JPH01228465A - 新規なβ−アガラーゼ及びその製造法 - Google Patents
新規なβ−アガラーゼ及びその製造法Info
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- JPH01228465A JPH01228465A JP5270088A JP5270088A JPH01228465A JP H01228465 A JPH01228465 A JP H01228465A JP 5270088 A JP5270088 A JP 5270088A JP 5270088 A JP5270088 A JP 5270088A JP H01228465 A JPH01228465 A JP H01228465A
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- agar
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、微生物由来の新規なβ−アガラーゼ及びその
製造法に関する。さらに詳しくは、シュードモナス(P
seudomonas)属に属する細菌を培養して得ら
れる新規なβ−アガラーゼ及びその製造法に関する。
製造法に関する。さらに詳しくは、シュードモナス(P
seudomonas)属に属する細菌を培養して得ら
れる新規なβ−アガラーゼ及びその製造法に関する。
アガロースは、テングサ、オゴノリなどのン毎藻(紅藻
)から得られる多vM類で、古くから食品用に供されて
きている寒天の主成分である。その構造は第1図に示し
たように、D−ガラクトースと3.6−アンヒドロ−し
−ガラクトースが交互にβ−1,4結合、α−1,3結
合した多糖である。
)から得られる多vM類で、古くから食品用に供されて
きている寒天の主成分である。その構造は第1図に示し
たように、D−ガラクトースと3.6−アンヒドロ−し
−ガラクトースが交互にβ−1,4結合、α−1,3結
合した多糖である。
また、寒天にはアガロースに硫酸やピルビン酸が部分的
にエステル結合したアガロペクチンも含まれている。
にエステル結合したアガロペクチンも含まれている。
アガロースを部分加水分解すると、オリゴ糖が得られる
が、加水分解方法によって異なったオリゴ糖が生成する
ことが知られている。今までの知見をまとめると、アガ
ロースの加水分解様式は第1図のようになる。すなわち
、希酸で弱く加水分解すると、α−1,3結合が比較的
選択的に分解されアガロビオース(酸(1)、酸(2)
、酸(3)の各位置で加水分解された2Iりをはじめと
するアガロオリゴ糖が得られる(C,Araki、 P
roceedings of 4thInt、 Con
gress of Biochemistry 1+
15〜30 (1959)Pergaa+on Pre
ss Ltd、)。
が、加水分解方法によって異なったオリゴ糖が生成する
ことが知られている。今までの知見をまとめると、アガ
ロースの加水分解様式は第1図のようになる。すなわち
、希酸で弱く加水分解すると、α−1,3結合が比較的
選択的に分解されアガロビオース(酸(1)、酸(2)
、酸(3)の各位置で加水分解された2Iりをはじめと
するアガロオリゴ糖が得られる(C,Araki、 P
roceedings of 4thInt、 Con
gress of Biochemistry 1+
15〜30 (1959)Pergaa+on Pre
ss Ltd、)。
また別にα−1,3結合を分解して、アガロテトラオー
ス(α−アガラーゼ(1)、 (2)を分解)を主とし
て生成するα−アガラーゼも知られている(K、S、
Young ら、 Carbohydrate Re5
earch 66207〜212 (1978))
。
ス(α−アガラーゼ(1)、 (2)を分解)を主とし
て生成するα−アガラーゼも知られている(K、S、
Young ら、 Carbohydrate Re5
earch 66207〜212 (1978))
。
一方、β−1,4結合は酵素β−アガラーゼによっての
み選択的に分解されて主としてネオアガロテトラオース
(β−アガラーゼ(1)と(2))、ネオアガロヘキサ
オース(β−アガラーゼ(1)と(3))を生ずる(L
、 M、 Morrice ら、 European
Journalof Biochemistry 13
7.149−154 (1983)など)。
み選択的に分解されて主としてネオアガロテトラオース
