JPH01171488A - 組換えプラスミド及びそれにより形質転換された枯草菌 - Google Patents
組換えプラスミド及びそれにより形質転換された枯草菌Info
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- JPH01171488A JPH01171488A JP33062587A JP33062587A JPH01171488A JP H01171488 A JPH01171488 A JP H01171488A JP 33062587 A JP33062587 A JP 33062587A JP 33062587 A JP33062587 A JP 33062587A JP H01171488 A JPH01171488 A JP H01171488A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01041—Pullulanase (3.2.1.41)
-
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- Chemical & Material Sciences (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
■ 産業上の利用分野
この発明は、多糖体プルラン及びでん粉のα−1,4お
よびα−1,6グルコシド結合を切断する能力をもつプ
ルラナーゼ類似酵素(以下、ネオプルラナーゼという)
の製造と、かかる酵素を生産するプラスミド並びにその
プラスミドを有する枯草菌に関するものである。
よびα−1,6グルコシド結合を切断する能力をもつプ
ルラナーゼ類似酵素(以下、ネオプルラナーゼという)
の製造と、かかる酵素を生産するプラスミド並びにその
プラスミドを有する枯草菌に関するものである。
■ 従来の技術および本発明が解決しようとする問題点
従来、プルランに作用する酵素としては、プルランの末
端からグルコース単位で作用するグルコアミラーゼ、α
−1,6グルコシド結合だけを切断するプルラナーゼ、
プルラン中のα−1,4グルコ享 シト結合を切断しインパノースをXえるインプルラナー
ゼ、パノース(62−a −Glucosyl mal
to−se ) を生成するサーモアクチノミセス
ヴルガリカス(Th2actinomyces :1g
aricas ) のアミラーゼ(TVA)などが知
られている。
端からグルコース単位で作用するグルコアミラーゼ、α
−1,6グルコシド結合だけを切断するプルラナーゼ、
プルラン中のα−1,4グルコ享 シト結合を切断しインパノースをXえるインプルラナー
ゼ、パノース(62−a −Glucosyl mal
to−se ) を生成するサーモアクチノミセス
ヴルガリカス(Th2actinomyces :1g
aricas ) のアミラーゼ(TVA)などが知
られている。
本発明の酵素はプルランに作用してパノースを生成する
点ではTVAと同様であるが、同時に本酵素はグルコー
ス、マルトースを生成する点で全(TVAと異り、新し
い作用特異性をもつ新規酵素である。また本酵素はでん
粉にも作用しα−7ミラーゼの一種ともいえる。
点ではTVAと同様であるが、同時に本酵素はグルコー
ス、マルトースを生成する点で全(TVAと異り、新し
い作用特異性をもつ新規酵素である。また本酵素はでん
粉にも作用しα−7ミラーゼの一種ともいえる。
α−アミラーゼはでん粉糖化産業などにおいて広く用い
られる酵素であるので、本酵素単独嘩至は他の各種酵素
と混合使用することにより色々な用途が開発されるもの
と期待される。
られる酵素であるので、本酵素単独嘩至は他の各種酵素
と混合使用することにより色々な用途が開発されるもの
と期待される。
■ 問題点を解決するための手段および作用本発明は新
規なプラスミド、それを有する枯草菌及びそれを利用し
て耐熱性のネオプルラナーゼを製造する方法に関するも
のである。
規なプラスミド、それを有する枯草菌及びそれを利用し
て耐熱性のネオプルラナーゼを製造する方法に関するも
のである。
本発明者等は、プルランを分解し主としてパノースを生
成する耐熱性のあるネオプルラナーゼを分泌するバチル
ス ステアロサーモフィルスTR540を大阪市鶴見区
