PL185214B1 - Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie - Google Patents

Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie

Info

Publication number
PL185214B1
PL185214B1 PL96313904A PL31390496A PL185214B1 PL 185214 B1 PL185214 B1 PL 185214B1 PL 96313904 A PL96313904 A PL 96313904A PL 31390496 A PL31390496 A PL 31390496A PL 185214 B1 PL185214 B1 PL 185214B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
lecithin
modified
acyl groups
immobilized
triacetin
Prior art date
Application number
PL96313904A
Other languages
English (en)
Inventor
Oliver Chmiel
Nicholas Melachouris
Helmut Traitler
Original Assignee
Nestle Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nestle Sa filed Critical Nestle Sa
Publication of PL185214B1 publication Critical patent/PL185214B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P9/00Preparation of organic compounds containing a metal or atom other than H, N, C, O, S or halogen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L27/00Spices; Flavouring agents or condiments; Artificial sweetening agents; Table salts; Dietetic salt substitutes; Preparation or treatment thereof
    • A23L27/60Salad dressings; Mayonnaise; Ketchup
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/18Multi-enzyme systems
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/001Amines; Imines

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Seasonings (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Edible Oils And Fats (AREA)
  • Seeds, Soups, And Other Foods (AREA)

Abstract

1. Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie poprzez enzymatyczna wy- miane z triacylogliceryna, znamienny tym, ze reakcje prowadzi sie bez rozpuszczalnika z systemem enzymatycznym skladajacym sie z mieszaniny unieruchomionej lipazy i unieruchomionej fosfolipazy oraz, ze stosuje sie triacylogliceryne zawierajaca grupy acylowe z nasyconym krótkim lancuchem C2-C4 i/lub grupy acylowe z nasyconym lancu- chem o sredniej dlugosci C6-C12. PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie na drodze enzymatycznej wymiany estrowej z triacylogliceryną.
Glicerofosfolipidy, takie jak fosfatydylocholina składają się z gliceryny zestryfikowanej dwiema grupami acylowymi kwasów tłuszczowych i jedną fosforanową lub zestryfikowanej grupą fosforanową. W niektórych przypadkach zastosowań fosfolipidów, wskazana jest wymiana grup acylowych w fosfolipidach, np. w celu poprawienia ich stabilności termicznej.
Mając to na uwadze, wcześniej wykazano, np. wUS-A-5 314 706, że żółtko jajka wzmocnione egzogeniczną lizofosfatydylocholiną, otrzymaną w wyniku hydrolizy lecytyny za pomocą fosfolipazy A2, poprawia termostabilność emulsji, a zwłaszcza majonezu.
