JPH0571232B2 - - Google Patents
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、新規な抗腫瘍性成分SPF10−12及び
その製法に関するものである。 従来、溶血性連鎖状球菌(以下溶連菌という)
の生菌体を弱毒化して製剤化したものは、すでに
制癌剤として使用されている。 また、溶連菌の菌体を破砕後水または塩類溶液
で有効成分を抽出し、有機溶媒を加えて、抗腫瘍
性成分を沈澱として、回収する方法(特公昭38−
1647)、溶連菌を溶菌酵素リゾチーム、セルラー
ゼまたは蛋白質分解酵素により、溶菌し、活性画
分を水溶性区分として分画する方法(英国特許
1163865号)、溶連菌の菌体を破砕後水不溶性物質
を採取し、核酸分解酵素および蛋白分解酵素で処
理する方法(特開昭55−7014)などが知られてい
る。 このように、ストレプトコツカス属細菌そのも
のもしくはその菌体成分に抗腫瘍活性があること
は広く知られているのであるが、従来知られたも
のは、菌体もしくは水溶性もしくは水不溶性高分
子細胞構成物質であるに過ぎなかつた。菌体もし
くは菌体内から有効成分を単離しようとすれば、
菌体を溶菌したり、機械的に破砕したりして全体
を分画しなければならなかつた。 このような処理では、精製は複雑となり、有効
成分の単離はきわめて困難であつた。実際に分離
し、有効成分として測定された例では分子量
200000の蛋白質(特公昭48−43841、特開昭51−
44617)及び分子量150000の糖蛋白質(特開昭58
−22026)が知られている程度である。 本発明者らは、先に溶連菌の培養液中に抗腫瘍
性成分を溶出させる方法を鋭意研究したところ、
培養中にペニシリン又はその関連物質を添加する
ことによつて抗腫瘍性成分が培養液中に溶出する
ことを見出し(特開昭60−30677号)、培養液中か
ら生理活性物質SPF−1を分離するに至つたので
ある。(特開昭60−30689号) 本発明者らは、更に、溶連菌の培養濾液中から
より有効な成分を分離する目的で研究したとこ
ろ、本発明において、癌化白血球培養細胞L1210
(以下培養細胞L1210という)の生育を阻害し、
かつ、アンスロン硫酸法による呈色反応陽性の画
分であることにより特徴づけられる抗腫瘍性成分
SPF10−12を分離するに至つた。 本発明の抗腫瘍性成分SPF10−12は元素分析、
呈色反応および赤外線吸収スペクトル等から糖を
含むペプチド様物質と考えられるが、紫外線吸収
スペクトルおよび赤外線吸収スペクトルから、既
知の抗腫瘍性物質とは、相違する新規な物質と認
められるものである。 本発明は、ストレプトコツカス属に属する抗腫
瘍性成分SPF10−12生産菌を培養し、培養物から
抗腫瘍性成分SPF10−12を採取することを特徴と
する抗腫瘍性成分SPF10−12の製造法を包含する
ものである。 本発明においては、ストレプトコツカス属に属
する抗腫瘍性成分SPF10−12生産菌が広く使用で
きる。次に抗腫瘍性成分SPF10−12生産菌を記載
する。 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21060 ストレプトコツカス・エスピー
(Streptococcus sp.) ATCC21597 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogens) ATCC21546 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21547 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21548 培養液は、肉エキス培地、酵母エキス培地、ブ
レイン・ハート・インフユージヨン培地(BHI
培地)等の天然培地がよく用いられるが、ストレ
プトコツカス属細菌の生育に適した培地であれば
任意の培地を使用できる。 培養は、PH5.0〜8.0、好ましくは、6.1〜7.2で
あり、培養温度は、30〜40℃、好ましくは、35〜
37℃であり、嫌気的に静置培養または、撹拌培養
を行なうことができる。 本発明においては、培養中に適当な時期に、ペ
ニシリンまたは、その関連物質を添加すること
が、抗腫瘍性成分SPF10−12の採取に重要な役割
をはたすことになる。 ペニシリンまたは、その関連物質の添加時期
は、35〜37℃の培養で、対数増殖期にかかつて
後、3〜20時間の間、特に5〜10時間が好まし
い。その後1〜20時間、好ましくは3〜15時間培
養を継続することにより、培養中に抗腫瘍性成分
SPF10−12を多量蓄積させることができる。 ペニシリンまたはその関連物質としては、すで
に知られたペニシリンと類似の作用をもつ関連物
質であればいかなるものでもよいが、ペニシリン
Gが普通用いられる。添加量は、ペニシリンGで
100〜7000単位/ml、好ましくは、300〜5000単
位/ml培養液程度で十分である。 ストレプトコツカス属細菌のペニシリンまた
は、その関連物質の添加培養によつて得られた培
養液は遠心分離によつて菌体を除去し、濾液を得
る。濾液は、硫安を添加し、50〜90%飽和度の画
分を分取するか、もしくは、濾液は、限外濾過膜
を用いて濃縮する。 得られた抗腫瘍性成分SPF10−12を含む硫安塩
