JPH0320228B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0320228B2 JPH0320228B2 JP22068683A JP22068683A JPH0320228B2 JP H0320228 B2 JPH0320228 B2 JP H0320228B2 JP 22068683 A JP22068683 A JP 22068683A JP 22068683 A JP22068683 A JP 22068683A JP H0320228 B2 JPH0320228 B2 JP H0320228B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- medium
- production
- decomposition
- agar medium
- agar
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明はキヤンデイダ・ギリモンデイ属に属す
る新規な微生物に関する。 従来、脂肪酸のω−末端のみを選択的に酸化す
ることは工業的には困難とされてきた。例えば、
ラクトン系ムスク（じや香合成香料）の主成分で
あるヘキサデカノライドの製造にはω−ヒドロキ
シパルミチン酸が使用されるが、ムスクが高価で
あるのは、この前駆体たるω−ヒドロキシパルミ
チン酸の製造が困難なことに起因する。即ち、パ
ルミチン酸のω−末端を選択的に酸化してω−ヒ
ドロキシパルミチン酸とすることは、合成化学上
困難である。 一方、微生物にノルマルパラフインを資化させ
てジカルボン酸を製造する際に副産物としてω−
ヒドロキシ高級脂肪酸も得られることが報告され
ている（例えば特公昭48−26238号）このように
ω−ヒドロキシ高級脂肪酸はノルマルパラフイン
のアルカン資化性菌によるジカルボン酸への代謝
中間体であるが、その著量生産は困難とされてい
る。その理由としてはω−ヒドロキシ高級脂肪酸
の生成速度に比べて、そのジカルボン酸への転化
速度の方がずつと大きいためと推測される。 また、ω−ヒドロキシ脂肪酸と同様にラクトン
系ムスクの主成分である大環状ラクトンの有用な
中間体としてはω−ハロカルボン酸がある。ω−
ハロカルボン酸はハロゲンに官能基を導入するこ
とにより種々の誘導体にも導びくこともできる。
このω−ハロカルボン酸に関しては、アルスロバ
クター属、コリネバクテリウム属、ノカルデイア
属に属し、アルキルハライドからω−ハロカルボ
ン酸を生産する能力を有する菌を培養し、ω−ハ
ロカルボン酸を生産する方法が報告されている
（特開昭57−50893号）。 そこで、本発明者らは、斯かる現状に鑑みアル
キル（又はアレケニル）ハライドを対応するω−
ハロカルボン酸に変換する能力を有する菌を自然
界より広く検索した結果、キヤンデイダ属に属す
る微生物中に斯かる能力を有するものがあること
を見出し、本発明を完成した。 すなわち、本発明はキヤンデイダ属に属し、ア
ルキル（又はアレケニル）ハライドを資化してω
−ハロカルボン酸を生産する能力を有する新規な
キヤンデイダ・エスピー・KSM−Ｂ−24（微工研
寄第7309号）に関するものである。 次に、本発明者らが分離、採取した本菌株の菌
学的性質を詳述する。 (a) 細胞の大きさ：直径2.2〜2.5μ (b) 各培地における生育状態 (1) MY寒天培地： 円形の光沢のない集落を生じる。色は白色
を有する。 (2) MY液体培地： 皮膜は形成せず、中程度に混濁し沈殿を生
ずる。 (3) コーンミール寒天培地によるスライド培
養： 仮性菌糸を形成する。分生子は出芽型を有
する。 (4) 子のう胞子の形成 ゴドロコワ培地： 形成しない 麦芽抽出液寒天培地：形成しない (5) 射出胞子の形成 MY寒天平面培地：形成しない (c) 生理学的性質 (1) 生育条件： 温度 14〜47℃（最適 20〜40℃） PH 2.2〜9.6（最適 4.3〜9.0） (2) 硝酸塩の同化：同化しない (3) 脂質の分解（油脂）：分解しない（リパ
ーゼ活性がない） (4) 尿素の分解：分解する (5) ゼラチンの液化：液化しない (6) 耐浸透圧（NaCl耐性）：12〜13％ (7) カロチノイドの生成：生成しない (8) 顕著な有機酸の生成：有機酸は生成しない (9) ビタミンの要求性：要求しない (10) 各炭素源の同化性：
る新規な微生物に関する。 従来、脂肪酸のω−末端のみを選択的に酸化す