Poza tym, w WO 91/03564 wykazano, że enzymatyczna estryfikacja wewnątrzcząsteczkowa fosfolipidu kwasem tłuszczowym z zastosowaniem, jako katalizatora, unieruchomionej lipazy osadzonej na makroporowatym nośniku, w rozpuszczalniku organicznym, zwiększa ilość wprowadzanych specyficznych reszt acylowych do fosfolipidu. W procesie tym, stosuje się duży nadmiar kwasu tłuszczowego, który pozostaje w mieszaninie reakcyjnej po zakończeniu procesu i który jest trudny do rozdzielenia od poszukiwanej zmodyfikowanej lecytyny.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest taka modyfikacja składu kwasu tłuszczowego fosfolipidów, w wyniku której następuje wymiana nienasyconych kwasów tłuszczowych o długim łańcuchu z kwasami tłuszczowymi o krótkim i średniej długości łańcucha.
Obecnie, całkowicie nieoczekiwanie, znaleziono możliwość estryfikacji wewnątrzcząsteczkowej triglicetydów z fosfolipidami, w obecności unieruchomionej lipazy i unieruchomionej fosfolipazy, co umożliwia wprowadzenie reszt kwasu tłuszczowego o krótkim łańcuchu w pozycje 1 i 2 gliceryny. Podczas całego przebiegu reakcji nie stwierdzono wyraźnego wzrostu zawartości wolnych kwasów tłuszczowych. Poza tym, nieoczekiwanie stwierdzono, że modyfikowana lecytyna jest lepszym emulgatorem niż naturalna lecytyna. Dotyczy to niektórych systemów emulsyjnych np. w przypadku majonezu i dressingów. Również zwilżalność proszków, a zwłaszcza proszków lecytynizowanego mleka i kakao w proszku, polepsza się w zdecydowany sposób, jeśli stosuje się lecytynę, modyfikowaną sposobem według wynalazku. Inną zdecydowaną korzyścią lecytyn modyfikowanych sposobem według niniejszego wynalazku jest fakt, że nie mają one nieprzyjemnych zapachów.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie poprzez enzymatyczną wymianę z triacylogliceryną, polegający na tym, że reakcję prowadzi się bez rozpuszczalnika z systemem enzymatycznym składającym się z mieszaniny unierucho185 214 mionej lipazy i unieruchomionej fosfolipazy oraz, że stosuje się triacyloglicerynę zawierającą grupy acylowe z nasyconym łańcuchem o średniej długości C6-C12.
Korzystnie, stosuje się triacyloglicerynę stanowiącą triacetynę, olej maślany lub trigliceryd C6-C12.
Także korzystnie, jako triacyloglicerynę stosuje się triacetynę, a także korzystnie można oddzielać fosfolipid od nieprzereagowanej triacetyny, zwłaszcza przez dekantację.
Korzystnie też reakcję prowadzi się w obecności wysuszonej lecytyny.
Sposób według wynalazku można stosować do dowolnego rodzaju fosfolipidu zawierającego estrowe grupy acylowe kwasu tłuszczowego. Przykładami takich naturalnie występujących fosfolipidów są kwas fosfatydowy, fosfatydylocholina, fosfatydyloseryna, fosfatydylogliceryna, fosfatydyloinozytol, fosfatydyloetanoloamina i difosfatydylogliceryna. W procesie mogą być również stosowane syntetyczne fosfolipidy z różnymi związkami hydroksy estryfikowanymi grupą fosforanową, 1-alkilo-2-acylo-fosfolipidy i diacylofosfolipidy.
Reakcję wymiany można stosować w celu wprowadzenia dowolnej żądanej reszty kwasu tłuszczowego do fosfolipidu. Szczególnie interesujące są reszty nasyconych kwasów tłuszczowych o krótkim łańcuchu np. C2-C4 i reszty nasyconych kwasów tłuszczowych o średniej długości łańcucha np. C6-C12. Jako surowce można stosować wszystkie oleje i tłuszcze zawierające znaczne ilości tych reszt kwasów tłuszczowych w triglicerydach, szczególnie triglicerydy o krótkim i średnim łańcuchu i olej masłowy, a zwłaszcza triacetynę.
