BE1005697A5

BE1005697A5 - Procede pour la preparation de microspheres en materiau polymere biodegradable.

Info

Publication number: BE1005697A5
Application number: BE9200672A
Authority: BE
Inventors: Piero Orsolini; Frederic Heimgartner
Original assignee: Debio Rech Pharma Sa
Priority date: 1991-07-22
Filing date: 1992-07-20
Publication date: 1993-12-21
Also published as: ITBS920093A0; SE9202213L; DK93892A; NO922886L; NL194577C; HUT64234A; ATA148892A; FR2679450B1; IT1259891B; GB2257909A; GB2257973B; IE71199B1; HU218203B; JP3600252B2; DE4223284C2; AU652844B2; FR2680109B1; UA35569C2; IT1259892B; ITBS920092A1

Abstract

Le procédé vise à préparer une composition destinée à la libération prolongée et contrôlée de substances médicamenteuses peptidiques, se présentant sous forme de microsphères en matériau polymère biodégradable incorporant ladite substance médicamenteuse. Il consiste à convertir premièrement un peptide ou sel de peptide soluble dans l'eau en un peptide, respectivement un sel de peptide insoluble dans l'eau. Les étapes subséquentes font ensuite appel à la préparation d'une émulsion organique aqueuse, puis à l'extraction du solvant organique dans un excès de milieu aqueux.

Description


   <Desc/Clms Page number 1> 
 



  Procédé pour la préparation de microsphères en matériau polymère biodégradable 
La présente invention a pour objet un procédé de préparation d'une composition destinée à la libération prolongée et contrôlée de substances médicamenteuses peptidiques, se présentant sous forme de microsphères en matériau polymère biodégradable incorporant ladite substance médicamenteuse. 



   Le procédé consiste à convertir premièrement un peptide ou sel de peptide soluble dans l'eau en un peptide, respectivement un sel de peptide insoluble dans l'eau, puis à mettre en suspension ledit peptide, respectivement sel de peptide, en suspension dans une solution de matériau polymère biodégradable, à convertir ladite suspension en une émulsion de type huile-dans-eau et finalement isoler les microsphères de polymère biodégradable après transfert de l'émulsion huile-dans-eau dans un excès de milieu aqueux. 



   Diverses solutions ont été proposées à ce jour pour la préparation de compositions à libération prolongée et contrôlée de substances médicamenteuses, mettant en oeuvre la fabrication d'implants biodégradables, la microencapsulation ou la préparation de matrices poreuses biodégradables se présentant, par exemple, sous forme de microsphères ou microparticules de dimensions diverses. On peut citer à ce propos EP-A-0052510 pour la microencapsulation par séparation de phases de drogues hydrosolubles et EP-A-0058481 ou US-A-3.976. 071 pour la préparation d'implants ou de matrices poreuses biodégradables à base de polylactide ou co-polylactide- 

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 glycolide pour l'essentiel.

   Ces techniques font appel à la dissolution préalable dans un solvant organique du polymère ou copolymère biodégradable utilisé comme support, le cas échéant à la dissolution de la substance médicamenteuse elle-même. 



   D'autres techniques, conduisant également à la formation de microcapsules ou de microsphères, font appel à des procédés d'émulsification, la phase essentielle de tels procédés consistant à obtenir une émulsion de type huiledans-eau à partir   d'une   solution organique de matériau polymère et   d'une   solution aqueuse de peptide-voir à ce propos US-A-4.384. 975,3. 891.570, 4.389. 330,3. 737.337, 4.652. 441 ou   WO-90/13361-.   Dans tous les cas de figure cependant, l'homme du métier est forcé de développer des techniques complexes et difficiles à maîtriser, afin de réduire au mieux les pertes de substances actives peptidiques éminemment hydrosolubles, comme par exemple la double émulsification. 



   S'agissant de mettre en oeuvre, au cours d'un tel procédé, la formation   d'une   émulsion de type huile-dans-eau suivie de son transfert dans un milieu aqueux, l'invention permet contre toute attente de surmonter avantageusement les défauts des techniques connues à ce jour. 



   En effet, en procédant premièrement à la conversion d'un peptide ou dérivé peptidique hydrosoluble en un peptide, respectivement un sel de peptide, insoluble dans l'eau, l'invention offre à l'homme du métier un moyen particulièrement original de tirer parti des solubilités relatives des ingrédients mis en jeu, plus particulièrement des solvants et"non-solvants"mis en jeu. 



