）、Ａｎら（ＵＳ ２００７／０２５９３６８）、Ｇｕｉｌｆｏｒｄら（ＵＳ ２００７／０１８４４３９）、Ｗｉｒｔｚら（ＵＳ ２００４／００１８５２５）、Ｆｉｌｅｌｌａら（Ａｃｔａ Ｏｎｃｏｌ．３３（７）：７４７−７５１、１９９４）、Ｗａｌｄｍａｎら（ＵＳ ６，７６７，７０４）、およびＬｉｐｋｉｎら（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、４８：２３５−２４５、１９８８）に示されている。卵巣癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｐｏｄｕｓｔら（ＵＳ ７，５１０，８４２）、Ｗａｎｇ（ＵＳ ７，３４８，１４２）、Ｏ’Ｂｒｉｅｎら（ＵＳ ７，２９１，４６２、６，９４２，９７８、６，３１６，２１３、６，２９４，３４４、および６，２６８，１６５）、Ｇａｎｅｔｔａ（ＵＳ ７，０７８，１８０）、Ｍａｌｉｎｏｗｓｋｉら（ＵＳ ２００９／００８７８４９）、Ｂｅｙｅｒら（ＵＳ ２００９／００８１６８５）、Ｆｉｓｃｈｅｒら（ＵＳ ２００９／００７５３０７）、Ｍａｎｓｆｉｅｌｄら（ＵＳ ２００９／０００４６８７）、Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎら（ＵＳ ２００８／０２８６１９９）、Ｆａｒｉａｓ−Ｅｉｓｎｅｒら（ＵＳ ２００８／００３８７５４）、Ａｈｍｅｄら（ＵＳ ２００７／００５３８９６）、Ｇｉｏｒｄａｎｏ（ＵＳ ５，８４０，５０６）、およびＴｃｈａｇａｎｇら（Ｍｏｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒ、７：２７−３７、２００８）に示されている。頭頸部および甲状腺癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｓｉｄｒａｎｓｋｙら（ＵＳ ７，３７８，２３３）、Ｓｋｏｌｎｉｃｋら（ＵＳ ５，９８９，８１５）、Ｂｕｄｉｍａｎら（ＵＳ ２００９／００７５２６５）、Ｈａｓｉｎａら（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、６３：５５５−５５９、２００３）、Ｋｅｂｅｂｅｗら（ＵＳ ２００８／０２８０３０２）、およびＲａｌｈａｎ（Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ、７（６）：１１６２−１１７３、２００８）に示されている。前記論文、特許および特許出願のそれぞれについての内容はそれら全体が参照により本明細書に援用されている。結腸直腸癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｒａｉｔａｎｏら（ＵＳ ７，５０７，５４１）、Ｒｅｉｎｈａｒｄら（ＵＳ ７，５０１，２４４）、Ｗａｌｄｍａｎら（ＵＳ ７，４７９，３７６）；Ｓｃｈｌｅｙｅｒら（ＵＳ ７，１９８，８９９）；Ｒｅｅｄ（ＵＳ ７，１６３，８０１）、Ｒｏｂｂｉｎｓら（ＵＳ ７，０２２，４７２）、Ｍａｃｋら（ＵＳ ６，６８２，８９０）、Ｔａｂｉｔｉら（ＵＳ ５，８８８，７４６）、Ｂｕｄｉｍａｎら（ＵＳ ２００９／００９８５４２）、Ｋａｒｌ（ＵＳ ２００９／００７５３１１）、Ａｒｊｏｌら（ＵＳ ２００８／０２８６８０１）、Ｌｅｅら（ＵＳ ２００８／０２０６７５６）、Ｍｏｒｉら（ＵＳ ２００８／００８１３３３）、Ｗａｎｇら（ＵＳ ２００８／００５８４３２）、Ｂｅｌａｃｅｌら（ＵＳ ２００８／００５０７２３）、Ｓｔｅｄｒｏｎｓｋｙら（ＵＳ ２００８／００２０９４０）、Ａｎら（ＵＳ ２００６／０２３４２５４）、Ｅｖｅｌｅｉｇｈら（ＵＳ ２００４／０１４６９２１）、およびＹｅａｔｍａｎら（ＵＳ ２００６／０１９５２６９）に示されている。