析物は凍結状態で保存することもできる。 この硫安塩析物から抗腫瘍性成分SPF10−12を
抽出するには、塩析物を緩衝液に溶解して用い
る。又、限外濾過膜を用いて得た濃縮液を、その
まま用いることもできる。この水溶液をDEAEセ
ルロースカラムに吸着させ、燐酸緩衝液を用いて
段階的に溶出させ、培養細胞L1210の生育を阻害
する活性画分を分取し、この活性画分をDEAEセ
フアデツクスA−25カラムに吸着させ、燐酸緩衝
液中の塩化ナトリウム濃度を直線的に上昇させつ
つ溶出し、その非吸着部分及び塩化ナトリウム低
濃度部分を分取し、この分画部分を緩衝液に対し
て透析し、ゲル濾過材トヨパールHW−50Fカラ
ムに吸着させ、0.1M NaClを含む燐酸緩衝液で
溶出させ、アンスロン硫酸法による呈色反応及び
培養細胞L1210に対する活性を調べる。ここで培
養細胞L1210に対して強い活性を示す画分すなわ
ち、トヨパールHW50Fの排除限界(以下Voと略
す)付近のアンスロン硫安法による呈色反応でピ
ークを形成する画分を得る。この画分を濃縮し、
トヨパールHW60Fカラムに吸着させ、0.1M
NaClを含む燐酸緩衝液で溶出させる。SPF10−
12はトヨパールHW60Fカラムクロマトグラフイ
ーにおいて280nmの吸収が強く、かつアンスロン
硫酸法に弱い呈色を示す画分として得ることが出
来る。 次に、実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10
−12の凍結乾燥標品は、次の理化学的性質を示
す。 1 元素元析 C 41.3〜43.5% H 5.9〜6.7% N 14.2〜16.6% O 37.9〜31.4% Ash 0.7〜1.8% 2 分解点 本物質は165℃で褐変し240℃になる
と黒色となり分解する。 3 比旋光度〔α〕20 D=−80゜〜−95゜(C=1.00) 4 紫外線吸収スペクトル 本物質0.1%の水溶
液の紫外線吸収スペクトルは第1図に示され
る。 5 赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。
3300cm-1付近及び1650cm-1付近のペプチドによ
る吸収が認められ特徴的である。 6 塩基性、酸性、中性の区別 本物質0.1%の
水溶液のPHは5.5〜6.0である。 7 物質の色 淡褐色 8 呈色反応 ローリー反応 + ビユーレツト反応 + ニンヒドリン反応 + アンスロン硫酸反応 + モーリツシユ反応 + システイン硫酸反応 + オルシン塩酸反応 − 9 分子量 ゲルル濾過法による測定では分子量
約10000〜40000である。 10 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メ
タノール、エタノール、n−プロパノール、ア
セトン、エチルエーテル、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、酢酸エチル等の溶剤には難溶又は不
溶である。 次にインビトロにおける培養細胞L1210に対す
る抗腫瘍性活性の測定方法及びアンスロン硫酸法
による呈色反応の方法を示す。 抗腫瘍活性の測定方法 抗腫瘍活性の測定は、培養細胞L1210の生育阻
止率(IR%)の測定により行つた。 L1210細胞を10%FBS添加RPMI1640培地(5
mg/カナマイシン含有)に懸濁した。この培養
液0.5mlをフアルコン2058チユーブに注加し、細
胞数が1×105cells/tubeになるようにした。次
いでこの培養液に所定量の標品(抗腫瘍性成分
SPF10−12)を目的濃度になるように培養液に溶
解した0.5mlを注加して、37℃で5%CO2存在下
に培養した。標品を添加して48時間後にトリパン
ブルーによる染色をおこない、次式によりIR
(%)を算出した。 IR(%)=(A)−各実験群の生細胞数/対照群の生細
胞数×100 ここで(A)とは対照群の生細胞数を示す。 対照は標品を含まない培養液0.5mlを用い同時
に行つた。 アンスロン硫酸法による呈色反応 脱イオン水に溶解し目的濃度にした標品1mlに
2mlのアンスロン試薬(0.20grのアンスロンを
100mlの濃硫酸に溶解したもの)を注加し、混合
30分後、標品1mlに代えて脱イオン水1mlに2ml
のアンスロン試薬を注加した液を対照として
620nmで吸収を測定する。定量値はグルコースを
用いて同様に測定して得た検量式より求める。 次に本発明の実施例を示す。 実施例 1 ストレプトコツカス・ピオゲネス (Streptococcus pyogenes)ATCC21060を
BHI培地100mlに接種して37℃、8時間静置培養
をおこなつて得た種培養液を第1表に示す培地
A1lに接種し、種培養と同一条件で嫌気的に前培
養を行つた。 第1表 培地A マルトース 0.25% 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.8 10ジヤーフアーメンターに培地A8を投入
して120℃、10分間加熱殺菌後、37℃まで冷却し
て、前培養液1を接種し、37℃、15.5時間、PH
6.8、300回転/分で撹拌しながら嫌気的に培養す
る。次いでペニシリンG1000単位/ml培養液にな
るように添加して、培養を更に5時間継続した。
得られた培養液を遠心分離にかけて菌体を除去し
