JPH02276595A - 胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物 - Google Patents
胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/26—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
- C12Q1/32—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase involving dehydrogenase
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は胆汁酸、特に生体試料中の胆汁酸の高感度測定
法に関する。
法に関する。
血清等の生体試料中の胆汁酸を測定することは、肝機能
検査として、あるいは黄痘、胆石症の成立機序の解明な
どとして重要である。
検査として、あるいは黄痘、胆石症の成立機序の解明な
どとして重要である。
従来、コール酸、デオキシコール酸やケノデオキシコー
ル酸などを含む胆汁酸の測定法としては種々の方法が報
告されているが、近年臨床検査には、一般に3α−ハイ
ドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ及び1つの補酵素
としてニコチンアデニンジヌクレオチド類(以下NAD
類という)又はニコチンアデニンジヌクレオチドホスフ
ェート類(以下NAIIP類という)を反応させて、胆
汁酸量に比例して生成する還元型NAD類(以下Nへ旧
1類という)又は還元型NADP類(以下Nへ口門1類
という)を測定する方法(特公昭59−13197号)
が使用されている。しかしながら、この方法はビリルビ
ンの影響を受は易いために予め胆汁酸の分離が必要であ
る、多量の検体が必要である、また感度が低いという欠
点があった。そのため高感度発色剤を使用する工夫もな
されているが〔第33回日本臨床病理学会総会抄録、1
23頁(1986)及び第34回向抄録、124頁(1
987) ) 、これも本質的な解決とはなっていない
。
ル酸などを含む胆汁酸の測定法としては種々の方法が報
告されているが、近年臨床検査には、一般に3α−ハイ
ドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ及び1つの補酵素
としてニコチンアデニンジヌクレオチド類(以下NAD
類という)又はニコチンアデニンジヌクレオチドホスフ
ェート類(以下NAIIP類という)を反応させて、胆
汁酸量に比例して生成する還元型NAD類(以下Nへ旧
1類という)又は還元型NADP類(以下Nへ口門1類
という)を測定する方法(特公昭59−13197号)
が使用されている。しかしながら、この方法はビリルビ
ンの影響を受は易いために予め胆汁酸の分離が必要であ
る、多量の検体が必要である、また感度が低いという欠
点があった。そのため高感度発色剤を使用する工夫もな
されているが〔第33回日本臨床病理学会総会抄録、1
23頁(1986)及び第34回向抄録、124頁(1
987) ) 、これも本質的な解決とはなっていない
。
また、他の方法として、生成した3−オキソステロイド
を更に3−オキソ−Δ4−ステロイドデヒドロゲナーゼ
の作用により3Δ4−ステロイドとし、ホルマザン色素
を従来の2倍量生成させるキットも市販されているが、
これも感度がたかだか2倍になったにすぎない。
を更に3−オキソ−Δ4−ステロイドデヒドロゲナーゼ
の作用により3Δ4−ステロイドとし、ホルマザン色素
を従来の2倍量生成させるキットも市販されているが、
これも感度がたかだか2倍になったにすぎない。
更にまた、胆汁酸の量に比例して生成されるNA口■又
はN A D P 11を酵素的サイクリング反応を利
用して高感度に測定する方法が報告されている(特公昭
63−36758号)。しかし、この方法も、NAAl
I3たはNA口門1を酵素ザイクリング反応によって増
幅させるためには、残存している過剰のNAD又はN^
叶をアルカリ加温処理によって分解除去しなければなら
ないため操作が煩雑であり、臨床検査のような多検体を
処理する場合には不利なるを免れなかった。
はN A D P 11を酵素的サイクリング反応を利
用して高感度に測定する方法が報告されている(特公昭
63−36758号)。しかし、この方法も、NAAl
I3たはNA口門1を酵素ザイクリング反応によって増
幅させるためには、残存している過剰のNAD又はN^
叶をアルカリ加温処理によって分解除去しなければなら
ないため操作が煩雑であり、臨床検査のような多検体を
処理する場合には不利なるを免れなかった。
斯かる実情において、本発明者は鋭意研究を行った結果
、次の新しい事実を見出した。
、次の新しい事実を見出した。
胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応に
おいて、一般の微生物由来のステロイドデヒドロゲナー
ゼはNへ口類を補酵素とするが、NADP類を補酵素と
しないか又はごくわずかしか働かない。しかし、シュー
ドモナス(Pseudomonas)属に属するPse
udomunassp、 B−0831(FBRM t
lP−2376)由来の市1k(7) 3α−ヒドロキ
システロイドデヒドロゲナーゼ〔東洋醋造■製、「酵素
カタ[1グ」、53頁、カタログNαT−273はNA
口類及びNAl類を共に補酵素とする。
おいて、一般の微生物由来のステロイドデヒドロゲナー
ゼはNへ口類を補酵素とするが、NADP類を補酵素と
しないか又はごくわずかしか働かない。しかし、シュー
ドモナス(Pseudomonas)属に属するPse
udomunassp、 B−0831(FBRM t
lP−2376)由来の市1k(7) 3α−ヒドロキ
システロイドデヒドロゲナーゼ〔東洋醋造■製、「酵素
カタ[1グ」、53頁、カタログNαT−273はNA
口類及びNAl類を共に補酵素とする。
そして、当該ステロイドデヒドロゲナーゼを使用し、N
AD類(又はNへ口P類)を補酵素として胆汁酸からオ
キソ胆汁酸を生成させる反応系となし、かつ当該補酵素
と異なるNAOP類(又はN^口類)を共存させて、胆
汁酸とオキソ胆汁酸の間の可逆的サイクリング反応を行
わせると、NAl類(又はNへ旧’II類)の生成量が
時間の経過と共に直線的に増加し、しがもその増加速度
は胆汁酸の量に比例する。
AD類(又はNへ口P類)を補酵素として胆汁酸からオ
キソ胆汁酸を生成させる反応系となし、かつ当該補酵素
と異なるNAOP類(又はN^口類)を共存させて、胆
汁酸とオキソ胆汁酸の間の可逆的サイクリング反応を行
わせると、NAl類(又はNへ旧’II類)の生成量が
時間の経過と共に直線的に増加し、しがもその増加速度
は胆汁酸の量に比例する。
本発明は、斯かる新知見に基いて完成されたもので、胆
汁酸含有被検体に、 ■ NAl類又はNAG類を補酵素とし、少な(とも胆
汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応をな
すステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰mの八。
汁酸含有被検体に、 ■ NAl類又はNAG類を補酵素とし、少な(とも胆
汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応をな
すステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰mの八。
■ B1又は/及びB2
■ 胆汁酸及びA1に作用せず、B、→口、の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する試薬を作用せしめて、次の反応式(式中、A
、はN^OP類又はNへ口類、A2はA、の還元型生成
物、B1は八、がNADP類のときは還元型NAD類、
AtがNAO類のときは還元型NAl類、口、は口、の
酸化型生成物、0*−0,は口、を補酵素として口、を
生成する酵素反応を示す)で表わされるサイクリング反
応を形成せしめ、該反応によって生成されるA1の量を
測定することを特徴とする胆汁酸の高感度測定法を提供
するものである。
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する試薬を作用せしめて、次の反応式(式中、A
、はN^OP類又はNへ口類、A2はA、の還元型生成
物、B1は八、がNADP類のときは還元型NAD類、
AtがNAO類のときは還元型NAl類、口、は口、の
酸化型生成物、0*−0,は口、を補酵素として口、を
生成する酵素反応を示す)で表わされるサイクリング反
応を形成せしめ、該反応によって生成されるA1の量を
測定することを特徴とする胆汁酸の高感度測定法を提供
するものである。
更に本発明は、この胆汁酸の高感度測定法に使用する次
の成分■〜■ ■ NADP類及びNAD頚を補酵素とし、少なくとも
胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応を
なすステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰量のA1■ B、又は/
及びB。
の成分■〜■ ■ NADP類及びNAD頚を補酵素とし、少なくとも
胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応を
なすステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰量のA1■ B、又は/
及びB。
■ 胆汁酸及びA1に作用せず、ロ、→口、の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する胆汁酸測定用組成物を提供するものである。
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する胆汁酸測定用組成物を提供するものである。
本発明において、ステロイドデヒドロゲナーゼとしては
上記要件を具備するものであれば何れのものでも使用で
きるが、その具体例としては、市販のシュードモナスs
p、ロー0831(Pseud、sp、) 、由来の3
α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ(3(x=
llS口)、7α−113口、12α−113口等が挙
げられる。
上記要件を具備するものであれば何れのものでも使用で
きるが、その具体例としては、市販のシュードモナスs
p、ロー0831(Pseud、sp、) 、由来の3
α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ(3(x=
llS口)、7α−113口、12α−113口等が挙
げられる。
また、A、及びB、で示されるNAu)類及びNへ〇類
としては、例えばニコチンアデニンジヌクレオチドホス
フェ−) (Nへ旧])、アセチルピリジンアデニンジ
ヌクレオチドホスフェート(アセチルNADP)および
ニコチン“rミドヒボキサンチンジヌクレオチドホスフ
ェート(テ゛アミノNA叶) ;およびニコチンアデニ
ンジヌクレオチド(Nへ〇)、了セチルピリジン°rデ
ニンジヌクレオチド(アセチルNAIJ ) Jよびニ
コチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド(デアミノ
NA口)が挙げられる。この^、及び8.は異なるもの
であることが必要であり、^、がNADP頚のときはB
1として還元型Nへ〇類を、またAtがN^口類のとき
は口、として還元型N^口P類妻使用する。
としては、例えばニコチンアデニンジヌクレオチドホス
フェ−) (Nへ旧])、アセチルピリジンアデニンジ
ヌクレオチドホスフェート(アセチルNADP)および
ニコチン“rミドヒボキサンチンジヌクレオチドホスフ
ェート(テ゛アミノNA叶) ;およびニコチンアデニ
ンジヌクレオチド(Nへ〇)、了セチルピリジン°rデ
ニンジヌクレオチド(アセチルNAIJ ) Jよびニ
コチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド(デアミノ
NA口)が挙げられる。この^、及び8.は異なるもの
であることが必要であり、^、がNADP頚のときはB
1として還元型Nへ〇類を、またAtがN^口類のとき
は口、として還元型N^口P類妻使用する。
Atの量は被検体中の胆汁酸の里に比較して過剰量であ
ることが必要であり、特に胆汁酸の20〜10.000
倍モルが好ましい。口、の間はA1より少ない量である
ことが必要であり、−般にはA1の1/100モル以下
が好ましい。
ることが必要であり、特に胆汁酸の20〜10.000
倍モルが好ましい。口、の間はA1より少ない量である
ことが必要であり、−般にはA1の1/100モル以下
が好ましい。
B、の代りに8.を用いてもよい。
第2のデヒドロゲナーゼ及びその基質としては、例えば
、LがNA3類のときは、アルコールデヒドロゲナーゼ
([EC1,1,1,l)とエタノール、グリセロール
デヒドロゲナーゼ (BC1,1,1,6) (ロ、Co11由来)とグリ
セロール、グリセロール−3−リン酸デヒドロゲナーゼ
(BC1,1,1,8) (ウサギ筋肉出来)とL−グ
リセロール−3−リン酸、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ(
BC1,1,1,37) (ブタ心筋、ウシ心筋由来
)とL−リンゴ酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロ
ゲナーゼ([EC1,2,1,12) (ウサギ骨格
筋、肝、酵母、[E、Co11由来)とD−グリセロア
ルデヒドリン酸とリン酸、B、がN人口P類のときは、
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナiゼ(BC1,1
,l、 49) (酵母由来)とグルコース−6−リン
酸、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ(tic 1.1.
