JPH0276593A - 放線菌によるテレオシジンの製造法 - Google Patents
放線菌によるテレオシジンの製造法Info
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- JPH0276593A JPH0276593A JP22750588A JP22750588A JPH0276593A JP H0276593 A JPH0276593 A JP H0276593A JP 22750588 A JP22750588 A JP 22750588A JP 22750588 A JP22750588 A JP 22750588A JP H0276593 A JPH0276593 A JP H0276593A
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- JP
- Japan
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- teleosidin
- methanol
- culture
- strain
- water
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
［発明の目的］
本発明は、放線菌ストレプトへルティシリウム◆ユーロ
シジカム（５ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔ ｉｃ ｉ ｌ ｌ
ｉｕｍ ｅｕｒｏｃ−ｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９
１）を培養して、培養物からテレオシジンを採取するこ
とに関するものである。
シジカム（５ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔ ｉｃ ｉ ｌ ｌ
ｉｕｍ ｅｕｒｏｃ−ｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９
１）を培養して、培養物からテレオシジンを採取するこ
とに関するものである。
テレオシジンは強力な発癌プロモーターとして知られて
いる物質であるが、本物質には発癌プロモーション活性
、及びプロティンキナーゼＣ活性化作用の他、ヒト骨髄
性白血病細胞株ＫＧ−１及びヒト前骨髄性白血病細胞株
ＨＬ−６０など、種々の白血病細胞株のマクロファージ
への分化誘導作用を持つこと等が知られている。
いる物質であるが、本物質には発癌プロモーション活性
、及びプロティンキナーゼＣ活性化作用の他、ヒト骨髄
性白血病細胞株ＫＧ−１及びヒト前骨髄性白血病細胞株
ＨＬ−６０など、種々の白血病細胞株のマクロファージ
への分化誘導作用を持つこと等が知られている。
従って、本物質の分化誘導作用を利用して、大量に増殖
可能な白血病細胞からマクロファージを大量に得ること
ができ、それによりインターロイキン１ （ＩＬ−１＞
、インターフェロン、Ｃ３Ｆ（コロニー刺激因子）など
、その医薬面への応用が期待されるマクロファージの分
泌産物であるモノ力イン類を大量に生産することが可能
である。
可能な白血病細胞からマクロファージを大量に得ること
ができ、それによりインターロイキン１ （ＩＬ−１＞
、インターフェロン、Ｃ３Ｆ（コロニー刺激因子）など
、その医薬面への応用が期待されるマクロファージの分
泌産物であるモノ力イン類を大量に生産することが可能
である。
従来、発酵法によるテレオシジンの製造法としてはスト
レプトベルティシリウム・プラストマイセティカム（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｂｌａｓｔ
ｍｙｃｅｔ−ｉｃｕｍ） 、ストレプトマイセス・メデ
イオシジカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｍｅｄｉｏ
ｃｉｄｉｃｕｓ ） 、ストレプトベルティシリウム・
オリボレテイキュリ（Ｓｔｒｅｐｔｏ−ｖｅｒＮｃｉｌ
ｌｉｕｍ ｏｌｉｖｏｒｅｔｉｃｕｌｉ） 、ストレプ
トベルティシリウム・クリツシー（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅ
ｒｔｉｃｉｌｌｉ−ｕｍ Ｋｒ１ｓｓｉｉ）を培養して
、テレオシジンを製造する方法が知られている。