た。 培養濾液は、分画分子量10000の限外濾過膜
(米国、ロミコン社)を用いて、1.5に縮濃し
た。この濃縮液を、DEAEセルロースカラム(5
×70cm)に吸着させた後、10mM、PHを7.0の燐
酸緩衝液を用いて、洗浄し、次いで0.3M塩化ナ
トリウムを含む上記燐酸緩衝液を用いて、段階的
に溶出させ、アンスロン硫酸法による呈色反応陽
性でかつ培養細胞L1210の生育を阻害する活性画
分を分取した。 この活性画分をDEAEセフアデツクスA−25カ
ラム(7.5×50cm)に吸着させ、次いで上記燐酸
緩衝液で洗浄後塩化ナトリウム濃度を直線的に上
昇させて溶出を行い、培養細胞L1210に対して活
性のある部分を分取する。この溶出曲線は第3図
に示される。第3図において点線部分は非吸着部
分で、実線部分は塩化ナトリウム添加部分であ
る。Aは培養細胞L1210生育阻害活性画分で、
MP−2(特開昭60−30689)生育阻害非活性画分
であり、Bは培養細胞L1210生育阻害非活性画分
で、MP−2生育阻害活性画分である。 Aの活性画分の溶出液を分画分子量10000の限
外濾過膜(ミリポア社)で30mlに濃縮する。この
濃縮液をトヨパールHW50Fカラム(5.0×100cm)
に吸着させ、次いで、上記燐酸緩衝液中に塩化ナ
トリウム0.1Mを含む溶液で溶出させ、アンスロ
ン硫酸法による呈色反応陽性の画分を分取した。
この溶出曲線は第4図に示される。第4図におい
て実線は全体の溶出曲線を示し、点線はアンスロ
ン硫酸法による呈色反応陽性部分の溶出曲線を示
している。ここでCはアンスロン硫酸法による呈
色反応陽性画分であるが、培養細胞L1210に対す
る生育阻止活性を調べ活性の強いVo付近の、ア
ンスロン硫酸法でピークを形成するD画分を得
る。D画分は凍結乾燥する。この凍結乾燥標品を
溶解しトヨパールHW60Fカラム(2.6×100cm)
に吸着させ次いでトヨパールHW50Fの場合と同
じ溶出液で溶出する。 この溶出曲線は第5図に示される。第5図にお
いて実線は全体の溶出曲線を示し、黒丸付の実線
はアンスロン硫酸法による呈色反応陽性部分の溶
出曲線を示している。ここでアンスロン硫酸法に
よる呈色反応で強い呈色を示すFの画分をSPF10
−11とし、Gの画分をSPF10−12とした。 Gの画分を凍結乾燥した。この凍結乾燥標品は
抗腫瘍性成分SPF10−12であり、0.68grを得た。 実施例 2 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは300単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を10
時間継続した。この培養濾液に硫安を添加し50〜
90%飽和度の画分を分取する。 透析により硫安を除き実施例1と同様に精製し
て抗腫瘍性成分SPF10−12 0.34grを得た。 実施例 3 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは3000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を3
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.73grを得た。 実施例 4 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第2表に示した培地Bを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.46grを得た。 第2表 培地B マルトース 0.1% 肉エキス 0.5% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% 塩化ナトリウム 0.1% PH=7.2 実施例 5 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第3表に示した培地Cを用いて実施例1と同様
に35℃で培養した。この場合、ペニシリンGは
1000単位/ml培養液となるように添加し、更に培
養を5時間継続した。この培養濾液を実施例1と
同様に精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.32gr
を得た。 第3表 培地C マルトース 0.1% 肉エキス 0.5% ポリペプトン 0.5% カザミノ酸 0.3% 酵母エキス 0.5% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.5 実施例 6 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第4表に示した培地Dを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.29grを得た。 第4表 培地D マルトース 0.25% カザミノ酸 0.3% 酵母エキス 1.0% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.9 実施例 7 ストレプトコツカス・エスピーATCC21597を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に
培養した。この場合、ペニシリンGは1000単位/
