JPH0676333B2 - ヘモグロビン―ポリオキシアルキレン結合体 - Google Patents
ヘモグロビン―ポリオキシアルキレン結合体Info
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- JPH0676333B2 JPH0676333B2 JP61142302A JP14230286A JPH0676333B2 JP H0676333 B2 JPH0676333 B2 JP H0676333B2 JP 61142302 A JP61142302 A JP 61142302A JP 14230286 A JP14230286 A JP 14230286A JP H0676333 B2 JPH0676333 B2 JP H0676333B2
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- C07K14/795—Porphyrin- or corrin-ring-containing peptides
- C07K14/805—Haemoglobins; Myoglobins
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- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
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- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
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Description
【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は、代用血液中に必要な酸素運搬物質として使用
する新規なヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体
に関する。
する新規なヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体
に関する。
従来の技術 代用血液に使用する酸素運搬物質としてヘモグロビン−
ポリオキシアルキレン結合体が血流内寿命を大幅に延ば
すことができる点で優れていることは既に明らかにされ
ている(特開昭56-12308号,57-206622号明細書参
照。)。
ポリオキシアルキレン結合体が血流内寿命を大幅に延ば
すことができる点で優れていることは既に明らかにされ
ている(特開昭56-12308号,57-206622号明細書参
照。)。
発明が解決しようとする問題点 ヘモグロビンが生体成分であるところから、ポリオキシ
アルキレンを結合させることによりヘモグロビンが変性
したり酸素親和性を減少させたりする問題があった。さ
らに、得られたヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結
合体の保存性特にポリオキシアルキレン−ヘモグロビン
間の結合の安定性にも問題があった。
アルキレンを結合させることによりヘモグロビンが変性
したり酸素親和性を減少させたりする問題があった。さ
らに、得られたヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結
合体の保存性特にポリオキシアルキレン−ヘモグロビン
間の結合の安定性にも問題があった。
問題点を解決するための手段 本発明者はこのような問題点を解決するべく種種検討の
結果、末端にエーテル結合を介してカルボキシル基を有
するポリオキシアルキレンを用いてこれにヘモグロビン
をアミド結合させて得られた結合体は前記問題点を解決
したものであることを見出して本発明を完成するに至っ
た。
結果、末端にエーテル結合を介してカルボキシル基を有
するポリオキシアルキレンを用いてこれにヘモグロビン
をアミド結合させて得られた結合体は前記問題点を解決
したものであることを見出して本発明を完成するに至っ
た。
すなわち、本発明は、ポリオキシアルキレン末端とヘモ
グロビンのアミノ基との結合部分が下記の構造式よりな
るヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体に関する
ものである。
グロビンのアミノ基との結合部分が下記の構造式よりな
るヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体に関する
ものである。
‐CH2‐O-(CH2)n‐CONH-Hb (式中、Hbはヘモグロビンを表わし、n=1〜7であ
る。) 本発明で用いられるポリオキシアルキレンは、例えばポ
リオキシエチレン(エチレンオキサイドの重合体でポリ
エチレングリコールともいう。)、ポリオキシプロピレ
ンあるいはエチレンオキサイドとプロピレンオキサイド
との共重合体等水溶性の高い重合物であり、その分子量
は300〜20,000、製造される結合体の粘度等の観点から
好ましくは750〜10,000、特に好ましくは1000〜6000、
の範囲内にあるものである。
る。) 本発明で用いられるポリオキシアルキレンは、例えばポ
リオキシエチレン(エチレンオキサイドの重合体でポリ
エチレングリコールともいう。)、ポリオキシプロピレ
ンあるいはエチレンオキサイドとプロピレンオキサイド
との共重合体等水溶性の高い重合物であり、その分子量