レプトベルティシリウム・プラストマイセティカム（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｂｌａｓｔ
ｍｙｃｅｔ−ｉｃｕｍ） 、ストレプトマイセス・メデ
イオシジカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｍｅｄｉｏ
ｃｉｄｉｃｕｓ ） 、ストレプトベルティシリウム・
オリボレテイキュリ（Ｓｔｒｅｐｔｏ−ｖｅｒＮｃｉｌ
ｌｉｕｍ ｏｌｉｖｏｒｅｔｉｃｕｌｉ） 、ストレプ
トベルティシリウム・クリツシー（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅ
ｒｔｉｃｉｌｌｉ−ｕｍ Ｋｒ１ｓｓｉｉ）を培養して
、テレオシジンを製造する方法が知られている。
本発明者らは、微生物培養ろ液及び菌体中にＣＦＵ−Ｃ
コロニーの形成を指標としてＣＦＵ−Ｃコロニー形成物
質を探索した結果、放線菌ストレプトベルティシリウム
・ユーロシジカム（ｓｔｒｅｐ−ｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌ
ｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９１
）の培養ろ液及び菌体中にＣＦＵ−Ｃコロニー形成物質
を認め、この物質の単離・精製及び構造決定を行った結
果、菌体中から得られたＣＦＵ−Ｃコロニー形成物質は
、テレオシジンＡ−１及びテレオシジンＢ−４であるこ
とを認め、本発明を完成した。
コロニーの形成を指標としてＣＦＵ−Ｃコロニー形成物
質を探索した結果、放線菌ストレプトベルティシリウム
・ユーロシジカム（ｓｔｒｅｐ−ｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌ
ｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９１
）の培養ろ液及び菌体中にＣＦＵ−Ｃコロニー形成物質
を認め、この物質の単離・精製及び構造決定を行った結
果、菌体中から得られたＣＦＵ−Ｃコロニー形成物質は
、テレオシジンＡ−１及びテレオシジンＢ−４であるこ
とを認め、本発明を完成した。
即ち、本発明は、放線菌ストレゾ１〜ベルテイシリウム
・ユーロシジカム（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉ ！
ｌ ｉｕｍｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９
１）を培養して、培養物からテレオシジンを採取するこ
とに関するものである。本菌株はテレオシジンＡ−１及
びテレオシジンＢ−４を同時に大量に生産することがで
き、本菌株がテレオシジンを生産することを見出したの
は、本発明が初めてでめる。
・ユーロシジカム（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉ ！
ｌ ｉｕｍｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９
１）を培養して、培養物からテレオシジンを採取するこ
とに関するものである。本菌株はテレオシジンＡ−１及
びテレオシジンＢ−４を同時に大量に生産することがで
き、本菌株がテレオシジンを生産することを見出したの
は、本発明が初めてでめる。
なお、本物質の理化学的性質は次に示すとおりである。
［１］化合物Ａ
１〉分子量 ： （高分解能マススペクトル）実験値ｍ
／ｚ： ４３７．３０７３ 理論値 ： ４３７．３０４２ （Ｍ 、Ｃ２７Ｈ３９Ｎ３０２） ２）分子量 ： ４３７（ＦＡＢ−）ｉｓ ｍ／ｚ
： ４３８０１＋旧 〉３）分子式 ” ２７Ｈ３９Ｎ
３ Ｃ２４）融点 ： ７５−８２°Ｃ ５）溶解性 ： ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 ６）定色反応： エーリツヒ反応が陽性７）紫外吸収ス
ペクトル： ｅＯｔｌ λＭａｘ ｎｍ（ε） ３０１（８９００） 、
２３１（２６２００）８）赤外吸収スペクトル： １、ＩＭａＸ ”” Ｃｍ−１ ３４４０、２９３０，２８７０，１６５０，１５９０゜
１５５０、１５１０．１４５０．１４１５．１３Ｂ０゜
１３４２、１３００．１２４０．１２００．１０６５゜