1.42) (酵母、ブタ心筋由来)とイソクエン酸、
グリオキシル酸デヒドロゲナーゼ(BC1,2,1,1
7) (Pseudomonasoxalaticus
由来)とCo^とグリオキシル酸、ホスホグルコン酸デ
ヒドロゲナーゼ(EC1,1゜1、44) (ラット肝
、ビール酵母、口、Co11由来)と6−ホスホ−D−
グルコン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナー
ゼ(tIC1,2,1゜13)(植物葉緑体由来)とD
−グリセロアルデヒド−3−リン酸とリン酸、ベンズア
ルデヒドテヒドロゲー1−一−t’(EC1,2,1,
7)(Pseudomonas fluorescen
s由来)とベンズアルデヒド等が挙げられる。
、LがNA3類のときは、アルコールデヒドロゲナーゼ
([EC1,1,1,l)とエタノール、グリセロール
デヒドロゲナーゼ (BC1,1,1,6) (ロ、Co11由来)とグリ
セロール、グリセロール−3−リン酸デヒドロゲナーゼ
(BC1,1,1,8) (ウサギ筋肉出来)とL−グ
リセロール−3−リン酸、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ(
BC1,1,1,37) (ブタ心筋、ウシ心筋由来
)とL−リンゴ酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロ
ゲナーゼ([EC1,2,1,12) (ウサギ骨格
筋、肝、酵母、[E、Co11由来)とD−グリセロア
ルデヒドリン酸とリン酸、B、がN人口P類のときは、
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナiゼ(BC1,1
,l、 49) (酵母由来)とグルコース−6−リン
酸、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ(tic 1.1.
1.42) (酵母、ブタ心筋由来)とイソクエン酸、
グリオキシル酸デヒドロゲナーゼ(BC1,2,1,1
7) (Pseudomonasoxalaticus
由来)とCo^とグリオキシル酸、ホスホグルコン酸デ
ヒドロゲナーゼ(EC1,1゜1、44) (ラット肝
、ビール酵母、口、Co11由来)と6−ホスホ−D−
グルコン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナー
ゼ(tIC1,2,1゜13)(植物葉緑体由来)とD
−グリセロアルデヒド−3−リン酸とリン酸、ベンズア
ルデヒドテヒドロゲー1−一−t’(EC1,2,1,
7)(Pseudomonas fluorescen
s由来)とベンズアルデヒド等が挙げられる。
本発明の胆汁酸測定用組成物は、各成分の濃度が、八、
は例えJfo、05〜100 mM、好ましくは2〜3
0mM5B+又は/及びl]21jA、(D使用lに比
べて1/100モル以下として適宜使用すればよく、例
えば0.05〜500μ舖、好ましくは5〜50μM、
ステロイドデヒドロゲナーゼは例えば0.05〜100
U/rnll、好ましくは1〜50 U/rIdl、
第2のデヒドロゲナーゼはB2に対するKmの20倍以
上になるように調製すればよく、例えば1〜100 U
/rne。
は例えJfo、05〜100 mM、好ましくは2〜3
0mM5B+又は/及びl]21jA、(D使用lに比
べて1/100モル以下として適宜使用すればよく、例
えば0.05〜500μ舖、好ましくは5〜50μM、
ステロイドデヒドロゲナーゼは例えば0.05〜100
U/rnll、好ましくは1〜50 U/rIdl、
第2のデヒドロゲナーゼはB2に対するKmの20倍以
上になるように調製すればよく、例えば1〜100 U
/rne。
またこの第2のデヒドロゲナーゼの基質は0.5〜50
00μM1好ましくは50〜1000μMを用いればよ
く、さらにこれ以上の過剰量を用いてもよい。
00μM1好ましくは50〜1000μMを用いればよ
く、さらにこれ以上の過剰量を用いてもよい。
また本発明に使用できるステロイドデヒドロゲナーゼに
関しては、例えば補酵素としてNAG類好ま°しくはN
A口、およびNAIIP類好ましくはNADPを用いて
、基質となるコール酸などの胆汁酸試薬に対する反応性
を有するものであればよく、これらの補酵素と基質を用
いることにより確認できるものである。市lkのステロ
イドデヒドロゲナーゼ、例えば3tX)1sD [東
洋醸造■製、[酵素カタログ1.53頁、カタログNa
T−27]について、NAl1とコール酸による反応の
場合のKm値は各々2.9X 10−’M 、 3X
10−’Mであり、またNAl】とコール酸の場合のに
m値は各々1.ldX I 0間、6.2 X 10−
5Mテある。t タNへI3−d: タハNADPとコ
ール酸による正反応の至適、I+はいずれも9.5付近
であり、N八旧1またはN八旧1とオキソコール酸によ
る逆反応の至適l111はいずれも5.5付近である性
質を示す。この両反応において、各補酵素に対するKm
値に基づき、両音間の至適PHの間のpH条件を適宜調
整して正反応/逆反応の反応速度比が1に近づくように
pi+条件を設定すればよい。また同様に使用できる3
α−83口としては、例えばラット肝、前立腺曲乗のB
C1,1,1,50[J、SteroidBioche
m、、 8. 4l−46(1977)]’の3a−
113口が挙げられこれらの酵素は、適宜単独または祝
用してもよい。
関しては、例えば補酵素としてNAG類好ま°しくはN
A口、およびNAIIP類好ましくはNADPを用いて
、基質となるコール酸などの胆汁酸試薬に対する反応性
を有するものであればよく、これらの補酵素と基質を用
いることにより確認できるものである。市lkのステロ
イドデヒドロゲナーゼ、例えば3tX)1sD [東
洋醸造■製、[酵素カタログ1.53頁、カタログNa
T−27]について、NAl1とコール酸による反応の
場合のKm値は各々2.9X 10−’M 、 3X
10−’Mであり、またNAl】とコール酸の場合のに
m値は各々1.ldX I 0間、6.2 X 10−
5Mテある。t タNへI3−d: タハNADPとコ
ール酸による正反応の至適、I+はいずれも9.5付近