   L'invention a plus précisément pour objet un procédé qui se caractérise par le fait que : 

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 a. on convertit un peptide ou un sel de peptide soluble dans l'eau'en un peptide, respectivement un sel de peptide insoluble dans l'eau ; b. on met en suspension ledit peptide, respectivement sel de peptide insoluble dans l'eau en suspension dans un milieu organique contenant le matériau polymère biodégradable à l'état dissout ; c. on disperse ladite suspension organique dans un milieu aqueux formant la phase continue de l'émulsion résultante ; d. on transfère ladite émulsion dans un excès de milieu aqueux et finalement sépare de la phase liquide les microsphères ainsi obtenues. 



   Selon l'invention, par"substance médicamenteuse peptidique on définit pour l'essentiel un polypeptide naturel ou synthétique, physiologiquement actif, comportant de 3 à 45 acides aminés. Nombreux sont les polypeptides que l'on peut traiter conformément au procédé de l'invention, en particulier l'oxytocine, la vasopressine, la corticotrophine, la calcitonine, le facteur de croissance épidermique (EGF), la prolactine, l'inhibitine, l'interféron, la somatostatine, l'insuline, le glucagon, le facteur natriurétique auriculaire (ANF), l'endorphine, un inhibiteur de la rénine, l'hormone de libération de la lutéinostimuline (LHRH), l'hormone de libération de l'hormone de croissance (GHRH), le peptide T ou l'un de leurs analogues ou homologues synthétiques. 



   A titre préférentiel, on peut citer des polypeptides tels que le LHRH ou la somatostatine, ou encore l'un de 
 EMI3.1 
 leurs homologues ou analogues synthétiques tels que 
 EMI3.2 
 1 1 D-Phe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-OH, 1 1 D-Phe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Trp-NH 

 <Desc/Clms Page number 4> 

 
 EMI4.1 
 1 1 D-Trp-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-NH 2, D-Phe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Thr-NH 2, D-Phe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Trp-NH2, 1 1 AcPhe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-NH2, 1 1 ACPhe-Cys-TYr-D-Trp-Lys-Val-CyS-Trp-NH21 
 EMI4.2 
 Ac-DNal-DpCl-Phe-DPal-Ser-Tyr-DCit-Leu-Arg-Pro-DAla-NH2, (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-Gly-NH, (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Phe-Leu-Arg-Pro-Gly-NHs, (pyro) Glu-His-Trp-D-Ser-. Tyr-D-Leu-Leu-Arg-Pro-Gly-NHR-, ou (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-NHR1, (Rl = alkyle inférieur). 



  Cette liste n'est cependant pas exhaustive. 



   La première phase du procédé consiste à convertir, au moyen des techniques usuelles, un peptide ou un sel de peptide soluble dans l'eau en un peptide, respectivement un sel de peptide, insoluble dans l'eau. Par'soluble dans l'eau", on entend un peptide ou dérivé peptidique possédant une solubilité dans l'eau supérieure ou égale à 0,1 mg/ml à   25OC,   de préférence supérieure ou égale à 1,0 mg/ml. 



     Par"insoluble   dans l'eau"on entend un peptide ou dérivé peptidique possédant une solubilité dans l'eau inférieure ou égale à 0,1 mg/ml à   25 C.   Des sels de peptides tels le pamoate, le tannate, le stéarate ou le palmitate répondent à cette définition. 



   A titre de matériau polymère biodégradable, on utilise le plus communément des polymères tels un polylactide, un 

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   polyglycolide,   un copolymère d'acides lactique et glycolique, un polyester tel un polyalkylène fumarate ou succinate, ou encore un polyorthoester, un polyacétal ou un polyanhydride. 



   A titre de matériau polymère préférentiel, il convient de citer les copolymères d'acides lactique et glycolique (PLGA), en particulier les copolymères d'acide   L-ou   D, Llactique contenant de 45 à 90% (mole %) de motifs acide lactique, respectivement de 55 à 10% (mole %) de motifs acide glycolique. 



   On peut citer au même titre divers polyalkylène fumarates ou succinates, notamment le poly-1, 4-butylènesuccinate, le poly-2,3-butylène-succinate, le poly- 1, 4,   butylène-fumarate   ou le poly-2,   3-butylène-fumarate.   Ces polymères sont aisément préparés conformément à la littérature ou peuvent être obtenus auprès du commerce spécialisé. 