は300〜20,000、製造される結合体の粘度等の観点から
好ましくは750〜10,000、特に好ましくは1000〜6000、
の範囲内にあるものである。
ポリオキシアルキレンの末端とカルボキシル基部分との
間の結合にはエステル結合、アミド結合、エーテル結合
等が考えられる。これらの結合のうちで特にエーテル結
合が有効であることを見出してなされたのが本発明であ
る。従って、本発明のヘモグロビン−ポリオキシアルキ
レン結合体の合成に使用されるポリオキシアルキレンは
ヘモグロビンを結合させる末端が‐O-(CH2)n‐COOHに変
換されているものである。nは1〜10程度であり、1〜
7程度、特に1〜3程度のものが選択されることが多
い。
間の結合にはエステル結合、アミド結合、エーテル結合
等が考えられる。これらの結合のうちで特にエーテル結
合が有効であることを見出してなされたのが本発明であ
る。従って、本発明のヘモグロビン−ポリオキシアルキ
レン結合体の合成に使用されるポリオキシアルキレンは
ヘモグロビンを結合させる末端が‐O-(CH2)n‐COOHに変
換されているものである。nは1〜10程度であり、1〜
7程度、特に1〜3程度のものが選択されることが多
い。
ポリオキシアルキレンの末端をこのような形に変換する
方法としては、白金、パラジウムの炭素担持触媒を用い
て末端炭素を酸化する方法、活性化二酸化マンガンで末
端のオキシメチル基を酸化してアルデヒドに変え、過酸
化水素でさらに酸化してカルボン酸にする方法、塩基の
存在下でポリオキシアルキレンにハロゲン化脂肪酸を反
応させる方法、ジアゾ基を有する脂肪酸とポリオキシア
ルキレンを反応させる方法などを利用すればよい。
方法としては、白金、パラジウムの炭素担持触媒を用い
て末端炭素を酸化する方法、活性化二酸化マンガンで末
端のオキシメチル基を酸化してアルデヒドに変え、過酸
化水素でさらに酸化してカルボン酸にする方法、塩基の
存在下でポリオキシアルキレンにハロゲン化脂肪酸を反
応させる方法、ジアゾ基を有する脂肪酸とポリオキシア
ルキレンを反応させる方法などを利用すればよい。
このようにカルボキシル基を付与されたポリオキシアル
キレンとヘモグロビンの反応に際して、例えばN−ヒド
ロキシコハク酸イミド、N−ヒドロキシフタル酸イミ
ド、p−ニトロフェノール、ペンタクロロフェノール等
通常のペプチド合成におけるカルボン酸活性化剤により
活性エステルとし、これとヘモグロビンと反応させてア
ミド交換することもできるし、塩化チオニル等ハロゲン
化剤を作用させてポリオキシアルキレンの酸ハロゲン化
物とし、これとヘモグロビンとを反応させることもでき
る。
キレンとヘモグロビンの反応に際して、例えばN−ヒド
ロキシコハク酸イミド、N−ヒドロキシフタル酸イミ
ド、p−ニトロフェノール、ペンタクロロフェノール等
通常のペプチド合成におけるカルボン酸活性化剤により
活性エステルとし、これとヘモグロビンと反応させてア
ミド交換することもできるし、塩化チオニル等ハロゲン
化剤を作用させてポリオキシアルキレンの酸ハロゲン化
物とし、これとヘモグロビンとを反応させることもでき
る。
本発明に使用するヘモグロビンは、ヒト、ウシ、ブタ、
ヒツジ、ウマ、イヌ、サル、ウサギ、ニワトリ等ヘモグ
ロビンを有する動物由来のものであればよい。本明細書
でいうヘモグロビンとは、いわゆる異常ヘモグロビン
(K.Imai,Alloaterle Effects in Haemoglobin,Cambrid
ge University Press,1980参照)あるいはピリドキサー
ル−リン酸例えば、ピリドキサール−5′−リン酸、2
−ノル−2−ホルミルピリドキサール−5′−リン酸、
ピリドキサール−硫酸、例えばピリドキサール−5′−
硫酸、グリセリンリン酸類、例えばグリセリン−2,3−
ジリン酸、糖リン酸、例えばグルコース−6−リン酸、
アデノシン−5′−リン酸等のヘモグロビン誘導体であ
ってもよい。
ヒツジ、ウマ、イヌ、サル、ウサギ、ニワトリ等ヘモグ
ロビンを有する動物由来のものであればよい。本明細書
でいうヘモグロビンとは、いわゆる異常ヘモグロビン
(K.Imai,Alloaterle Effects in Haemoglobin,Cambrid
ge University Press,1980参照)あるいはピリドキサー
ル−リン酸例えば、ピリドキサール−5′−リン酸、2
−ノル−2−ホルミルピリドキサール−5′−リン酸、
ピリドキサール−硫酸、例えばピリドキサール−5′−
硫酸、グリセリンリン酸類、例えばグリセリン−2,3−
ジリン酸、糖リン酸、例えばグルコース−6−リン酸、
アデノシン−5′−リン酸等のヘモグロビン誘導体であ
ってもよい。
ヘモグロビンの反応時の濃度は、0.5〜20%(重量)程
度、好ましくは0.5〜10%(重量)程度である。しかし
ながら、アミノ酸等が共存せずヘモグロビン濃度が4%
を越えた場合には、架橋反応が進んで高分子化しゲル化
しやすくなるので反応の管理に注意を要する。一方、ヘ
モグロビンが低濃度になると反応容器が大型化するとと
もに反応後に濃縮が必要になるので好ましくない。
度、好ましくは0.5〜10%(重量)程度である。しかし
ながら、アミノ酸等が共存せずヘモグロビン濃度が4%
を越えた場合には、架橋反応が進んで高分子化しゲル化
しやすくなるので反応の管理に注意を要する。一方、ヘ
モグロビンが低濃度になると反応容器が大型化するとと
もに反応後に濃縮が必要になるので好ましくない。
ポリオキシアルキレンの使用量は、ヘモグロビン1モル