であり、N八旧1またはN八旧1とオキソコール酸によ
る逆反応の至適l111はいずれも5.5付近である性
質を示す。この両反応において、各補酵素に対するKm
値に基づき、両音間の至適PHの間のpH条件を適宜調
整して正反応/逆反応の反応速度比が1に近づくように
pi+条件を設定すればよい。また同様に使用できる3
α−83口としては、例えばラット肝、前立腺曲乗のB
C1,1,1,50[J、SteroidBioche
m、、 8. 4l−46(1977)]’の3a−
113口が挙げられこれらの酵素は、適宜単独または祝
用してもよい。
さらに正反応/逆反応の反応速度比を1に近づけるため
に、いずれか一方の反応速度が遅い系について、その反
応を行う補助的な試薬系、例えばpH条件の設定により
正反応速度を遅らせた場合には正反応を行う別のステロ
イドデヒドロゲナーゼを添加してもよく、又逆反応速度
が遅い場合にはその逆反応を行う別のステロイドデヒド
ロゲナーゼを添加してもよい。このような別のステロイ
ドデヒドロゲナーゼとしては、N^口類又はNAIIP
類のいずれか一方に実質的に補酵素して作用するもので
あって、例えば胆汁酸に対してN^口類又はNADP類
にて正反応を示すか、又はオ:トソ胆汁酸に対してNA
l類又はNAu)11類にて逆反応を示すものであれば
よく、公知の酵素リストより適宜選択使用でき、例示す
ればNAl類に特異的であるバチルス・スファエリカス (Bacillus 5phaericus) [特
開昭54−157894号公報〕、シュードモナス・テ
ストステロニ(Pseudomonas testo
steroni) (J、口、[’、、227゜37
−52(1957) )由来の3α−113口が挙げら
れる。
に、いずれか一方の反応速度が遅い系について、その反
応を行う補助的な試薬系、例えばpH条件の設定により
正反応速度を遅らせた場合には正反応を行う別のステロ
イドデヒドロゲナーゼを添加してもよく、又逆反応速度
が遅い場合にはその逆反応を行う別のステロイドデヒド
ロゲナーゼを添加してもよい。このような別のステロイ
ドデヒドロゲナーゼとしては、N^口類又はNAIIP
類のいずれか一方に実質的に補酵素して作用するもので
あって、例えば胆汁酸に対してN^口類又はNADP類
にて正反応を示すか、又はオ:トソ胆汁酸に対してNA
l類又はNAu)11類にて逆反応を示すものであれば
よく、公知の酵素リストより適宜選択使用でき、例示す
ればNAl類に特異的であるバチルス・スファエリカス (Bacillus 5phaericus) [特
開昭54−157894号公報〕、シュードモナス・テ
ストステロニ(Pseudomonas testo
steroni) (J、口、[’、、227゜37
−52(1957) )由来の3α−113口が挙げら
れる。
このようにして調製された本発明の組成物または測定法
により、被検液中の胆汁酸量を測定するに、成分■〜■
を含有する上記試薬に被検液0.001〜0.5 dを
加え、約37℃の温度にて反応させ、反応開始一定時間
後の2点間の数分ないし数十分間、例えば3分後と4分
後の1分間または3分後と8分後の5分間にふける生成
された^2の量をその吸収波長による吸光度により測定
すればよく、例えばA、がNA口■、N^口pHの場合
は340 nmの吸光度による吸光値を求めればよく、
その差から簡便に胆汁酸の量を測定する。またA1の爪
の測定においてステロイドデヒドロゲナーゼの量をIO
U/−以上の濃度として用いることにより1分間当り少
なくとも胆汁酸の量に比べてサイクル数に基づく高感度
にて測定でき、かつ2点間の吸光度を測定するために被
検液のブランク測定を省略でき、レイトアッセイによる
簡便な測定をなし得る。さらに^2測定に当り、吸光度
測定の代りに、生成された八。
により、被検液中の胆汁酸量を測定するに、成分■〜■
を含有する上記試薬に被検液0.001〜0.5 dを
加え、約37℃の温度にて反応させ、反応開始一定時間
後の2点間の数分ないし数十分間、例えば3分後と4分
後の1分間または3分後と8分後の5分間にふける生成
された^2の量をその吸収波長による吸光度により測定
すればよく、例えばA、がNA口■、N^口pHの場合
は340 nmの吸光度による吸光値を求めればよく、
その差から簡便に胆汁酸の量を測定する。またA1の爪
の測定においてステロイドデヒドロゲナーゼの量をIO
U/−以上の濃度として用いることにより1分間当り少
なくとも胆汁酸の量に比べてサイクル数に基づく高感度
にて測定でき、かつ2点間の吸光度を測定するために被
検液のブランク測定を省略でき、レイトアッセイによる
簡便な測定をなし得る。さらに^2測定に当り、吸光度
測定の代りに、生成された八。
を公知の測定法、例えばジアホラーゼ及びテトラゾリウ
ム塩やレザズリンを使用して測定してもよい。
ム塩やレザズリンを使用して測定してもよい。
叙上の如く、本発明は、酵素的サイクリング反応を組合
せることによって感度を増大することができ、その結果
、少量の検体で迅速かつ正確に被検体中の胆汁酸を測定
することができる。
せることによって感度を増大することができ、その結果
、少量の検体で迅速かつ正確に被検体中の胆汁酸を測定
することができる。
次いで本発明の実施例を挙げて具体的に述べるが、本発
明はこれによって何ら限定されるものではない。
明はこれによって何ら限定されるものではない。
実施例1
く試薬〉
40mM グIJ シン−NaUII(pH10,0
)5mMN^口P 20μM NAAl 1、4M エタノール 300/mg アルコールデヒドロゲナーゼ(オリエ
ンタル酵母社製) 100/−3a −IIS口(Pseud、 sp、由
来、東洋醸造社製) 0.2 % ト リ ト ンX−100く操作〉 上記試薬1rnlを石英キュベツトにとり、これに2M
moleのコール酸を加え、生成されたNADPHにつ
いて3400mにおけるタイムコースを測定した。な右
対照としてコール酸を添加しないものを用いた。
)5mMN^口P 20μM NAAl 1、4M エタノール 300/mg アルコールデヒドロゲナーゼ(オリエ
ンタル酵母社製) 100/−3a −IIS口(Pseud、 sp、由
来、東洋醸造社製) 0.2 % ト リ ト ンX−100く操作〉 上記試薬1rnlを石英キュベツトにとり、これに2M