前立腺癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｓｉｄｒａｎｓｋｙ（ＵＳ ７，５２４，６３３）、Ｐｌａｔｉｃａ（ＵＳ ７，５１０，７０７）、Ｓａｌｃｅｄａら（ＵＳ ７，４３２，０６４およびＵＳ ７，３６４，８６２）、Ｓｉｅｇｌｅｒら（ＵＳ ７，３６１，４７４）、Ｗａｎｇ（ＵＳ ７，３４８，１４２）、Ａｌｉら（ＵＳ ７，３２６，５２９）、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｏ’Ｂｒｉｅｎら（ＵＳ ７，２９１，４６２）、Ｇｏｌｕｂら（ＵＳ ６，９４９，３４２）、Ｏｇｄｅｎら（ＵＳ ６，８４１，３５０）、Ａｎら（ＵＳ ６，１７１，７９６）、Ｂｅｒｇａｎら（ＵＳ ２００９／０１２４５６９）、Ｂｈｏｗｍｉｃｋ（ＵＳ ２００９／００１７４６３）、Ｓｒｉｖａｓｔａｖａら（ＵＳ ２００８／０２６９１５７）、Ｃｈｉｎｎａｉｙａｎら（ＵＳ ２００８／０２２２７４１）、Ｔｈａｘｔｏｎら（ＵＳ ２００８／０１８１８５０）、Ｄａｈａｒｙら（ＵＳ ２００８／００１４５９０）、Ｄｉａｍａｎｄｉｓら（ＵＳ ２００６／０２６９９７１）、Ｒｕｂｉｎら（ＵＳ ２００６／０２３４２５９）、Ｅｉｎｓｔｅｉｎら（ＵＳ ２００６／０１１５８２１）、Ｐａｒｉｓら（ＵＳ ２００６／０１１０７５９）、Ｃｏｎｄｏｎ−Ｃａｒｄｏ（ＵＳ ２００４／００５３２４７）、およびＲｉｔｃｈｉｅら（ＵＳ ２００９／０１２７４５４）に示されている。膵臓癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｓａｈｉｎら（ＵＳ ７，５２７，９３３）、Ｒａｔａｉｎｏら（ＵＳ ７，５０７，５４１）、Ｓｃｈｌｅｙｅｒら（ＵＳ ７，４７６，５０６）、Ｄｏｍｏｎら（ＵＳ ７，４７３，５３１）、ＭｃＣａｆｆｅｙら（ＵＳ ７，３５８，２３１）、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｃｈａｎら（ＵＳ ２００５／００９５６１１）、Ｍｉｔｃｈｌら（ＵＳ ２００６／０２５８８４１）、およびＦａｃａら（ＰＬｏＳ Ｍｅｄ ５（６）：ｅ１２３、２００８）に示されている。肺癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｓａｈｉｎら（ＵＳ ７，５２７，９３３）、Ｈｕｔｔｅｍａｎ（ＵＳ ７，４７３，５３０）、Ｂａｅら（ＵＳ ７，３６８，２５５）、Ｗａｎｇ（ＵＳ ７，３４８，１４２）、Ｎａｃｈｔら（ＵＳ ７，３３２，５９０）、Ｇｕｒｅら（ＵＳ ７，３１４，７２１）、Ｐａｔｅｌ（ＵＳ ７，３００，７６５）、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｏ’Ｂｒｉｅｎら（ＵＳ ７，２９１，４６２およびＵＳ ６，３１６，２１３）、Ｍｕｒａｍａｔｓｕら（ＵＳ ７，０９０，９８３）、Ｃａｒｓｏｎら（ＵＳ ６，５７６，４２０）、Ｇｉｏｒｄａｎｏ（ＵＳ ５，８４０，５０６）、Ｇｕｏ（ＵＳ ２００９／００６２１４４）、Ｔｓａｏら（ＵＳ ２００８／０１７６２３６）、Ｎａｋａｍｕｒａら（ＵＳ ２００８／００５０３７８）、Ｒａｐｏｎｉら（ＵＳ ２００６／０２５２０５７）、Ｙｉｐら（ＵＳ ２００６／０２２３１２７）、Ｐｏｌｌｏｃｋら（ＵＳ ２００６／００４６２５７）、Ｍｏｏｎら（ＵＳ ２００３／０２２４５０９）、およびＢｕｄｉｍａｎら（ＵＳ ２００９／００９８５４３）に示されている。皮膚癌（例えば、基底細胞癌腫、扁平上皮癌腫、および黒色腫）の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｒｏｂｅｒｔｓら（ＵＳ ６，３１６，２０８）、Ｐｏｌｓｋｙ（ＵＳ ７，４４２，５０７）、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｇｅｎｅｔｔａ（ＵＳ ７，０７８，１８０）、Ｃａｒｓｏｎら（ＵＳ ６，５７６，４２０）、Ｍｏｓｅｓら（ＵＳ ２００８／０２８６８１１）、Ｍｏｓｅｓら（ＵＳ ２００８／０２６８４７３）、Ｄｏｏｌｅｙら（ＵＳ ２００３／０２３２３５６）、Ｃｈａｎｇら（ＵＳ ２００８／０２７４９０８）、Ａｌａｎｉら（ＵＳ ２００８／０１１８４６２）、Ｗａｎｇ（ＵＳ ２００７／０１５４８８９）、およびＺｅｔｔｅｒら（ＵＳ ２００８／００６４０４７）に示されている。