の堆肥より分離したのであるが、本酵素は従来報告され
ているどのプルラナーゼともその活性が異りており、本
発明者等によってネオプルラナーゼと命名された酵素で
ある。
成する耐熱性のあるネオプルラナーゼを分泌するバチル
ス ステアロサーモフィルスTR540を大阪市鶴見区
の堆肥より分離したのであるが、本酵素は従来報告され
ているどのプルラナーゼともその活性が異りており、本
発明者等によってネオプルラナーゼと命名された酵素で
ある。
なお、バチルス ステアロサーモフィルスTR340は
次のような菌学的性質を有している。
次のような菌学的性質を有している。
−1形態学的性質
1)細胞の形及び大きさ・・・・・・(0,6〜1.0
) X (2〜3.5)μの桿菌。連鎖性なく莢膜は
少い。加糖肉汁寒天培地では肉汁寒天培地と同一の桿菌
の形を示す。
) X (2〜3.5)μの桿菌。連鎖性なく莢膜は
少い。加糖肉汁寒天培地では肉汁寒天培地と同一の桿菌
の形を示す。
2)運動性・・・・・・あり。
3)胞子−−(0,4〜0.5 ) X (0,5〜0
.6 ) pの長円形で末端付近に存在し膜壁はうすい
。60℃・16時間で形成するものが多い。胞子のうの
ふくらみは認められる。
.6 ) pの長円形で末端付近に存在し膜壁はうすい
。60℃・16時間で形成するものが多い。胞子のうの
ふくらみは認められる。
4)ダラム染色性・・・・・・陽性。
二、生育状態
1)肉汁寒天平板培養・・・・・・生育良好。表面はや
や乾き白色に近い。
や乾き白色に近い。
2)肉汁寒天斜面培養・・・・・・拡布状となり表面の
光沢な、し。
光沢な、し。
8)肉汁液体培養・・・・・・P H7,0で生育良好
。液は混濁する。
。液は混濁する。
4)ゼラチン穿刺培養・・・・・・ゼラチンを液化する
。
。
5)食塩肉汁液体培養・・・・・・7%の食塩水濃度で
は生育しない。
は生育しない。
6)グルコース・アスパラギン寒天培地・・・・・・生
育不良。
育不良。
7)グルコースやナイトレイト寒天培地・・・・・・僅
かに生育。
かに生育。
三、生理学的性質
l)硝酸塩の還元・・・・・・陽性。
2)でん粉の加水分解・・・・・・でん粉を含むシャー
レ上で生育させるときヨード呈色は陰性。
レ上で生育させるときヨード呈色は陰性。
3)クエン酸の醗酵性・・・・・・陽性。
4)カタラーゼの生成・・・・・・陰性。
5)生育の範囲・・・・・・トリプシン、酵母エキス、
食塩を含む培地で65℃まで生育。最適生育温度は60
℃。
食塩を含む培地で65℃まで生育。最適生育温度は60
℃。
6)糖の醗酵性・・・・・・グルコース、ラクトース、
しよ糖から酸を形成。ただし、ガス発生を伴わない。
しよ糖から酸を形成。ただし、ガス発生を伴わない。
7)7セチルメチルカルビノールの生成・・・・・・陽
性。
性。
8)ゼラチンの分解・・・・・・陽性。
以上の結果をパージニーのマニアルeオプ・システマテ
イツク・バクテリオデターミネーションし 第2巻(Bergey’s Manual of Sy
stematgc Bacter−赤odet+rmi
nation vol 2. (1986) )と照合
して本国はバチルス ステアルサーモフィルス(B−a
cillus stearothermophilus
) と同定した0つぎに本菌株の生産する酵素を詳
細に説明する。
イツク・バクテリオデターミネーションし 第2巻(Bergey’s Manual of Sy
stematgc Bacter−赤odet+rmi
nation vol 2. (1986) )と照合
して本国はバチルス ステアルサーモフィルス(B−a
cillus stearothermophilus
) と同定した0つぎに本菌株の生産する酵素を詳
細に説明する。
−1作用及び基質特異性
本酵素はプルランに作用し、最終的にパノース、グルコ
ース、マルトースを生じる。量的にはパノースが最も多
い。
ース、マルトースを生じる。量的にはパノースが最も多
い。
でん粉に作用させると主としてマルトースとグルコース
を生じるが、反応後期には分枝デキストリンとしてバ0
ノース及びインマルトシルマルトース(jsomalt
osyl maltose 略称IMM)を生成する。
を生じるが、反応後期には分枝デキストリンとしてバ0
ノース及びインマルトシルマルトース(jsomalt