に対して1〜50モル程度、好ましくは2〜10モル程度で
ある。
に対して1〜50モル程度、好ましくは2〜10モル程度で
ある。
ポリオキシアルキレンとヘモグロビンとの結合反応にお
いてアミノ酸又はアミンを共存させることにより、生成
するヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体の分子
量をコントロールすることができる。これはポリオキシ
アルキレンの活性化されたカルボキシル基の一部にアミ
ノ酸又はアミンを結合させてヘモグロビンへの結合を阻
止することによる。この方法により、ヘモグロビンを希
薄溶液としなくとも好ましい結合体を得ることができ
る。
いてアミノ酸又はアミンを共存させることにより、生成
するヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体の分子
量をコントロールすることができる。これはポリオキシ
アルキレンの活性化されたカルボキシル基の一部にアミ
ノ酸又はアミンを結合させてヘモグロビンへの結合を阻
止することによる。この方法により、ヘモグロビンを希
薄溶液としなくとも好ましい結合体を得ることができ
る。
反応時に存在せしめるアミノ酸は、例えば蛋白質の構成
アミノ酸を使用すればよく、リジン、アルギニン、ヒス
チジン等の塩基性アミノ酸、グリシン、フェニルアラニ
ン等の中性アミノ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸等
の酸性アミノ酸が例示される。一方、アミンはアンモニ
ア、脂肪族アミン、芳香族アミンのいずれでもよいが、
本物質が血流内に投与される関係から安全性の高いもの
が好ましい。アミノ酸及びアミンは1種であってもよ
く、2種以上であってもよい。アミノ酸又はアミンのア
ミノ基が第3級である場合には活性エステルの分解を触
媒することによりヘモグロビンと結合していないポリオ
キシアルキレンの末端は‐O-(CH2)n‐COOHの形をとる。
一方、第1級又は第2級の場合には末端が‐O-(CH2)n‐
CONHRとなり、Rの種類によってヘモグロビン表面の電
荷や疎水性を変えることができる。これによって本発明
の結合体を代用血液に用いた場合に生体内の血液との混
合によって接する赤血球、白血球、血漿タンパク等との
相互作用を変えて免疫的認識等を好ましい方向に変える
ことができる。アミノ酸の使用量はヘモグロビン1モル
に対し1〜100モル程度、好ましくは5〜20モル程度で
ある。
アミノ酸を使用すればよく、リジン、アルギニン、ヒス
チジン等の塩基性アミノ酸、グリシン、フェニルアラニ
ン等の中性アミノ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸等
の酸性アミノ酸が例示される。一方、アミンはアンモニ
ア、脂肪族アミン、芳香族アミンのいずれでもよいが、
本物質が血流内に投与される関係から安全性の高いもの
が好ましい。アミノ酸及びアミンは1種であってもよ
く、2種以上であってもよい。アミノ酸又はアミンのア
ミノ基が第3級である場合には活性エステルの分解を触
媒することによりヘモグロビンと結合していないポリオ
キシアルキレンの末端は‐O-(CH2)n‐COOHの形をとる。
一方、第1級又は第2級の場合には末端が‐O-(CH2)n‐
CONHRとなり、Rの種類によってヘモグロビン表面の電
荷や疎水性を変えることができる。これによって本発明
の結合体を代用血液に用いた場合に生体内の血液との混
合によって接する赤血球、白血球、血漿タンパク等との
相互作用を変えて免疫的認識等を好ましい方向に変える
ことができる。アミノ酸の使用量はヘモグロビン1モル
に対し1〜100モル程度、好ましくは5〜20モル程度で
ある。
ヘモグロビンとポリオキシアルキレンとを結合させる反
応時に、酸素不存在か酸素低濃度とするのが好ましい、
酸素分圧として0〜30mmHg程度を選択すればよい。上記
酸素濃度以外の反応条件は、ヘモグロビンの変性を伴わ
ない条件であればいずれであってもよい。
応時に、酸素不存在か酸素低濃度とするのが好ましい、
酸素分圧として0〜30mmHg程度を選択すればよい。上記
酸素濃度以外の反応条件は、ヘモグロビンの変性を伴わ
ない条件であればいずれであってもよい。
酸素の濃度を低下させるには、窒素、アルゴン、ヘリウ
ム等の不活性ガスで反応容器中の空気を置換する方法、
容器中の酸素を還元剤(NaBH4、Na2S2O3等)によって還
元し除去する方法、ポンプ等で脱ガスしアルゴン等の不
活性ガスで置換する方法等、公知の方法を採用すること
ができる。
ム等の不活性ガスで反応容器中の空気を置換する方法、
容器中の酸素を還元剤(NaBH4、Na2S2O3等)によって還
元し除去する方法、ポンプ等で脱ガスしアルゴン等の不
活性ガスで置換する方法等、公知の方法を採用すること
ができる。
このようにして得られたヘモグロビン−ポリアルキレン
結合体は通常は凍結乾燥して製剤化する。
結合体は通常は凍結乾燥して製剤化する。
作用 本発明のヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体
は、エーテル結合を介してカルボン酸が結合した形のポ
リオキシアルキレンを用いることによって、ヘモグロビ
ンの酸素親和力を低下させないばかりでなく、安定性の
高い結合体になっている。
は、エーテル結合を介してカルボン酸が結合した形のポ
リオキシアルキレンを用いることによって、ヘモグロビ
ンの酸素親和力を低下させないばかりでなく、安定性の