１０４０、９２０．８００ ９）旋光度 ：［α］ 、 ＝ −１１４，０’ （０
，５，Ｅｔｏｌ（）［２］化合物Ｂ １）分子量 ： （高分解能マススペクトル）実験値ｍ
／ｚ： ４５１．３１８１ 理論値 ： ４５１，３１９９ （Ｍ＋、Ｃ２８日４１Ｎ３０２） ２）分子量： ４５１（ＦＡＢ−）ｆｓｍ／ｚ：４５
２（ｔ４＋Ｈ） ＞３）分子式 ’ ０２８Ｈ４１
Ｎ３ Ｃ２４）融点 ： ’１２５−１３６°Ｃ５）
溶解性 ： ジメチルスルホキシド、クロロホルム、メ
タノールに易溶 ６）定色反応： エーリツヒ反応が陽性７）紫外吸収ス
ペクトル： λＭａＸ ””’ ｎｍ（ε＞ ２８７（８２１）０）
、２３３（２７２００）８）赤外吸収スペクトル： ｕ）ｌａＸ ＫＢ「Ｃｍ” ３４４０、２９４０．２８７０．１６５０．１６００゜
１５５０、１５１０．１４５０．１４１０．１３７０゜
１０５５、９２０ ９）旋光度 ：［α］。−−１６０，８・ （０，５，
ＥｔＯＨ）以上の性質により、化合物Ａはテレオシジン
八−１に、また化合物ＢはテレオシジンＢ−４にそれぞ
れ一致することが確認された。
／ｚ： ４３７．３０７３ 理論値 ： ４３７．３０４２ （Ｍ 、Ｃ２７Ｈ３９Ｎ３０２） ２）分子量 ： ４３７（ＦＡＢ−）ｉｓ ｍ／ｚ
： ４３８０１＋旧 〉３）分子式 ” ２７Ｈ３９Ｎ
３ Ｃ２４）融点 ： ７５−８２°Ｃ ５）溶解性 ： ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 ６）定色反応： エーリツヒ反応が陽性７）紫外吸収ス
ペクトル： ｅＯｔｌ λＭａｘ ｎｍ（ε） ３０１（８９００） 、
２３１（２６２００）８）赤外吸収スペクトル： １、ＩＭａＸ ”” Ｃｍ−１ ３４４０、２９３０，２８７０，１６５０，１５９０゜
１５５０、１５１０．１４５０．１４１５．１３Ｂ０゜
１３４２、１３００．１２４０．１２００．１０６５゜
１０４０、９２０．８００ ９）旋光度 ：［α］ 、 ＝ −１１４，０’ （０
，５，Ｅｔｏｌ（）［２］化合物Ｂ １）分子量 ： （高分解能マススペクトル）実験値ｍ
／ｚ： ４５１．３１８１ 理論値 ： ４５１，３１９９ （Ｍ＋、Ｃ２８日４１Ｎ３０２） ２）分子量： ４５１（ＦＡＢ−）ｆｓｍ／ｚ：４５
２（ｔ４＋Ｈ） ＞３）分子式 ’ ０２８Ｈ４１
Ｎ３ Ｃ２４）融点 ： ’１２５−１３６°Ｃ５）
溶解性 ： ジメチルスルホキシド、クロロホルム、メ
タノールに易溶 ６）定色反応： エーリツヒ反応が陽性７）紫外吸収ス
ペクトル： λＭａＸ ””’ ｎｍ（ε＞ ２８７（８２１）０）
、２３３（２７２００）８）赤外吸収スペクトル： ｕ）ｌａＸ ＫＢ「Ｃｍ” ３４４０、２９４０．２８７０．１６５０．１６００゜
１５５０、１５１０．１４５０．１４１０．１３７０゜
１０５５、９２０ ９）旋光度 ：［α］。−−１６０，８・ （０，５，
ＥｔＯＨ）以上の性質により、化合物Ａはテレオシジン
八−１に、また化合物ＢはテレオシジンＢ−４にそれぞ
れ一致することが確認された。
（参考文献、
［１］ ５ｃｉｅｎｃｅ、２０４．１９３ （１９７９
）［１１］ Ｃｈｅｍ、Ｐｈａｒｍ、Ｂｕ１１．、３２
．４２３３ （１９８４）［発明の構成コ 本発明におけるテレオシジンは、ストレプトベルティシ
リウム・ユーロシジカム株（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅ−ｒｔ
ｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１
３４９１）を通常の放線菌培養培地で培養して菌体中に
産生させ、通常の分離精製方法により採取することがで
きる。
）［１１］ Ｃｈｅｍ、Ｐｈａｒｍ、Ｂｕ１１．、３２
．４２３３ （１９８４）［発明の構成コ 本発明におけるテレオシジンは、ストレプトベルティシ
リウム・ユーロシジカム株（Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅ−ｒｔ
ｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１
３４９１）を通常の放線菌培養培地で培養して菌体中に
産生させ、通常の分離精製方法により採取することがで
きる。
即ち、本発明における前記の該菌株の培養は、例えば、
炭素源としてはグルコース、シュークロース、マルトー