osyl maltose 略称IMM)を生成する。
還元糖の生成に較べてヨード呈色の減少が速かでα−ア
ミラーゼの一種と考えられる。一般にα−アミラーゼは
比較的でん粉をよく加水分解する糖化型と、でん粉の液
化速度は大きいが糖化度の低い液化型に大別される。そ
して、前者をでん粉に作用させた場合、得られる最小の
低分子y4ットデキストリンはIMMである。本発明の
酵素はでん粉に作用させると最初からグルコースやマル
トースを生成し、糖化型のグループに属するが、最小の
リミットデキストリンはIMMではなくパノースである
。この点において著だ特異なα−7ミラーゼである。更
に、本酵素はプルランとでん粉に同濃度、同条件で作用
させると、プルランに対してでん粉に対すると同等もし
くはそれ以上に作用する。TVAはでん粉への作用の方
がプルランへの作用より著しく大きい。この意味でTV
Aはα−アミラーゼの一種と考えられるのに対し、本酵
素はプルラナーゼの一種であり、これを従来のプルラナ
ーゼと区別するため、ネオプルラナーゼと命名した。
ミラーゼの一種と考えられる。一般にα−アミラーゼは
比較的でん粉をよく加水分解する糖化型と、でん粉の液
化速度は大きいが糖化度の低い液化型に大別される。そ
して、前者をでん粉に作用させた場合、得られる最小の
低分子y4ットデキストリンはIMMである。本発明の
酵素はでん粉に作用させると最初からグルコースやマル
トースを生成し、糖化型のグループに属するが、最小の
リミットデキストリンはIMMではなくパノースである
。この点において著だ特異なα−7ミラーゼである。更
に、本酵素はプルランとでん粉に同濃度、同条件で作用
させると、プルランに対してでん粉に対すると同等もし
くはそれ以上に作用する。TVAはでん粉への作用の方
がプルランへの作用より著しく大きい。この意味でTV
Aはα−アミラーゼの一種と考えられるのに対し、本酵
素はプルラナーゼの一種であり、これを従来のプルラナ
ーゼと区別するため、ネオプルラナーゼと命名した。
また、本酵素をβ−サイクシデキストリンにマルトース
がα−1,6グルフシル結合で結合したマルトシル−β
−サイクロデキストリンに作用させると、まずそのα−
1,6結合を切断し、マルトースとβ−サイクロデキス
トリンを生じる。ついでβ−サイクロデキストリンも再
分解を受け、グルコース、マルトース及びマルトトリオ
ースを与える。
がα−1,6グルフシル結合で結合したマルトシル−β
−サイクロデキストリンに作用させると、まずそのα−
1,6結合を切断し、マルトースとβ−サイクロデキス
トリンを生じる。ついでβ−サイクロデキストリンも再
分解を受け、グルコース、マルトース及びマルトトリオ
ースを与える。
即ち、本酵素は主としてマルトースを認識し、マルトー
スがα−1,4結合で結合していてもα−1,6結合で
結合していても、その結合を切断する新しい作用特異性
をもつ酵素と考えることができる。
スがα−1,4結合で結合していてもα−1,6結合で
結合していても、その結合を切断する新しい作用特異性
をもつ酵素と考えることができる。
二、作用PH
P H5,0〜7.5゜測定は0.05 M酢酸ナトリ
ウム−酢酸緩衝液(PH4〜6)又はリン酸2ナトリウ
ム−リン酸1カリウム緩衝液(PH6〜8)を用い、0
.5%プルラン中で60−℃、15分間反応させる。生
成した還元糖はDNS法で測定。
ウム−酢酸緩衝液(PH4〜6)又はリン酸2ナトリウ
ム−リン酸1カリウム緩衝液(PH6〜8)を用い、0
.5%プルラン中で60−℃、15分間反応させる。生
成した還元糖はDNS法で測定。
三、作用最適PH。
前記二の条件でおよそP H6,0゜
四、作用温度
0.1Mリン酸緩衝液(P H6,0)、0.5%プル
ラン中で各種温度下16分間反応させたところ、75℃
まで反応した。
ラン中で各種温度下16分間反応させたところ、75℃
まで反応した。
五、作用最適温度
前記の条件下60〜65℃であった。
六、熱安定性
0、2 M酢酸緩衝液(P H6,0>中で各種温度で
60分間加熱し残存活性を測定したところ、65℃にお
いて60%の活性が残存していた。更にこの系に1mM
、EDTAを加えると90%以上活性は残存した。
60分間加熱し残存活性を測定したところ、65℃にお
いて60%の活性が残存していた。更にこの系に1mM