高い結合体になっている。
例えばポリオキシエチレン4000の末端が-OCO(CH2)2COO
H、-NHCO(CH2)2COOH、-O-CH2COOHの3種のポリオキシエ
チレンを調製し、これらのポリオキシエチレンと結合さ
せた3種のポリオキシエチレン−ヘモグロビン結合体の
加水分解反応に対する抵抗性を比較したところ次のよう
な結果が得られた。すなわち、上記エステル型(I)、
アミド型(II)、エーテル型(III)の各々5%水溶液
(pH7.0 0.1規定リン酸緩衝液)を35℃で1週間インキ
ュベートし、分解によって生じたポリオキシエチレンを
定量したところ、III>II>Iの順となった。そこで、
最も安定性が秀れているのがエーテル型である事が明ら
かとなった。
H、-NHCO(CH2)2COOH、-O-CH2COOHの3種のポリオキシエ
チレンを調製し、これらのポリオキシエチレンと結合さ
せた3種のポリオキシエチレン−ヘモグロビン結合体の
加水分解反応に対する抵抗性を比較したところ次のよう
な結果が得られた。すなわち、上記エステル型(I)、
アミド型(II)、エーテル型(III)の各々5%水溶液
(pH7.0 0.1規定リン酸緩衝液)を35℃で1週間インキ
ュベートし、分解によって生じたポリオキシエチレンを
定量したところ、III>II>Iの順となった。そこで、
最も安定性が秀れているのがエーテル型である事が明ら
かとなった。
以下実施例で本発明の詳細を説明する。
なお、これらの実施例において、生成物の分子量はプレ
パックドゲル(Prepacked)型カラムSW3000G(東洋ソー
ダ(株)、日本)を用い高速液体クロマトグラフィーよ
り測定した。
パックドゲル(Prepacked)型カラムSW3000G(東洋ソー
ダ(株)、日本)を用い高速液体クロマトグラフィーよ
り測定した。
なお用いた展開溶媒は0.1Mリン酸緩衝液(pH=6.8)を
使用し、分子量はファルマシア社製(Pharmacia Fine C
hem.,Sweden)の分子量決定のための標準タンパク質キ
ットを用いて検量線を求め、溶出量より推定した。
使用し、分子量はファルマシア社製(Pharmacia Fine C
hem.,Sweden)の分子量決定のための標準タンパク質キ
ットを用いて検量線を求め、溶出量より推定した。
またヘモグロビン1分子当りの結合ポリアルキレン分子
数は、限外過により完全に塩類と未反応ポリオキシア
ルキレンを除去して、凍結乾燥(脱水)した後、重量測
定し、その後吸光度より算出して当該サンプル中のヘモ
グロビン量を差引く事によって求めた。
数は、限外過により完全に塩類と未反応ポリオキシア
ルキレンを除去して、凍結乾燥(脱水)した後、重量測
定し、その後吸光度より算出して当該サンプル中のヘモ
グロビン量を差引く事によって求めた。
またえられた安定化ヘモグロビンの酸素解離曲線の測定
はpH7.4の0.1Mリン酸緩衝液を用い、今井らの方法(K.I
mai.H.Morimoto,M.Kotani,H.Waka,M.Kuroda,Biochim.Bi
ophys.Acta.,200,189〜196(1970))によっておこなっ
た。
はpH7.4の0.1Mリン酸緩衝液を用い、今井らの方法(K.I
mai.H.Morimoto,M.Kotani,H.Waka,M.Kuroda,Biochim.Bi
ophys.Acta.,200,189〜196(1970))によっておこなっ
た。
実施例1 分子量1000ダルトンのポリオキシエチレン(Aldrich Ch
emical Co.,USA)30g(30mモル)と3−クロロプロピオ
ン酸エチル16.4g(120mモル)を乾燥したジメチルホル
ムアミド700mlに溶解し、これに20gの酸化銀を加え70°
で24時間反応したのち沈殿物を過により除去した。
emical Co.,USA)30g(30mモル)と3−クロロプロピオ
ン酸エチル16.4g(120mモル)を乾燥したジメチルホル
ムアミド700mlに溶解し、これに20gの酸化銀を加え70°
で24時間反応したのち沈殿物を過により除去した。
えられた液は3lの冷却したエチルエーテル中にそそ
ぎ、ポリオキシエチレン誘導体を沈殿させた。
ぎ、ポリオキシエチレン誘導体を沈殿させた。
沈殿物はエチルエーテルで洗浄後乾燥し、水300mlに再
び溶かし、1規定水酸化ナトリウム水溶液をpH11以上に
なるまで加え、60℃で一夜攪拌してエステルの加水分解
をおこなった。
び溶かし、1規定水酸化ナトリウム水溶液をpH11以上に
なるまで加え、60℃で一夜攪拌してエステルの加水分解
をおこなった。
1規定塩酸で反応液を中和してpH5とし、濃縮、乾固し
た。
た。
えられた生成物は塩化メチレン−エーテルの1:1混合溶
液200mlに溶かし不溶物を別したのち濃縮し、白色粉
末を沈殿によってえた。
液200mlに溶かし不溶物を別したのち濃縮し、白色粉
末を沈殿によってえた。
えられた固型物を水100mlに溶解したのち強塩基性イオ
ン交換樹脂Bio-Rad AGIX2(Bio-Rad Laboratories,US
A)にかけ、吸着物を0.05規定塩酸で溶離した。
ン交換樹脂Bio-Rad AGIX2(Bio-Rad Laboratories,US
A)にかけ、吸着物を0.05規定塩酸で溶離した。
生成物は18gの白色結晶であった。
この生成物(ポリオキシエチレンのジカルボン酸誘導
体)10gとN−ヒドロキシコハク酸イミド6.5g(56.5ミ
リモル)をジメチルホルムアミド200mlに溶かし、ジシ