   A titre de solvant du matériau polymère choisi, on utilise un solvant organique tel le chlorure de méthylène par exemple, dans tous les cas un solvant se comportant comme un"non-solvant"pour le peptide ou sel de peptide retenu. 



   Selon l'invention, une fois ledit peptide ou sel mis en suspension dans la solution organique de matériau polymère, celle-ci est incorporée à une quantité prédéterminée d'un milieu aqueux, le plus généralement de l'eau additionnée d'un agent tensio-actif approprié. Le but visé est la formation rapide d'une émulsion homogène, de type huiledans-eau, ledit milieu aqueux faisant office de phase continue. Divers facteurs interviennent dans la préparation d'une telle émulsion, qui à leur tour conditionnent la taille ou la structure des microsphères résultant du processus.

   L'un des facteurs à prendre en considération est la vitesse d'addition de la solution organique au milieu aqueux ; un autre peut être la température ou encore la vitesse d'agitation ou l'énergie de dispersion (sonication), 

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 ce dernier paramètre influant notamment sur la taille des microsphères finales. Il est du ressort de l'homme du métier de mettre en oeuvre les méthodes et conditions d'émulsification appropriées au but visé. 



   En cours de réalisation de la dite émulsion, il peut être également avantageux de modifier le rapport volumique des phases en présence, notamment de diminuer le volume initial de la phase organique par rapport à celui de la phase aqueuse. Selon les cas, vu la volatilité des solvants organiques mis en jeu, le chlorure de méthylène par exemple, une évaporation intervenant spontanément lors de l'agitation peut déjà se révéler suffisante ; dans d'autres, l'on peut accélérer le phénomène souhaité en pratiquant une évaporation partielle, sous pression réduite. 



   Une fois l'émulsion organique-aqueuse stabilisée, celleci est transférée dans une quantité excédentaire de milieu aqueux, le plus généralement de l'eau. Une telle opération vise à amplifier le durcissement des microsphères embryonnaires formées dans l'émulsion, par extraction du solvant organique encore présent dans lesdites microsphères. 



  Cette opération vise également à éliminer simultanément les traces encore présentes d'agent tensio-actif qui pourraient subsister dans la masse de polymère en cours de durcissement terminal. On notera que l'eau est un"non-solvant"aussi bien pour le matériau polymère biodégradable, tel le PLGA par exemple, que pour le sel de peptide présent au sein desdites microsphères. Cette situation favorise d'autant l'extraction nécessaire de solvant résiduel du polymère, CH2Cl2 par exemple. 



   Après transfert de ladite émulsion dans un excès de milieu aqueux, on recueille les microsphères durcies conformément aux techniques usuelles, par exemple la centrifugation, la filtration ou la décantation. Lavages, purifications et séchages s'effectuent de même. 



   L'un des avantages du procédé de l'invention est qu'il permet l'obtention de microsphères dont la taille peut être 

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 contrôlée avec précision, ce contrôle s'opérant essentiellement lors de la préparation de l'émulsion (vitesse d'agitation par exemple). Un autre avantage tient au taux de charge peptidique particulièrement élevé que l'on peut obtenir, 5,10 voire 20% poids ou plus selon les cas. 



   En outre, le rendement de l'incorporation du peptide ou sel de peptide est particulièrement élevé ; ceci est notamment dû à la conversion préalable du peptide retenu de dérivé hydrosoluble en dérivé insoluble dans l'eau, tel un sel par exemple. 



   Les microsphères obtenues conformément au procédé de l'invention à partir des ingrédients susmentionnés sont alors utilisées, après une stérilisation adéquate, pour la préparation de suspensions destinées à une administration par voie parentérale, par exemple une injection intra- . musculaire ou sous-cutanée. 



   L'invention est illustrée au moyen des exemples ci- après. De tels exemples ne sont en aucun cas limitatifs quant aux substances utilisées ou conditions opérationnelles mises en oeuvre. 



   Exemple 1 
3 g d'acétate de D-Trp6-LHRH de formule : (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-Gly-NH2 ont été convertis en pamoate correspondant, au moyen des techniques usuelles. Finement pulvérisé, ce sel se présente sous forme de microparticules de dimension moyenne d'env. 10 microns, de structure amorphe. Solubilité : inférieure à
0,025 mg/ml dans H20 à   40 C.   