、EDTAを加えると90%以上活性は残存した。
七、PH安定性
P H5,5よす9.0の間で安定(各種緩衝液を用い
PHを調整し、60℃−60分放置後、P H7゜0に
調整し残存活性を測定した)。
PHを調整し、60℃−60分放置後、P H7゜0に
調整し残存活性を測定した)。
八、精製方法
培養上澄液を硫安分画(85〜60%飽和)した後、沈
でん物を少量の水に溶解し透析後、PH8,0でD E
A E −celluloseに吸着させた。ついで
食塩濃度を0.6 Mまで漸次上昇させて酵素を溶出し
た。さらにセファデックスG−2000カラムクロマト
グラフイーを2回繰返した後、α−サイクロデキストリ
ンを結合したセファロース6B(5epharose
6 B )カラムでアフイ會ティクロマトグラフィを行
った。
でん物を少量の水に溶解し透析後、PH8,0でD E
A E −celluloseに吸着させた。ついで
食塩濃度を0.6 Mまで漸次上昇させて酵素を溶出し
た。さらにセファデックスG−2000カラムクロマト
グラフイーを2回繰返した後、α−サイクロデキストリ
ンを結合したセファロース6B(5epharose
6 B )カラムでアフイ會ティクロマトグラフィを行
った。
溶出液の蛋白質の吸収は1個のピークを示し、酵素活性
のピークと完全に一致した。この活性区分を5DS−P
AGEにより電気泳動を行うと単一バンドを示した。
のピークと完全に一致した。この活性区分を5DS−P
AGEにより電気泳動を行うと単一バンドを示した。
九、分子量
62000daltor%(SDS−PAGE法)士、
生産物 プルランからはパノースの他グルコース、マルトースを
与えた。また、でん粉からグルコース、マルトース、パ
ノース、IMMを与えた。
生産物 プルランからはパノースの他グルコース、マルトースを
与えた。また、でん粉からグルコース、マルトース、パ
ノース、IMMを与えた。
十−1力価測定方法
1%プルラン(0,2M酢酸緩衝液(P H6,0)に
溶解) 0.25 m lに酵素液0.25 m /を
加え、60℃・15分間反応させ、生ずる還元力の増加
をDNS法により定量した。上記反応で1分間当’ll
1mmolの還元糖を生ずる酵素力を1単位とした。
溶解) 0.25 m lに酵素液0.25 m /を
加え、60℃・15分間反応させ、生ずる還元力の増加
をDNS法により定量した。上記反応で1分間当’ll
1mmolの還元糖を生ずる酵素力を1単位とした。
以上の理化学的性質から、本発明酵素はこれまでに報告
されたことのない新規なプルラナーゼであるといえる。
されたことのない新規なプルラナーゼであるといえる。
本発明では、かかる耐熱性のあるネオプルラナーゼの遺
伝子をバチルス ステアロサーモフィルス、殊にバチル
ス ステアロサーモフィルスTR840から調製し、制
限酵素ヒンドIIIを用いて切断する。ヒンドIIIを
使用するのは、酵素の分子量の大きさ、生成蛋白質の細
胞外への分泌に必要なキャリアー蛋白質に相当する遺伝
情報(シグナル配列)などを有効に保持した遺伝子の断
片が得られるためである。切断処理法は常法による。
伝子をバチルス ステアロサーモフィルス、殊にバチル
ス ステアロサーモフィルスTR840から調製し、制
限酵素ヒンドIIIを用いて切断する。ヒンドIIIを
使用するのは、酵素の分子量の大きさ、生成蛋白質の細
胞外への分泌に必要なキャリアー蛋白質に相当する遺伝
情報(シグナル配列)などを有効に保持した遺伝子の断
片が得られるためである。切断処理法は常法による。
切断した断片をショットガン方式でベクタープGene
ral Microbiology s 第181巻
、第1757頁、1985年刊行に記載あり)に組換え
、枯草菌を宿主として複製維持できる組換えプラスミド
を作成する。目的とするプラスミドは、分子量約2.2
M dで制限酵素E co RIに対する切断箇所が
2ケ所であり%EC0RIで処理したと きのDNA断
片′の分子量が0.8.0.4及び1.0(Md)で示
されうるDNA断片を含む組換えプラスミドPIGと命
名された組換えプラスミドは、遺伝子的 工学場一般的な手法により目的物質生産を可能とするた
めの所望性質(コピー数、薬剤耐性の種類、図に示す。
ral Microbiology s 第181巻