moleのコール酸を加え、生成されたNADPHにつ
いて3400mにおけるタイムコースを測定した。な右
対照としてコール酸を添加しないものを用いた。
その結果は第1表に示す通りであった。
以下余白
その結果少なくとも10分間の反応における測定結果と
して、34Qnmにおける吸光度が直線的に増加した。
して、34Qnmにおける吸光度が直線的に増加した。
このときのサイクリング率(倍率)は次式により算出し
た。
た。
サイクリング率(17分)=
L 6.22 ’1t
:反応時間(分) ΔAs:コール酸を添加した反応液の時間しにふける3
4 u cImOJ吸光度変化(mAbs ) へへ、:対照の反応液の時間tにおける3LOniの吸
光度変化(mAbs )6.22: NADPHの34
0 nml+−おける分」′・吸光係数(co+ ”
7 nmolc) 1:反応液全潰(−) 2:加えたコール酸の量(nmolc )従って10分
間反応による感度はコール酸のモル量に比べて約44倍
と高感度となった。
:反応時間(分) ΔAs:コール酸を添加した反応液の時間しにふける3
4 u cImOJ吸光度変化(mAbs ) へへ、:対照の反応液の時間tにおける3LOniの吸
光度変化(mAbs )6.22: NADPHの34
0 nml+−おける分」′・吸光係数(co+ ”
7 nmolc) 1:反応液全潰(−) 2:加えたコール酸の量(nmolc )従って10分
間反応による感度はコール酸のモル量に比べて約44倍
と高感度となった。
さらに上記反応液において:lα−++SUの量を0〜
200/艷に変化させ、同様に測定して上記計算式によ
り求めた結果、3 a −11sLIの量とサイクリン
グ率(17分)との関係は第1図に示す通りであった1
、その結果3cr−83口の量20 U/m1でサイク
リング率は約7回/分となり、また用いる3α−113
口の量によりサイクリング率を適宜調製できたものであ
る。
200/艷に変化させ、同様に測定して上記計算式によ
り求めた結果、3 a −11sLIの量とサイクリン
グ率(17分)との関係は第1図に示す通りであった1
、その結果3cr−83口の量20 U/m1でサイク
リング率は約7回/分となり、また用いる3α−113
口の量によりサイクリング率を適宜調製できたものであ
る。
実施例2
く試薬〉
40mM グリシン−Na口II(pHlo、0)5
mMNADP 20μM NAAl 1.4M エタノール 300/−アルコールデヒドロゲナーゼ0.2 %
ト リ ト ンX−100101/mg 3
a −11sDく操作〉 上記試薬1−を石英キュベツトにとり、0゜0.1.0
,2.0.3.0.4.0.5 tnlJのコール酸溶
液lOμlを添加し、37℃にて反応を開始させた。反
応開始3分及び4分後の340nmにおける吸光度を読
みとり、その差を求めた。
mMNADP 20μM NAAl 1.4M エタノール 300/−アルコールデヒドロゲナーゼ0.2 %
ト リ ト ンX−100101/mg 3
a −11sDく操作〉 上記試薬1−を石英キュベツトにとり、0゜0.1.0
,2.0.3.0.4.0.5 tnlJのコール酸溶
液lOμlを添加し、37℃にて反応を開始させた。反
応開始3分及び4分後の340nmにおける吸光度を読
みとり、その差を求めた。
その結果を第2図に示す。第2図から明らかなように、
コール酸量に対する吸光度変化mは良好な直線性を示し
た。
コール酸量に対する吸光度変化mは良好な直線性を示し
た。
実施例3
く試薬〉
40mM グリシン−Na叶(pHlO,O)5mM
N八〇P へ0μMN^口11 0.2M エタノール 0.2 % ) IJ ) ンX−1004
51/d アルコールデヒドロゲナーゼ2011/m
13 a−HSD く操作〉 上記試薬1dを石英キュベツトにとり、血清0.20.
40.6G、 80.100μlを添加し、実施例2と
同様に操作した。その結果を第3図に示す。
N八〇P へ0μMN^口11 0.2M エタノール 0.2 % ) IJ ) ンX−1004
51/d アルコールデヒドロゲナーゼ2011/m
13 a−HSD く操作〉 上記試薬1dを石英キュベツトにとり、血清0.20.
40.6G、 80.100μlを添加し、実施例2と
同様に操作した。その結果を第3図に示す。
実施例4
実施例2の試薬に1mMになるようにオキザミン酸(L
口■阻害剤)を添加した。また同様に調製した試薬に、
さらにP s e u d o m o n a s・
teststavoni由来の3 a−IIsD l
OU/rnlを追加して調製した。これらの各試薬を石
英キュベツトにとり、以下実施例2と同じ操作を行った
。その結果は第4図のとおりであり、良好な直線性が得
られた。第4図中、−〇−は市販のPseudomon
as sp、B−0831由来の3α−03口を単独に
て用いた場合を示し、−専一は同32−)ISI)とP
seudomonas teststevoni由来の
3α−HSDとの混合物を用いた場合を示す。
口■阻害剤)を添加した。また同様に調製した試薬に、
さらにP s e u d o m o n a s・
teststavoni由来の3 a−IIsD l
OU/rnlを追加して調製した。これらの各試薬を石
英キュベツトにとり、以下実施例2と同じ操作を行った
。その結果は第4図のとおりであり、良好な直線性が得
られた。第4図中、−〇−は市販のPseudomon
as sp、B−0831由来の3α−03口を単独に
て用いた場合を示し、−専一は同32−)ISI)とP
seudomonas teststevoni由来の
3α−HSDとの混合物を用いた場合を示す。
実施例5
実施例2の試薬に1m旧こなるようにオキザミン酸を添
加したものを石英キュベツトにとり、プール血清に25
μ開、50μ舖及びlOOμ舖になるようにコール酸を
加えた被検体50μlを添加し、実施例2と同じ操作を
行った。結果は第2表のとふりであり、回収率は98.
3〜101%であった。
加したものを石英キュベツトにとり、プール血清に25
μ開、50μ舖及びlOOμ舖になるようにコール酸を
加えた被検体50μlを添加し、実施例2と同じ操作を
行った。結果は第2表のとふりであり、回収率は98.