クロヘキシルカルボジイミドで脱水縮合してポリオキシ
エチレン1000の活性エステル9.8gをえた。
体)10gとN−ヒドロキシコハク酸イミド6.5g(56.5ミ
リモル)をジメチルホルムアミド200mlに溶かし、ジシ
クロヘキシルカルボジイミドで脱水縮合してポリオキシ
エチレン1000の活性エステル9.8gをえた。
一方ウシの新鮮赤血球100mlを0.9%食塩水に浮遊させ遠
心分離機を用いて4℃で4回洗浄した。
心分離機を用いて4℃で4回洗浄した。
ウシ洗浄赤血球60mlを同容の注射薬用蒸留水を用いて溶
血し孔径0.22μのフィルター(Millipore Co.,USA)を
用いて膜成分を除いた。さらに残存する膜成分は遠心分
離機で6000回転1時間遠心分離して除いた。
血し孔径0.22μのフィルター(Millipore Co.,USA)を
用いて膜成分を除いた。さらに残存する膜成分は遠心分
離機で6000回転1時間遠心分離して除いた。
えられたウシヘモグロビン溶液10gを200mlのホウ酸0.1
モル緩衝液pH7.0に溶解し、えられた溶液(0.15ミリモ
ル)に活性ポリオキシエチレン4.7g(3.5ミリモル)と
リジン212mg(1.45ミリモル)を加え、アルゴンで酸素
分圧1mmHgまで引下げたあと4℃で2時間反応させた。
モル緩衝液pH7.0に溶解し、えられた溶液(0.15ミリモ
ル)に活性ポリオキシエチレン4.7g(3.5ミリモル)と
リジン212mg(1.45ミリモル)を加え、アルゴンで酸素
分圧1mmHgまで引下げたあと4℃で2時間反応させた。
えられた反応液は分画分子量10,000ダルトンの限外過
膜YM-10(Amicon Co,UAS)で未反応ポリオキシエチレン
が100ppm以下になるまでくり返し精製した。
膜YM-10(Amicon Co,UAS)で未反応ポリオキシエチレン
が100ppm以下になるまでくり返し精製した。
生成した反応液のゲル過クロマトグラフィーにおける
ピークの面積比から原料ヘモグロビンは、ほとんど残存
せず、第1図に例示するような単量体型(A),二重体
型(B),三重体型(C)がほぼ5:3:1で混合している
事が判明した。尚、図中丸4つでヘモグロビン分子を表
わし、カギ形はポリオキシエチレンを表わしている。
ピークの面積比から原料ヘモグロビンは、ほとんど残存
せず、第1図に例示するような単量体型(A),二重体
型(B),三重体型(C)がほぼ5:3:1で混合している
事が判明した。尚、図中丸4つでヘモグロビン分子を表
わし、カギ形はポリオキシエチレンを表わしている。
またヘモグロビン分子1個あたりについているポリオキ
シエチレンの結合分子数は6.3個であった。
シエチレンの結合分子数は6.3個であった。
またP50即ち酸素解離曲線において50%の酸素が化学修
飾ヘモグロビンに配位する時の酸素分圧は25℃で13.7mm
Hgであった。また、結合ポリオキシエチレンの末端にリ
ジン基が存在する事が加水分解物のアミノ酸分析より明
らかにされた。
飾ヘモグロビンに配位する時の酸素分圧は25℃で13.7mm
Hgであった。また、結合ポリオキシエチレンの末端にリ
ジン基が存在する事が加水分解物のアミノ酸分析より明
らかにされた。
実施例2 特開昭53-141219(川研ファインケミカル(株))に述
べられている方法で調製した白金パラジウム炭素触媒20
gと市販のポリオキシエチレン(日本油脂(株),日
本)(Macrogoal 4000)200gを含む水溶液500mlを1.5l
オートクレーブ中に入れ、加圧空気を導入して圧力を10
kg/cm2とし、90℃で10時間反応させた。
べられている方法で調製した白金パラジウム炭素触媒20
gと市販のポリオキシエチレン(日本油脂(株),日
本)(Macrogoal 4000)200gを含む水溶液500mlを1.5l
オートクレーブ中に入れ、加圧空気を導入して圧力を10
kg/cm2とし、90℃で10時間反応させた。
反応生成物は過により触媒を除去したのち、活性炭で
処理し、さらに水から再結晶し180gの両末端にカルボキ
シル基を有するポリオキシエチレンの酸誘導体(α−カ
ルボキシメチル−ω−カルボメトキシポリ(エチレンオ
キシド))をえた。
処理し、さらに水から再結晶し180gの両末端にカルボキ
シル基を有するポリオキシエチレンの酸誘導体(α−カ
ルボキシメチル−ω−カルボメトキシポリ(エチレンオ
キシド))をえた。
この分子量約4000のポリオキシエチレンの酸誘導体20g
(5ミリモル)、N−ヒドロキシコハク酸イミド4g及び
ジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)7gをジメチル
ホルムアミド100mlに溶かし一夜攪拌した。生成した結
晶のジシクロヘキシル尿素を分離したのち、エチルエー
テル400mlを加えてポリオキシエチレンの活性化エステ
ル17gを沈殿させ、別後更にエーテルで洗浄した。一
方期限切れ輸血用血液より得られたヒト赤血球50mlを0.
9%の食塩水50mlで遠心分離機を用いて4℃で4回洗浄
した。
(5ミリモル)、N−ヒドロキシコハク酸イミド4g及び
ジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)7gをジメチル
ホルムアミド100mlに溶かし一夜攪拌した。生成した結
晶のジシクロヘキシル尿素を分離したのち、エチルエー
テル400mlを加えてポリオキシエチレンの活性化エステ
ル17gを沈殿させ、別後更にエーテルで洗浄した。一
方期限切れ輸血用血液より得られたヒト赤血球50mlを0.