、第1757頁、1985年刊行に記載あり)に組換え
、枯草菌を宿主として複製維持できる組換えプラスミド
を作成する。目的とするプラスミドは、分子量約2.2
M dで制限酵素E co RIに対する切断箇所が
2ケ所であり%EC0RIで処理したと きのDNA断
片′の分子量が0.8.0.4及び1.0(Md)で示
されうるDNA断片を含む組換えプラスミドPIGと命
名された組換えプラスミドは、遺伝子的 工学場一般的な手法により目的物質生産を可能とするた
めの所望性質(コピー数、薬剤耐性の種類、図に示す。
本願の第2発明(本願の特許請求の範囲の第4項に記載
のものをいう。以下おなじ)は、前述の組換えプラスミ
ドで形質転換せしめた新規の微生物である。この場合、
宿主枯草菌はアミラーゼ生産能を失った枯草菌であれば
菌株の如何を問わず利用できる。かかる欠損株は常法に
より容易に取得できる。
のものをいう。以下おなじ)は、前述の組換えプラスミ
ドで形質転換せしめた新規の微生物である。この場合、
宿主枯草菌はアミラーゼ生産能を失った枯草菌であれば
菌株の如何を問わず利用できる。かかる欠損株は常法に
より容易に取得できる。
本願の第8発明(特許請求の範囲の第6項に記載のもの
をいう。以下おなじ)は、第2発明の枯草菌を使用した
ネオプルラナーゼの製造法に関するものである。即ち、
第2発明になる菌が生育しうる栄養培地として、たとえ
ば炭素源としてでん粉、可溶性でん粉、デキストリン、
酸処理でん粉などの炭水化物を1〜10%、窒素源とし
て大豆粕、大豆粕抽出物、乾燥酵母、ミルクカゼイン、
ペプトン、肉エキス、コーンステイープリカー、ペプチ
ド含有物、アミノ酸類の単独ないし適宜の混和物を添加
し、その他必要に応じて少量の無機塩類を適量添加した
ものを使い、これに菌体を接種し、P H6,5〜7.
8.37℃で24〜72時間通気攪拌培養することによ
り、ネオプルラナーゼを生成蓄積せしめるのである。こ
の培養物からネオプルラナーゼを回収・精製するには、
培養F液を硫安により分画・沈でん、アルコール沈でん
、膜濃縮法などの通常の手段によつて行えばよい。
をいう。以下おなじ)は、第2発明の枯草菌を使用した
ネオプルラナーゼの製造法に関するものである。即ち、
第2発明になる菌が生育しうる栄養培地として、たとえ
ば炭素源としてでん粉、可溶性でん粉、デキストリン、
酸処理でん粉などの炭水化物を1〜10%、窒素源とし
て大豆粕、大豆粕抽出物、乾燥酵母、ミルクカゼイン、
ペプトン、肉エキス、コーンステイープリカー、ペプチ
ド含有物、アミノ酸類の単独ないし適宜の混和物を添加
し、その他必要に応じて少量の無機塩類を適量添加した
ものを使い、これに菌体を接種し、P H6,5〜7.
8.37℃で24〜72時間通気攪拌培養することによ
り、ネオプルラナーゼを生成蓄積せしめるのである。こ
の培養物からネオプルラナーゼを回収・精製するには、
培養F液を硫安により分画・沈でん、アルコール沈でん
、膜濃縮法などの通常の手段によつて行えばよい。
■ 実施例
実施例1(組換えプラスミドの生成と形質転換された枯
草菌の培養) まずバチルス ステアロサーモフィルスTR540の染
色体DNAを以下により調製する。
草菌の培養) まずバチルス ステアロサーモフィルスTR540の染
色体DNAを以下により調製する。
バチルス ステアロサーモフィルスTR340を100
m l L培地を含む500mA’容フラスコ中で一
夜、60℃で培養した。これを遠心集菌し、20 m
lのTE緩衝液(ILimMトリス、1mM−EDTA
、PH8,5)で洗浄し、amlの15%しよ糖−50
m M )リス(PH8,5) −50M−EDTA−
1mJ’/m!リゾチームに愁眉し、水中で30分間静
置した。これにamlの1%ザル−x シk −50m
M )リス(PH8,5) −50mM・EDTAを添
加し、混合した。ついで5.4tCsC1を加え0.8
m /のエチジウムブロマイドダ 液(10mり/mりを加え、RP6flTローター(日
立製作新製)で超遠心場で分離した。超遠心終了後、D
NA区分を注射針で抜き取+1)、n−ブタノールで3
回抽出を繰り返してエチジウムブロマイドを除去した。
m l L培地を含む500mA’容フラスコ中で一
夜、60℃で培養した。これを遠心集菌し、20 m