(β−アガラーゼ(1)と(2))、ネオアガロヘキサ
オース(β−アガラーゼ(1)と(3))を生ずる(L
、 M、 Morrice ら、 European
Journalof Biochemistry 13
7.149−154 (1983)など)。
一般にβ−アガラーゼはネオアガロテトラオース以下の
オリゴ糖は加水分解できず、これらのオリゴ糖は別の酵
素で分解されることが知られている(tl、J、 va
n der Meulenら、Antonie van
Leeuwenhoek婬、81〜94 (1976
)など)。
オリゴ糖は加水分解できず、これらのオリゴ糖は別の酵
素で分解されることが知られている(tl、J、 va
n der Meulenら、Antonie van
Leeuwenhoek婬、81〜94 (1976
)など)。
寒天の主要な用途は食品用であり、ゲル化剤。
増粘剤として幅広く使われ、他にはゲル形成能を利用し
た試薬、培地原料、クロマトグラフ用担体。
た試薬、培地原料、クロマトグラフ用担体。
電気泳動用担体、さらには歯科印象剤、芳香・消臭剤な
どの用途がある。一方、酵素分解などによって得られる
オリゴ糖類の用途は未開発であったが、最近澱粉老化防
止作用、静菌作用、難消化性が明らかになり、(特開昭
62−210955゜同62−210965.同62−
210974)、新たな用途開発が期待されている。
どの用途がある。一方、酵素分解などによって得られる
オリゴ糖類の用途は未開発であったが、最近澱粉老化防
止作用、静菌作用、難消化性が明らかになり、(特開昭
62−210955゜同62−210965.同62−
210974)、新たな用途開発が期待されている。
寒天のオリゴ糖を効率良く製造するためには、酵素によ
る部分加水分解法は酸による方法よりもオリゴ糖の収率
、脱色脱塩などの精製の容易性。
る部分加水分解法は酸による方法よりもオリゴ糖の収率
、脱色脱塩などの精製の容易性。
作業性、製造装置の簡易性等の点で明らかに優れている
。しかし、今までに知られている寒天分解酵素アガラー
ゼはその殆んどが、海水、海藻、海辺の土壌など海由来
の微生物から調製されたものである。一般に海洋性微生
物から得られる酵素の耐熱性は低いことが知られており
、アガラーゼもまたその至適温度が高いもので40〜4
5°Cで、多(は40°C以下である。一方、寒天は高
温(80゛C以上)で水に溶解するが、寒天溶液の温度
を降下させると50〜40°Cでゲル化してしまい、酵
素による分解を非常に受けにくくなる。寒天をゲル化さ
せないためには基質である寒天の濃度を1%以下にしな
ければならず、オリゴ糖の生産性を著しく低めてしまう
という課題がある。従って、これらの課題を解決するた
めに耐熱性の酵素が必要となってきている。
。しかし、今までに知られている寒天分解酵素アガラー
ゼはその殆んどが、海水、海藻、海辺の土壌など海由来
の微生物から調製されたものである。一般に海洋性微生
物から得られる酵素の耐熱性は低いことが知られており
、アガラーゼもまたその至適温度が高いもので40〜4
5°Cで、多(は40°C以下である。一方、寒天は高
温(80゛C以上)で水に溶解するが、寒天溶液の温度
を降下させると50〜40°Cでゲル化してしまい、酵
素による分解を非常に受けにくくなる。寒天をゲル化さ
せないためには基質である寒天の濃度を1%以下にしな
ければならず、オリゴ糖の生産性を著しく低めてしまう
という課題がある。従って、これらの課題を解決するた
めに耐熱性の酵素が必要となってきている。
本発明者らは上記の課題を解決するための、耐熱性の向
上したアガラーゼを取得すべく鋭意検討を重ねた結果、
シュードモナス属に属する微生物によって産生される新
規なβ−アガラーゼが従来より優れた耐熱性を有するこ
とを見出し、本発明を完成するに至った。
上したアガラーゼを取得すべく鋭意検討を重ねた結果、
シュードモナス属に属する微生物によって産生される新
規なβ−アガラーゼが従来より優れた耐熱性を有するこ
とを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち本発明は、このように微生物由来の優れた耐熱
性を存する新規なβ−アガラーゼを供給することにより
寒天オリゴ糖の製造を工業的に容易に実施可能とするも
のである。
性を存する新規なβ−アガラーゼを供給することにより
寒天オリゴ糖の製造を工業的に容易に実施可能とするも
のである。