多発性骨髄腫の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｃｏｉｇｎｅｔ（ＵＳ ７，４４９，３０３）、Ｓｈａｕｇｈｎｅｓｓｙら（ＵＳ ７，３０８，３６４）、Ｓｅｓｈｉ（ＵＳ ７，０４９，０７２）、およびＳｈａｕｇｈｎｅｓｓｙら（ＵＳ ２００８／０２９３５７８、ＵＳ ２００８／０２３４１３９、およびＵＳ ２００８／０２３４１３８）に示されている。白血病の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ａｎｄｏら（ＵＳ ７，４７９，３７１）、Ｃｏｉｇｎｅｔ（ＵＳ ７，４７９，３７０およびＵＳ ７，４４９，３０３）、Ｄａｖｉら（ＵＳ ７，４１６，８５１）、Ｃｈｉｏｒａｚｚｉ（ＵＳ ７，３１６，９０６）、Ｓｅｓｈｉ（ＵＳ ７，０４９，０７２）、Ｖａｎ Ｂａｒｅｎら（ＵＳ ６，１３０，０５２）、Ｔａｎｉｇｕｃｈｉ（ＵＳ ５，６４３，７２９）、Ｉｎｓｅｌら（ＵＳ ２００９／０１３１３５３）、およびＶａｎ Ｂｏｃｋｓｔａｅｌｅら（Ｂｌｏｏｄ Ｒｅｖ．２３（１）：２５−４７、２００９）に示されている。リンパ腫の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ａｎｄｏら（ＵＳ ７，４７９，３７１）、Ｌｅｖｙら（ＵＳ ７，３３２，２８０）、およびＡｒｎｏｌｄ（ＵＳ ５，８５８，６５５）に示されている。膀胱癌の発達に関連づけられるバイオマーカーは、Ｐｒｉｃｅら（ＵＳ ７，２２９，７７０）、Ｏｒｎｔｏｆｔ（ＵＳ ６，９３６，４１７）、Ｈａａｋ−Ｆｒｅｎｄｓｃｈｏら（ＵＳ ６，００８，００３）、Ｆｅｉｎｓｔｅｉｎら（ＵＳ ６，９９８，２３２）、Ｅｌｔｉｎｇら（ＵＳ ２００８／０３１１６０４）、およびＷｅｗｅｒら（２００９／００２９３７２）に示されている。上記参考文献のそれぞれについての内容はその全体が参照により本明細書に援用されている。
一定の実施形態において、本発明の方法は、癌の再発について患者をモニターするために用いることができる。患者は、既に癌の処置を受けているので、その患者の癌に関連づけられる遺伝子プロファイルおよび特定の突然変異（単数または複数）は既にわかっている。患者が以前に治療を受けた癌の指標となる突然変異（単数または複数）を含有する核酸の領域に特異的にハイブリダイズするプローブを設計することができる。その後、患者のサンプル（例えば、膿、痰、精液、尿、血液、唾液、糞便、または脳脊髄液）を上で説明したように分析して、突然変異体対立遺伝子（単数または複数）がサンプル中で検出されるかどうかを決定することができ、その突然変異体対立遺伝子（単数または複数）が癌の再発の指標となる。
液滴選別
本発明の方法は、液滴が分子の均一な集団を含有するかまたは分子の不均一な集団を含有するかに基づく液滴の選別を含む。選別モジュールは、検出モジュール内での液滴問い合わせに関連して受け取るシグナルに依存して液滴のフローが１つ以上の他のチャネル、例えば枝チャネル、に入るように方向を変えることができるチャネルの接合部であり得る。典型的に、選別モジュールはモニターされ、および／または検出モジュールの制御下にあり、従って、選別モジュールは検出モジュールに応答することができる。選別領域は１つ以上の選別装置と連通しており、それらによる影響を受ける。