lのTE緩衝液(ILimMトリス、1mM−EDTA
、PH8,5)で洗浄し、amlの15%しよ糖−50
m M )リス(PH8,5) −50M−EDTA−
1mJ’/m!リゾチームに愁眉し、水中で30分間静
置した。これにamlの1%ザル−x シk −50m
M )リス(PH8,5) −50mM・EDTAを添
加し、混合した。ついで5.4tCsC1を加え0.8
m /のエチジウムブロマイドダ 液(10mり/mりを加え、RP6flTローター(日
立製作新製)で超遠心場で分離した。超遠心終了後、D
NA区分を注射針で抜き取+1)、n−ブタノールで3
回抽出を繰り返してエチジウムブロマイドを除去した。
このDNA試料を10mMトリ、x、 (P H7,5
) −0,1m M @E D T A中で透析し4″
Cで保存した。
) −0,1m M @E D T A中で透析し4″
Cで保存した。
次いで以下の通りに制限酵素及びリガーゼで処理してベ
クタープラスミドを調製する。即ち、−方では枯草菌を
宿主として複製維持できるペクタ性)を常法により調製
し、ついでバチルス ステその反応条件は次の通りであ
る。
クタープラスミドを調製する。即ち、−方では枯草菌を
宿主として複製維持できるペクタ性)を常法により調製
し、ついでバチルス ステその反応条件は次の通りであ
る。
表中、10 X Hind [[緩衝液とは、100m
Mト リ ス (P H7,4) 、 1 0
0mMMg CI2 、5 0 0mMNa cl
、 10 mMジチオスレイトールを含む。
Mト リ ス (P H7,4) 、 1 0
0mMMg CI2 、5 0 0mMNa cl
、 10 mMジチオスレイトールを含む。
上記溶液で37℃・1.5〜2時間反応させる。
上記で得られるA%B、2種類のDNAを混合し、8M
酢酸カリウム20μ!加え、その後エタノール0.45
m1を加えて遠心し、上澄を除いた。沈でんはエタノー
ルで洗浄し、脱水・脱塩し、デシケータ−で乾燥した。
酢酸カリウム20μ!加え、その後エタノール0.45
m1を加えて遠心し、上澄を除いた。沈でんはエタノー
ルで洗浄し、脱水・脱塩し、デシケータ−で乾燥した。
この乾燥物に2×リガーゼ緩衝液(1g2mM)リス(
P H7,6) −18,2M@Mgc12) 10
0 s is 100mMジチオスレイトール20
p is 5mM 1IATP 20 p l、水6
0μlを加え混合した後、DNA!Jガーゼ1μlを加
え、8℃−16時間保ち、DNA溶液とした。
P H7,6) −18,2M@Mgc12) 10
0 s is 100mMジチオスレイトール20
p is 5mM 1IATP 20 p l、水6
0μlを加え混合した後、DNA!Jガーゼ1μlを加
え、8℃−16時間保ち、DNA溶液とした。
第8段階としては、上述のベクターを枯草菌に導入して
クローニングする段階である。
クローニングする段階である。
バチルス ズブチリスNAIは、通常の変異処理により
得られるアミラーゼ欠損株の1つであるが(日本農芸化
学会昭和61年度京都大会にて発表。講演番号2A−2
2)、これをL培地で一夜培養した後、その1ml!を
100 m l容フラスコ内のTFI培地20 m l
に植菌する。
得られるアミラーゼ欠損株の1つであるが(日本農芸化
学会昭和61年度京都大会にて発表。講演番号2A−2
2)、これをL培地で一夜培養した後、その1ml!を
100 m l容フラスコ内のTFI培地20 m l
に植菌する。
これを87℃で培養し、対数増殖期を外れてから1時間
後、500m1!容フラスコ内のTF■培地86mlに
4 m l植菌し、1.5時間培養してコンピテント
セルを得る。
後、500m1!容フラスコ内のTF■培地86mlに
4 m l植菌し、1.5時間培養してコンピテント
セルを得る。
TFI、TF■培地は夫々以下の通りである。
このコンピテント セル1mI!に前述により得られた
DNA溶液を混合し、37℃・30分間激しく振盪培養
後、遠心集菌し、L培地1mj’を加えて37℃・1.
5時間振盪培養する。その培養液を100μlづつテト
ラサイクリン25μJ’ / mlを含む寒天平板に塗
抹し、37℃1夜培養し、形質転換体を得た。
DNA溶液を混合し、37℃・30分間激しく振盪培養
後、遠心集菌し、L培地1mj’を加えて37℃・1.