ることは工業的には困難とされてきた。例えば、
ラクトン系ムスク（じや香合成香料）の主成分で
あるヘキサデカノライドの製造にはω−ヒドロキ
シパルミチン酸が使用されるが、ムスクが高価で
あるのは、この前駆体たるω−ヒドロキシパルミ
チン酸の製造が困難なことに起因する。即ち、パ
ルミチン酸のω−末端を選択的に酸化してω−ヒ
ドロキシパルミチン酸とすることは、合成化学上
困難である。 一方、微生物にノルマルパラフインを資化させ
てジカルボン酸を製造する際に副産物としてω−
ヒドロキシ高級脂肪酸も得られることが報告され
ている（例えば特公昭48−26238号）このように
ω−ヒドロキシ高級脂肪酸はノルマルパラフイン
のアルカン資化性菌によるジカルボン酸への代謝
中間体であるが、その著量生産は困難とされてい
る。その理由としてはω−ヒドロキシ高級脂肪酸
の生成速度に比べて、そのジカルボン酸への転化
速度の方がずつと大きいためと推測される。 また、ω−ヒドロキシ脂肪酸と同様にラクトン
系ムスクの主成分である大環状ラクトンの有用な
中間体としてはω−ハロカルボン酸がある。ω−
ハロカルボン酸はハロゲンに官能基を導入するこ
とにより種々の誘導体にも導びくこともできる。
このω−ハロカルボン酸に関しては、アルスロバ
クター属、コリネバクテリウム属、ノカルデイア
属に属し、アルキルハライドからω−ハロカルボ
ン酸を生産する能力を有する菌を培養し、ω−ハ
ロカルボン酸を生産する方法が報告されている
（特開昭57−50893号）。 そこで、本発明者らは、斯かる現状に鑑みアル
キル（又はアレケニル）ハライドを対応するω−
ハロカルボン酸に変換する能力を有する菌を自然
界より広く検索した結果、キヤンデイダ属に属す
る微生物中に斯かる能力を有するものがあること
を見出し、本発明を完成した。 すなわち、本発明はキヤンデイダ属に属し、ア
ルキル（又はアレケニル）ハライドを資化してω
−ハロカルボン酸を生産する能力を有する新規な
キヤンデイダ・エスピー・KSM−Ｂ−24（微工研
寄第7309号）に関するものである。 次に、本発明者らが分離、採取した本菌株の菌
学的性質を詳述する。 (a) 細胞の大きさ：直径2.2〜2.5μ (b) 各培地における生育状態 (1) MY寒天培地： 円形の光沢のない集落を生じる。色は白色
を有する。 (2) MY液体培地： 皮膜は形成せず、中程度に混濁し沈殿を生
ずる。 (3) コーンミール寒天培地によるスライド培
養： 仮性菌糸を形成する。分生子は出芽型を有
する。 (4) 子のう胞子の形成 ゴドロコワ培地： 形成しない 麦芽抽出液寒天培地：形成しない (5) 射出胞子の形成 MY寒天平面培地：形成しない (c) 生理学的性質 (1) 生育条件： 温度 14〜47℃（最適 20〜40℃） PH 2.2〜9.6（最適 4.3〜9.0） (2) 硝酸塩の同化：同化しない (3) 脂質の分解（油脂）：分解しない（リパ
ーゼ活性がない） (4) 尿素の分解：分解する (5) ゼラチンの液化：液化しない (6) 耐浸透圧（NaCl耐性）：12〜13％ (7) カロチノイドの生成：生成しない (8) 顕著な有機酸の生成：有機酸は生成しない (9) ビタミンの要求性：要求しない (10) 各炭素源の同化性：
【表】
【表】
(11) アルブミンの分解：分解しない
(12) 窒素源の利用
バクトペプトン：利用する
硫酸アンモニウム：利用する
DL−アスパラギン：利用する
尿素：利用する
(13) デンプン類似物質の生産性：なし
(14) 採集地：土壌から分離
以上の菌学的性質を有する菌について、ロツダ
ーのザ・イースト（Lodder′s The Yeasts）第
２版（1971年）にもとづいて検索した結果、上記
酵母はキヤンデイダ・ギリモンデイに属する新菌
株と認め、キヤンデイダ・ギラモンデイ・KSM
−Ｂ−24（Candida・guilliermondii・KSM−Ｂ
−24）と命名した。なお、本菌株は、微工研菌寄
第7309号として工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。 分離源の土壌からの本菌株の分離はアルキル
（又はアルケニル）ハライド含有培地を用い常法
で行なつた。 本菌株の培養に使用する培地の組成は、使用す
る菌株が良好に生育し、アルキル（又はアルケニ
ル）ハライドからのω−ハロカルボン酸の生産を
順調に行なわしめるために適当な炭素源、窒素源