Zazwyczaj stosowany katalizator enzymatyczny zawiera lipazę pochodzenia zwierzęcego, roślinnego lub mikrobiologicznego i może być pozycyjnie specyficzny lub niespecyficzny, np. Lypozyme (TM), Novo Nordisk a/s. Zawiera również fosfolipazę, korzystnie, fosfolipazę ekstrakomórkową A2, np. Lecitase (TM), Novo Nordisk a/s.
Enzymy, stosowane w sposobie według wynalazku, są osadzone na jednorodnym makroporowatym organicznym lub nieorganicznym nośniku i są korzystnie połączone z nośnikiem przez dowolny środek sieciujący, np. aldehyd glutarowy.
Stosunek unieruchomionej lipazy do unieruchomionej fosfolipazy jest tak dobrany, aby lipaza stanowiła 25-75%, korzystnie 30-70% wagowych enzymu, tym samym procentem wyraża się również całkowita aktywność systemu enzymatycznego. Proces estryfikacji wewnątrzcząsteczkowej powinien być prowadzony w warunkach, w których osiąga się optymalną, aktywność i termostabilność unieruchomionego enzymu, korzystnie w temperaturze 60°C-80°C i w ciągu
1-72 godzin, korzystnie około 23 godzin. Po zakończeniu reakcji, enzymy oddziela się, np. na drodze filtracji. Jedną z korzyści sposobu według wynalazku jest to, że jeśli jest to wskazane, fosfolipidy mogą być łatwo oddzielone od triglicerydów, a zwłaszcza w przypadku gdy jako olej jest stosowana triacetyna, ponieważ następuje natychmiastowe rozdzielenie faz nieprzereagowanej triacetyny i lecytyny.
W przypadku stosowania jakiegokolwiek innego triglicerydu, jeśli wskazane jest rozdzielanie faz, można stosować klasyczne metody oczyszczania lecytyny, takie jak destylacja frakcjonowana z acetonem lub odśluzowanie np. z około 0,3% kwasem fosforowym w temperaturze około 90°C. Alternatywnie, co nic jest korzystne, rozdzielanie można prowadzić na drodze chromatografii cienkowarstwowej wysokiej rozdzielczości (HPTLC).
Modyfikowane lecytyny wytwarzane sposobem według wynalazku, mogą być stosowane w emulsjach spożywczych, np. sosach, majonezie i dressingach, co w sposób wyraźny poprawia własności emulgujące jak również termiczną stabilność produktów do których zostały dodane.
Modyfikowane lecytyny mogą być również stosowane w produkcji proszków typu instant, np. mleka, kakao i kawy i wówczas zapewniają lepszą zwilżalność niż normalne lecytyny.
W dalszej części wynalazek zostanie zilustrowany przykładami, w których części i skład procentowy są wyrażone wagowo, jeśli nie wskazano inaczej.
W Przykładach jako unieruchomioną lipazę zastosowano Lipozyme (TM), Novo Nordisk a/s.
Unieruchomioną fosfolipazę stanowiła ekstrakomórkowa fosfolipaza A2 unieruchomiona na perełkach szklanych i sporządzona jak poniżej:
185 214