選別装置は、技術または制御システム、例えば、誘電性、電気的、電気浸透性、（マイクロ−）バルブなどを含む。制御システムは、様々な選別技術を用いて、分子、細胞、小分子または粒子のフローを所定の枝チャネルに変えるまたは向けることができる。枝チャネルは、選別領域および主チャネルと連通しているチャネルである。主チャネルは、例えばＴ形またはＹ形を形成するように、選別モジュールまたは分岐点で２つ以上の枝チャネルと連通し得る。他の形およびチャネル幾何形状を望みどおりに用いることができる。典型的に、枝チャネルは、検出モジュールにより検出され、選別モジュールで選別されると、関心のある液滴を受け取る。枝チャネルは、流出モジュールを有することができ、および／または分子、細胞、小分子もしくは粒子の回収または廃棄を可能にするウエルもしくはレザバー（それぞれ、回収モジュールもしくは廃棄モジュール）を末端に有することができる。あるいは、枝チャネルは、追加の選別を可能にするために他のチャネルと連通していることがある。
流体液滴の特性を、何らかの仕方で、例えば本明細書に記載するように、感知および／もしくは決定することができ（例えば、流体液滴の蛍光を決定することができ）、および、呼応して、流体液滴を特定の領域（例えば、チャネル）に向けるために電場を印加するまたは除去することができる。一定の実施形態では、非荷電流体液滴（最初は、荷電されていることもあり、または非荷電であることもある）内に双極子を誘導すること、および印加された電場を用いてその液滴を選別するまたは指向させることにより、流体液滴を選別するまたは指向させる。前記電場は、ＡＣ場、ＤＣ場などであり得る。例えば、流体液滴とキャリア流体とを含有するチャネルは、分岐点で第一および第二のチャネルに分かれる。一般に、前記流体液滴は、非荷電である。分岐点の後に、第一の電極を第一のチャネル付近に配置し、第二の電極を第二のチャネルの付近に配置する。第三の電極は、第一チャネルと第二チャネルの分岐点の付近に配置する。その後、これらの電極の組み合わせを用いて、流体液滴内に双極子を誘導する。このように、適当な電場を印加することにより、液滴を望みどおりに第一または第二のチャネルのいずれかに向けることができる。液滴選別についてのさらなる説明は、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に示されている。
検出モジュールで検出されたシグナルに基づいて、分子の不均一集団を含有する液滴を、分子の均一集団を含有する液滴から選別除去する。液滴をさらに選別して、ターゲットのアンプリコンの均一集団を含有する液滴を、ターゲットの変異体のアンプリコンの均一集団を含有する液滴から分離することができる。
液滴からのターゲットの放出
本発明の方法は、さらなる分析のために液滴から増幅ターゲット分子を放出させることをさらに含むことができる。液滴から増幅ターゲット分子を放出させる方法は、例えば、Ｌｉｎｋら（米国特許出願第２００８／００１４５８９号、同第２００８／０００３１４２号、および同第２０１０／０１３７１６３号）およびＲａｉｎｄａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．の欧州特許出願公開第２０４７９１０号に示されている。
一定の実施形態では、サンプル液滴をキャリア流体の上にクリーム状に固まらせる。非限定的な例として、前記キャリア流体には、１つ以上の安定化界面活性剤を有することができるパーフルオロカーボン油を挙げることができる。液滴は、その液滴を構成する水性相のものより大きいキャリア流体の密度によって、キャリア流体から上に上昇するまたは分離する。例えば、本発明の方法の１つの実施形態において使用するパーフルオロカーボン油は、１．０である液滴の水性相の密度と比較して、１．８である。
その後、それらのクリーム状の液を、脱不安定化界面活性剤、例えば過フッ素化アルコール（例えば、１Ｈ，１Ｈ，２Ｈ，２Ｈ−パーフルオロ−１−オクタノール）、を含有する第二のキャリア流体上に置く。前記第二のキャリア流体もパーフルオロカーボン油であることがある。混合すると、水性液滴は合体し始め、合体を低速での短い遠心分離（例えば、遠心分離器において２０００ｒｐｍで１分）によって完了させる。合体した水性相を今や除去し、さらに分析することができる。