あるいは有機栄養源、無機塩などからなる。炭素
源としては、炭水化物（例えば、グルコース、フ
ラクトース、シユクロース、ソルビトール等）、
有機酸（例えば、クエン酸、コハク酸等）、炭水
化物（例えば、ｎ−ドデカン、ｎ−ヘキサデカン
等）、アルキル（又はアルケニル）ハライドなど
資化されるものならばいずれも使用できる。ま
た、窒素源あるいは有機栄養源としては、例え
ば、硝酸ナトリウム、硝酸カリウム、硝酸アンモ
ニウム等の硝酸塩類、酵母エキス、肉エキス、ペ
プトンが挙げられる。また、無機塩としては各種
リン酸塩、硫酸マグネシウムなどが使用できる。
さらに微量の重金属塩類が使用されるが、天然物
を含む培地では必ずしも添加を必要としない。ま
た栄養要求を必要とする変異株を用いる場合に
は、その栄養要求を満たす物質を培地に添加しな
ければならない。 培養は培地を加熱等により殺菌後、菌を接種
し、28〜35℃で３〜５日振盪又は通気撹拌すれば
良い。PHは6.5〜８程度に調整すると良い結果が
得られる。水に難溶性の炭素源等を使用する場合
には、ポリオチエチレンソルビタン等の各種界面
活性剤を培地に添加することも可能である。 叙上の如く得られた培養物は、そのまま酵素源
として用いることもできるが、菌体を培養液より
分離する場合は、通常の固液分離手段が用いられ
る。このように分離された生菌体及びその処理物
（凍結乾燥菌体等）も酵素源として用いることが
できる。 アルキル（又はアルケニル）ハロイドを反応基
質として本菌株を上記の如く培養するω−ハロカ
ルボン酸が生産される。該基質は炭素数２〜18の
ものが特に適当である。 これらの培養液から目的物質であるω−ハロカ
ルボン酸の採取および精製は、一般の有機化合物
の採取および精製の手段に準じて行うことができ
る。たとえば培養液から菌体等を除去したろ液も
しくは培養液そのものを酸性とし、エチルエーテ
ル、酢酸エチル又はクロロホルム−メタノール混
液等の有機溶媒で抽出する。この抽出物をカラム
クロマトグラフイーあるいは再結晶などの方法を
用いてω−ハロカルボン酸を単離することができ
る。 以下、実施例により本発明を更に詳しく説明す
る。 実施例 １ 採取した土壌及び土壌付着の落葉落枝の小スパ
ーテル１杯分（約0.5ｇ）を10ml滅菌水に懸濁し、
充分撹拌した後放置する。かくして得られる土壌
懸濁液上清の100倍希釈液0.1mlを下記組成のセチ
ルクロライド含有の分離用寒天培地（）に直接
移し、30℃にて５日間培養する。
ーのザ・イースト（Lodder′s The Yeasts）第
２版（1971年）にもとづいて検索した結果、上記
酵母はキヤンデイダ・ギリモンデイに属する新菌
株と認め、キヤンデイダ・ギラモンデイ・KSM
−Ｂ−24（Candida・guilliermondii・KSM−Ｂ
−24）と命名した。なお、本菌株は、微工研菌寄
第7309号として工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。 分離源の土壌からの本菌株の分離はアルキル
（又はアルケニル）ハライド含有培地を用い常法
で行なつた。 本菌株の培養に使用する培地の組成は、使用す
る菌株が良好に生育し、アルキル（又はアルケニ
ル）ハライドからのω−ハロカルボン酸の生産を
順調に行なわしめるために適当な炭素源、窒素源
あるいは有機栄養源、無機塩などからなる。炭素
源としては、炭水化物（例えば、グルコース、フ
ラクトース、シユクロース、ソルビトール等）、
有機酸（例えば、クエン酸、コハク酸等）、炭水
化物（例えば、ｎ−ドデカン、ｎ−ヘキサデカン
等）、アルキル（又はアルケニル）ハライドなど
資化されるものならばいずれも使用できる。ま
た、窒素源あるいは有機栄養源としては、例え
ば、硝酸ナトリウム、硝酸カリウム、硝酸アンモ
ニウム等の硝酸塩類、酵母エキス、肉エキス、ペ
プトンが挙げられる。また、無機塩としては各種
リン酸塩、硫酸マグネシウムなどが使用できる。
さらに微量の重金属塩類が使用されるが、天然物
を含む培地では必ずしも添加を必要としない。ま
た栄養要求を必要とする変異株を用いる場合に
は、その栄養要求を満たす物質を培地に添加しな
ければならない。 培養は培地を加熱等により殺菌後、菌を接種
し、28〜35℃で３〜５日振盪又は通気撹拌すれば
良い。PHは6.5〜８程度に調整すると良い結果が
得られる。水に難溶性の炭素源等を使用する場合
には、ポリオチエチレンソルビタン等の各種界面