ス、デキストリン、グリセリン、でんぷん等を、窒素源
としてはペプトン、肉エキス、酵母エキス、麦芽エキス
、力Ｕイン等を用い、更に無機塩としてはＮａＣｇｌに
２ ＨＰＯ４、ＭＣ］ＳＯ４、ＣｕＳＯ４等を用いた中
性液体培地で通気、攪拌することによって行うことがで
きる。
炭素源としてはグルコース、シュークロース、マルトー
ス、デキストリン、グリセリン、でんぷん等を、窒素源
としてはペプトン、肉エキス、酵母エキス、麦芽エキス
、力Ｕイン等を用い、更に無機塩としてはＮａＣｇｌに
２ ＨＰＯ４、ＭＣ］ＳＯ４、ＣｕＳＯ４等を用いた中
性液体培地で通気、攪拌することによって行うことがで
きる。
このとき、培地のｐＨは、５〜８、好ましくは６〜７付
近がよい。また、培養温度は、通常２０〜３５℃、好ま
しくは３０’Ｃがよい。
近がよい。また、培養温度は、通常２０〜３５℃、好ま
しくは３０’Ｃがよい。
このようにして該菌株を培養することによって、該菌体
を高収量で得ることができる。
を高収量で得ることができる。
また、本発明における該菌体からのテレオシジンの採取
は、アンバーライトＸＡＤ−２を用いた吸・脱着、メタ
ノール抽出、アセトン抽出、酢酸エチル抽出等の操作、
Ｃ−８逆相カラムクロマトグラフイー（炭素鎖８の直鎖
をシリカゲルに結合させた疎水性樹脂）、Ｃ−１８逆相
カラムクロマトグラフイー（炭素鎖１８の直鎮をシリカ
ゲルに結合させた疎水性樹脂）、シリカゲルカラムクロ
マトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬ
Ｃ）等を用いた操作によって行うことができる。
は、アンバーライトＸＡＤ−２を用いた吸・脱着、メタ
ノール抽出、アセトン抽出、酢酸エチル抽出等の操作、
Ｃ−８逆相カラムクロマトグラフイー（炭素鎖８の直鎖
をシリカゲルに結合させた疎水性樹脂）、Ｃ−１８逆相
カラムクロマトグラフイー（炭素鎖１８の直鎮をシリカ
ゲルに結合させた疎水性樹脂）、シリカゲルカラムクロ
マトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬ
Ｃ）等を用いた操作によって行うことができる。
即ち、本発明における該菌株の培養液からのテレオシジ
ンの採取は、例えば、培養菌体に１００％のメタノール
を加えて４°Ｃ１１６時間静置した後、菌体除去液を得
、この溶液に水を加えて５０％メタノール／水にした後
、５０％メタノール／水で平衡化したＣ−１８逆相カラ
ムクロマトを行い７５％メタノール／水、８０％メタノ
ール／水で順次溶出することにより、単一標品である化
合物Ａ及び化合物Ｂのテレオシジンを得ることができる
。
ンの採取は、例えば、培養菌体に１００％のメタノール
を加えて４°Ｃ１１６時間静置した後、菌体除去液を得
、この溶液に水を加えて５０％メタノール／水にした後
、５０％メタノール／水で平衡化したＣ−１８逆相カラ
ムクロマトを行い７５％メタノール／水、８０％メタノ
ール／水で順次溶出することにより、単一標品である化
合物Ａ及び化合物Ｂのテレオシジンを得ることができる
。
以下に、本発明を参考例及び実施例によって具体的に示
す。なお、これらの実施例は、本発明を例示するための
ものであって、本発明の範囲を限定するものではない。
す。なお、これらの実施例は、本発明を例示するための
ものであって、本発明の範囲を限定するものではない。
実施例１
グルコース１．５％、ペプトン０．５％、肉エキス０．
５％、酵母エキス０．５％、ＮａＣ，ｌｌＯ，５％を含
むｐＨ７，４の液体培地１００ｍを５００ｄの坂ロフラ
スコに分注し、１２０℃、２０分間減菌した。この培地
に放線菌ストレプトベルティシリウム・ユーロシジカム
株（Ｓｔｒｅｐｔｏ−ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕ
ｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９１）の斜面培地か
ら一白金耳量を接種し、３０’Ｃ１３日間往復振どう培
養を行った。この培養液と同組成の培地２０１！を３０
β容ジャーファーメンタ−に仕込み、３０℃、１５０回
転／分、通気量毎分１０．Ｑで４８時間培養を行った。
５％、酵母エキス０．５％、ＮａＣ，ｌｌＯ，５％を含
むｐＨ７，４の液体培地１００ｍを５００ｄの坂ロフラ
スコに分注し、１２０℃、２０分間減菌した。この培地