本発明は第1に以下に示す理化学的性質を有する新規な
β−アガラーゼに関する。
β−アガラーゼに関する。
0作用
アガロースのβ−1,4結合を加水分解して2、速にア
ガロース溶液の粘度を低下させ、主としてネオアガロテ
トラオースとネオアガロヘキサオースを生成する。
ガロース溶液の粘度を低下させ、主としてネオアガロテ
トラオースとネオアガロヘキサオースを生成する。
■基質特異性
β−1,4力ラクトシド結合を有するアガロース。
アガロペクチン、寒天などのガラククン系の多糖類なら
びにネオアガロオクタオース以上の少糖類に作用する。
びにネオアガロオクタオース以上の少糖類に作用する。
ネオアガロへキサオース、ネオアガロテトラオース、ネ
オアガロビオースには作用しにくく、乳糖には作用しな
い。
オアガロビオースには作用しにくく、乳糖には作用しな
い。
■至適ρ■及びpH安定性
寒天を基質としたとき至適pnは7.0であり、45°
C930分、基質非存在の条件下ではp)15〜9で安
定である。
C930分、基質非存在の条件下ではp)15〜9で安
定である。
■至適温度及び熱安定性
寒天を基質としたとき至適温度は50°Cであり、p1
16.0.30分、基質非存在の条件下では45°Cで
は安定、50’Cで約75%、55゛cで約35%の活
性が残存している。
16.0.30分、基質非存在の条件下では45°Cで
は安定、50’Cで約75%、55゛cで約35%の活
性が残存している。
■失活の条件
pH6,0,65’C,30分以上又はpH6,0゜1
00°C110分でほぼ完全に失活する。
00°C110分でほぼ完全に失活する。
■分子量
360.000 (ゲル濾過クロマト法)■等電点
4.9(等電点電気泳動法)
■金属塩の影響
pH6、o、45°C,1mMの金属塩濃度下、3時間
の処理でFe−”、Hg”“、Ag”、A/2”“が1
0%以下、Cu”、Zn’+が約50〜80%の残存活
性を示し、Na”、に’、Mg”、Co”。
の処理でFe−”、Hg”“、Ag”、A/2”“が1
0%以下、Cu”、Zn’+が約50〜80%の残存活
性を示し、Na”、に’、Mg”、Co”。
Mn″”、pb”では安定である。また、Ca ”によ
って活性化され、EDTA(5mM)で残存活性が10
%以下となる。
って活性化され、EDTA(5mM)で残存活性が10
%以下となる。
本発明のβ−アガラーゼの至適pH(基質;0.5%、
0.5d、温度:45°C1反応時間10分)を第2図
に、p)1安定性(45°C130分静置、45’C,
pH6,10分にて活性測定)を第3図に、至適温度(
基質=0.5%、0.5緘、pH6、IJン酸緩衝液、
反応時間10分)を第4図に、熱安定性(p)16.3
0分静置、45°C,pH6,10分にて活性測定)を
第5図にそれぞれ示す。
0.5d、温度:45°C1反応時間10分)を第2図
に、p)1安定性(45°C130分静置、45’C,
pH6,10分にて活性測定)を第3図に、至適温度(
基質=0.5%、0.5緘、pH6、IJン酸緩衝液、
反応時間10分)を第4図に、熱安定性(p)16.3
0分静置、45°C,pH6,10分にて活性測定)を
第5図にそれぞれ示す。
本発明のβ−アガラーゼは分子量、至適温度。
耐熱性が高いことにおいて従来のアガラーゼとは全く異
なるが、その他の性質、たとえば等電点。
なるが、その他の性質、たとえば等電点。
至適pl+、基質特異性については近似するアガラーゼ
がある。
がある。
第2に本発明は、シュードモナス(Pseudomon
as )属に属し、上記の性質を有する新規なβ−アガ
ラーゼの産生する微生物を培養し、培養液中に該酵素を
蓄積させて分離、採取することを特徴とするβ−アガラ
ーゼの製造法に関する。 本発明の新規なβ−アガラー
ゼは微生物を用いて生産されるが、その生産菌としては
シュードモナス(Pseudomonas )属に属し
、上記性質を有する酵素を生産する能力を有する微生物
であればよく、例えば本発明者らによって新たに土壌か
ら分離されたシュードモナス・エスピー N −7(P
seudomonas sp、 N−7)が挙げられる
。本菌株は微工研菌寄第9884号として微生物工業技
術研究所に寄託されており、その菌学的性質は以下の通
りである。
as )属に属し、上記の性質を有する新規なβ−アガ
ラーゼの産生する微生物を培養し、培養液中に該酵素を
蓄積させて分離、採取することを特徴とするβ−アガラ
ーゼの製造法に関する。 本発明の新規なβ−アガラー