放出された増幅材料を、テイルドプライマーおよび第二のＰＣＲプライマーの使用により、さらなる増幅に付すこともできる。この実施形態において、液滴内のプライマーは、該プライマーの配列特異的部分の５’末端に付加された追加の配列またはテイルを含有する。これらのテイル付き領域についての配列は、各プライマー対と同じであり、ＰＣＲサイクリング中にアンプリコンの５’部分に組み込まれる。アンプリコンを液滴から除去したら、そのアンプリコンのテイル領域にハイブリダイズすることができるもう１セットのＰＣＲプライマーを使用して、追加のＰＣＲラウンドにより産物をさらに増幅することができる。前記第二のプライマーは、前記テイル付き領域と長さおよび配列の点で厳密に合致することがあり、またはそれら自体、該プライマーのテイル部分の５’末端に追加の配列を含有することがある。第二のＰＣＲサイクリング中、これらの追加の領域もアンプリコンに組み込まれた状態になる。これらの追加の配列としては、ライブラリー調製およびシークエンシングのためのシークエンシングプラットホームによって用いられるアダプター領域、同じ反応に多重化されたサンプルの同定のためにバーコード化機能として用いられる配列、ビオチン、ジゴキシン、ペプチドまたは抗体などの反応材料の残部からのアンプリコンの分離のための分子、およびフラグメントを同定するために使用することができる蛍光マーカーなどの分子を挙げることができるが、それらに限定されない。
一定の実施形態では、それらの増幅されたターゲット分子をシークエンシングする。特定の実施形態において、前記シークエンシングは、合成ごとの単一分子シークエンシング（ｓｉｎｇｌｅ−ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ−ｂｙ−ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）である。単一分子シークエンシングは、例えば、Ｌａｐｉｄｕｓら（米国特許第７，１６９，５６０号）、Ｑｕａｋｅら（米国特許第６，８１８，３９５号）、Ｈａｒｒｉｓ（米国特許第７，２８２，３３７号）、Ｑｕａｋｅら（米国特許出願第２００２／０１６４６２９号）、およびＢｒａｓｌａｖｓｋｙら、ＰＮＡＳ（ＵＳＡ）、１００：３９６０−３９６４（２００３）に示されており、これらの参考文献のそれぞれの内容はその全体が参照により本明細書に援用されている。
簡単に言うと、フローセルの表面に付着させたオリゴヌクレオチドに一本鎖核酸（例えば、ＤＮＡまたはｃＤＮＡ）をハイブリダイズさせる。それらの一本鎖核酸を、当該技術分野において公知の方法、例えばＬａｐｉｄｕｓ（米国特許第７，６６６，５９３号）に示されているもの、によって捕捉することができる。前記オリゴヌクレオチドは、前記表面に共有結合で付着させることができ、または当業者に公知であるような共有結合以外の様々な付着を用いることができる。さらに、この付着は、間接的であってもよく、例えば、前記表面に直接または間接的に付着された本発明のポリメラーゼによるものであってもよい。前記表面は、平面であってもよいし、そうでなくてもよく、および／または多孔性もしくは無孔性、または付着に適することが当業者に知られている任意の他のタイプであってもよい。次に、成長鎖表面オリゴヌクレオチドに組み込まれた蛍光標識されたヌクレオチドのポリメラーゼ媒介付加を単一分子分解で撮像することにより、核酸をシークエンシングする。
実験の詳細
次に続くのは、上で詳述した様々な実験についての実験の詳細である。
プライマーおよびプローブ
ここで使用したすべてのＴａｑＭａｎ（登録商標）プライマーおよびプローブを表２にリストする。表中に参考文献による別の注記がない限り、プライマーおよびプローブは、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ．（ＡＢＩ）からの「Ｃｕｓｔｏｍ ＴａｑＭａｎ（登録商標）Ａｓｓａｙ Ｄｅｓｉｇｎ Ｔｏｏｌ」で設計し、ＡＢＩ（カリフォルニア州カールズバッド）を通じて調達した。プローブを６−カルボキシフルオレセイン（ＦＡＭ、λ励起４９４ｎｍ＼λ放射４９４ｎｍ）またはＶＩＣ（商標）（ＡＢＩから、λ励起５３８ｎｍ＼λ放射５５４ｎｍ）で標識した。