0,5 g szklanych perełek (aminopropylowanych, Sigma G-5019) umieszcza się w 5 ml, 100 mikromoli odgazowanego buforu NaH2P04 (pH 7) zawierającego 2,5% aldehydu glutarowego i utrzymuje pod próżnią w ciągu 1 godziny. Następnie, perełki przemywa się kolejno wodą, 0,5 molowym roztworem NaCl i 100 milimolowym roztworem NaH2PO4 (pH 6). Po dodaniu do perełek 1 ml Lcitase (TM), Novo Nordisk azs i 4 ml odgazowanego buforu, inkubuje się je w temperaturze 4°C przez całą noc, lekko mieszając. Po ponownym przemyciu wytworzonym buforem, perełki przechowuje się w buforze.
Przykład I
Ogrzewa się do temperatury 70°C, 150 g mieszaniny pozbawionej wilgoci lecytyny: triglicerydy o średniej długości łańcucha w proporcji 1 : 2. Następnie, dodaje się 1,5 g unieruchomionej Lipozyme (TM) i 0,3 g unieruchomionej fosfolipazy A2, po czym próbkę inkubuje się w tej temperaturze w ciągu 23 godzin. Enzymy odzyskuje się na drodze filtracji. Dla celów analizy, estry metylowe kwasów tłuszczowych (FAMES) otrzymuje się z fosfolipidów po dodaniu 400 mikrolitrów chlorku acetylu (Fluka) i 20 minutowej inkubacji w temperaturze 100°C. Fosfolipidy oddziela się od innych składników za pomocą HPTLC (płytki z żelu krzemionkowego 60 F 254, Merc) w dwóch etapach migracyjnych, pierwszym z mieszaniną toluen : heksan : kwas mrówkowy w proporcjach 70 : 30 : 0,5, a następnie z mieszaniną heksan : eter dietylowy : kwas mrówkowy w proporcjach 60 : 40 : 1, po czym ekstrahuje się z żelu krzemionkowego za pomocą 2 ml mieszaniny heksan : metanol w proporcjach 1 : 4. Otrzymane FAMES wyjściowej lecytyny i lecytyny modyfikowanej zgodnie z wynalazkiem, analizuje się za pomocą chromatografii gazowej. W tabeli 1 przedstawiono dane oparte na wadze kwasów tłuszczowych.
Tabela 1
Kwas tłuszczowy Lecytyna wyjściowa Lecytyna modyfikowana
C 4:0 - -
C 6:0 - -
C 8:0 - 18,4
C 10:0 0,1 9,1
C 12:0 - -
C 14:0 1,8 1,5
C 16:0 17,7 21,4
C 18:0 5,9 4,1
C 18:1 11,1 4,6
C 18:2 57 35,7
C 18:3 6,6 4,5
W celu porównania, tę samą lecytynę poddawano działaniu, bądź unieruchomionej Lecitase (TM) (porównanie 1) lub unieruchomionej Lipozyme (TM) (porównanie 2). Ilość wprowadzonych, nowych kwasów tłuszczowych wyniosła 18% mol. w przypadku porównania 1 i 27% mol. w porównaniu 2, podczas, gdy w przypadku lecytyny modyfikowanej mieszaniną enzymów sposobem według wynalazku miała wartość 45% mol.
Przykład II
Stosuje się procedurę jak w Przykładzie I, z tą różnicą, że lecytynę poddaje się działaniu triacetyny. Stosunek pozbawionej wilgoci lecytyny do triacetyny wyniósł 1:1. Próbki pozostawia się na noc, aby uzyskać prawie całkowity rozdział faz. Enzym odzyskuje się na drodze filtracji. Fazę górną, lecytynową, zanalizowano na zawartość kwasów tłuszczowych, tak jak to opisano w Przykładzie I, z taką różnicą, że dla lepszego określenia ilościowego C 2:0, zostały zrobione estry butylowe zamiast metylowych, z zastosowaniem procedury dobrze znanej z literatury.
185 214
W tabeli 2 przedstawiono dane oparte na wadze kwasów tłuszczowych.
Tabela 2
Kwas tłuszczowy Lecytyna modyfikowana
C 2.0 3,5
C 4:0 0,3
C 14:0 1,9
C 16:0 24,5
C 18:0 5,4
C 18:1 11,3
C 18:2 45,5
C 18:3 7,7
Przykład III