ゼは微生物を用いて生産されるが、その生産菌としては
シュードモナス(Pseudomonas )属に属し
、上記性質を有する酵素を生産する能力を有する微生物
であればよく、例えば本発明者らによって新たに土壌か
ら分離されたシュードモナス・エスピー N −7(P
seudomonas sp、 N−7)が挙げられる
。本菌株は微工研菌寄第9884号として微生物工業技
術研究所に寄託されており、その菌学的性質は以下の通
りである。
(1) 形態
■細胞の形および大きさ
桿菌 0.2〜0.4 μmX1.0〜2.0 p
m■多形性 なし ■運動性 あり ■鞭毛 極鞭毛1本を有する■胞子形成
なし ■ダラム染色 陰性 ■抗酸性 なし く2)各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培地 生育は微弱である。
m■多形性 なし ■運動性 あり ■鞭毛 極鞭毛1本を有する■胞子形成
なし ■ダラム染色 陰性 ■抗酸性 なし く2)各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培地 生育は微弱である。
■肉汁液体培養(人工海水使用)
普通の生育、着脱色なし、表面生育なし、沈渣を生じる
。
。
■マリンアガー平板培地(デイフコ社)生育は良好、形
状は円形であるが、寒天を穿孔し孔の表面に付着して生
育する。コロニー周辺の寒天の濁りは透明となる。色調
は黄白色。
状は円形であるが、寒天を穿孔し孔の表面に付着して生
育する。コロニー周辺の寒天の濁りは透明となる。色調
は黄白色。
(3)生理学的性質
■硝酸塩の還元 :陽性
■インドールの生成 :陰性
■硫化水素の生成 :陰性
■デンプンの加水分解:陽性
■無機窒素源の利用:硝酸塩、アンモニウム塩を窒素源
として利用する。
として利用する。
■色素生成:黄白色の非水溶性色素を生成する。
■オキシダーゼ:陰性
■カタラーゼ :陽性
■生育の範囲 :温度10〜45°Cで生育し、28〜
37゛Cが至適である。
37゛Cが至適である。
生育のpHは中性付近が適して
いる。
[相]酸素に対する態度二好気的にのみ生育する。
■0−Fテスト:0型
■糖からの酸の生成
I! 類 酸生成
L−アラビノース +
D−キシロース +
D−グルコース +
D−マンノース +
D−フラクトース −
D−ガラクトース 士
麦芽糖 モ
ショ糖 −乳糖
十 トレハロース + D−ソルビトール − D−マンニトール − イノシトール − グリセリン − デンプン + アドニトール − ネオアガロテトラロース 士 ネオアガロヘキサオース + アガロース 士 寒天 + (4)その他の諸性質 ■DNアーゼの生産 :陰性 ■ゼラチン分解テスト :陰性 ■アルギニン分解テスト:陰性 ■エスクリンの分解性 :陽性 ■好塩性試験 :好塩性(人工海水と水道水を用いた同
一培地で比較) 以上の菌学的性質を有する本菌株について、パージエイ
ズ・マニュアル・オプ・システマティソク・バタテリオ
ロジ−(Bergey’s Manual or Sy
stematicBacteriology) (19
86年)、海洋微生物研究法(学会出版センター、 1
985年)に基づき検索した結果、シュードモナス(P
seudomonas)属に属する菌株と同定した。ま
た、本菌株を詳細に比較すると、本菌株はシュードモナ
ス属に属する新菌株の可能性が大と認め、シュードモナ
ス・エスピー N−7(Pseudo+wonas s
p、 N−7) と命名した。
十 トレハロース + D−ソルビトール − D−マンニトール − イノシトール − グリセリン − デンプン + アドニトール − ネオアガロテトラロース 士 ネオアガロヘキサオース + アガロース 士 寒天 + (4)その他の諸性質 ■DNアーゼの生産 :陰性 ■ゼラチン分解テスト :陰性 ■アルギニン分解テスト:陰性 ■エスクリンの分解性 :陽性 ■好塩性試験 :好塩性(人工海水と水道水を用いた同
一培地で比較) 以上の菌学的性質を有する本菌株について、パージエイ
ズ・マニュアル・オプ・システマティソク・バタテリオ
ロジ−(Bergey’s Manual or Sy
stematicBacteriology) (19
86年)、海洋微生物研究法(学会出版センター、 1
985年)に基づき検索した結果、シュードモナス(P
seudomonas)属に属する菌株と同定した。ま
た、本菌株を詳細に比較すると、本菌株はシュードモナ