ml培養液となるように添加し、更に培養を5時間
継続した。この培養濾液を実施例1と同様に精製
して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.55grを得た。 実施例 8 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21546
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.61grを得た。 実施例 9 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21547
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.64grを得た。 実施例 10 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21548
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.48grを得た。 実施例 11 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、セフアロスポリンCは
600μg/ml培養液となるように添加し、更に培
養を5時間継続した。この培養濾液を実施例1と
同様に精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.64gr
を得た。 実験例 1 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10−12の
インビトロにおける抗腫瘍活性試験は、本文中に
記載した抗腫瘍活性の測定方法により行い、その
結果を第5表に示す。 第5表 SPF10−12の抗腫瘍活性の結果 SPF10−12(mg/ml) IR% 0.5 87.9 0.25 56.1 0.125 32.6 実験例 2 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10−12の
インビボにおける抗腫瘍活性試験は、Crj;CD−
1(ICR系、雌性7週齢)マウスを使用して実施
した。腫瘍細胞としては、Sarcoma−180腹水癌
細胞を用いこれを生理食塩水に浮遊させ、マウス
の腹腔内に5×105cells/マウス接種した。 癌細胞接種24時間後から1日1回5日間連続し
てSPF10−12を腹腔内に投与してその生存数を観
察しその結果を第6表に示す。 【表】
その製法に関するものである。 従来、溶血性連鎖状球菌(以下溶連菌という)
の生菌体を弱毒化して製剤化したものは、すでに
制癌剤として使用されている。 また、溶連菌の菌体を破砕後水または塩類溶液
で有効成分を抽出し、有機溶媒を加えて、抗腫瘍
性成分を沈澱として、回収する方法(特公昭38−
1647)、溶連菌を溶菌酵素リゾチーム、セルラー
ゼまたは蛋白質分解酵素により、溶菌し、活性画
分を水溶性区分として分画する方法(英国特許
1163865号)、溶連菌の菌体を破砕後水不溶性物質
を採取し、核酸分解酵素および蛋白分解酵素で処
理する方法(特開昭55−7014)などが知られてい
る。 このように、ストレプトコツカス属細菌そのも
のもしくはその菌体成分に抗腫瘍活性があること
は広く知られているのであるが、従来知られたも
のは、菌体もしくは水溶性もしくは水不溶性高分
子細胞構成物質であるに過ぎなかつた。菌体もし
くは菌体内から有効成分を単離しようとすれば、
菌体を溶菌したり、機械的に破砕したりして全体
を分画しなければならなかつた。 このような処理では、精製は複雑となり、有効
成分の単離はきわめて困難であつた。実際に分離
し、有効成分として測定された例では分子量
200000の蛋白質(特公昭48−43841、特開昭51−
44617)及び分子量150000の糖蛋白質(特開昭58
−22026)が知られている程度である。 本発明者らは、先に溶連菌の培養液中に抗腫瘍
性成分を溶出させる方法を鋭意研究したところ、
培養中にペニシリン又はその関連物質を添加する
ことによつて抗腫瘍性成分が培養液中に溶出する
ことを見出し(特開昭60−30677号)、培養液中か
ら生理活性物質SPF−1を分離するに至つたので
ある。(特開昭60−30689号) 本発明者らは、更に、溶連菌の培養濾液中から
より有効な成分を分離する目的で研究したとこ
ろ、本発明において、癌化白血球培養細胞L1210
(以下培養細胞L1210という)の生育を阻害し、
かつ、アンスロン硫酸法による呈色反応陽性の画
分であることにより特徴づけられる抗腫瘍性成分
SPF10−12を分離するに至つた。 本発明の抗腫瘍性成分SPF10−12は元素分析、
呈色反応および赤外線吸収スペクトル等から糖を
含むペプチド様物質と考えられるが、紫外線吸収
スペクトルおよび赤外線吸収スペクトルから、既
知の抗腫瘍性物質とは、相違する新規な物質と認
められるものである。 本発明は、ストレプトコツカス属に属する抗腫
瘍性成分SPF10−12生産菌を培養し、培養物から
抗腫瘍性成分SPF10−12を採取することを特徴と
する抗腫瘍性成分SPF10−12の製造法を包含する
ものである。 本発明においては、ストレプトコツカス属に属
する抗腫瘍性成分SPF10−12生産菌が広く使用で