ターゲットＤＮＡ
幾つかの遺伝子ターゲット、ＢＣＫＤＨＡおよびＳＭＮ２、について、プライマー対の間にわたる配列（表２参照）を含有するプラスミドＤＮＡを合成し（ドイツ、レーゲンスブルクのＧｅｎｅＡｒｔ）、ＧｅｎｅＡｒｔ標準ベクター（２．５ｋｂ）にクローニングした。アッセイに影響を及ぼし得る一切のＤＮＡスーパーコイル化を回避するために、ＳｆｉＩでの制限消化によってターゲットフラグメントをクローニングベクターから放出させた。簡略化のために、本文全体を通してこれらの遺伝子フラグメントを「プラスミドＤＮＡ」と呼ぶ。多重化反応の実証実験のために異なる遺伝子フラグメントのストリングも合成し（ＧｅｎｅＡｒｔ）、ＧｅｎｅＡｒｔ標準ベクターにクローニングした。それを本文では「人工染色体」と呼ぶ。この場合はフラグメントを隣接ＥｃｏＲＶ部位での制限消化によって互いに分離した。細胞株（表３参照；ニュージャージー州カムデンのＣｏｒｉｅｌｌ）から既に精製された形態でヒトＤＮＡを得、使用前に製造業者（カリフォルニア州カールズバッドのＩｎｖｔｒｏｇｅｎ）の説示に従ってＫ７０２５−０５ネブライザーでフラグメント化した。Ｎａｎｏｄｒｏｐ ２０００分光光度計（デラウェア州ウィルミントンのＴｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて２６０ｎｍでの吸収を測定することにより、ＤＮＡ濃度を定量した。
マイクロフルイディクス
従来のソフトリソグラフィーによってマイクロ流体チップを製造した。６インチシリコンウェハ上にＳＵ−８ネガティブフォトレジスト（マサチューセッツ州ニュートンのＭｉｃｒｏＣｈｅｍ Ｃｏｒｐ．）をスピンコートし、ＯＡＩ Ｈｙｂｒａｌｉｇｎ Ｓｅｒｉｅｓ ２００アライナー（カリフォルニア州サンホゼのＯＡＩ）でのコンタクトリソグラフィーによりフォトマスク（オレゴン州バンドンのＣＡＤ／Ａｒｔ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ）から流体形状を転写することによって、成形用マスターを作製した。チップは、そのチップの外部ポートから機能領域に流体を移送するための低い流体力学的抵抗を有する深いチャネル（１００±１０ｕｍ）と液滴操作および検出のための浅いチャネル（２０±１ｕｍ）である、２つの深度を有するチャネルを含有した。ＳＵ−８フォトレジスト２１００および２０２５を深いおよび浅いチャネルにそれぞれ使用した。ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＡ）（Ｓｙｌｇａｒｄ（登録商標）１８４、ミシガン州ミッドランドのＤｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ）チップを注文設計の金型ハウジング内でネガティブマスターから成形した。ＡｕｔｏＧｌｏｗ（商標）酸素プラズマシステム（アリゾナ州フェニックスのＧｌｏｗ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）での表面活性化、続いて即座の圧着により、それらのチップの流体側にガラス・カバー・スライドを永久接着した。疎水性表面を作るために、１００ｕＬの溶剤中の１８ｇのシランの混合物として調製したＦＣ−３２８３（ミネソタ州セントポールの３Ｍ Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ）に溶解した１Ｈ，１Ｈ，２Ｈ，２Ｈ−パーフルオロデシルトリクロロシラン（マサチューセッツ州ワードヒルのＡｌｆａ Ａｅｓａｒ）に〜２分間、それらのマイクロ流体チャネルを暴露した。