ス属に属する新菌株の可能性が大と認め、シュードモナ
ス・エスピー N−7(Pseudo+wonas s
p、 N−7) と命名した。
本発明に用いる微生物としては、本菌株とその変種、変
異株に限定されるものでなく、新規なβ−アガラーゼ生
産能を有するものであれば良い。
異株に限定されるものでなく、新規なβ−アガラーゼ生
産能を有するものであれば良い。
本発明の新規なβ−アガラーゼの生産菌は、公知の常法
によって培養することができる。使用する培地としては
炭素源、窒素源、無機化合物及びその他の栄養素を適当
量含有する培地ならば、合成培地または天然培地のいず
れも使用可能であり、液体または固体の培地を用いて培
養することができる。具体的には炭素源としては、アガ
ラーゼが誘導酵素であるので、寒天、アガロース、アガ
ロペクチン、寒天の部分加水分解物、さらには寒天の原
料であるテングサ、オゴノリなどの紅藻類を単独あるい
は併用して用いることが出来る。なお、グルコースなど
他の炭素源を併用することも可能である。
によって培養することができる。使用する培地としては
炭素源、窒素源、無機化合物及びその他の栄養素を適当
量含有する培地ならば、合成培地または天然培地のいず
れも使用可能であり、液体または固体の培地を用いて培
養することができる。具体的には炭素源としては、アガ
ラーゼが誘導酵素であるので、寒天、アガロース、アガ
ロペクチン、寒天の部分加水分解物、さらには寒天の原
料であるテングサ、オゴノリなどの紅藻類を単独あるい
は併用して用いることが出来る。なお、グルコースなど
他の炭素源を併用することも可能である。
また、窒素源としては肉エキス、ペプトン、酵母エキス
、乾燥酵母、大豆粉、カゼイン、カザミノ酸、各種アミ
ノ酸、コーンステイープリカー。
、乾燥酵母、大豆粉、カゼイン、カザミノ酸、各種アミ
ノ酸、コーンステイープリカー。
フィツシュミール、尿素など動物、植物、微生物由来の
蛋白質、その加水分解物のような有機窒素源や各種無機
アンモニウム塩、硝酸塩などの無機窒素化合物を使用微
生物の資化性を考慮して1種または2種以上を適宜選択
して用いる。
蛋白質、その加水分解物のような有機窒素源や各種無機
アンモニウム塩、硝酸塩などの無機窒素化合物を使用微
生物の資化性を考慮して1種または2種以上を適宜選択
して用いる。
無機塩としてナトリウム、マグネシウム、カルシウム、
鉄、亜鉛、マンガン、銅などのリン酸塩。
鉄、亜鉛、マンガン、銅などのリン酸塩。
塩酸塩、硫酸塩、炭酸塩、酢酸塩などの1種または2種
以上を適宜添加するか、好塩性の菌を使用する場合には
、人工海水を使用するか食塩濃度を海水濃度程度までの
適当な範囲で設定して用いることができる。また、必要
に応じて植物油、3面活性剤などの消泡剤を添加しても
良い。
以上を適宜添加するか、好塩性の菌を使用する場合には
、人工海水を使用するか食塩濃度を海水濃度程度までの
適当な範囲で設定して用いることができる。また、必要
に応じて植物油、3面活性剤などの消泡剤を添加しても
良い。
培養は、前記培地成分を含む液体培地中で振とう培養2
通気撹拌培養、連続培養など通常の培養法を用いて実施
できる。培養条件は培地の種類。
通気撹拌培養、連続培養など通常の培養法を用いて実施
できる。培養条件は培地の種類。
培養法により適宜選択すれば良く、アガラーゼ生産菌が
増殖しβ−アガラーゼを産生できる条件であれば特段の
制限はない。通常、培養初発pH6,5〜8.5.25
〜37°Cで通気攪拌して培養するのが好ましい。培養
日数は通常1〜2日が適当である。
増殖しβ−アガラーゼを産生できる条件であれば特段の
制限はない。通常、培養初発pH6,5〜8.5.25
〜37°Cで通気攪拌して培養するのが好ましい。培養
日数は通常1〜2日が適当である。
以上のようにして培養中に産生されたβ−アガラーゼは
次のような方法で分離、回収できる。木β−アガラーゼ
は主に菌体外に蓄積されるので、培養終了後、菌体を濾
過、遠心分離等の方法で除去して培養濾液を得る。菌体
酵素については通常用いられる手段により菌体を破砕し
てβ−アガラーゼを抽出し、用いることができる。
次のような方法で分離、回収できる。木β−アガラーゼ
は主に菌体外に蓄積されるので、培養終了後、菌体を濾
過、遠心分離等の方法で除去して培養濾液を得る。菌体
酵素については通常用いられる手段により菌体を破砕し
てβ−アガラーゼを抽出し、用いることができる。
得られた酵素を含む液をそのまま真空−awI又は限外