に放線菌ストレプトベルティシリウム・ユーロシジカム
株（Ｓｔｒｅｐｔｏ−ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕ
ｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９１）の斜面培地か
ら一白金耳量を接種し、３０’Ｃ１３日間往復振どう培
養を行った。この培養液と同組成の培地２０１！を３０
β容ジャーファーメンタ−に仕込み、３０℃、１５０回
転／分、通気量毎分１０．Ｑで４８時間培養を行った。
培養終了後、７０００回転／回転速続遠心分離を行うこ
とによって菌体を採取し、１４６０ｇの菌体を得た。
とによって菌体を採取し、１４６０ｇの菌体を得た。
この培養菌体（１１６０ｇ＞に’１００％メタノール（
４β）を加えて４°Ｃ１１６時間静置した後、菌体をろ
紙で除去し、得られた濾液に水を加えて５０％メタノー
ル／水にした後、５０％メタノール／水で平衡化したＣ
−１８逆相カラムクロマト（内径６．０ｃｍ、長さ３５
ｃｍ＞を行った。溶出液として５０％メタノール／水、
７５％メタノール／水、８０％メタノール／水を用いて
順次溶出することによっＴａ１ｂ、Ｃ，ｄ、ｅ、ｆの６
種類の活性画分を得ることができた。活性画分ａを濃縮
した後、Ｃ−８逆相カラムクロマト（２，５×３１ｃｍ
）にかけ、６５％アセトニトリル／水で溶出を行って得
られたものを減圧乾固することによって、白色粉末の化
合物Ａを１５７ＩＩｇ得た。同様に、活性画分Ｃを濃縮
した後、Ｃ−８逆相カラムクロマト（２，５Ｘ３１ｃｍ
＞にかけ、６５％アセトニトリル／水で溶出を行って得
られた活性画分を減圧乾固することによって、白色粉末
の化合物Ｂを９ｍｇ得た。
４β）を加えて４°Ｃ１１６時間静置した後、菌体をろ
紙で除去し、得られた濾液に水を加えて５０％メタノー
ル／水にした後、５０％メタノール／水で平衡化したＣ
−１８逆相カラムクロマト（内径６．０ｃｍ、長さ３５
ｃｍ＞を行った。溶出液として５０％メタノール／水、
７５％メタノール／水、８０％メタノール／水を用いて
順次溶出することによっＴａ１ｂ、Ｃ，ｄ、ｅ、ｆの６
種類の活性画分を得ることができた。活性画分ａを濃縮
した後、Ｃ−８逆相カラムクロマト（２，５×３１ｃｍ
）にかけ、６５％アセトニトリル／水で溶出を行って得
られたものを減圧乾固することによって、白色粉末の化
合物Ａを１５７ＩＩｇ得た。同様に、活性画分Ｃを濃縮
した後、Ｃ−８逆相カラムクロマト（２，５Ｘ３１ｃｍ
＞にかけ、６５％アセトニトリル／水で溶出を行って得
られた活性画分を減圧乾固することによって、白色粉末
の化合物Ｂを９ｍｇ得た。
実施例２
グルコース１．５％、ペプトン０．５％、肉エキス０．
５％、酵母エキス０．５％、Ｎａ（、ＱＯ，５％を含む
ｐＨ７，４の液体培ｊａ１００ｄを５００ｄの坂ロフラ
スコに分注し、１２０’Ｃ。
５％、酵母エキス０．５％、Ｎａ（、ＱＯ，５％を含む
ｐＨ７，４の液体培ｊａ１００ｄを５００ｄの坂ロフラ
スコに分注し、１２０’Ｃ。
２０分間滅菌した。この培地に放線菌ストレプトベルテ
ィシリウム・ユーロシジカム株（Ｓｔｒｅｐｔｏｖ−ｅ
ｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦ
Ｏ１３４９１）の斜面培地から一白金耳量を接種し、３
０℃、３日間往復振どう培養を行った。次に、この前培
養液５ｄを同組成の培地１．１１を含む三角フラスコに
移し、３０’Ｃで培養を行い、テレオシジン生産の経時
変化を測定した。テレオシジンの生産量は、培養菌体の
メタノール抽出液をＣ−１８逆相１−Ｉ Ｐ Ｌ Ｃ（
高速液体クロマトグラフィー）にかけ、７０％アセトニ
トリル／水で溶出を行い分析した。各培養日数に於ける
培養液１！１当たりのテレオシジン生産量を、表１に示
す。
ィシリウム・ユーロシジカム株（Ｓｔｒｅｐｔｏｖ−ｅ
ｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ ｅｕｒｏｃｉｄｉｃｕｍ、ＩＦ
Ｏ１３４９１）の斜面培地から一白金耳量を接種し、３
０℃、３日間往復振どう培養を行った。次に、この前培
養液５ｄを同組成の培地１．１１を含む三角フラスコに
移し、３０’Ｃで培養を行い、テレオシジン生産の経時
変化を測定した。テレオシジンの生産量は、培養菌体の
メタノール抽出液をＣ−１８逆相１−Ｉ Ｐ Ｌ Ｃ（