一方は液滴生成用および他方は熱サイクリング後の蛍光読み出し用である２つの異なるマイクロ流体デバイスを使用した。液滴生成チップは、この時点以降「キャリア油」と呼ぶ、エマルジョン安定化界面活性剤を伴う不活性フッ素化油（ＲＥＢキャリア油；マサチューセッツ州レキシントンのＲａｉｎＤａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）に懸濁されたテンプレートＤＮＡおよびＰＣＲマスターミックスの均一なサイズの水性液滴のエマルジョンを生じさせた。十字形のマイクロ流体交差部、すなわち「ノズル」、内で液滴を生成させた。図３ａに示すように、典型的な動作のもとで、水性相は、右からノズルに流れ込み（１６０ｕＬ／時）、上部および下部からのキャリア油のフロー（７５０ｕＬ／時の全油）に合流し、１１ｋＨｚの速度で４ｐＬの液滴を生じさせた。交差部でのチャネル幅は、水溶液流入口については１５ｕｍ、油流入口については１２．５の測定値であり、および流出口では１５ｕｍが４０ｕｍに広がっていた。特注ＯＥＭポンプ（イリノイ州ノースブルックのＩＤＥＸ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）によってフローを駆動した。
おおよそ２５ｕＬのＰＣＲ反応混合物を液滴生成チップからエマルジョンとして回収し、ＤＮＡ Ｅｎｇｉｎｅ（カリフォルニア州ハーキュリーズのＢｉｏ−Ｒａｄ）での熱サイクルに付した。その反応混合物は、１×ＴａｑＭａｎ（登録商標）汎用ＰＣＲマスターミックス（カリフォルニア州カールズバッドのＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）、０．２ｍＭ ｄＮＴＰ（ウィスコンシン州マディソンのＴａｋａｒａ Ｂｉｏ）ならびに結果の中で説明するような様々な量のプライマー対およびプローブを含有した。すべての場合、１×濃度から変動させるとき、プライマーおよびプローブを同じ量、変動させた。サイクルプログラムは、９５℃での１０分のホットスタート、ならびに９５℃で１５秒および６０℃で６０秒の４５サイクルを含んだ。
キャリア油が水性相より高濃度になり、エマルジョンから流れ落ちるため、オフチップ処理中に液滴が濃縮されてきた。それ故、一方の液滴を他方と正しく区別するために読み出し前に希釈を必要とする密充填エマルジョンとして、液滴を読み出しチップに再注入した。上の液滴生成ノズルに類似した「スペーサー」ノズルを使用して、余分なキャリア油の均一なプラグを読み出し直前に液滴間に注入した。図３ｂに示すように、ノズルへの液滴入口は、ほぼ個々の液滴サイズのくびれに先細になっていて、液滴を単一の列で、それ故、安定した速度でノズルに入らせた。上部および下部チャネルからのキャリア油の対向フローがそれらの液滴を均一に分離した。スペーサーノズルから出て行くノズルは、フロー方向に沿って幅が増大し、液滴は、その幅が液滴径より小さいまたは液滴径に等しいそのチャネルに沿った位置（図３ｂに矢印でしるしをつけた）でレーザー誘導蛍光による問い合わせを受けた。前記ノズルの寸法は、液滴入口および出口については１５ｕｍ、および油ラインについては２０ｕｍであった。
器械使用
特注の顕微鏡での従来の落射蛍光顕微鏡法により、蛍光読み出しを行った。２０ｍＷ、４８８ｎｍレーザー源（Ｃｙａｎ；カリフォルニア州サニーヴェールのＰｉｃａｒｒｏ）を２×拡大し、対物レンズ（２０×／０．４５ＮＡ；日本の株式会社ニコン（Ｎｉｋｏｎ）によってマイクロ流体チャネルに焦点を合わせた。２つのバンド・パス・フィルターが、対物レンズによって集められた蛍光を識別した：ＦＡＭおよびＶＩＣ蛍光体についてそれぞれ５１２／２５ｎｍおよび５２９／２８ｎｍ（ニューヨーク州ロチェスターのＳｅｍｒｏｃｋ）。２つのＨ５７８４−２０光電子倍増管（Ｈａｍａｍａｔｓｕ、日本）により蛍光を検出し、ＵＳＢ−６２５９データ取得カード（テキサス州オースチンのＮａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）を用いて２００ｋＨｚのサンプリング速度で概して記録した。