濾過膜を用いて濃縮して液状酵素として、あるいは凍結
乾燥法、噴霧乾燥法により粉末化して用いることができ
る。別な方法としては通常用いられる精製方法、例えば
硫安塩析、溶媒沈澱法によりβ−アガラーゼを沈澱させ
精製する方法、あるいはイオン交換クロマト9ゲル濾過
クロマトさらにはアガロースアフィニティ吸着法、クロ
マトフオーカシング、等電点電気泳動などの精製方法を
1種あるいは2種以上組合わせて高純度に精製する方法
を用いることもできる。
濾過膜を用いて濃縮して液状酵素として、あるいは凍結
乾燥法、噴霧乾燥法により粉末化して用いることができ
る。別な方法としては通常用いられる精製方法、例えば
硫安塩析、溶媒沈澱法によりβ−アガラーゼを沈澱させ
精製する方法、あるいはイオン交換クロマト9ゲル濾過
クロマトさらにはアガロースアフィニティ吸着法、クロ
マトフオーカシング、等電点電気泳動などの精製方法を
1種あるいは2種以上組合わせて高純度に精製する方法
を用いることもできる。
本発明でのβ−アガラーゼの活性測定法は以下の通りで
ある。pH6,0,0,1M酢酸緩衝液に希釈溶解した
酵素0.5 dを45°Cに保温しておき、これに0.
5%寒天溶液(45°Cに予熱)0.5meを添加して
反応を開始させる。反応は45°Cで1゛0分間行ない
、反応停止はソモギー液を添加することで行ない、ソモ
ギー・ふルソン法で還元糖を定量する。活性は1μmo
leのガラクトースに相当する還元力を生成する酵素量
を1単位として表示する。
ある。pH6,0,0,1M酢酸緩衝液に希釈溶解した
酵素0.5 dを45°Cに保温しておき、これに0.
5%寒天溶液(45°Cに予熱)0.5meを添加して
反応を開始させる。反応は45°Cで1゛0分間行ない
、反応停止はソモギー液を添加することで行ない、ソモ
ギー・ふルソン法で還元糖を定量する。活性は1μmo
leのガラクトースに相当する還元力を生成する酵素量
を1単位として表示する。
[実施例]
次に、実施例により本発明をさらに詳細に説明する。
実施例1
シュードモナス・エスピー N 7 (Pseudo
−monas sp、 N−7)(微工研菌寄第988
4号)を天草裁断物1.5%、ポリペプトン0.5%、
酵母エキス0.5%を人工海水に懸濁熔解し、pH6,
5に調整し殺菌した培地40d(200d三角フラスコ
)に1白金耳植菌し、25“Cで45時間振とう培養し
た。培養終了後、菌体と天草残渣を遠心分離で除去し、
酵素活性を測定したところ、β−アガラーゼが 0.1
9単位/戚生産されていた。
−monas sp、 N−7)(微工研菌寄第988
4号)を天草裁断物1.5%、ポリペプトン0.5%、
酵母エキス0.5%を人工海水に懸濁熔解し、pH6,
5に調整し殺菌した培地40d(200d三角フラスコ
)に1白金耳植菌し、25“Cで45時間振とう培養し
た。培養終了後、菌体と天草残渣を遠心分離で除去し、
酵素活性を測定したところ、β−アガラーゼが 0.1
9単位/戚生産されていた。
実施例2
シュードモナス・エスピー N−7(微工研菌寄第98
84号)を粉末寒天0.7%、グルコース0.1%、硝
酸ナトリウム0.5%、酵母エキス0.5%。
84号)を粉末寒天0.7%、グルコース0.1%、硝
酸ナトリウム0.5%、酵母エキス0.5%。
硫酸マグネシウム0.2%、塩化カルシウム0.2%。
塩化ナトリウム2.0%を含むpH8,5の培地401
11!(200mf三角フラスコ)に1白金耳植菌し、
37℃で1口振とうして前培養した後、この前培養液を
同じ培地1.5I!、を含む31ジャーファーメンタ−
に植菌した。37°Cで24時間、通気量1、5 l/
min攪拌速度400 rpmの条件で培養した。
11!(200mf三角フラスコ)に1白金耳植菌し、
37℃で1口振とうして前培養した後、この前培養液を
同じ培地1.5I!、を含む31ジャーファーメンタ−
に植菌した。37°Cで24時間、通気量1、5 l/
min攪拌速度400 rpmの条件で培養した。
培養終了後、菌体を遠心分離で除去して培養濾液1.4
j2を得た。培養濾液中のアガラーゼ活性は1.0単位
/dであった。この培養濾液を分画分子量1万の限外濾
過膜で約20倍に濃縮したところ、21.3単位/戚の
酵素液60dを得た。
j2を得た。培養濾液中のアガラーゼ活性は1.0単位
/dであった。この培養濾液を分画分子量1万の限外濾
過膜で約20倍に濃縮したところ、21.3単位/戚の
酵素液60dを得た。