Przygotowuje się dressing o następującym składzie : 30 % oleju sojowego, 60% wody, 10% octu, 0,3% gumy Xanthan i 1% lecytyny modyfikowanej jak w Przykładzie I. Dla porównania, ten sam dressing sporządza się odpowiednio, bądź z regularną lecytyną (porównanie 3), bądź z mieszaniną lecytyna regularna: trigliceryd o łańcuchu średniej długości w proporcji 2 : 1 (porównanie 4).
Metodyką, jak opisana poniżej, badano stabilność termiczną próbek biorąc pod uwagę homogeniczność i lepkość:
ml odpowiedniego dressingu inkubuje się w ciągu 2 godzin, w temperaturze 80°C (temperatura łaźni wodnej). Po okresie inkubacji, próbka zawierająca regularną lecytynę była niehomogeniczna, widoczne było pewne rozwarstwienie, podczas gdy próbka zawierająca modyfikowaną lecytynę była homogeniczna bez jakiegokolwiek rozwarstwienia.
Lepkość określano testem łyżeczkowym (kropienie próbki z łyżeczki) i za pomocą reometru (szybkość ścinania w stosunku do naprężeń ścinających). Oba wyniki wskazują na wyższą lepkość próbek zawierających modyfikowaną lecytynę: przy szybkości ścinania 240/s, naprężenie ścinające wynosiło 160 dla próbki zawierającej regularną lecytynę i około 185 dla próbki ze zmodyfikowaną lecytyną. Przed udarem termicznym obie próbki miały wartość 185.
Triglicerydy o łańcuchu średniej długości nie mają wpływu na żaden z tych czynników. Stwierdzono, że próbki z lecytyną modyfikowaną według wynalazku są bardziej stabilne termicznie niż próbki z regularną lecytyną (porównanie 3) i z mieszaniną regularnej lecytyny i triglicerydów o średniej długości łańcucha. Po odwirowaniu stwierdzono wyraźnie mniejszą ilość oleju w górnej warstwie, a mianowicie 0,18 g w próbkach zawierających modyfikowaną lecytynę według wynalazku w porównaniu z 0,25 g oleju w próbkach z regularną lecytyną zawierającą trigliceryd o średniej długości łańcucha (porównanie 4) lub bez, dodatku triglicerydu o średniej długości łańcucha (porównanie 3). W próbce z lecytyną modyfikowaną stwierdzono również odczuwalne zmniejszenie zapachów.
Przykład IV
W przykładzie tym zbadano stabilizujący wpływ lecytyny modyfikowanej zgodnie z wynalazkiem, na proteiny żółtka jajka. 10 ml zhomogenizowanego, 5-10 rozcieńczonego żółtka jajka, umieszcza się w fiolce, po czym poddaje udarowi termicznemu (u. t.), umieszczając fiolkę na 30 s w łaźni wodnej o temperaturze 80°C.
Mierzy się wymiary cząstek (D (v, 0,9) w mikrometrach), przed i po udarze termicznym. Wyniki przedstawiono w tabeli 3.
Tabela 3
D Bez lec. 0,5% lec. 0,5% lec. 1% lec. 1% lec 2% lec. 2% lec.
mod mod. mod.
Przed u t. 28 18 11 9 4 4 6
Po u.t 75 60 41 55 17 15 13
185 214
Jak wynika z danych tabeli, próbki z lecytyną modyfikowaną zgodnie z wynalazkiem są bardziej stabilne. Generalnie, można stwierdzić, że taki sam stabilizujący wpływ lecytyny, można uzyskać stosując o połowę mniejszą ilość lecytyny modyfikowanej sposobem według wynalazku.
Przykład V
Przygotowuje się majonez składający się z 50 g żółtka jajka, 3 g soli, 5 g musztardy, 200 g oleju roślinnego, 3 g octu, 5 ml soku z cytryny i 6 ml wody, bez lecytyny lub z różną zawartością regularnej lub modyfikowanej lecytyny. Próbki o wielkości 100 g każdego z majonezów umieszcza się w słoikach, zamyka, po czym inkubuje się 2x30 minut w temperaturze 100°C. Warstwę olejową zdekantuje się i oznacza jej ilość. Wyniki przedstawiono w tabeli 4.