5時間振盪培養する。その培養液を100μlづつテト
ラサイクリン25μJ’ / mlを含む寒天平板に塗
抹し、37℃1夜培養し、形質転換体を得た。
この形質変換体をPLL寒天平板(1%プルラン、0.
2%トリプトン、0.2%イーストエキス、0.2%N
aC/%1.5%寒天(P H7,8) )にレプリカ
し、37℃1夜培養後、平板上にエタノールを注ぎ数時
間放置し、ハローを形成するコーニーバチルス ズブチ
リスNAIを2.6%可溶性でん粉を含むし培地(25
μ/ / mI!テトラサイクリン含有)にて37℃・
24時間培養した。培養液を遠心分離して上澄を採り6
0℃・15分間加熱処理をした。この段階で培養上澄液
中の蛋白質は殆んど耐熱性のネオプルラナーゼのみであ
ることが、SDSポリアクリルアミド電気泳動により確
認された。
2%トリプトン、0.2%イーストエキス、0.2%N
aC/%1.5%寒天(P H7,8) )にレプリカ
し、37℃1夜培養後、平板上にエタノールを注ぎ数時
間放置し、ハローを形成するコーニーバチルス ズブチ
リスNAIを2.6%可溶性でん粉を含むし培地(25
μ/ / mI!テトラサイクリン含有)にて37℃・
24時間培養した。培養液を遠心分離して上澄を採り6
0℃・15分間加熱処理をした。この段階で培養上澄液
中の蛋白質は殆んど耐熱性のネオプルラナーゼのみであ
ることが、SDSポリアクリルアミド電気泳動により確
認された。
ネオプルラナーゼ活性測定法により関連菌株を測定した
ところ、次のようであった。
ところ、次のようであった。
ス ズブチリスNAIより得たネオプルラナーゼは、6
0℃、65℃で夫々60分間熱処理したところ、夫々9
0%以上、60%程度の酵素活性を維持しており、耐熱
性に富むことが確認された。
0℃、65℃で夫々60分間熱処理したところ、夫々9
0%以上、60%程度の酵素活性を維持しており、耐熱
性に富むことが確認された。
■ 本発明の効果
一般に好熱菌であるバチルス ステアロサーモフィルス
は、枯草菌に較べ培養時の最終菌体濃度が低く、菌体生
産物を大量に取得するのが比較的困難である。そこで本
発明ではバチルス ステアロサーモフィルス中の耐熱性
酵素であるネオプルラナーゼの遺伝子を枯草菌に組込む
ことにより、ネオプルラナーゼを大量に取得することを
可能としたものである。就中、バチルス ステア0サー
込ンタバチルス ズブチリスNAIは本願発明を効果的
に実現可能とするものである。しかして本発明によると
きは、宿主菌にα−アミラーゼ及びプロテアーゼ欠損の
変異株であるバチルス ズブチリスNAIを用いるので
、培養F液に含まれる菌体外分泌酵素は殆んど本菌株に
クローン化された耐熱性のネオプルラナーゼのみとなり
、その遺伝−子が増幅されることにより、当該酵素の生
産性を顕著に向上せしめ得ることや、中温菌に好熱菌の
遺伝子がクローン化されたことにより、たとえば60℃
・15分間の加熱処理により培養F液中の耐熱性のネオ
プルラナーゼ以外の蛋白質は殆んど変性法でんしてしま
うことから、目的酵素の濃縮・精製はバチルス ステア
ロサーモフィルスTR540を培養しこれから本件酵素
を濃縮・精製するよりも遥かに簡便・効率的に行うこと
ができる。
は、枯草菌に較べ培養時の最終菌体濃度が低く、菌体生
産物を大量に取得するのが比較的困難である。そこで本
発明ではバチルス ステアロサーモフィルス中の耐熱性
酵素であるネオプルラナーゼの遺伝子を枯草菌に組込む
ことにより、ネオプルラナーゼを大量に取得することを
可能としたものである。就中、バチルス ステア0サー
込ンタバチルス ズブチリスNAIは本願発明を効果的
に実現可能とするものである。しかして本発明によると
きは、宿主菌にα−アミラーゼ及びプロテアーゼ欠損の
変異株であるバチルス ズブチリスNAIを用いるので
、培養F液に含まれる菌体外分泌酵素は殆んど本菌株に
クローン化された耐熱性のネオプルラナーゼのみとなり
、その遺伝−子が増幅されることにより、当該酵素の生
産性を顕著に向上せしめ得ることや、中温菌に好熱菌の
遺伝子がクローン化されたことにより、たとえば60℃
・15分間の加熱処理により培養F液中の耐熱性のネオ
プルラナーゼ以外の蛋白質は殆んど変性法でんしてしま
うことから、目的酵素の濃縮・精製はバチルス ステア
ロサーモフィルスTR540を培養しこれから本件酵素
を濃縮・精製するよりも遥かに簡便・効率的に行うこと
ができる。
10の制限酵素地図、図中、太線で示した2、 2 M
dのヒンドIII断片に相当する部分は、バチルス
ステアロサーモフィルスTR340由来の耐熱性ネオプ
ルラナーゼ遺伝子である。ただし、円内の数字は分子サ
イズをMdで表わしたもの。
dのヒンドIII断片に相当する部分は、バチルス