実施例3
シュードモナス・エスピー N−7(微工研菌寄第98
84号)をアガロース0.5%、硝酸ナトリウム0.5
%、酵母エキス0.5%を人工海水に溶解したp)17
.5の培地で前培養した。前培養液を同組成の培地15
I!、を入れた302ジャーファーメンタ−に植菌し、
30℃で30時間培養した。
84号)をアガロース0.5%、硝酸ナトリウム0.5
%、酵母エキス0.5%を人工海水に溶解したp)17
.5の培地で前培養した。前培養液を同組成の培地15
I!、を入れた302ジャーファーメンタ−に植菌し、
30℃で30時間培養した。
培養中、通気量は15 i!、/minとし、200r
pmの撹拌を行なった。
pmの撹拌を行なった。
培養終了後、菌体を濾過により除き培養濾液を得た。培
養濾液中のアガラーゼ活性は1.1単位1 mlであっ
た。培養濾液をCL−セファロース6B(ファルマシア
社)50mj!のカラムに500 ml/hrの流速で
通液しアフィニティー吸着させ、水洗浄後、2%ネオア
ガロオリゴtJH容液液500d7容出しアガラーゼを
溶出した。その後、常法として用いられているDEAE
l−ヨバール(東ソー社)。
養濾液中のアガラーゼ活性は1.1単位1 mlであっ
た。培養濾液をCL−セファロース6B(ファルマシア
社)50mj!のカラムに500 ml/hrの流速で
通液しアフィニティー吸着させ、水洗浄後、2%ネオア
ガロオリゴtJH容液液500d7容出しアガラーゼを
溶出した。その後、常法として用いられているDEAE
l−ヨバール(東ソー社)。
トヨバールHW55 S、 クロマトフオーカシング
で精製してほぼ純品に近い精製酵素を得た(22単位/
mg蛋白質)。なお、活性収率は約15%であった。
で精製してほぼ純品に近い精製酵素を得た(22単位/
mg蛋白質)。なお、活性収率は約15%であった。
〔発明の効果]
本発明によれば、シュードモナス属に属する綴植を培養
することにより新規なβ−アガラーゼが得られる。この
酵素は優れた耐熱性を有しているため、寒天オリゴ糖の
工業的製造に利用することができる。寒天オリゴ垢は澱
粉老化防止作用、静菌作用、難消化性などの性質を有し
ており、様々な分野での利用が期待される。
することにより新規なβ−アガラーゼが得られる。この
酵素は優れた耐熱性を有しているため、寒天オリゴ糖の
工業的製造に利用することができる。寒天オリゴ垢は澱
粉老化防止作用、静菌作用、難消化性などの性質を有し
ており、様々な分野での利用が期待される。
第1図はアガロースの構造と加水分解様式を示すもので
ある。 第2図は本発明のβ−アガラーゼの至適pl+を示すも
のである。 第3図は本発明のβ−アガラーゼのpH安定性を示すも
のである。 第4図は本発明のβ−アガラーゼの至適温度を示すもの
である。 第5図は本発明のβ−アガラーゼの熱安定性を示すもの
である。 特許出願人 食品産業バイオリアクターシステム第2図 pH 第3r!1J 4)e+/a 9
ある。 第2図は本発明のβ−アガラーゼの至適pl+を示すも
のである。 第3図は本発明のβ−アガラーゼのpH安定性を示すも
のである。 第4図は本発明のβ−アガラーゼの至適温度を示すもの
である。 第5図は本発明のβ−アガラーゼの熱安定性を示すもの
である。 特許出願人 食品産業バイオリアクターシステム第2図 pH 第3r!1J 4)e+/a 9
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)下記の理化学的性質を有する新規なβ−アガラー
ゼ。 [1]作用 アガロースのβ−1,4結合を加水分解して急速にアガ
ロース溶液の粘度を低下させ、主としてネオアガロテト
ラオースとネオアガロヘキサオースを生成する。 [2]基質特異性 β−1,4ガラクトシド結合を有するアガロース、アガ
ロペクチン、寒天などのガラクタン系の多糖類ならびに
ネオアガロオクタオース以上の少糖類に作用する。ネオ
アガロヘキサオース、ネオアガロテトラオース、ネオア
ガロビオースには作用しにくく、乳糖には作用しない。 [3]至適pH及びpH安定性 寒天を基質としたとき至適pHは7.0であり、45℃
、30分、基質非存在の条件下ではpH5〜9で安定で
ある。 [4]至適温度及び熱安定性 寒天を基質としたとき至適温度は50℃であり、pH6
.0、30分、基質非存在の条件下では45℃では安定
、50℃で約75%、55℃で約35%の活性が残存し
ている。 [5]失活の条件 pH6.0、65℃、30分以上又はpH6.0、10