Tabela 4
Próbka Ilość oleju po obróbce termicznej, g
Bez, lecytyny 13,2
z 1% regularnej lecytyny 6
z 1,5%regulamej lecytyny 5
z 1% modyfikowanej lecytyny jak w przykładzie I 3,5
z 2% modyfikowanej lecytyny jak w przykładzie I 1,1
z 1% modyfikowanej lecytyny jak w przykładzie II 1
z 2% modyfikowanej lecytyny jak w przykładzie II 0,5
z 1% lizolecotowo 2,2
z 2% lizelecytywo (Emulfluid(TM), Lukas Meyer 1
I ponowniestwierdzono, ze około połowa ilości iub nawet mniej, lecytyny modyfikowanej zgodnie z wynalazkiem ma taki sam efekt stabilizujący w porównaniu z ilością regularnej lecytyny, a nawet lepszy efekt stabilizujący niż handlowa lizenecytywa.
Przykład VI
Regularną lub modyfikowaną lecytynę (jak w Przykładzie II) rozpuszcza się w heksanie, a następnie podczas mieszania zrasza się nią mleko w proszku, po czym odparowywuje się heksan.
W celu zmierzenia zwilżalności, wsypuje się 5 g mleka w proszku do 100 ml wody o temperaturze pokojowej i mierzy czas do całkowitego zniknięcia proszku pod powierzchnią wody. Uzyskane czasy wskazują, że regularna lecytyna w znakomity sposób poprawia zwilżalność mleka w proszku, ale jednocześnie stwierdzono, że wynik uzyskany z lecytyną modyfikowaną zgodnie z przykładem II, jest nawet lepszy.
Wyniki przedstawiono w tabeli 5.
Tabela 5
Próbka Czas zatapiania, s
Samo mleko w proszku > 120
Mleko w proszku + 0,5% lecytyny 21
Mleko w proszku + 0,5% lecytyny modyfikowanej 9
Mleko w proszku + 1% lecytyny 15
Mleko w proszku + 1% lecytyny modyfikowanej 7
Przykład VII
Ten sam rodzaj badań jak w Przykładzie VI przeprowadza się z kakao typu instant, które zawiera sacharozę, holenderski proszek kakao, aromat kakao i 1 % lecytyny. Przygotowano dwie próbki zawierające 1% regularnej lecytyny lub lecytyny modyfikowanej triacetyną (jak w Przykładzie II).
185 214
Próbki aglomeruje się za pomocą pary i wytwarza w postaci handlowego produktu kakao. W celu zmierzenia zwilżalności, dodaje się 21 g kakao do 250 ml mleka o temperaturze pokojowej i mierzy czas do całkowitego zatopienia. Próbki obserwowano przez kilka dni.
Wyniki przedstawiono w tabeli 6.
Tabela 6
Czas zatapiania (dni) Lecytyna reg. Lecytyna mod.
0 15 11
3 35 17
5 32 13
7 35 10
10 40 15
21 35 12
28 37 16
35 42 19
42 39 17
Przykład VIII
Masło sklarowane ODELL’S (TM) o zawartości wilgoci co najwyżej 0,1%, miesza się z lecytyną w stosunku 2:1 i dodaje, podobnie jak w poprzednich przykładach, unieruchomionej lipazy i fosfolipazy. Warunki reakcyjne były również takie jak opisane poprzednio. Otrzymano lecytynę modyfikowaną o składzie kwasów tłuszczowych, jak przedstawiono poniżej w tabeli 7.
Tabela 7
Kwas tłuszczowy Lecytyna modyfikowana
C 4:0 1,2
C 6.0 0,8
C 8:0 1,5
C 10:0 1,4
C 12:0 3
C 14:0 11,9
C 16:0 20,9
C 18:0 22,4
C 18:1 17,9
C 18:2 15,3
C 18.3 3
185 214
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 50 egz. Cena 2,00 zł.