9%の食塩水50mlで遠心分離機を用いて4℃で4回洗浄
した。
上記の操作でえられた洗浄赤血球40mlを注射薬用蒸留水
40mlに加えて溶血したあと、20mlのトルエンにて膜成分
を抽出した。えられたヘモグロビン液は8000回転で1時
間遠心分離を行う事によって更に膜成分とヘモグロビン
を分離した。
40mlに加えて溶血したあと、20mlのトルエンにて膜成分
を抽出した。えられたヘモグロビン液は8000回転で1時
間遠心分離を行う事によって更に膜成分とヘモグロビン
を分離した。
ヘモグロビン溶液は0.1Mリン酸緩衝液に溶解し濃度を6g
/dl(0.088mM),pH7.0とした。ついでこのヘモグロビン
溶液1.00mlに酸素分圧が2mmHg以下になるまで激しくア
ルゴンをふき込む事により脱酸素したのち、ベネシェら
の方法(R.Benesch,R.Benesch,S.Kwong,A.Acharya,J.Ma
nning,J.Biol.Chem 257(3)1320-24(1982))によりピリ
ドキサール−5′−リン酸を付加し、ピリドキサール化
ヘモグロビン(6g/dl)をえた。
/dl(0.088mM),pH7.0とした。ついでこのヘモグロビン
溶液1.00mlに酸素分圧が2mmHg以下になるまで激しくア
ルゴンをふき込む事により脱酸素したのち、ベネシェら
の方法(R.Benesch,R.Benesch,S.Kwong,A.Acharya,J.Ma
nning,J.Biol.Chem 257(3)1320-24(1982))によりピリ
ドキサール−5′−リン酸を付加し、ピリドキサール化
ヘモグロビン(6g/dl)をえた。
これにグリシン160mlを加えた後、上記の方法でえたポ
リオキシエチレンの活性化エステル7.2gを加え、30分4
℃で反応した。ついで、1規定水酸化ナトリウム水溶液
を加えpH7.8にしたのち更に30分反応させた。
リオキシエチレンの活性化エステル7.2gを加え、30分4
℃で反応した。ついで、1規定水酸化ナトリウム水溶液
を加えpH7.8にしたのち更に30分反応させた。
反応液は分子量分画3万の限外過膜YM30(Amicon社,U
SA)により限外過をくり返し、未反応のポリオキシエ
チレンの濃度が100ppm以下にした。
SA)により限外過をくり返し、未反応のポリオキシエ
チレンの濃度が100ppm以下にした。
実施例1で述べたゲルタイプの充填カラムを用いた高速
液体クロマトグラフィーから生成物の分子量は約9.8万
ダルトンと推定された。なおポリオキシエチレンのヘモ
グロビンと結合していない方の末端にはグリシンが結合
している。
液体クロマトグラフィーから生成物の分子量は約9.8万
ダルトンと推定された。なおポリオキシエチレンのヘモ
グロビンと結合していない方の末端にはグリシンが結合
している。
実施例3 市販のプルロニック(Pluronic)P123,分子量4000ダル
トン(エチレンオキサイドとプロピレンオキサイドのブ
ロック共重体(BASF Wayandotte Co,USA))20g(5ミ
リモル)をよく脱水したジオキサン中1gの金属ナトリウ
ムと反応させ、プルロニックの2ナトリウム塩をえた。
沈殿物を過後、この過液に、モノクロロ酢酸エチル
エステル2mlを滴下し50℃で24時間反応させた。
トン(エチレンオキサイドとプロピレンオキサイドのブ
ロック共重体(BASF Wayandotte Co,USA))20g(5ミ
リモル)をよく脱水したジオキサン中1gの金属ナトリウ
ムと反応させ、プルロニックの2ナトリウム塩をえた。
沈殿物を過後、この過液に、モノクロロ酢酸エチル
エステル2mlを滴下し50℃で24時間反応させた。
えられた反応液は実施例1で述べた方法により、エステ
ルを加水分解後、沈殿をくり返す事により精製した。
ルを加水分解後、沈殿をくり返す事により精製した。
更にプルロニックの両末端にカルボキシル基を有するこ
のポリアルキレングリコール誘導体は実施例2で述べた
方法を用いてN−ヒドロキシコハク酸イミドと反応させ
活性エステルとした。
のポリアルキレングリコール誘導体は実施例2で述べた
方法を用いてN−ヒドロキシコハク酸イミドと反応させ
活性エステルとした。
一方実施例2の方法によってえられたヒトヘモグロビン
の6%溶液(0.09ミリモル)100ml(pH7.4のホウ酸緩衝
溶液)に窒素ガスを吸込む事により酸素分圧を5mmHgに
下げたのち、上記によってえられたプルロニックの活性
エステル7g(1.7ミリモル)とL−アラニン250mg(2.8
ミリモル)を加え4℃で1時間反応させた。
の6%溶液(0.09ミリモル)100ml(pH7.4のホウ酸緩衝
溶液)に窒素ガスを吸込む事により酸素分圧を5mmHgに
下げたのち、上記によってえられたプルロニックの活性
エステル7g(1.7ミリモル)とL−アラニン250mg(2.8
ミリモル)を加え4℃で1時間反応させた。
次いでpH7.8に上げ更に30分攪拌し実施例1の方法で精
製した。
製した。
高速液体クロマトグラフィーによって推定した分子量は
95,000ダルトン,ヘモグロビン分子1個あたりのプルロ
ニック結合数は4.8であった。また酸素解離曲線より推
定された50%酸素解離圧(P50)は25℃で6.1mmHgであっ
た。
95,000ダルトン,ヘモグロビン分子1個あたりのプルロ
ニック結合数は4.8であった。また酸素解離曲線より推
定された50%酸素解離圧(P50)は25℃で6.1mmHgであっ
た。
実施例4 ポリオキシエチレンメチルエーテル分子量1900(Aldric
h Chemical Co.USA)15g(7.9ミリモル)を乾燥したジ
クロロメタンに溶解し、30gの活性化二酸化マンガンを
加え、室温で一夜攪拌し反応させた。
h Chemical Co.USA)15g(7.9ミリモル)を乾燥したジ
クロロメタンに溶解し、30gの活性化二酸化マンガンを
加え、室温で一夜攪拌し反応させた。
過により触媒を分離したのち、アルデヒド型に酸化さ
れたポリオキシエチレン誘導体は、溶媒を減圧下で留去
したのち3%の過酸化水素水500mlに溶解し24時間反応