   0,280 g de pamoate de D-Trp6-LHRH ont ensuite été mis en suspension dans 20 ml de   CHsCis,   puis ladite suspension 

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 ajoutée à 20 ml de   CH2C12contenant   à l'état dissout 1,720 g de copolymère d'a'cides D, L-lactique et glycolique (PLGA) 75 : 25 (mole %/viscosité inhérente 0,82 dans HFIP). Le mélange a été effectué à température ambiante, sous agitation, de sorte à obtenir une suspension parfaitement homogène. 



   La suspension résultante a ensuite été déchargée en une seule fois dans 500 ml de solution de méthoxycellulose à 0,075% dans l'eau et l'agitation du mélange poursuivie durant env. 90 min à température ambiante (vitesse d'agitation 900 tours/min). L'évolution de l'émulsion est suivie périodiquement, en moyenne toutes les 30 min, par prélèvement d'un échantillon et examen des microsphères présentes au microscope. 



   Une fois l'agitation terminée (stabilisation de la réduction de taille des microsphères), ladite émulsion est transférée en une seule fois dans 2 1 d'eau maintenue à env. 



    10 C,   le mélange étant agité jusqu'à son homogénéisation. 



   Les microsphères de PLGA ont été isolées du mélange réactionnel et purifiées par une succession de centrifugations alternant avec lavage avec H20, et finalement filtrées et séchées sous pression réduite. On a ainsi recueilli 1,25 g (rdt 63%) de microsphères de PLGA comportant plus de 96% de particules de diamètre inférieur à 100 microns (max. à 55-85 microns). 



   Après analyse (dissolution de la masse de PLGA, extraction et détermination du peptide par HPLC), on constate que le taux de charge des microsphères en pamoate de D-Trp6-LHRH est de 9,05% poids (théorique : 10%). 



   Les microsphères ainsi obtenues ont ensuite été soumises à une stérilisation par rayons gamma et mises en suspension dans un véhicule stérile approprié. Les tests in vivo (dosage du taux de testostérone sanguin chez des rats mâles) confirment la libération régulière de la substance active sur au moins 21 jours, qui se traduit par un effondrement du 

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 taux de testostérone à des valeurs de castration à compter de J4 (injection   à'JO).   
 EMI9.1 
 
<tb> 
<tb> DUREE <SEP> (jours) <SEP> TESTOSTERONE <SEP> (ng/ml)
<tb> 0 <SEP> 3,7
<tb> 2 <SEP> 5, <SEP> 1
<tb> 4 <SEP> 0,7
<tb> 7 <SEP> 0,6
<tb> 11 <SEP> 0,8
<tb> 14 <SEP> 1,2
<tb> 18 <SEP> 1,9
<tb> 21 <SEP> 2,0
<tb> 25 <SEP> 2,0
<tb> 
 Exemple 2 
On a procédé exactement selon le procédé de l'Exemple 1, à l'exception de l'emploi de 0,

  560 g de pamoate de   D-Trp6-   LHRH pour 1,440 g de PLGA 75 : 25 (mole %). 



   On a recueilli 1,49 g (rdt 75%) de microsphères de PLGA comportant plus de 90% de particules de diamètre inférieur à 100 microns. 



   Taux de charge : 16,3 % poids (théorique : 20%) Exemple 3 
On a opéré conformément au procédé de l'Exemple 1, à partir de 0,140 g de pamoate de   D-Trp6-LHRH   et 0,860 g de 

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 poly-1, 4-butylène-succinate (viscosité inhérente env. 0,35 dans   HFIP).   



   L'émulsion organique-aqueuse résultante a été transférée en une seule portion dans 500 ml d'eau et le mélange résultant soumis aux traitements successifs de centrifugation et lavage avec H20, filtration et finalement séchage sous pression réduite pour donner 0,52 g (rdt 52%) de microsphères de polysuccinate. 



   Taux de charge : 2,87% poids (théorique : 10%). 



  Exemple 4 
On a premièrement converti l'acétate d'un analogue de somatostatine de formule 
 EMI10.1 
 1 1 D-Phe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Trp-NHs 
 EMI10.2 
 en pamoate correspondant selon les techniques usuelles, pour obtenir des particules de dimension moyenne de 10 microns environ. 