活性剤を培地に添加することも可能である。 叙上の如く得られた培養物は、そのまま酵素源
として用いることもできるが、菌体を培養液より
分離する場合は、通常の固液分離手段が用いられ
る。このように分離された生菌体及びその処理物
（凍結乾燥菌体等）も酵素源として用いることが
できる。 アルキル（又はアルケニル）ハロイドを反応基
質として本菌株を上記の如く培養するω−ハロカ
ルボン酸が生産される。該基質は炭素数２〜18の
ものが特に適当である。 これらの培養液から目的物質であるω−ハロカ
ルボン酸の採取および精製は、一般の有機化合物
の採取および精製の手段に準じて行うことができ
る。たとえば培養液から菌体等を除去したろ液も
しくは培養液そのものを酸性とし、エチルエーテ
ル、酢酸エチル又はクロロホルム−メタノール混
液等の有機溶媒で抽出する。この抽出物をカラム
クロマトグラフイーあるいは再結晶などの方法を
用いてω−ハロカルボン酸を単離することができ
る。 以下、実施例により本発明を更に詳しく説明す
る。 実施例 １ 採取した土壌及び土壌付着の落葉落枝の小スパ
ーテル１杯分（約0.5ｇ）を10ml滅菌水に懸濁し、
充分撹拌した後放置する。かくして得られる土壌
懸濁液上清の100倍希釈液0.1mlを下記組成のセチ
ルクロライド含有の分離用寒天培地（）に直接
移し、30℃にて５日間培養する。
【表】
【表】
上記分離用寒天培地(I)の調製法は、FeSO4・
7H2O成分のみろ過滅菌しておき、これを予めオ
ートクレープ滅菌して60℃付近に冷却しておいた
培地成分に添加後、ダイナミツクシエーカーで充
分撹拌、乳化させた後、滅菌シヤーレに分注する
ものである。 上記培養により発生するコロニーの一白金耳を
滅菌水で100倍希釈し、この希釈液0.1mlを下述の
分離用寒天培地（）に移し、30℃にて３日間培
養する。生じた複数のコロニーが相互間に相異し
ないことを肉眼及び顕微鏡的に確認する。なお、
分離用寒天培地（）は、分離用寒天培地（）
の組成よりセチルクロライドとポリオキシエチレ
ンソルビタンモノラウリン酸エステルを除いた寒
天培地の底にセチルクロライドを含浸させたろ紙
を敷いてセチルクロライドを供給させたものであ
る。 上記コロニーのうち10個のコロニーをそれぞれ
分離用寒天培地（）と同組成の斜面寒天培地に
接種し、30℃で３日間培養し、10本の斜面倍地上
の菌株が肉眼及び顕微鏡的に同一菌株であること
を確認し、また、これら10菌株の各培地上の性状
及び生理学的性質が同一であることを確認した。
上記菌株の各培地上の性状及び生理学的性質は前
述した通りである。 上記試験の結果、各10本の培養菌はすべて自然
界より純粋に分離された単一菌株であることが判
る。 次いで、上記で純粋培養された斜面培地上の菌
株より一白金耳を滅菌した10％グリセリン水溶液
（２ml）の入つた凍結保存用バイアルに懸濁し、−
80℃にて凍結保存する。かくして３ケ月凍結保存
後、迅速に解凍し得られる懸濁液の一白金耳を普
通寒天培地に蘇生後、前記と同条件下に各培地上
での性状及び生理学的性質を調べた結果、凍結前
とは変化が認められなかつた。 また、上記凍結及び解凍を１ケ月毎に５度繰り
返した菌株について同様に、各培地上での性状及
び生理学的性質を調べた結果変化は認められなか
つた。 次いで、本菌株を利用してω−ハロカルボン酸
を製造した例を参考例として挙げる。 参考例 １ セチルクロライド50ｇ、リン酸二アンモニウム
10ｇ、リン酸一カリウム２ｇ、硫酸マグネシウム
（７水塩）0.2ｇ、硫酸第一鉄（７水塩）0.02ｇ、
硫酸亜鉛（７水塩）0.016ｇ、硫酸マンガン（４
〜６水塩）0.016ｇ、酵母エキス２ｇを水道水に
溶かして１にし、PHを6.5に調製した。この液
体培地を５ml容振盪試験管に仕込み、120℃で15
分間蒸気滅菌した後、キヤンデイダ・ギリモンデ
イ・KSM−Ｂ−24（Candida・gulliermondii・
KSM−Ｂ−24）を一白金耳接種し、30℃で168時
間振盪培養した。 培養終了後、この培養液に9N硫酸１mlを加え
PHを強酸性として、クロロホルム−メタノール
（２：１）混液20mlで抽出した。この抽出液を滅
圧下濃縮した後メタノール−BF3触媒でメチル化
し、ガスクロマトグラフイーにて生成物のω−ク
ロロパルミチン酸の定量を行なつた。その結果を
第１表に示す。 なお生成物のガス−マス（GC−MS）データ
は標品のそれと一致し、ω−クロロパルミチン酸
であることが確認された。