させた。
れたポリオキシエチレン誘導体は、溶媒を減圧下で留去
したのち3%の過酸化水素水500mlに溶解し24時間反応
させた。
反応液はBio-Rad AGI×2を充填したカラムを通し中性
物を除去したのち0.02M HClで末端にカルボキシル基を
有するポリオキシエチレン誘導体を分離した。
物を除去したのち0.02M HClで末端にカルボキシル基を
有するポリオキシエチレン誘導体を分離した。
この酸誘導体5g(2.6ミリモル)を乾燥したジメチルホ
ルムアミド100mlに溶解し0.8g(7.0ミリモル)のN−ヒ
ドロキシコハク酸イミドと1.5g(7.2ミリモル)のジシ
クロヘキシルカルボジイミドを加えて一夜室温で反応さ
せた。
ルムアミド100mlに溶解し0.8g(7.0ミリモル)のN−ヒ
ドロキシコハク酸イミドと1.5g(7.2ミリモル)のジシ
クロヘキシルカルボジイミドを加えて一夜室温で反応さ
せた。
不溶物を別後、乾燥エーテルを沈殿が生成するまで加
え活性化エステルをえた。
え活性化エステルをえた。
一方、実施例2により調製したヒトヘモグロビンの6%
溶液300mlを20倍過剰のグリオキザール酸とHEPES緩衝液
中でディドナートらの方法(A.DiDonato,W.Fartl,A.Ach
arya,J.Manning,J.Biol,Chem.258(19)11890〜895(198
3))で反応させひきつづきNaBH3CNで還元した。
溶液300mlを20倍過剰のグリオキザール酸とHEPES緩衝液
中でディドナートらの方法(A.DiDonato,W.Fartl,A.Ach
arya,J.Manning,J.Biol,Chem.258(19)11890〜895(198
3))で反応させひきつづきNaBH3CNで還元した。
えられたカルボキシメチル化したヘモグロビンはセファ
デックスG-100で低分子物質を除き、さらに0.1Mのリン
酸緩衝液で5.2g/100mlの溶液とし、4.8gの上記の手法に
よってえられたポリオキシエチレンモノメチルエーテル
の活性化エステルと5℃2時間反応させた。
デックスG-100で低分子物質を除き、さらに0.1Mのリン
酸緩衝液で5.2g/100mlの溶液とし、4.8gの上記の手法に
よってえられたポリオキシエチレンモノメチルエーテル
の活性化エステルと5℃2時間反応させた。
生成物は実施例1の限外過の手法で精製した。前記の
高速液体クロマトグラフィーで測定した分子量は8.2万
ダルトン、P50=12mmHg(25℃,pH7.4)であった。
高速液体クロマトグラフィーで測定した分子量は8.2万
ダルトン、P50=12mmHg(25℃,pH7.4)であった。
実施例5 ポリオキシエチレン平均分子量8,000ダルトン(Aldrich
Chemical Co.USA)20g(2.5ミリモル)を用い実施例2
で示した方法で該当するポリオキシエチレンの両末端に
‐O-CH2‐CO2Hを持つカルボン酸をえた。
Chemical Co.USA)20g(2.5ミリモル)を用い実施例2
で示した方法で該当するポリオキシエチレンの両末端に
‐O-CH2‐CO2Hを持つカルボン酸をえた。
このカルボン酸をBio-Rad AGI×2の樹脂で精製したあ
と実施例2の方法でN−ヒドロキシコハク酸イミドと反
応させ活性エステルとした。一方実施例1で示した方法
によってえられたウシヘモグロビン7gを用い、これをpH
7.4のリン酸緩衝液に溶解して0.1M溶液(100ml)を作
り、前記ベネシェらの方法でピリドキサール−5′−リ
ン酸と反応させ、ひきつづき水素化ホウ素ナトリウム
(NaBH4)で還元した。
と実施例2の方法でN−ヒドロキシコハク酸イミドと反
応させ活性エステルとした。一方実施例1で示した方法
によってえられたウシヘモグロビン7gを用い、これをpH
7.4のリン酸緩衝液に溶解して0.1M溶液(100ml)を作
り、前記ベネシェらの方法でピリドキサール−5′−リ
ン酸と反応させ、ひきつづき水素化ホウ素ナトリウム
(NaBH4)で還元した。
この溶液を高純度窒素で脱酸素後、N−ジメチルグリシ
ン1500mgと4.8gの活性化ポリオキシエチレンエステルを
加え4℃の低温で1時間反応させた。
ン1500mgと4.8gの活性化ポリオキシエチレンエステルを
加え4℃の低温で1時間反応させた。
反応液は実施例1で述べた方法を用いて低分子量の物質
を除き精製した。
を除き精製した。
シアンメトヘモグロビン法でヘモグロビン濃度を測定し
た。収率はウシヘモグロビンから計算して63%であっ
た。
た。収率はウシヘモグロビンから計算して63%であっ
た。
また平均分子量12万ダルトン,6%のヘモグロビン濃度の
溶液の粘度は2.8cpsであった。
溶液の粘度は2.8cpsであった。
今井の方法(前述)で測定した酸素解離曲線からP50=1
9mmHg(25℃,pH=7.4)がえられた。
9mmHg(25℃,pH=7.4)がえられた。
実施例6 10.9%のヒトヘモグロビン溶液20ml(0.034ミリモル)
を0.122Mのトリス緩衝液(pH6.8)90mlに溶解した液に
容量200mlの三つ口フラスコに入れ、アルゴンガスを1
時間通気した。
を0.122Mのトリス緩衝液(pH6.8)90mlに溶解した液に
容量200mlの三つ口フラスコに入れ、アルゴンガスを1
時間通気した。
引き続き、アルゴンガスを通気しつつ、ピリドキサール
5リン酸エステル−水和物33mg(0.125ミリモル)を加
え、さらに1時間アルゴンガスを通気した後、水素化ホ
ウ素ナトリウム(NaBH4)25mg(0.66ミリモル)を加え
てさらに1時間アルゴンガスを通気し、溶液1を得た。
5リン酸エステル−水和物33mg(0.125ミリモル)を加
え、さらに1時間アルゴンガスを通気した後、水素化ホ
ウ素ナトリウム(NaBH4)25mg(0.66ミリモル)を加え
てさらに1時間アルゴンガスを通気し、溶液1を得た。
一方、ポリオキシエチレン(Aldrich Chemical Co.US
A、平均分子量3400)をジョーンズ試薬で酸化し、両端
にカルボキシメチル基を有するポリオキシエチレンを調