きる。次に抗腫瘍性成分SPF10−12生産菌を記載
する。 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21060 ストレプトコツカス・エスピー
(Streptococcus sp.) ATCC21597 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogens) ATCC21546 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21547 ストレプトコツカス・ピオゲネス
(Streptococcus pyogenes) ATCC21548 培養液は、肉エキス培地、酵母エキス培地、ブ
レイン・ハート・インフユージヨン培地(BHI
培地)等の天然培地がよく用いられるが、ストレ
プトコツカス属細菌の生育に適した培地であれば
任意の培地を使用できる。 培養は、PH5.0〜8.0、好ましくは、6.1〜7.2で
あり、培養温度は、30〜40℃、好ましくは、35〜
37℃であり、嫌気的に静置培養または、撹拌培養
を行なうことができる。 本発明においては、培養中に適当な時期に、ペ
ニシリンまたは、その関連物質を添加すること
が、抗腫瘍性成分SPF10−12の採取に重要な役割
をはたすことになる。 ペニシリンまたは、その関連物質の添加時期
は、35〜37℃の培養で、対数増殖期にかかつて
後、3〜20時間の間、特に5〜10時間が好まし
い。その後1〜20時間、好ましくは3〜15時間培
養を継続することにより、培養中に抗腫瘍性成分
SPF10−12を多量蓄積させることができる。 ペニシリンまたはその関連物質としては、すで
に知られたペニシリンと類似の作用をもつ関連物
質であればいかなるものでもよいが、ペニシリン
Gが普通用いられる。添加量は、ペニシリンGで
100〜7000単位/ml、好ましくは、300〜5000単
位/ml培養液程度で十分である。 ストレプトコツカス属細菌のペニシリンまた
は、その関連物質の添加培養によつて得られた培
養液は遠心分離によつて菌体を除去し、濾液を得
る。濾液は、硫安を添加し、50〜90%飽和度の画
分を分取するか、もしくは、濾液は、限外濾過膜
を用いて濃縮する。 得られた抗腫瘍性成分SPF10−12を含む硫安塩
析物は凍結状態で保存することもできる。 この硫安塩析物から抗腫瘍性成分SPF10−12を
抽出するには、塩析物を緩衝液に溶解して用い
る。又、限外濾過膜を用いて得た濃縮液を、その
まま用いることもできる。この水溶液をDEAEセ
ルロースカラムに吸着させ、燐酸緩衝液を用いて
段階的に溶出させ、培養細胞L1210の生育を阻害
する活性画分を分取し、この活性画分をDEAEセ
フアデツクスA−25カラムに吸着させ、燐酸緩衝
液中の塩化ナトリウム濃度を直線的に上昇させつ
つ溶出し、その非吸着部分及び塩化ナトリウム低
濃度部分を分取し、この分画部分を緩衝液に対し
て透析し、ゲル濾過材トヨパールHW−50Fカラ
ムに吸着させ、0.1M NaClを含む燐酸緩衝液で
溶出させ、アンスロン硫酸法による呈色反応及び
培養細胞L1210に対する活性を調べる。ここで培
養細胞L1210に対して強い活性を示す画分すなわ
ち、トヨパールHW50Fの排除限界(以下Voと略
す)付近のアンスロン硫安法による呈色反応でピ
ークを形成する画分を得る。この画分を濃縮し、
トヨパールHW60Fカラムに吸着させ、0.1M
NaClを含む燐酸緩衝液で溶出させる。SPF10−
12はトヨパールHW60Fカラムクロマトグラフイ
ーにおいて280nmの吸収が強く、かつアンスロン
硫酸法に弱い呈色を示す画分として得ることが出
来る。 次に、実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10
−12の凍結乾燥標品は、次の理化学的性質を示
す。 1 元素元析 C 41.3〜43.5% H 5.9〜6.7% N 14.2〜16.6% O 37.9〜31.4% Ash 0.7〜1.8% 2 分解点 本物質は165℃で褐変し240℃になる
と黒色となり分解する。 3 比旋光度〔α〕20 D=−80゜〜−95゜(C=1.00) 4 紫外線吸収スペクトル 本物質0.1%の水溶
液の紫外線吸収スペクトルは第1図に示され
る。 5 赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。
3300cm-1付近及び1650cm-1付近のペプチドによ
る吸収が認められ特徴的である。 6 塩基性、酸性、中性の区別 本物質0.1%の
水溶液のPHは5.5〜6.0である。 7 物質の色 淡褐色 8 呈色反応 ローリー反応 + ビユーレツト反応 + ニンヒドリン反応 + アンスロン硫酸反応 + モーリツシユ反応 + システイン硫酸反応 + オルシン塩酸反応 − 9 分子量 ゲルル濾過法による測定では分子量
約10000〜40000である。 10 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メ
タノール、エタノール、n−プロパノール、ア
セトン、エチルエーテル、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、酢酸エチル等の溶剤には難溶又は不