7H2O成分のみろ過滅菌しておき、これを予めオ
ートクレープ滅菌して60℃付近に冷却しておいた
培地成分に添加後、ダイナミツクシエーカーで充
分撹拌、乳化させた後、滅菌シヤーレに分注する
ものである。 上記培養により発生するコロニーの一白金耳を
滅菌水で100倍希釈し、この希釈液0.1mlを下述の
分離用寒天培地（）に移し、30℃にて３日間培
養する。生じた複数のコロニーが相互間に相異し
ないことを肉眼及び顕微鏡的に確認する。なお、
分離用寒天培地（）は、分離用寒天培地（）
の組成よりセチルクロライドとポリオキシエチレ
ンソルビタンモノラウリン酸エステルを除いた寒
天培地の底にセチルクロライドを含浸させたろ紙
を敷いてセチルクロライドを供給させたものであ
る。 上記コロニーのうち10個のコロニーをそれぞれ
分離用寒天培地（）と同組成の斜面寒天培地に
接種し、30℃で３日間培養し、10本の斜面倍地上
の菌株が肉眼及び顕微鏡的に同一菌株であること
を確認し、また、これら10菌株の各培地上の性状
及び生理学的性質が同一であることを確認した。
上記菌株の各培地上の性状及び生理学的性質は前
述した通りである。 上記試験の結果、各10本の培養菌はすべて自然
界より純粋に分離された単一菌株であることが判
る。 次いで、上記で純粋培養された斜面培地上の菌
株より一白金耳を滅菌した10％グリセリン水溶液
（２ml）の入つた凍結保存用バイアルに懸濁し、−
80℃にて凍結保存する。かくして３ケ月凍結保存
後、迅速に解凍し得られる懸濁液の一白金耳を普
通寒天培地に蘇生後、前記と同条件下に各培地上
での性状及び生理学的性質を調べた結果、凍結前
とは変化が認められなかつた。 また、上記凍結及び解凍を１ケ月毎に５度繰り
返した菌株について同様に、各培地上での性状及
び生理学的性質を調べた結果変化は認められなか
つた。 次いで、本菌株を利用してω−ハロカルボン酸
を製造した例を参考例として挙げる。 参考例 １ セチルクロライド50ｇ、リン酸二アンモニウム
10ｇ、リン酸一カリウム２ｇ、硫酸マグネシウム
（７水塩）0.2ｇ、硫酸第一鉄（７水塩）0.02ｇ、
硫酸亜鉛（７水塩）0.016ｇ、硫酸マンガン（４
〜６水塩）0.016ｇ、酵母エキス２ｇを水道水に
溶かして１にし、PHを6.5に調製した。この液
体培地を５ml容振盪試験管に仕込み、120℃で15
分間蒸気滅菌した後、キヤンデイダ・ギリモンデ
イ・KSM−Ｂ−24（Candida・gulliermondii・
KSM−Ｂ−24）を一白金耳接種し、30℃で168時
間振盪培養した。 培養終了後、この培養液に9N硫酸１mlを加え
PHを強酸性として、クロロホルム−メタノール
（２：１）混液20mlで抽出した。この抽出液を滅
圧下濃縮した後メタノール−BF3触媒でメチル化
し、ガスクロマトグラフイーにて生成物のω−ク
ロロパルミチン酸の定量を行なつた。その結果を
第１表に示す。 なお生成物のガス−マス（GC−MS）データ
は標品のそれと一致し、ω−クロロパルミチン酸
であることが確認された。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ 以下の性質を有する微工研菌寄第7309号とし
て寄託された新規なキヤンデイダ・ギリモンデ
イ・KSM−Ｂ−24株。 (a) 細胞の大きさ：直径2.2〜2.5μ (b) 各培地における生育状態 (1) MY寒天培地： 円形の光沢のない集落を生じる。色は白色
を有する。 (2) MY液体培地： 皮膜は形成せず、中程度に混濁し沈殿を生
ずる。 (3) コーンミール寒天培地によるスライド培
養： 仮性菌糸を形成する。分生子は出芽型を有
する。 (4) 子のう胞子の形成 ゴドロコワ培地：形成しない 麦芽抽出液寒天培地：形成しない (5) 射出胞子の形成 MY寒天平面培地：形成しない (c) 生理学的性質 (1) 生育条件： 温度 14〜47℃（最適20〜40℃） PH 2.2〜9.6（最適4.3〜9.0） (2) 硝酸塩の同化：同化しない (3) 脂質の分解（油脂）：分解しない（リパー
ゼ活性がない） (4) 尿素の分解：分解する (5) ゼラチンの液化：液化しない (6) 耐浸透圧（NaCl耐性）：12〜13％ (7) カロチノイドの生成：生成しない (8) 顕著な有機酸の生成：有機酸は生成しない (9) ビタミンの要求性：要求しない (10) 各炭素源の同化性： 【表】 【表】 (11) アルブミンの分解：分解しない (12) 窒素源の利用 バクトペプトン：利用する 硫酸アンモニウム：利用する DL−アスパラギン：利用する 尿素：利用する (13) デンプン類似物質の生産性：なし