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie poprzez enzymatyczną wymianę z triacylogliceryną znamienny tym, że reakcję prowadzi się bez rozpuszczalnika z systemem enzymatycznym składającym się z mieszaniny unieruchomionej lipazy i unieruchomionej fosfolipazy oraz, że stosuje się triacyloglicerynę zawierającą grupy acylowe z nasyconym krótkim łańcuchem C2-C4 i/lub grupy acylowe z nasyconym łańcuchem o średniej długości C6-C12.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się triacyloglicerynę stanowiącą triacetynę, olej maślany lub trigliceryd C6-C12.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że jako triacyloglicerynę stosuje się triacetynę oraz, że można oddzielać fosfolipid od nieprzereagowanej triacetyny, zwłaszcza przez dekantację.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję prowadzi się w obecności wysuszonej lecytyny.
PL96313904A 1995-04-24 1996-04-23 Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie PL185214B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/427,544 US5989599A (en) 1995-04-24 1995-04-24 Process for the interesterification of phospholipids

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL185214B1 true PL185214B1 (pl) 2003-04-30

Family

ID=23695324

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL96313904A PL185214B1 (pl) 1995-04-24 1996-04-23 Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie

Country Status (22)

Country Link
US (1) US5989599A (pl)
EP (1) EP0739985B1 (pl)
JP (1) JPH08291188A (pl)
KR (1) KR960037835A (pl)
CN (1) CN1100882C (pl)
AT (1) ATE197610T1 (pl)
AU (1) AU713557B2 (pl)
BR (1) BR9602023A (pl)
CA (1) CA2174793A1 (pl)
DE (1) DE69610939T2 (pl)
DK (1) DK0739985T3 (pl)
ES (1) ES2153072T3 (pl)
GR (1) GR3035378T3 (pl)
HU (1) HU219850B (pl)
IL (1) IL118001A (pl)
NO (1) NO961615L (pl)
NZ (1) NZ286423A (pl)
PL (1) PL185214B1 (pl)
PT (1) PT739985E (pl)
TR (1) TR199600314A2 (pl)
TW (1) TW430668B (pl)
ZA (1) ZA963284B (pl)

Families Citing this family (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6936289B2 (en) 1995-06-07 2005-08-30 Danisco A/S Method of improving the properties of a flour dough, a flour dough improving composition and improved food products
JP3853464B2 (ja) * 1997-04-08 2006-12-06 辻製油株式会社 植物性リゾレシチンの製造法
ES2168236T3 (es) 1997-04-09 2005-04-16 Danisco A/S Utilizacion de lipasa para mejorar las pastas de pan y los productos de panaderia.
ATE231186T1 (de) 1998-07-21 2003-02-15 Danisco Lebensmittel
AU7235901A (en) * 2000-07-06 2002-01-21 Novozymes As Method of preparing a dough or a baked product made from a dough, with addition of lipolytic enzymes
ATE524071T1 (de) * 2000-07-06 2011-09-15 Novozymes As Verfahren zur herstellung von teig oder backwaren aus teig mit lipolytischen enzymen
BR0209154A (pt) 2001-05-18 2004-07-20 Danisco Processo de preparação de uma massa com uma enzima
US7955814B2 (en) 2003-01-17 2011-06-07 Danisco A/S Method
DE602004030000D1 (de) 2003-01-17 2010-12-23 Danisco Verfahren zur in-situ-herstellung eines emulgators in einem nahrungsmittel
US20050196766A1 (en) 2003-12-24 2005-09-08 Soe Jorn B. Proteins
IL158553A0 (en) * 2003-10-22 2004-05-12 Enzymotec Ltd Method for preparing phosphatidylserine containing omega-3 acid moieties
GB0716126D0 (en) 2007-08-17 2007-09-26 Danisco Process
US7906307B2 (en) 2003-12-24 2011-03-15 Danisco A/S Variant lipid acyltransferases and methods of making
WO2008090395A1 (en) 2007-01-25 2008-07-31 Danisco A/S Production of a lipid acyltransferase from transformed bacillus licheniformis cells
US7718408B2 (en) 2003-12-24 2010-05-18 Danisco A/S Method
GB0405637D0 (en) 2004-03-12 2004-04-21 Danisco Protein
CN1934263B (zh) * 2004-03-18 2011-09-28 长濑化成株式会社 酶的除去方法和使用该方法的磷脂的碱交换方法或水解方法
US7189544B2 (en) 2004-04-09 2007-03-13 Cargill, Incorporated Enzymatic modification of lecithin
CN101052702B (zh) 2004-07-16 2013-01-09 杜邦营养生物科学有限公司 脂肪分解酶及其在食品工业中的应用
JP5260960B2 (ja) * 2005-06-09 2013-08-14 日清オイリオグループ株式会社 リパーゼ粉末組成物
US8012724B2 (en) * 2005-06-13 2011-09-06 Novozymes A/S Production of degummed fatty acid alkyl esters using both lipase and phospholipase in a reaction mixture
CN104293764A (zh) * 2013-07-19 2015-01-21 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种磷脂酶a1的固定化方法