溶である。 次にインビトロにおける培養細胞L1210に対す
る抗腫瘍性活性の測定方法及びアンスロン硫酸法
による呈色反応の方法を示す。 抗腫瘍活性の測定方法 抗腫瘍活性の測定は、培養細胞L1210の生育阻
止率(IR%)の測定により行つた。 L1210細胞を10%FBS添加RPMI1640培地(5
mg/カナマイシン含有)に懸濁した。この培養
液0.5mlをフアルコン2058チユーブに注加し、細
胞数が1×105cells/tubeになるようにした。次
いでこの培養液に所定量の標品(抗腫瘍性成分
SPF10−12)を目的濃度になるように培養液に溶
解した0.5mlを注加して、37℃で5%CO2存在下
に培養した。標品を添加して48時間後にトリパン
ブルーによる染色をおこない、次式によりIR
(%)を算出した。 IR(%)=(A)−各実験群の生細胞数/対照群の生細
胞数×100 ここで(A)とは対照群の生細胞数を示す。 対照は標品を含まない培養液0.5mlを用い同時
に行つた。 アンスロン硫酸法による呈色反応 脱イオン水に溶解し目的濃度にした標品1mlに
2mlのアンスロン試薬(0.20grのアンスロンを
100mlの濃硫酸に溶解したもの)を注加し、混合
30分後、標品1mlに代えて脱イオン水1mlに2ml
のアンスロン試薬を注加した液を対照として
620nmで吸収を測定する。定量値はグルコースを
用いて同様に測定して得た検量式より求める。 次に本発明の実施例を示す。 実施例 1 ストレプトコツカス・ピオゲネス (Streptococcus pyogenes)ATCC21060を
BHI培地100mlに接種して37℃、8時間静置培養
をおこなつて得た種培養液を第1表に示す培地
A1lに接種し、種培養と同一条件で嫌気的に前培
養を行つた。 第1表 培地A マルトース 0.25% 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.8 10ジヤーフアーメンターに培地A8を投入
して120℃、10分間加熱殺菌後、37℃まで冷却し
て、前培養液1を接種し、37℃、15.5時間、PH
6.8、300回転/分で撹拌しながら嫌気的に培養す
る。次いでペニシリンG1000単位/ml培養液にな
るように添加して、培養を更に5時間継続した。
得られた培養液を遠心分離にかけて菌体を除去し
た。 培養濾液は、分画分子量10000の限外濾過膜
(米国、ロミコン社)を用いて、1.5に縮濃し
た。この濃縮液を、DEAEセルロースカラム(5
×70cm)に吸着させた後、10mM、PHを7.0の燐
酸緩衝液を用いて、洗浄し、次いで0.3M塩化ナ
トリウムを含む上記燐酸緩衝液を用いて、段階的
に溶出させ、アンスロン硫酸法による呈色反応陽
性でかつ培養細胞L1210の生育を阻害する活性画
分を分取した。 この活性画分をDEAEセフアデツクスA−25カ
ラム(7.5×50cm)に吸着させ、次いで上記燐酸
緩衝液で洗浄後塩化ナトリウム濃度を直線的に上
昇させて溶出を行い、培養細胞L1210に対して活
性のある部分を分取する。この溶出曲線は第3図
に示される。第3図において点線部分は非吸着部
分で、実線部分は塩化ナトリウム添加部分であ
る。Aは培養細胞L1210生育阻害活性画分で、
MP−2(特開昭60−30689)生育阻害非活性画分
であり、Bは培養細胞L1210生育阻害非活性画分
で、MP−2生育阻害活性画分である。 Aの活性画分の溶出液を分画分子量10000の限
外濾過膜(ミリポア社)で30mlに濃縮する。この
濃縮液をトヨパールHW50Fカラム(5.0×100cm)
に吸着させ、次いで、上記燐酸緩衝液中に塩化ナ
トリウム0.1Mを含む溶液で溶出させ、アンスロ
ン硫酸法による呈色反応陽性の画分を分取した。
この溶出曲線は第4図に示される。第4図におい
て実線は全体の溶出曲線を示し、点線はアンスロ
ン硫酸法による呈色反応陽性部分の溶出曲線を示
している。ここでCはアンスロン硫酸法による呈
色反応陽性画分であるが、培養細胞L1210に対す
る生育阻止活性を調べ活性の強いVo付近の、ア
ンスロン硫酸法でピークを形成するD画分を得
る。D画分は凍結乾燥する。この凍結乾燥標品を
溶解しトヨパールHW60Fカラム(2.6×100cm)
に吸着させ次いでトヨパールHW50Fの場合と同
じ溶出液で溶出する。 この溶出曲線は第5図に示される。第5図にお
いて実線は全体の溶出曲線を示し、黒丸付の実線
はアンスロン硫酸法による呈色反応陽性部分の溶
出曲線を示している。ここでアンスロン硫酸法に
よる呈色反応で強い呈色を示すFの画分をSPF10
−11とし、Gの画分をSPF10−12とした。 Gの画分を凍結乾燥した。この凍結乾燥標品は
抗腫瘍性成分SPF10−12であり、0.68grを得た。 実施例 2 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは300単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を10
時間継続した。この培養濾液に硫安を添加し50〜
90%飽和度の画分を分取する。 透析により硫安を除き実施例1と同様に精製し
て抗腫瘍性成分SPF10−12 0.34grを得た。 実施例 3 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは3000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を3