3〜101%であった。
第2表
第3表
実施例6
実施例5と同じプール血清に、グルコース200mg/
d1、尿酸10mg/d1、ビリルビン20mg/a又
はアスコルビン酸5 mg / dllを添加した被検
体を用い、実施例5と同様に操作した。その結果は′g
J3表のとおりであり、上記添加物により殆んど影響を
うけなか−」た“。
d1、尿酸10mg/d1、ビリルビン20mg/a又
はアスコルビン酸5 mg / dllを添加した被検
体を用い、実施例5と同様に操作した。その結果は′g
J3表のとおりであり、上記添加物により殆んど影響を
うけなか−」た“。
実施例7
実施例2の試薬を用い、実施例2と同様にして、2種類
の血清(5(lμりにつき、同時再現性を検討した。そ
の結果を第4表に示す。
の血清(5(lμりにつき、同時再現性を検討した。そ
の結果を第4表に示す。
第4表
実施例8
市販の胆汁酸測定試薬(和光純薬工業
(株)製、総胆汁酸デストワ:J−: Nへυ、Pse
udomonas testostevoni山来3
a −IIsII 。
udomonas testostevoni山来3
a −IIsII 。
シアMT−ゼ、ニトロテトラゾリウムブルー含有:血清
中の胆汁酸200μ!を用い、こtN:hi酵素NAD
、!= 3 a−11sDを37℃テl。
中の胆汁酸200μ!を用い、こtN:hi酵素NAD
、!= 3 a−11sDを37℃テl。
分間正確に作用せしめ、生成したN^旧1をジアホラー
ゼを介してニトロデトラゾリウムブルーを還元し、赤紫
色のジホルマザンを生1&、せしめ、この赤紫色の吸光
度を波長560 nmにて測定<BS ) して血清2
00μ!中の総胆汁酸の含量を求め、測定に当り、波長
560 nmにおける、検体ブランクの吸光度Useを
求め各吸光度に基づ<Os 1lssの値に相当する
総胆汁酸量を検量線から算出する)と下記の本発明方法
による試薬(血清50μ!使用)を用い、17種類の血
清について胆汁酸を測定した。
ゼを介してニトロデトラゾリウムブルーを還元し、赤紫
色のジホルマザンを生1&、せしめ、この赤紫色の吸光
度を波長560 nmにて測定<BS ) して血清2
00μ!中の総胆汁酸の含量を求め、測定に当り、波長
560 nmにおける、検体ブランクの吸光度Useを
求め各吸光度に基づ<Os 1lssの値に相当する
総胆汁酸量を検量線から算出する)と下記の本発明方法
による試薬(血清50μ!使用)を用い、17種類の血
清について胆汁酸を測定した。
く本発明方法〉
40mMグリシン−NaOII(pHlo、o) 、5
mMN八〇Pへ20μ絹RADII、0.01%エタノ
ール、20 U / ml 3 a−IISD (Ps
eudomonas sp。
mMN八〇Pへ20μ絹RADII、0.01%エタノ
ール、20 U / ml 3 a−IISD (Ps
eudomonas sp。
B−0831由来市販品)、0.2%トリ)ンX−10
0,45U/dアルコールデヒドロゲナーゼからなる試
薬1−を石英セル内にとり、37℃、2分間予備加温し
、血清50μlを添加し、よく攪拌し、37℃にて加温
し、血清添加後2分から5分までの3分間の34tln
mにおける吸光度変化を測定した(Δ口、)。
0,45U/dアルコールデヒドロゲナーゼからなる試
薬1−を石英セル内にとり、37℃、2分間予備加温し
、血清50μlを添加し、よく攪拌し、37℃にて加温
し、血清添加後2分から5分までの3分間の34tln
mにおける吸光度変化を測定した(Δ口、)。
な右検体の代りに水を添加したものを試薬ブランクとし
て(ΔL ) % 標t(It液とし′C1OμMグリ
ココール酸(和光純薬工業■製、総胆汁酸テストワコー
の試薬に添付されていたものを5倍希釈した) 50μ
lを用いて同様の操作を行った(ΔE、t、 )。
て(ΔL ) % 標t(It液とし′C1OμMグリ
ココール酸(和光純薬工業■製、総胆汁酸テストワコー
の試薬に添付されていたものを5倍希釈した) 50μ
lを用いて同様の操作を行った(ΔE、t、 )。
本測定における検体中の胆汁酸濃度
(μM)は下記式にて求めた。
胆汁酸濃度(μM)=
その結果、第5表に示す通りであった。
さらにこの第5表に基づき、市販の胆汁酸測定試薬と本
発明方法の試薬との相関関係を求めた結果を第5図に示
すもので、市販の胆汁酸測定試薬においては検体量が2
00μlと多いに比較して本発明では50μlで測定で
き、かつ検体量が少なくても測定における吸光値をみる
と約4倍の値を示しているもので高感度化されたもので
あった。
発明方法の試薬との相関関係を求めた結果を第5図に示
すもので、市販の胆汁酸測定試薬においては検体量が2
00μlと多いに比較して本発明では50μlで測定で
き、かつ検体量が少なくても測定における吸光値をみる
と約4倍の値を示しているもので高感度化されたもので
あった。
実施例9
く試薬〉
100 mM PIPBS−Na011(p117.