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5720894A (en) * 1980-07-15 1982-02-03 Nippon Keibi Hosho Kk Fault diagnozing method for ultrasonic alarm unit
JPS6025100B2 (ja) * 1981-06-18 1985-06-17 カルピス食品工業株式会社 即席コ−ヒ−の製造法
JP2559591B2 (ja) * 1987-06-03 1996-12-04 日清製油株式会社 乳化剤組成物の製造法
JPH0738771B2 (ja) * 1989-01-17 1995-05-01 花王株式会社 液状食用油組成物
DK426089D0 (da) * 1989-08-30 1989-08-30 Novo Nordisk As Omestring af phospholipider
JPH03109935A (ja) * 1989-09-26 1991-05-09 Asahi Denka Kogyo Kk 乳化剤組成物の製造法
DK0546215T3 (da) * 1991-12-12 1998-10-19 Nestle Sa Varmestabil olie-i-vandemulsion og proces til dens fremstilling

Also Published As

Publication number Publication date
TR199600314A2 (tr) 1996-11-21
IL118001A0 (en) 1996-08-04
US5989599A (en) 1999-11-23
IL118001A (en) 2000-08-13
HUP9601058A3 (en) 2000-06-28
ES2153072T3 (es) 2001-02-16
EP0739985A3 (fr) 1996-11-06
TW430668B (en) 2001-04-21
DE69610939D1 (de) 2000-12-21
AU5087896A (en) 1996-11-07
BR9602023A (pt) 1998-04-07
HU219850B (hu) 2001-08-28
EP0739985B1 (fr) 2000-11-15
CN1100882C (zh) 2003-02-05
DE69610939T2 (de) 2001-03-22
ATE197610T1 (de) 2000-12-15
CN1141343A (zh) 1997-01-29
NZ286423A (en) 1997-12-19
PT739985E (pt) 2001-03-30
NO961615D0 (no) 1996-04-23
JPH08291188A (ja) 1996-11-05
KR960037835A (ko) 1996-11-19
NO961615L (no) 1996-10-25
ZA963284B (en) 1997-10-24
AU713557B2 (en) 1999-12-02
HU9601058D0 (en) 1996-06-28
CA2174793A1 (en) 1996-10-25
EP0739985A2 (fr) 1996-10-30
DK0739985T3 (da) 2001-01-02
GR3035378T3 (en) 2001-05-31
HUP9601058A2 (en) 1996-12-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL185214B1 (pl) Sposób wymieniania grup acylowych w fosfolipidzie
US6184009B1 (en) Process for the preparation of materials with a high content of conjugated long chain polyunsaturated fatty acids
CA2252051C (en) Free flowing fat compositions
DK171799B1 (da) Fremgangsmåde til fremstilling af fedtsyreestere eller til omlejring af fedtstoffer og vegetabilske olier
CA2373832C (en) Water-in-oil type emulsified fat and/or oil composition
US5080911A (en) Process for modifying the properties of egg yolk
EP1740708B1 (en) Enzymatic production of hydrolyzed lecithin products
Ray et al. Comparative nutritional study of enzymatically and chemically interesterified palm oil products
Jensen Lipolytic enzymes
JP2736273B2 (ja) 油中水型乳化組成物
EP2177608A1 (en) Immobilized lipase and method for producing the same
JPH0710233B2 (ja) 固定化酵素およびその製造方法
KOSUGI et al. Glyceride production from high free fatty acid rice bran oil using immobilized lipase
JPH06220484A (ja) 油脂組成物及び乳化油脂組成物
US1917259A (en) Emulsion
JP4142887B2 (ja) 酵素反応生成物の製造方法
Rahayu et al. Encapsulation of Lipase Enzyme in Silica Gel Matrix from Rice Husk Ash and Transesterification Reaction Activity Test on Palm Oil
KR101446475B1 (ko) 재구성 인지질의 합성 방법
CN121445008B (zh) 一种猪乳脂肪替代脂微胶囊及其制备方法和应用
Su’i et al. Isolation of lipase enzyme from sesame seed and its application in esterification of coconut oil
JPS6439939A (en) Fat-containing composition and production thereof
WO2025133121A2 (en) Compositions and methods of making them
JPH07178A (ja) 細胞培養用担体
JPS6284092A (ja) 水分散性の良いレシチン
JPH09234357A (ja) 金属イオン存在下及び/又は酸性条件下において乳化能のある界面活性剤

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20110423