整し、これとN−ヒドロキシコハク酸イミドとを反応さ
せて活性化ポリオキシエチレン(α−カルボキシメチル
−ω−カルボメトキシポリ(エチレンオキシド)のN−
ヒドロキシコハク酸イミドエステル)を得た。
A、平均分子量3400)をジョーンズ試薬で酸化し、両端
にカルボキシメチル基を有するポリオキシエチレンを調
整し、これとN−ヒドロキシコハク酸イミドとを反応さ
せて活性化ポリオキシエチレン(α−カルボキシメチル
−ω−カルボメトキシポリ(エチレンオキシド)のN−
ヒドロキシコハク酸イミドエステル)を得た。
溶液1に活性化ポリオキシエチレン3.29g(0.91ミリモ
ル)を加えて4℃で一夜攪拌した後に分子量阻止30,000
の限外過膜により限外過を繰り返し、未反応の活性
エステルまたはその分解物を除去することにより、4.5
%の修飾ヘモグロビン溶液41mlを得た。これを標準修飾
ヘモグロビン溶液とする。なお、この修飾ヘモグロビン
は分子量約86,000ダルトン、置換度6.2であってP50(リ
ン酸緩衝液、pH7.40、25℃)は11.0mmHgであった。
ル)を加えて4℃で一夜攪拌した後に分子量阻止30,000
の限外過膜により限外過を繰り返し、未反応の活性
エステルまたはその分解物を除去することにより、4.5
%の修飾ヘモグロビン溶液41mlを得た。これを標準修飾
ヘモグロビン溶液とする。なお、この修飾ヘモグロビン
は分子量約86,000ダルトン、置換度6.2であってP50(リ
ン酸緩衝液、pH7.40、25℃)は11.0mmHgであった。
発明の効果 本発明のヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体は
ヘモグロビンを変性させず酸素親和力を損なわない。ま
た、安定性が高く、製剤化工程及び保存時においてその
活性を長く維持する。
ヘモグロビンを変性させず酸素親和力を損なわない。ま
た、安定性が高く、製剤化工程及び保存時においてその
活性を長く維持する。
第1図は本発明のヘモグロビン−ポリオキシアルキレン
結合物の単量体、二重体及び三重体を模式的に示した図
である。
結合物の単量体、二重体及び三重体を模式的に示した図
である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 矢吹 昭 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1 味の 素株式会社中央研究所内 (72)発明者 岩下 雄二 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1 味の 素株式会社中央研究所内 審査官 松浦 新司 (56)参考文献 特開 昭59−104323(JP,A) 特開 昭59−89629(JP,A) 特開 昭57−206622(JP,A) 特開 昭61−53223(JP,A)
Claims (6)
- 【請求項1】ポリオキシアルキレン末端とヘモグロビン
のアミノ基との結合部分が下記の構造式よりなるヘモグ
ロビン−ポリオキシアルキレン結合体。 ‐CH2‐O-(CH2)n‐CONH-Hb (式中、Hbはヘモグロビンを表わし、n=1〜7であ
る。) - 【請求項2】ポリオキシアルキレンのヘモグロビンが結
合されていない末端の少なくとも50%にアミノ酸がアミ
ド結合されている請求項1記載のヘモグロビン−ポリオ
キシアルキレン結合体。 - 【請求項3】アミノ酸が蛋白質の構成アミノ酸のいずれ
かである請求項2記載のヘモグロビン−ポリオキシアル
キレン結合体。 - 【請求項4】ポリオキシアルキレンがポリオキシエチレ
ン、ポリオキシプロピレン又はエチレンオキサイドとプ
ロピレンオキサイドの共重合体のいずれかである請求項
1記載のヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体。 - 【請求項5】ポリオキシアルキレンの分子量が1000〜60
00の範囲内にある請求項4記載のヘモグロビン−ポリオ
キシアルキレン結合体。 - 【請求項6】代用血液用酸素運搬剤の有効成分として存
する請求項1記載のヘモグロビン−ポリオキシアルキレ
ン結合体。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13205685 | 1985-06-19 | ||
| JP60-132056 | 1985-06-19 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6057162A Division JP2501543B2 (ja) | 1994-03-28 | 1994-03-28 | ヘモグロビン−ポリオキシアルキレン結合体凍結乾燥製剤 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6289630A JPS6289630A (ja) | 1987-04-24 |
| JPH0676333B2 true JPH0676333B2 (ja) | 1994-09-28 |
Family
ID=15072486
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61142302A Expired - Lifetime JPH0676333B2 (ja) | 1985-06-19 | 1986-06-18 | ヘモグロビン―ポリオキシアルキレン結合体 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4670417A (ja) |
| EP (1) | EP0206448B1 (ja) |
| JP (1) | JPH0676333B2 (ja) |
| DE (1) | DE3675588D1 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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