0℃、10分でほぼ完全に失活する。 [6]分子量 360,000(ゲル濾過クロマト法) [7]等電点 4.9(等電点電気泳動法) [8]金属塩の影響 pH6.0、45゜C、1mMの金属塩濃度下、3時間
の処理でFe^+^+^+、Hg^+^+、Ag^+、
Al^+^+^+が10%以下、Cu^+^+、Zn^
+^+が約50〜80%の残存活性を示し、Na^+、
K^+、Mg^+^+、Co^+^+、Mn^+^+、
Pb^+^+では安定である。また、Ca^+^+によ
って活性化され、EDTA(5mM)で残存活性が10
%以下となる。 (2)シュードモナス¥(Pseudomonas)¥
属に属する請求項1記載の理化学的性質を有する新規な
β−アガラーゼ生産菌を培養し、培養物から該β−アガ
ラーゼを採取することを特徴とする新規なβ−アガラー
ゼの製造法。 (3)シュードモナス¥(Pseudomonas)¥
属に属する新規なβ−アガラーゼ生産菌がシュードモナ
ス・エスピーN−7(¥Pseudomonas¥sp
.N−7)(微工研菌寄第9884号)である請求項2
記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5270088A JPH0797987B2 (ja) | 1988-03-08 | 1988-03-08 | 新規なβ−アガラーゼ及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5270088A JPH0797987B2 (ja) | 1988-03-08 | 1988-03-08 | 新規なβ−アガラーゼ及びその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01228465A true JPH01228465A (ja) | 1989-09-12 |
| JPH0797987B2 JPH0797987B2 (ja) | 1995-10-25 |
Family
ID=12922167
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5270088A Expired - Lifetime JPH0797987B2 (ja) | 1988-03-08 | 1988-03-08 | 新規なβ−アガラーゼ及びその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0797987B2 (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2009102279A (ja) * | 2007-10-25 | 2009-05-14 | Kose Corp | 抗シワ剤およびシワ形成防止用皮膚外用剤 |
| JP2012121910A (ja) * | 2012-03-05 | 2012-06-28 | Kose Corp | インターロイキン6産生抑制剤 |
| CN110713997A (zh) * | 2019-11-04 | 2020-01-21 | 江南大学 | 一种降解产物均一的琼胶酶及其应用 |
-
1988
- 1988-03-08 JP JP5270088A patent/JPH0797987B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2009102279A (ja) * | 2007-10-25 | 2009-05-14 | Kose Corp | 抗シワ剤およびシワ形成防止用皮膚外用剤 |
| JP2012121910A (ja) * | 2012-03-05 | 2012-06-28 | Kose Corp | インターロイキン6産生抑制剤 |
| CN110713997A (zh) * | 2019-11-04 | 2020-01-21 | 江南大学 | 一种降解产物均一的琼胶酶及其应用 |
| CN110713997B (zh) * | 2019-11-04 | 2022-02-01 | 江南大学 | 一种降解产物均一的琼胶酶及其应用 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0797987B2 (ja) | 1995-10-25 |
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