ステアロサーモフィルスTR340由来の耐熱性ネオプ
ルラナーゼ遺伝子である。ただし、円内の数字は分子サ
イズをMdで表わしたもの。
特許出願人 江崎グリコ株式会社
Claims (7)
- (1)バチルス ステアロサーモフイルス(Bacil
lus stearothermophilus)の染
色体DNAを制限酵素ヒンドIII(HindIII)により
処理して得られるプルラナーゼ類似酵素生産能をもつD
NA断片とヒンドIIIで処理して得られたベクター断片
とを結合させた組換えDNAであって、かつ、枯草菌を
宿主として複製維持されたことを特徴とする組換えプラ
スミド。 - (2)バチルス ステアロサーモフイルス菌がバチルス
ステアロサーモフイルスTRS40(微工研菌寄託第
9609号)であることを特徴とする特許請求の範囲の
第1項に記載の組換えプラスミド。 - (3)バチルス ステアロサーモフイルス又はバチルス
ステアロサーモフイルスTRS40をヒンドIII処理
して得られるDNA断片が分子量約2.2Mdであり、
かつ、制限酵素エコアール I (EcoR I )に対して
2ケ所の切断個所を示すことを特徴とする特許請求の範
囲の第1項に記載の組換えプラスミド。 - (4)バチルス ステアロサーモフイルスの染色体DN
Aを制限酵素ヒンドIIIにより処理して得られるプルラ
ナーゼ類似酵素生産能をもつDNA断片を有するプラス
ミドを複製維持した宿主であることを特徴とする形質転
換された枯草菌。 - (5)バチルス ステアロサーモフイルス菌がバチルス
ステアロサーモフイルスTRS40であることを特徴
とする特許請求の範囲の第4項に記載の形質転換された
枯草菌。 - (6)バチルス ステアロサーモフイルスの染色体DN
Aを制限酵素ヒンドIIIにより処理して得られるプルラ
ナーゼ類似酵素生産能をもつDNA断片を有するプラス
ミドを複製維持した枯草菌を栄養培地で培養し、その培
養物からプルラナーゼ類似酵素を回収することを特徴と
する形質転換された枯草菌によるプルラナーゼ類似酵素
の製造法。 - (7)バチルス ステアロサーモフイルス菌がバチルス
ステアロサーモフイルスTRS40であることを特徴
とする特許請求の範囲の第6項に記載の形質転換された
枯草菌によるプルラナーゼ類似酵素の製造法。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33062587A JPH01171488A (ja) | 1987-12-25 | 1987-12-25 | 組換えプラスミド及びそれにより形質転換された枯草菌 |
| JP5085761A JPH0691818B2 (ja) | 1987-12-25 | 1993-03-18 | 形質転換された枯草菌によるネオプルラナーゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33062587A JPH01171488A (ja) | 1987-12-25 | 1987-12-25 | 組換えプラスミド及びそれにより形質転換された枯草菌 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5085761A Division JPH0691818B2 (ja) | 1987-12-25 | 1993-03-18 | 形質転換された枯草菌によるネオプルラナーゼの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01171488A true JPH01171488A (ja) | 1989-07-06 |
| JPH0573388B2 JPH0573388B2 (ja) | 1993-10-14 |
Family
ID=18234755
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP33062587A Granted JPH01171488A (ja) | 1987-12-25 | 1987-12-25 | 組換えプラスミド及びそれにより形質転換された枯草菌 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01171488A (ja) |
-
1987
- 1987-12-25 JP JP33062587A patent/JPH01171488A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0573388B2 (ja) | 1993-10-14 |
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