後の分析の前に７点二次Ｓａｖｉｔｚｋｙ−Ｇｏｌａｙアルゴリズムによりデータトレースを平滑化した。蛍光読み出しと当時に、８５０ｎｍ ＬＥＤ（ＴＳＨＧ６２００；コネチカット州シェルトンのＶｉｓｈａｙ Ｓｅｍｉｃｏｎｄｕｃｔｏｒｓ）からの背面照明で同じ対物レンズと、蛍光検出および撮像のために光路を分離するためのショート・パス・フィルタと、Ｇｕｐｐｙ ＣＣＤカメラ（マサチューセッツ州ニューベリーポートのＡｌｌｉｅｄ Ｖｉｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）とによって、液滴を撮像した。画像にすじが入らないように短い照明パルス（５〜２０マイクロ秒）で液滴を撮像した。
データ分析
液滴事象を閾値より上の蛍光強度の継続的バーストと解釈する特注ＬａｂＶｉｅｗソフトウェア（テキサス州オースチンのＮａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）でデータを分析した。シグナル対ノイズ比は一般に相当高く、シグナルレベルは日ごとに一致しており、従って、５０ｍＶの固定閾値を主として用い、他の状況では閾値を目視によって設定した。ＶＩＣ蛍光体とＦＡＭ蛍光体の両方について液滴事象ごとにピーク蛍光強度を記録した。熱サイクリング中に液滴の多少の合体が、概して２個の無損傷液滴間の孤立した事象として発生して、「ダブレット」を形成した。ダブレットおよび稀なより大きい合体事象を蛍光バーストの継続期間に基づいてデータセットから容易に濾過した。
参照による援用
他の文献、例えば特許、特許出願、特許公開公報、ジャーナル、本、論文、ウェブコンテンツ、の参照および引用を本開示全体を通して行った。すべてのそのような文献は、あらゆる意味でそれら全体が参照により本明細書に援用されている。
等価物
本発明の精神または本質的特徴を逸脱することなく他の特定の形態で本発明を具現することができる。従って、上述の実施形態は、すべての点で、本明細書に記載する本発明を制限するものではなく例証するためのものであると解釈すべきである。

Claims (11)

  1. 以下：
    不混和性キャリア流体中に複数の核酸テンプレートを含むサンプル流体を区画化して、複数の微小液滴を形成する工程であって、各微小液滴は、単一の核酸テンプレートと複数のプライマー対とを含み、各プライマー対は、異なるターゲット部位に特異的であり、前記微小液滴内の一つのみのプライマー対が、前記テンプレートに結合する、工程；および
    前記微小液滴の各々において前記テンプレートを増幅する工程
    を包含する、方法。
  2. 前記サンプル流体が、水溶液であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
  3. 各微小液滴が、前記微小液滴内で生産されたアンプリコンにハイブリダイズする複数のプローブをさらに含む、請求項１に記載の方法。
  4. 前記単一の核酸テンプレートがＤＮＡまたはＲＮＡである、請求項１に記載の方法。
  5. 前記微小液滴が、ポリメラーゼ連鎖反応を行うための試薬をさらに含む、請求項１に記載の方法。
  6. 前記複数のプローブの構成員が検出可能標識を含有する、請求項３に記載の方法。
  7. 前記複数のプローブが、様々な濃度のプローブの１つ以上の群を含む、請求項３に記載の方法。
  8. 前記プローブの１つ以上の群の構成員それぞれが、同じ検出可能標識を含む、請求項７に記載の方法。
  9. 前記複数のプローブの構成員それぞれが、異なる検出可能標識を含む、請求項６に記載の方法。
  10. 前記検出可能標識が蛍光標識である、請求項６に記載の方法。
  11. 前記増幅する工程が、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を実行する工程である、請求項１に記載の方法。
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