   0,266 g dudit pamoate et 1,734 g de PLGA 75 : 25 (mole %) ont ensuite été utilisés conformément au procédé de l'Exemple 1. Après décharge de l'émulsion organique-aqueuse dans 2 l   d'H20   à   100C,   homogénéisation, puis centrifugation et traitements ultérieurs comme indiqué plus haut, on a recueilli 1,23 g (rdt 62%) de microsphères de PLGA comportant plus de 98% de particules d'un diamètre inférieur à 100 microns (max. à 40-65 microns). 



   Taux de charge : 8, 7% poids (théorique : 10%). 

 <Desc/Clms Page number 11> 

 



  Exemple 5 
On a procédé exactement comme indiqué à l'Exemple 4, en utilisant 0,532 g de pamoate d'analogue de somatostatine pour 1,468 g de PLGA 75 : 25. 



   Microsphères de PLGA : 1,21 g (rdt 60%). 



   Taux de charge : 17, 5% poids (théorique : 20%). 



   Les microsphères ainsi obtenues, stérilisées au moyen de rayons gamma ont été finalement mises en suspension dans un véhicule stérile approprié. Les tests in vivo (dosage de la quantité d'analogue de somatostatine dans le sérum sanguin de rats ayant subi une injection unique à JO) confirment une libération contrôlée   d'une   quantité détectable de substance active sur une période de 20 jours (injection i. m.). 
 EMI11.1 
 
<tb> 
<tb> 



  DUREE <SEP> (jours) <SEP> DOSAGE <SEP> DU <SEP> PEPTIDE <SEP> (ng/ml)
<tb> 0 <SEP> + <SEP> 3 <SEP> heures <SEP> 64,0
<tb> 1 <SEP> 15, <SEP> 0
<tb> 2 <SEP> 10, <SEP> 0
<tb> 3 <SEP> 5, <SEP> 0
<tb> 6 <SEP> 3,0
<tb> 8 <SEP> 2,0
<tb> 10 <SEP> 2,0
<tb> 14 <SEP> 1,5
<tb> 16 <SEP> 1, <SEP> 5
<tb> 20 <SEP> 1, <SEP> 5
<tb> 
 

 <Desc/Clms Page number 12> 

 Exemple 6 
3 g d'acétate d'un analogue de LHRH de formule   Ac-D-Nal-D-pCl-Phe-D-Pal-Ser-Tyr-D-Cit-Leu-Arg-Pro-D-AlaNH2   ont été convertis en pamoate correspondant selon les techniques usuelles et traités de façon à obtenir des particules de dimension moyenne d'env. 10 microns. 



   0, 317 g dudit pamoate et 1,683 g de PLGA 75 : 25 (mole %) ont ensuite été traités conformément au procédé de l'Exemple 1, pour finalement donner 1,61 g (rdt 80%) de microsphères de PLGA comportant plus de 94% de particules de diamètre inférieur à 100 microns (max. à 55-85 microns). 



   Taux de charge : 9.05% poids (théorique : 10%). 



  Exemple 7 
On a procédé exactement comme indiqué à l'Exemple 6, en utilisant 0,634 g du pamoate d'analogue de LHRH pour 1,366 g de PLGA 75 : 25. 



   Microsphères de PLGA : 1,70 g (rdt 85%). 



   Taux de charge : 18,3% (théorique : 20%). 



   Les microsphères ainsi obtenues ont ensuite été soumises à une stérilisation par rayons gamma et mises en suspension dans un véhicule stérile approprié. Les tests in vivo (dosage du taux de l'analogue dans le sérum sanguin chez les rats mâles) confirment la libération régulière d'une quantité biologiquement significative de substance active sur au moins 24 jours. 

 <Desc/Clms Page number 13> 

 
 EMI13.1 
 
<tb> 
<tb> 



  DUREE <SEP> (jours) <SEP> DOSAGE <SEP> DU <SEP> PEPTIDE <SEP> (ng/ml)
<tb> 0 <SEP> + <SEP> 3 <SEP> heures <SEP> 47,1
<tb> 1 <SEP> 48,9
<tb> 2 <SEP> 52,2
<tb> 3 <SEP> 46,9
<tb> 6 <SEP> 50,4
<tb> 8 <SEP> 40,1
<tb> 10 <SEP> 42,1
<tb> 14 <SEP> 29,8
<tb> 16 <SEP> 33, <SEP> 5
<tb> 20 <SEP> 33, <SEP> 0
<tb> 24 <SEP> 25,6
<tb> 
 Ces résultats sont aussi confirmés par les analyses faites sur des sujets sacrifiés à J30 : perte de poids des testicules d'au moins 80%, pertes de poids des vésicules séminales d'au moins 90%. 