高速液体クロマトグラフィー）にかけ、７０％アセトニ
トリル／水で溶出を行い分析した。各培養日数に於ける
培養液１！１当たりのテレオシジン生産量を、表１に示
す。
２日 ０ 、’２０
３日 ３ １６
４日 １４ ２６
参考例１〜３
ＩＣ’Ｒマウス（６週令）骨髄より骨髄細胞（１Ｘ １
０５ｃｅｌｌｓ／ｄｉｓｈ ） ヲ採取シ、生胎児血’
ａ、ウシ血清アルブミン、２−メルカプトエタノール、
及び被験化合物として、テレオシジンＡ−１、テレオシ
ジンＢ−４またはＣ３Ｆ−ＣＨＵＧＡＩ ’（中外製薬
製）を添加し、０．８％メチルセルロース中、５％Ｃｏ
２雰囲気下、３７℃で７日間培養し、コロニー数を算定
した結果を表２に示す。
０５ｃｅｌｌｓ／ｄｉｓｈ ） ヲ採取シ、生胎児血’
ａ、ウシ血清アルブミン、２−メルカプトエタノール、
及び被験化合物として、テレオシジンＡ−１、テレオシ
ジンＢ−４またはＣ３Ｆ−ＣＨＵＧＡＩ ’（中外製薬
製）を添加し、０．８％メチルセルロース中、５％Ｃｏ
２雰囲気下、３７℃で７日間培養し、コロニー数を算定
した結果を表２に示す。
２ テレオシジンＢ−４１Ｘ１０ ４０［発明の効
果コ 本発明のストレプトベルティシリウム・ユーロシジカム
株（５ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔ ｉｃ ｉ Ｉ ｌ ｉｕ
ｍ ｅｕｒｏｃ ｉｄ ｉｃｕｍ。
果コ 本発明のストレプトベルティシリウム・ユーロシジカム
株（５ｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔ ｉｃ ｉ Ｉ ｌ ｉｕ
ｍ ｅｕｒｏｃ ｉｄ ｉｃｕｍ。
ＩＦＯ１３４９１）だけを培養し、分離精製することに
よって、テレオシジンであるテレオシジンＡ−１及びテ
レオシジンＢ−４を単一標品として多量に、かつ容易に
得ることができる。
よって、テレオシジンであるテレオシジンＡ−１及びテ
レオシジンＢ−４を単一標品として多量に、かつ容易に
得ることができる。
Claims (1)
- ストレプトベルティシリウム・ユーロシジカム株（Ｓｔ
ｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍｅｕｒｏｃｉｄｉ
ｃｕｍ、ＩＦＯ１３４９１）の培養菌体からテレオシジ
ンを採取することを特徴とする、該菌株によるテレオシ
ジンの製造法
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22750588A JPH078237B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 放線菌によるテレオシジンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22750588A JPH078237B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 放線菌によるテレオシジンの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0276593A true JPH0276593A (ja) | 1990-03-15 |
| JPH078237B2 JPH078237B2 (ja) | 1995-02-01 |
Family
ID=16861949
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22750588A Expired - Lifetime JPH078237B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 放線菌によるテレオシジンの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH078237B2 (ja) |
-
1988
- 1988-09-13 JP JP22750588A patent/JPH078237B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH078237B2 (ja) | 1995-02-01 |
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