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22068683A JPS60114185A (ja) | 1983-11-25 | 1983-11-25 | 新規微生物 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22068683A JPS60114185A (ja) | 1983-11-25 | 1983-11-25 | 新規微生物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60114185A JPS60114185A (ja) | 1985-06-20 |
| JPH0320228B2 true JPH0320228B2 (ja) | 1991-03-18 |
Family
ID=16754885
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22068683A Granted JPS60114185A (ja) | 1983-11-25 | 1983-11-25 | 新規微生物 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60114185A (ja) |
-
1983
- 1983-11-25 JP JP22068683A patent/JPS60114185A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS60114185A (ja) | 1985-06-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JPS6274281A (ja) | 微生物ハイホジーマ・ロセオニガー | |
| JPH0775589A (ja) | プロトカテキュ酸の製造方法 | |
| JPH04131088A (ja) | ６−ヒドロキシニコチン酸の製造方法 | |
| JPS5846318B2 (ja) | ２−ケト−ｌ−グロン酸の製造方法 | |
| US4245048A (en) | Process for producing coenzyme Q10 | |
| US3930946A (en) | Yeasts | |
| NO169851B (no) | Stereospesifikk fremgangsmaate for fremstilling av 2-arylpropionsyrer med s-konfigurasjon | |
| JPH0361434B2 (ja) | ||
| JPS6337B2 (ja) | ||
| JPH07313176A (ja) | 新規微生物および該微生物を用いた ２，６−ナフタレンジカルボン酸の製造法 | |
| JPH0339678B2 (ja) | ||
| US3318781A (en) | Microbial oxidation of polynuclear aromatic hydrocarbons | |
| JPH0378106B2 (ja) | ||
| US3331750A (en) | Method for the preparation of salicylic acid | |
| JPH0378100B2 (ja) | ||
| JPS63283588A (ja) | アルコールの徴生物的酸化によるカルボン酸の製造方法 | |
| JPH0378107B2 (ja) | ||
| US3420741A (en) | Method for the preparation of salicylic acid | |
| JPH0378101B2 (ja) | ||
| JPH0378102B2 (ja) | ||
| JPH06277078A (ja) | パラヒドロキシベンズアルデヒドの製造方法 | |
| JPS60114185A (ja) | 新規微生物 | |
| JPH1014589A (ja) | キャンディダ・リポリティカｈｎａ−１１０株及び２，６−ジヒドロキシ−３−ナフトエ酸の製造方法 | |
| JPH0378104B2 (ja) | ||
| JPS63216485A (ja) | メバロン酸の製造法 |