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.73grを得た。 実施例 4 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第2表に示した培地Bを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.46grを得た。 第2表 培地B マルトース 0.1% 肉エキス 0.5% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% 塩化ナトリウム 0.1% PH=7.2 実施例 5 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第3表に示した培地Cを用いて実施例1と同様
に35℃で培養した。この場合、ペニシリンGは
1000単位/ml培養液となるように添加し、更に培
養を5時間継続した。この培養濾液を実施例1と
同様に精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.32gr
を得た。 第3表 培地C マルトース 0.1% 肉エキス 0.5% ポリペプトン 0.5% カザミノ酸 0.3% 酵母エキス 0.5% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.5 実施例 6 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第4表に示した培地Dを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.29grを得た。 第4表 培地D マルトース 0.25% カザミノ酸 0.3% 酵母エキス 1.0% 酸性第一燐酸カリウム 0.1% 硫酸マグネシウム 0.05% PH=6.9 実施例 7 ストレプトコツカス・エスピーATCC21597を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に
培養した。この場合、ペニシリンGは1000単位/
ml培養液となるように添加し、更に培養を5時間
継続した。この培養濾液を実施例1と同様に精製
して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.55grを得た。 実施例 8 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21546
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.61grを得た。 実施例 9 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21547
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.64grを得た。 実施例 10 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21548
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、ペニシリンGは1000単
位/ml培養液となるように添加し、更に培養を5
時間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に
精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.48grを得た。 実施例 11 ストレプトコツカス・ピオゲネスATCC21060
を第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様
に培養した。この場合、セフアロスポリンCは
600μg/ml培養液となるように添加し、更に培
養を5時間継続した。この培養濾液を実施例1と
同様に精製して抗腫瘍性成分SPF10−12 0.64gr
を得た。 実験例 1 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10−12の
インビトロにおける抗腫瘍活性試験は、本文中に
記載した抗腫瘍活性の測定方法により行い、その
結果を第5表に示す。 第5表 SPF10−12の抗腫瘍活性の結果 SPF10−12(mg/ml) IR% 0.5 87.9 0.25 56.1 0.125 32.6 実験例 2 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF10−12の
インビボにおける抗腫瘍活性試験は、Crj;CD−
1(ICR系、雌性7週齢)マウスを使用して実施
した。腫瘍細胞としては、Sarcoma−180腹水癌
細胞を用いこれを生理食塩水に浮遊させ、マウス
の腹腔内に5×105cells/マウス接種した。 癌細胞接種24時間後から1日1回5日間連続し
てSPF10−12を腹腔内に投与してその生存数を観
察しその結果を第6表に示す。 【表】
第1図は抗腫瘍性成分SPF10−12の紫外線吸収
スペクトルを示し、第2図は同じく赤外線吸収ス