5)5 mM アセチ」しHA口(アセチルピリジン
アデニンジヌクレオチド) 50mM Nへ〇P 0.2mM グルコース−6−リン酸5mM Mg
C1* (塩化マグネシウム)Q、2tl/rn!、
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ(酵母由
来、シ グマ社製) 250/ml! 3 a −H3口く操作〉 上記試薬1rnlを石英キュベツトにとリコール酸を加
え生成されたアセチルN^旧1に基づく36SOmの吸
光度変化より0.2.4.6.8. I Onmo l
のコール酸を定量することができた。
5)5 mM アセチ」しHA口(アセチルピリジン
アデニンジヌクレオチド) 50mM Nへ〇P 0.2mM グルコース−6−リン酸5mM Mg
C1* (塩化マグネシウム)Q、2tl/rn!、
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ(酵母由
来、シ グマ社製) 250/ml! 3 a −H3口く操作〉 上記試薬1rnlを石英キュベツトにとリコール酸を加
え生成されたアセチルN^旧1に基づく36SOmの吸
光度変化より0.2.4.6.8. I Onmo l
のコール酸を定量することができた。
第1図は本発明における3α−11SOI、)lとサイ
クリング率の関係を示す図面。 第2図はコール酸量に対する340nmにおけるレイト
アッセイの結果を示す図面。 第3図は血清量に対する340nmにおけるレイトアッ
セイの結果を示す図面。 第4図は血清におけるコール酸の定量結果を示す図面。 第5図は本発明の組成物と市販の胆汁酸測定試薬との相
関図を示す図面である。 以 上 第 図 第 図 血清1(7Jf) 第 図 コール酸(n moje) 第 図 コール酸(n moje) 手続補正書(自発) 平成2年5月2日 特許庁長官 吉 1)文 毅 殿 1、事件の表示 平成1年特許願第98443号 2、発明の名称 胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物3、補正をす
る者 事件との関係 出願人 名称東洋醸造株式会社 4、代理人 住 所 東京都中央区日本橋人形町1丁目3番6号(〒
103)6、 補正の対象 明細書の「特許請求の範囲」及び「発明の詳細な説明」
の欄 7、 補正の内容 (1)明細書の「特許請求の範囲」を別紙の如く訂正す
る。 (2)明細書中、第5頁第8行及び第11頁第4〜5行 「ニコチンアデニンジヌクレオチド」とあるを「ニコチ
ンアミドアデニンジヌクレオチド」と訂正する。 (3) 同第5頁第9〜10行及び第10頁第19行
〜最下行 「ニコチンアデニンジヌクレオチドホスフェート」とあ
るを 「ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェート
」と訂正する。 (4)同第6頁第6〜7行 「3−Δ4−ステロイド」とあるを 「3−オキソーΔ4−ステロイド」と訂正する。 (5)同第13頁第19行〜最下行 「0.5〜5000μM1好ましくは50〜1000μ
M」とあるを 「例えば0.05〜50mM、好ましくは0.5〜30
111MJと訂正する。 (6)同第16頁第14〜15行 「加え、約37℃の温度にて」とあるを[加え、例えば
ptts〜10にて約37℃の温度で」と訂正する。 (7)同第28頁第2行 「血清中の胆汁酸」とあるを 「血清」と訂正する。 特許請求の範囲 1、胆汁酸含有被検体に、 ■ ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェー
ト類(以下N^叶類という)及びニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチド類(以下NAG類という)を補酵素と
し、少なくとも胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成
する可逆反応をなすステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰量の^1■ B1又は/
及びB。 ■ 胆汁酸及びA1に作用せず、Bs→B、の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する試薬を作用せしめて、次の反応式(式中、A
1はNADP類又はNAo類、A、はA、の還元型生成
物、B1はA、がNADP類のときは還元型NAG類、
A、がNAG類のときは還元型NADP類、B、はB+
の酸化型生成物、日、−B、はB、を補酵素としてB、
を生成する酵素反応を示す) で表わされるサイクリング反応を形成せしめ、該反応に
よって生成されるA、の量を測定することを特徴とする
胆汁酸の高感度測定法。 2、 N^叶類が、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドホスフェート(NADP)、アセチルピリジンア
デニンジヌクレオチドホスフェート(アセチルNADP
)およびニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド
ホスフェート(デアミノNA口P)からなる群より選ば
れるものである請求項1記載の測定法。 3、 NAG類が、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチド(NAG)、アセチルピリジンアデニンジヌクレ
オチド(アセチルNAD) #よびニコチンアミドヒポ
キサンチンジヌクレオチド(デアミハAD)からなる群
より選ばれるものである請求項1記載の測定法。 4、 ステロイドデヒドロゲナーゼが3α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼである請求項18己載の測
定法。 5、 ステロイドデヒドロゲナーゼが7α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼである請求項1冨己載の測
定法。 6、 ステロイドデヒドロゲナーゼが12α−ヒドロキ
システロイドデヒドロゲナーゼである請求項1記載の測
定法。 7、 8+又は/及びB、の量が、A、の量の1/ 1
00モル以下である請求項1記載の測定法。 8、A、の量が、胆汁酸の20〜10000倍モルであ
る請求項1記載の測定法。 9、 次の成分■〜■ ■ NA叶類及びNAD類を補酵素とし、少なくとも胆
汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応をな
すステロイドデヒドロゲナーゼ、■ 胆汁酸の量に比較
して過剰量のAt■ 81又は/及び8゜ ■ 胆汁酸及びA1に作用せず、B、−B1の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有することを特徴とする胆汁酸測定用組成物。
クリング率の関係を示す図面。 第2図はコール酸量に対する340nmにおけるレイト
アッセイの結果を示す図面。 第3図は血清量に対する340nmにおけるレイトアッ
セイの結果を示す図面。 第4図は血清におけるコール酸の定量結果を示す図面。 第5図は本発明の組成物と市販の胆汁酸測定試薬との相
関図を示す図面である。 以 上 第 図 第 図 血清1(7Jf) 第 図 コール酸(n moje) 第 図 コール酸(n moje) 手続補正書(自発) 平成2年5月2日 特許庁長官 吉 1)文 毅 殿 1、事件の表示 平成1年特許願第98443号 2、発明の名称 胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物3、補正をす
る者 事件との関係 出願人 名称東洋醸造株式会社 4、代理人 住 所 東京都中央区日本橋人形町1丁目3番6号(〒
103)6、 補正の対象 明細書の「特許請求の範囲」及び「発明の詳細な説明」
の欄 7、 補正の内容 (1)明細書の「特許請求の範囲」を別紙の如く訂正す
る。 (2)明細書中、第5頁第8行及び第11頁第4〜5行 「ニコチンアデニンジヌクレオチド」とあるを「ニコチ
ンアミドアデニンジヌクレオチド」と訂正する。 (3) 同第5頁第9〜10行及び第10頁第19行
〜最下行 「ニコチンアデニンジヌクレオチドホスフェート」とあ
るを 「ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェート
」と訂正する。 (4)同第6頁第6〜7行 「3−Δ4−ステロイド」とあるを 「3−オキソーΔ4−ステロイド」と訂正する。 (5)同第13頁第19行〜最下行 「0.5〜5000μM1好ましくは50〜1000μ
M」とあるを 「例えば0.05〜50mM、好ましくは0.5〜30
111MJと訂正する。 (6)同第16頁第14〜15行 「加え、約37℃の温度にて」とあるを[加え、例えば
ptts〜10にて約37℃の温度で」と訂正する。 (7)同第28頁第2行 「血清中の胆汁酸」とあるを 「血清」と訂正する。 特許請求の範囲 1、胆汁酸含有被検体に、 ■ ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェー
ト類(以下N^叶類という)及びニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチド類(以下NAG類という)を補酵素と
し、少なくとも胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成
する可逆反応をなすステロイドデヒドロゲナーゼ、 ■ 胆汁酸の量に比較して過剰量の^1■ B1又は/
及びB。 ■ 胆汁酸及びA1に作用せず、Bs→B、の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有する試薬を作用せしめて、次の反応式(式中、A
1はNADP類又はNAo類、A、はA、の還元型生成
物、B1はA、がNADP類のときは還元型NAG類、
A、がNAG類のときは還元型NADP類、B、はB+
の酸化型生成物、日、−B、はB、を補酵素としてB、
を生成する酵素反応を示す) で表わされるサイクリング反応を形成せしめ、該反応に
よって生成されるA、の量を測定することを特徴とする
胆汁酸の高感度測定法。 2、 N^叶類が、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドホスフェート(NADP)、アセチルピリジンア
デニンジヌクレオチドホスフェート(アセチルNADP
)およびニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド
ホスフェート(デアミノNA口P)からなる群より選ば
れるものである請求項1記載の測定法。 3、 NAG類が、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチド(NAG)、アセチルピリジンアデニンジヌクレ
オチド(アセチルNAD) #よびニコチンアミドヒポ
キサンチンジヌクレオチド(デアミハAD)からなる群
より選ばれるものである請求項1記載の測定法。 4、 ステロイドデヒドロゲナーゼが3α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼである請求項18己載の測
定法。 5、 ステロイドデヒドロゲナーゼが7α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼである請求項1冨己載の測
定法。 6、 ステロイドデヒドロゲナーゼが12α−ヒドロキ
システロイドデヒドロゲナーゼである請求項1記載の測
定法。 7、 8+又は/及びB、の量が、A、の量の1/ 1
00モル以下である請求項1記載の測定法。 8、A、の量が、胆汁酸の20〜10000倍モルであ
る請求項1記載の測定法。 9、 次の成分■〜■ ■ NA叶類及びNAD類を補酵素とし、少なくとも胆
汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応をな
すステロイドデヒドロゲナーゼ、■ 胆汁酸の量に比較
して過剰量のAt■ 81又は/及び8゜ ■ 胆汁酸及びA1に作用せず、B、−B1の反応を形
成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒドロゲナ
ーゼの基質、 を含有することを特徴とする胆汁酸測定用組成物。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、胆汁酸含有被検体に、 (1)ニコチンアデニンジヌクレオチドホスフェート類
(以下NADP類という)及びニコチンアデニンジヌク
レオチド類(以下NAD類という)を補酵素とし、少な
くとも胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆
反応をなすステロイドデヒドロゲナーゼ、 (2)胆汁酸の量に比較して過剰量のA_1(3)B_
1又は/及びB_2 (4)胆汁酸及びA_1に作用せず、B_2→B_1の
反応を形成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒ
ドロゲナーゼの基質、 を含有する試薬を作用せしめて、次の反応式▲数式、化
学式、表等があります▼ (式中、A_1はNADP類又はNAD類、A_2はA
_1の還元型生成物、B_1はA_1がNADP類のと
きは還元型NAD類、A_1がNAD類のときは還元型
NADP類、B_2はB_1の酸化型生成物、B_2→
B_1はB_2を補酵素としてB_1を生成する酵素反
応を示す) で表わされるサイクリング反応を形成せしめ、該反応に
よって生成されるA_2の量を測定することを特徴とす
る胆汁酸の高感度測定法。 2、NADP類が、ニコチンアデニンジヌクレオチドホ
スフェート(NADP)、アセチルピリジンアデニンジ
ヌクレオチドホスフェート(アセチルNADP)および
ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドホスフェ
ート(デアミノNADP)からなる群より選ばれるもの
である請求項1記載の測定法。 3、NAD類が、ニコチンアデニンジヌクレオチド(N
AD)アセチルピリジンアデニンジヌクレオチド(アセ
チルNAD)およびニコチンアミドヒポキサンチンジヌ
クレオチド(デアミノNAD)からなる群より選ばれる
ものである請求項1記載の測定法。 4、ステロイドデヒドロゲナーゼが3α−ヒドロキシス
テロイドデヒドロゲナーゼである請求項1記載の測定法
。 5、ステロイドデヒドロゲナーゼが7α−ヒドロキシス
テロイドデヒドロゲナーゼである請求項1記載の測定法
。 6、ステロイドデヒドロゲナーゼが12α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼである請求項1記載の測定
法。 7、B_1又は/及びB_2の量が、A_1の量の1/
100モル以下である請求項1記載の測定法。 8、A_1の量が、胆汁酸の20〜10000倍モルで
ある請求項1記載の測定法。 9、次の成分(1)〜(4) (1)NADP類及びNAD類を補酵素とし、少なくと
も胆汁酸を基質としてオキソ胆汁酸を生成する可逆反応
をなすステロイドデヒドロゲナーゼ、 (2)胆汁酸の量に比較して過剰量のA_1(3)B_
1又は/及びB_2、 (4)胆汁酸及びA_1に作用せず、B_2→B_1の
反応を形成する第2のデヒドロゲナーゼ及び第2のデヒ
ドロゲナーゼの基質、 を含有することを特徴とする胆汁酸測定用組成物。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1098443A JP2811319B2 (ja) | 1989-04-18 | 1989-04-18 | 胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物 |
| US07/510,716 US5286627A (en) | 1989-04-18 | 1990-04-18 | Method of high-sensitive analysis of bile acid and reagent composition for the analysis |
| EP19900107346 EP0393624A3 (en) | 1989-04-18 | 1990-04-18 | Method of high-sensitive analysis of bile acid and reagent composition for the analysis |
Applications Claiming Priority (1)
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|---|---|---|---|
| JP1098443A JP2811319B2 (ja) | 1989-04-18 | 1989-04-18 | 胆汁酸の高感度測定法および測定用組成物 |
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| JP2811319B2 JP2811319B2 (ja) | 1998-10-15 |
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Family Applications (1)
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|---|---|---|---|
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Country Status (3)
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| US (1) | US5286627A (ja) |
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- 1990-04-18 US US07/510,716 patent/US5286627A/en not_active Expired - Fee Related
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