  Exemple 8 
On a opéré conformément au procédé de l'Exemple 1, à partir de 0,05 g de pamoate de calcitonine de saumon et 1,0 g de copolymère d'acide de D, L-lactique/glycolique 50 : 50 (mole %). 



  Les tests standard in vivo confirment une libération contrôlée de la substance active sur une période d'environ 8 jours.

Claims

REVENDICATIONS 1. Procédé pour la préparation d'une composition destinée à la libération prolongée et contrôlée de substances médicamenteuses peptidiques, se présentant sous forme de microsphères en matériau polymère biodégradable incorporant ladite substance médicamenteuse, caractérisé en ce que : a) on convertit un peptide ou un sel de peptide soluble dans l'eau en un peptide, respectivement un sel de peptide, in- soluble dans l'eau, à savoir ayant une solubilité égale ou inférieure à 0,1 mg/ml à 25 C ; b) on met en suspension ledit peptide, respectivement sel de peptide, insoluble dans l'eau, en suspension dans un milieu organique contenant le matériau polymère biodégradable à l'état dissous ; c) on disperse ladite suspension organique dans un milieu aqueux formant la phase continue de l'émulsion résultante ;

d) on transfère ladite émulsion dans un excès de milieu aqueux et finalement sépare de la phase liquide les microsphères ainsi obtenues.
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'avant de transférer l'émulsion huile-dans-eau dans un excès de milieu aqueux, on procède à une évaporation par- tielle du solvant organique constituant la phase huile.
3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que la substance médicamenteuse peptidique est un polypep- tide naturel ou synthétique comprenant de 3 à 45 acides aminés. <Desc/Clms Page number 15>
4.-Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la substance médicamenteuse est choisie parmi l'oxytocine, la vasopressine, la corticotrophine, la calcitonine, le facteur de croissance épidermique (EGF), la prolactine, l'inhibitine, l'interféron, la somatostatine, l'insuline, le glucagon, le facteur natriurétique auriculaire (ANF), l'endorphine, un inhibiteur de la rénine, l'hormone de libération de la lutéinostimuline (LHRH), l'hormone de libération de l'hormone de croissance (GHRH), le peptide T ou l'un de leurs analogues ou homologues synthétiques.
5.-Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la substance médicamenteuse est le LHRH ou la somatostatine ou un de leurs analogues ou EMI15.1 homologues synthétiques choisis parmi EMI15.2 1 1 D-Phe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-OH, 1 1 D-Phe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Trp-NH, 1 1 D-Trp-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-NH 2, D-Phe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Thr-NH 1 1 D-Phe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Trp-NH2, 1 1 AcPhe-Cys-Phe-D-Trp-Lys-Thr-Cys-Thr-NH2, AcPhe-Cys-Tyr-D-Trp-Lys-Val-Cys-Trp-NH2, EMI15.3 Ac-DNal-DpCl-Phe-DPal-Ser-Tyr-DCit-Leu-Arg-Pro-DAla-NH2, (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-Gly-NH2, (pyro) Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Phe-Leu-Arg-Pro-Gly-NH2, (pyro) Glu-His-Trp-D-Ser-Tyr-D-Leu-Leu-Arg-Pro-Gly-NHR, <Desc/Clms Page number 16> ou (pyro)

Glu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-NHR (Rl = alkyle inférieur).
6.-Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que le sel de peptide insoluble dans l'eau est un pamoate, tannate, stéarate ou palmitate.
7.-Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le matériau polymère biodégradable est un polylactide, un polyglycolide, un copolymère d'acides lactique et glycolique, un polyester tel un polyalkylène fumarate ou succinate, ou encore un polyorthoester, un polyacétal ou un polyanhydride.
8.-Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que le copolymère d'acides lactique et glycolique est un copolymère d'acide L-ou D, L-lactique contenant de 45 à 90% (mole) de motifs acide lactique, respectivement de 55 à 10% (mole) de motifs acide glycolique.
9.-Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que le polyalkylène fumarate ou succinate est un poly-1,4butylène-succinate, poly-2,3-butylène-succinate, poly-1,4butylène-fumarate ou poly-2,3-butylène-fumarate.