ペクトルを示す。第3図は実施例1における活性
画分のDEAEセフアデツクスA−2365カラムの溶
出曲線を示す図で、第4図はこのA画分をトヨパ
ールHW50Fカラムに吸着させ、0.1M NaCl含有
燐酸緩衝液による溶出曲線を示す図で、第5図は
このD画分をトヨパールHW60Fカラムに吸着さ
せ、0.1M NaCl含有燐酸緩衝液による溶出曲線
を示す。
スペクトルを示し、第2図は同じく赤外線吸収ス
ペクトルを示す。第3図は実施例1における活性
画分のDEAEセフアデツクスA−2365カラムの溶
出曲線を示す図で、第4図はこのA画分をトヨパ
ールHW50Fカラムに吸着させ、0.1M NaCl含有
燐酸緩衝液による溶出曲線を示す図で、第5図は
このD画分をトヨパールHW60Fカラムに吸着さ
せ、0.1M NaCl含有燐酸緩衝液による溶出曲線
を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 下記の理化学的性質を有する抗腫瘍性成分
SPF10−12。 1 元素元析 C 41.3〜43.5% H 5.9〜6.7% N 14.2〜16.6% O 37.9〜31.4% Ash 0.7〜1.8% 2 分解点 本物質は165℃で褐変し240℃になる
と黒色となり分解する。 3 比旋光度〔α〕20 D=−80゜〜−95゜(C=1.00) 4 紫外線吸収スペクトル 本物質0.1%の水溶
液の紫外線吸収スペクトルは第1図に示され
る。 5 赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。
3300cm-1付近および1650cm-1付近のペプチドに
よる吸収が認められ特徴的である。 6 塩基性、酸性、中性の区別 本物質0.1%の
水溶液のPHは5.5〜6.0である。 7 物質の色 淡褐色 8 呈色反応 ローリー反応 + ビユーレツト反応 + ニンヒドリン反応 + アンスロン硫酸反応 + モーリツシユ反応 + システイン硫酸反応 + オルシン塩酸反応 − 9 分子量 ゲル濾過法による測定では分子量約
10000〜40000である。 10 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メ
タノール、エタノール、n−プロパノール、ア
セトン、エチルエーテル、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、酢酸エチル等の溶剤には、難溶又は
不溶である。 2 ストレプトコツカス属に属する抗腫瘍性成分
SPF10−12生産菌を培養し、培養物から抗腫瘍性
成分SPF10−12を採取することを特徴とする抗腫
瘍性成分SPF10−12の製法。 3 ストレプトコツカス属に属する抗腫瘍性成分
SPF10−12生産菌を培養するに際し、培養中の適
当な時期にペニシリン又はその関連物質を添加し
て培養することを特徴とする特許請求の範囲第2
項に記載の抗腫瘍性成分SPF10−12の製法。 4 ストレプトコツカス属に属する抗腫瘍性成分
SPF10−12生産菌を培養し、培養物から抗腫瘍性
成分SPF10−12を採取するに当たり、培養細胞
L1210の生育を阻害し、又は/及びアンスロン硫
酸法による呈色反応陽性の画分を分取することを
特徴とする特許請求の範囲第2項に記載の抗腫瘍
性成分SPF10−12の製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61004187A JPS62164629A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | 抗腫瘍性成分spf10−12及びその製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61004187A JPS62164629A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | 抗腫瘍性成分spf10−12及びその製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62164629A JPS62164629A (ja) | 1987-07-21 |
| JPH0571232B2 true JPH0571232B2 (ja) | 1993-10-06 |
Family
ID=11577701
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61004187A Granted JPS62164629A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | 抗腫瘍性成分spf10−12及びその製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62164629A (ja) |
-
1986
- 1986-01-14 JP JP61004187A patent/JPS62164629A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS62164629A (ja) | 1987-07-21 |
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